This work was supported by a Wisconsin Partnership Program New Investigator Award (ID 2832), a National Heart, Lung, Blood Institute R01 Grant (HL-068673) and a T32 training Grant (HL-110853). We thank Dr. Melina Kibbe&#8217;s group at Northwestern University for providing helpful information.

הצהרת אתיקה:: הערה כל הנהלים עומדים במדריך לטיפול והשימוש בחי מעבדה (אקדמיות העיתונות הארצית, המהדורה 8, 2011), ופרוטוקולים שאושר על ידי ועדת הטיפול ושימוש בבעלי חיים המוסדיים באוניברסיטת ויסקונסין. כל הניתוחים בוצעו בהרדמה isoflurane (באמצעות שאיפה, לזרום 2 מיליליטר / דקת שיעור), וכל המאמצים שנעשו כדי למזער את הסבל. בעלי חיים היו מורדמים בחדר המלא בהדרגה עם CO 2. 1. אינדוקציה של הרדמה כללית וחתך בעור <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש זכר C57BL / 6 עכברים עם גיל 12-16 שבועות ומשקל של 23-28 גרם. להרדים את החיה על ידי isoflurane באמצעות מנגנון הרדמה במעגל סגור. לאשר הרדמה תקינה על ידי צובט את הבוהן שלו. החל משחת דמעות מלאכותית על עיניים כדי למנוע יובש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר במצב שכיבה עם האיבר השמאלי האחורי מעט נחטף ומשותף sl הברךמכווץ ightly. לגלח את השיער סביב אזור הירך השמאלי העליון ולחטא את העור עם chlorhexidine, הוחל שלוש פעמים באמצעות החלת מכותנה שקצה סטרילי. השתמש מעקר חרוז חם כדי לשמור על המכשירים מעוקרים במהלך הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח וילון גזה מעוקרת על רגל השמאל. ביצוע חתך 1.5 סנטימטרים ישר, אורך עור על הירך המדיאלי השמאלית ממפרק הברך למפשעה (איור 1 א). </li></ol> 2. חשיפה של עורק הירך וסניפים הערה: איור 1 מציג את האנטומיה כלי דם הגולמית בחלק העליון של הירך. עורק הירך השטחי (SFA) ניתן לצפות באמצעות מיקרוסקופ לנתח כאשר החתך בעור נעשה כראוי לאורך קו האמצע של הירך המדיאלי. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את fascia הדק מעל SFA עם פינצטה בסדר, ואז לולאת SFA עם 9-0 תפר ניילון. הערה: בתהליך זה, עצב הירך הוא לשים בקלות כIDE, אבל וריד הירך הסמוך דורש תשומת לב משום שקירה הוא כל כך דק שבו בקלות perforates והמדמם. טכניקת המפתח היא להתמקד בעורק עצמו; כל עוד לנתיחה מתבצעת בסמוך לעורק, וריד כל נזק מקרי הוא מיותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שSFA סובב, להחזיק את התפר עם מלקחיים יתוש ולמשוך אותו מעט כלפי מטה. תמרון זה עושה נתיחה נוספת קל יותר, אבל כדי למנוע נזק לעורק לא למשוך יותר מדי בכוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תמשיך לנתח את העורק proximally לחשוף ולולאת עורק הירך הנפוצה (CFA) עם 9-0 תפר ניילון. הערה: בדרך כלל, looping CFA בדיסטלי הצבע על העורק ברום הבטן (איור 1) הוא מספיק להכנסת חוט. החזק את תפר לולאת CFA עם מלקחיים יתוש באותה הדרך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> משוך את תפר לולאת CFA כלפי מעלה וכלפי מטה תפר לולאת SFA לחשוף את הסתעפות של SFA ועורק הירך עמוק (DFA). DFA, הסניף המרכזי של CFA,הולך לכיוון שריר הירך (איור 1). הערה: החוט יתווסף מDFA מאוחר יותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לולאת DFA במשנה זהירות בגלל הווריד הסמוך הוא סבוך מתחת לעורק. במקרה של דימום מהעורק, דחיסה פשוטה 30 עד 60 שניות עם גזה היא בדרך כלל מספיק כדי לייצר עצירת דימום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שDFA סובב עם 9-0 תפר ניילון, לוודא שכל שלוש לולאות התפר נמצאות בעמדות הנכונות שלהם (איור 2 א). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להמשיך עם דיסקציה של DFA distally ולקשור את העורק בנקודה רחוקה ככל האפשר מההסתעפות. חותך תפר נוסף אך להשאיר באורך מסוים, כך שיכולים להיות מוחזקים שני הקצוות עם מלקחיים יתוש, שלייצב את DFA מה שהופך את הכנסת החוט קל יותר. </li></ol> 3. יצירת חוט פגיעה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס חוט באמצעות DFA <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מסננים את תפרי CFA, SFA, וDFA להקים hemostat זמני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעשות חור קטן בDFעם microscissors. הכנס את הטיפים של microtweezers המעוקל כדי להרחיב את החור גדול מספיק עבור חוט בקוטר 0.015 אינץ &#39;(איור 2 מדגים את ההבדל בגודל בין העורק והחוט). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני ביצוע חור בDFA, לשחרר את תפר לולאת CFA ועדינות מהדקת / לסחוט את DFA מספר פעמים עם microtweezers שקצהו משעמם. התמרון הזה מרחיב את הקוטר העורק להפליא כדי להקל על החדרת התיל. מלחלח את החוט ביסודיות עם PBS חשוב גם להחדרה חלקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעת ביצוע חור בDFA, לא לחתוך את הדופן העורקת, אבל להפוך את צביטה בצורת V קטנה ולצבוט את הדש עם microtweezers המחודד למניפולציה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את החוט דרך החור כראוי-מורחב על DFA. בעדינות לקדם את החוט לכיוון עורק הכסל תוך התרופפות תפר הלולאה סביב CFA. 5-8 מ&quot;מ זה מספיק כדי לכסות את כל אורך CFA ברוב המקרים (איור 2 ג </strong&gt;). אל תכניס את החוט בכוח כניקוב עורקים גורם בדרך כלל לאובדן של העכבר. קיצור החוט לכ 15 מ&quot;מ באורך מסייע בטיפול. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השאר חוט בתוך עבור 1 Min <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הכנסת החוט לאורך האופטימלי, להשאיר אותו לדקות 1 ללהתמתח יתר הדפנות העורקים. להרטיב את החוט ועורקים עם PBS כדי למנוע התייבשות. תפר 9-0 ניילון נוסף ניתן להציב סביב הפרוקסימלי DFA לנקודת תיל-ההכנסה בזמן ההמתנה הזה. תפר זה ישמש מאוחר יותר כדי לסגור את החור בDFA לאחר פינוי התיל. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחזר חוט ולחדש את זרימת הדם <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החזק את החוט עם מלקחיים cannulation הכלי, ולמשוך בחזרה אותו בעדינות; החוט צריך להאסף בצורה חלקה. כדי להתגבר על כל התנגדות, בדרך כלל נגרמת על ידי דבקות של החוט לדפנות העורקים, שהפיל את החוט עם סיבוב עדין מועיל. שוב, תמרון חזק יכול לגרום לאובדן של בעלי חיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl">חרה אחזור התיל, לקשור DFA בנקודת הסתעפות עם תפר 9-0 ניילון. לא לקשור קרוב מדי להסתעפות, שיסכן את תזרים הדם לSFA. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שחרר את לולאות תפר SFA וCFA לחדש את זרימת הדם הנורמלית. שים לב שCFA מורחב היטב על ידי החדרת תיל (איור 2 ד). </li></ol></li></ol> 4. עור סגר ולאחר ניתוח טיפול <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שליטת מדמם. דליפה קטנה יכולה להיעצר על ידי דחיסה פשוטה; כמה דימומי עורקים גדולים ידרשו תפרים עם תפר 11-0 ניילון. עורקים נתפרו אלה סופו של דבר יגרמו לחסימת עורקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את עור פצע עם סיכות עור (בדרך כלל 3-4 סיכות). לשמור על אזור הפצע מעוקר על ידי יישום פתרון כירורגי chlorhexidine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל טיפולים שלאחר ניתוח. לשלוט בכאב של העכבר עם זריקות תת עורית של עצירות. שמור את העכבר על כרית החימום עד שהוא חזר סוףficient תודעה לשמור כיבה sternal. הבית אותו בכלוב נקי בלי החברה של בעלי חיים אחרים, עד שהתאושש לחלוטין. </li></ol>

<ol>
	<li>Dzau, V. J., Braun-Dullaeus, R. C., Sedding, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+proliferation+and+atherosclerosis:+new+perspectives+and+therapeutic+strategies.">Vascular proliferation and atherosclerosis: new perspectives and therapeutic strategies.</a> Nat Med. 8 (11), 1249-1256 (2002).</li><li>Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intimal+hyperplasia+in+murine+models.">Intimal hyperplasia in murine models.</a> Curr Drug Targets. 9 (3), 251-260 (2008).</li><li>Ferns, G. A., Avades, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanisms+of+coronary+restenosis:+insights+from+experimental+models.">The mechanisms of coronary restenosis: insights from experimental models.</a> Int J Exp Pathol. 81 (2), 63-88 (2000).</li><li>Sata, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+of+vascular+injury+that+induces+rapid+onset+of+medial+cell+apoptosis+followed+by+reproducible+neointimal+hyperplasia.">A mouse model of vascular injury that induces rapid onset of medial cell apoptosis followed by reproducible neointimal hyperplasia.</a> J Mol Cell Cardiol. 32 (11), 2097-2104 (2000).</li><li>Xu, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+arteriosclerosis:+from+arterial+injuries+to+vascular+grafts.">Mouse models of arteriosclerosis: from arterial injuries to vascular grafts.</a> Am J Pathol. 165 (1), 1-10 (2004).</li><li>Lv, L., Meng, Q., Ye, M., Wang, P., Xue, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=STAT4+deficiency+protects+against+neointima+formation+following+arterial+injury+in+mice.">STAT4 deficiency protects against neointima formation following arterial injury in mice.</a> J Mol Cell Cardiol. 74C, 284-294 (2014).</li><li>Zhu, B., Kuhel, D. G., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Apolipoprotein+E+inhibits+neointimal+hyperplasia+after+arterial+injury+in+mice.">Apolipoprotein E inhibits neointimal hyperplasia after arterial injury in mice.</a> Am J Pathol. 157 (6), 1839-1848 (2000).</li><li>Fu, Y., Duru, E. A., Davies, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+metabolic+syndrome+on+the+response+to+arterial+injury.">Effect of metabolic syndrome on the response to arterial injury.</a> J Surg Res. , (2014).</li><li>Kuhel, D. G., Zhu, B., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinction+in+genetic+determinants+for+injury-induced+neointimal+hyperplasia+and+diet-induced+atherosclerosis+in+inbred+mice.">Distinction in genetic determinants for injury-induced neointimal hyperplasia and diet-induced atherosclerosis in inbred mice.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 22 (6), 955-960 (2002).</li><li>Cooley, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+strain+differential+neointimal+response+in+vein+grafts+and+wire-injured+arteries.">Mouse strain differential neointimal response in vein grafts and wire-injured arteries.</a> Circ J. 71 (10), 1649-1652 (2007).</li><li>Ishigami, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deficiency+of+CuZn+superoxide+dismutase+promotes+inflammation+and+alters+medial+structure+following+vascular+injury.">Deficiency of CuZn superoxide dismutase promotes inflammation and alters medial structure following vascular injury.</a> J Atheroscler Thromb. 18 (11), 1009-1017 (2011).</li></ol>

The authors declare no competing financial interests.

הליך פציעת החוט הוא ישים כל עוד המבנים אנטומיים שלהם דומים. 4 במאמר זה את כל הזנים של עכברים, שנהגנו C57BL / 6 עכברי זכרים עם גיל 12-16 שבועות. כפי שלמדנו מהמחקרים הראשוניים שלנו, עורקי הירך של עכברים צעירים מ -10 שבועות הם לעתים קרובות כל כך קטנים שהכנסת חוט היא די מאתגרת...

In the era of expanded application of endovascular treatments for various cardiovascular diseases, restenosis after angioplasty is one of the major problems for patients undergoing such treatments. Damage to the vascular endothelium at the time of angioplasty, in concert with the atherosclerotic background, induces excessive smooth muscle cell proliferation in the medial layer, resulting in neointimal hyperplasia.1,2 A viable animal model that recapitulates post-angioplasty neointimal hyperplasia is, thus, important not only for the investigation of disease mechanisms but also for the development of effective therapeutics to treat this pathology.
Mice represent an excellent model animal to recapitulate neointimal hyperplasia for the following reasons: the genetic backgrounds of experimental mice are well established; a wide variety of genetically-modified strains are available;2 obtaining littermates of the same background is easy; and the cost of the animals is relatively low. Arterial ligation model and wire injury model are the two most common mouse models of mechanically-induced neointimal hyperplasia. The arterial ligation model is easy to create, but physiologically dissimilar to the actual angioplasty procedure. The wire injury model closely mimics actual angioplasty procedures but is technically difficult due to the small size of mouse arteries.2,3 Sata et al. first described a wire injury method for mouse femoral arteries based on the anatomical structure of the vasculature and the use of proper-sized flexible wire. Utilizing this technique, they succeeded in reproducibly inducing neointimal hyperplasia in various strains of mice.4
Although femoral wire injury is a well-established model, some of the technical aspects of the technique are highly challenging compared to other models such as ligation.5 The purpose of this paper is to describe our mouse wire injury model procedures in detail, which is a modified version of Sata&#8217;s original method. We have made two main modifications: 1) Looping only the arteries, and 2) No lidocaine use.

<table><tbody><tr><td>Fixed Core Wire Guide</td><td>Cook</td><td>G02426</td><td>Diameter 0.015 inch, Straight</td></tr><tr><td>Dilation Forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-4927</td><td>Curved, blunt tips</td></tr><tr><td>Dumont Tweesers #5</td><td>World Precision Instruments</td><td>14095</td><td>Straight, sharp tips</td></tr><tr><td>Dumont Vessel Cannulation Forceps</td><td>World Precision Instruments</td><td>503373</td><td></td></tr><tr><td>McPherson-Vannas Scissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>501234</td><td></td></tr><tr><td>Mosquito Forceps</td><td>World Precision Instruments</td><td>501291</td><td></td></tr><tr><td>Ethilon Nylon Suture 9-0</td><td>Ethicon</td><td>7717G</td><td>9-0, Black Nylon Monofilament</td></tr><tr><td>Micro AROSuture, Sterile 11-0, 70 micrometers, MET Point</td><td>AROSurgical</td><td>VT4A00N07</td><td>11-0, Black Nylon Monofilament</td></tr><tr><td>3M Precise Multi-Shot DS Disposable Skin Stapler</td><td>3M</td><td>DS-25</td><td></td></tr></tbody></table>

a murine model of arterial restenosis: technical aspects of femoral wire injury

מחלת לב וכלי דם הנגרמת על ידי טרשת עורקים היא הגורם המוביל למוות בעולם המפותח. צמצום של לומן הכלי, בשל התפתחות רובד טרשתית או פקיעת הפלאק הוקם, קוטע את זרימת דם נורמלית מובילה לתחלואות שונות כגון אוטם שריר לב ושבץ. בנהלי מרפאת endovascular כגון אנגיופלסטיקה מבוצעים בדרך כלל לפתוח מחדש את לומן. עם זאת, טיפולים אלה באופן בלתי נמנע נזק קיר הכלי, כמו גם את האנדותל של כלי הדם, מפעילה תגובת ריפוי מוגזמת ופיתוח של לוחית neointimal המשתרעת לתוך הלום גורם היצרות כלי (מחדש היצרות). היצרות נשארה גורם עיקרי לכישלון של טיפולי endovascular לטרשת עורקת. לפיכך, מודלים של בעלי חיים פרה-קליניים של היצרות הם חשובים וחיוני לחקירת מנגנוני pathophysiological כמו גם translational גישות להתערבות של כלי דם. בין כמה experime העכברימודלים פתיחות opening סגירות closures, פגיעת חוט עורק הירך מקובלת כמתאים ביותר ללימודים של היצרות לאחר אנגיופלסטיקה כי זה דומה להליך הצנתור שפוגע גם האנדותל וקיר כלי מקרוב. עם זאת, יש לי חוקרים רבים קושי ניצול מודל זה בשל הרמה הגבוהה של קושי טכני. זה בעיקר בגלל חוט מתכת צריך להיות מוכנס לתוך עורק הירך, שהם כ שלוש פעמים דקות יותר מהחוט, כדי ליצור פגיעה מספיק כדי לגרום neointima הבולט. כאן, אנו מתארים את הפרטים הניתוחיים ההכרחיים כדי להתגבר ביעילות על הקשיים הטכניים העיקריים של מודל זה. על פי הנהלים שהוצגו, ביצוע פציעת חוט עורק הירך עכבר הופכת להיות יותר קלה. ברגע להכיר, ההליך כולו יכול להסתיים בתוך 20 דקות.

ארבעה שבועות לאחר ניתוח, לקצור את עורק הירך-נפצע חוט ולעשות דגימת בלוק פרפין לנתח את היווצרות neointima. לגרום הרדמה כללית כפי שתואר לעיל. פתח את החזה באופן מיידי ולהכניס מחט פרפר 20-מד לחדר השמאלי. חבר את הקו לבקבוק עירוי. בצע קיבעון זלוף באמצעות עירוי טפטוף של PBS ואחרי...

Watch this Scientific Journal Video about A Murine Model of Arterial Restenosis: Technical Aspects of Femoral Wire Injury at JoVE.com

A Murine Model of Arterial Restenosis: Technical Aspects of Femoral Wire Injury

מודל פציעת חוט עורק הירך העכבר של היצרות הוא מאתגר מבחינה טכנית. בפרוטוקול זה אנו מציגים את הפרטים הטכניים מפתח חיוניים לביצוע בהצלחה פציעת חוט כדי לגרום neointima העקבי למחקרים של היצרות.

דגם Murine של עורקי היצרות: היבטים טכניים של עצם הירך חוט פגיעה

Cardiovascular disease caused by atherosclerosis is the leading cause of death in the developed world. Narrowing of the vessel lumen, due to ...

a-murine-model-arterial-restenosis-technical-aspects-femoral-wire

Research

JoVE Journal

Medicine

20.0K Views.  University of Wisconsin School of Medicine and Public Health.  מודל פציעת חוט עורק הירך העכבר של היצרות הוא מאתגר מבחינה טכנית. בפרוטוקול זה אנו מציגים את הפרטים הטכניים מפתח חיוניים לביצוע בהצלחה פציעת חוט כדי לגרום neointima העקבי למחקרים של היצרות. 

Video: A Murine Model of Arterial Restenosis: Technical Aspects of Femoral Wire Injury

Murine Model of Hindlimb Ischemia 

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide. Medical therapies for symptomatic relief are limited. Surgical or endovascular interventions are useful for some individuals, but long-term results are often disappointing. As a result, there is a need for developing new therapies to treat PAD. The murine hindlimb ischemia preparation is a model of PAD, and is useful for testing new therapies. When compared to other models of tissue ischemia such as coronary or cerebral artery ligation, femoral artery ligation provides for a simpler model of ischemic tissue. Other advantages of this model are the ease of access to the femoral artery and low mortality rate. 
In this video, we demonstrate the methodology for the murine model of unilateral hindimb ischemia. The specific materials and procedures for creating and evaluating the model will be described, including the assessment of limb perfusion by laser Doppler imaging. This protocol can also be utilized for the transplantation and non-invasive tracking of cells, which is demonstrated by Huang et al.1.

Murine Model of Hindlimb Ischemia

The surgical procedure for induction of unilateral hindlimb ischemia is demonstrated, with confirmation of ischemia by laser Doppler perfusion imaging.

דגם Murine של איסכמיה Hindlimb

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide.  Medical therapies for ...

Biology

Murine Spinotrapezius Model to Assess the Impact of Arteriolar Ligation on Microvascular Function and Remodeling

The murine spinotrapezius is a thin, superficial skeletal support muscle that extends from T3 to L4, and is easily accessible via dorsal skin incision. Its unique anatomy makes the spinotrapezius useful for investigation of ischemic injury and subsequent microvascular remodeling. Here, we demonstrate an arteriolar ligation model in the murine spinotrapezius muscle that was developed by our research team and previously published1-3. For certain vulnerable mouse strains, such as the Balb/c mouse, this ligation surgery reliably creates skeletal muscle ischemia and serves as a platform for investigating therapies that stimulate revascularization. Methods of assessment are also demonstrated, including the use of intravital and confocal microscopy. The spinotrapezius is well suited to such imaging studies due to its accessibility (superficial dorsal anatomy) and relative thinness (60-200 &mu;m). The spinotrapezius muscle can be mounted en face, facilitating imaging of whole-muscle microvascular networks without histological sectioning. We describe the use of intravital microscopy to acquire metrics following a functional vasodilation procedure; specifically, the increase in arterilar diameter as a result of muscle contraction. We also demonstrate the procedures for harvesting and fixing the tissues, a necessary precursor to immunostaining studies and the use of confocal microscopy.

We demonstrate a novel arterial ligation model in murine spinotrapezius muscle, including a step-by-step procedure and description of required instrumentation. We describe the surgery and relevant outcome measurements relating to vascular network remodeling and functional vasodilation using intravital and confocal microscopy.

דגם Spinotrapezius Murine כדי להעריך את ההשפעה של קשירת arteriolar על תפקוד כלי דם וRemodeling

The murine spinotrapezius is a thin, superficial skeletal support muscle that extends from T3 to L4, and is easily accessible via dorsal skin incision. ...

A Murine Model of Stent Implantation in the Carotid Artery for the Study of Restenosis

Despite the considerable progress made in the stent development in the last decades, cardiovascular diseases remain the main cause of death in western countries. Beside the benefits offered by the development of different drug-eluting stents, the coronary revascularization bears also the life-threatening risks of in-stent thrombosis and restenosis. Research on new therapeutic strategies is impaired by the lack of appropriate methods to study stent implantation and restenosis processes. Here, we describe a rapid and accessible procedure of stent implantation in mouse carotid artery, which offers the possibility to study in a convenient way the molecular mechanisms of vessel remodeling and the effects of different drug coatings.

A model of stent implantation in mouse carotid artery is described. Compared to other similar methods, this procedure is very rapid, simple and accessible, offering the possibility to study in a convenient way the vascular wall reaction to different drug-eluting stents and the molecular mechanisms of restenosis.

דגם Murine של השתלת תומכן בעורק הראשי לחקר restenosis

Despite  the considerable progress made in the stent development in the last decades,  cardiovascular diseases remain the main cause of death in western ...

Generation and 3-Dimensional Quantitation of Arterial Lesions in Mice Using Optical Projection Tomography

The generation and analysis of vascular lesions in appropriate animal models is a cornerstone of research into cardiovascular disease, generating important information on the pathogenesis of lesion formation and the action of novel therapies. Use of atherosclerosis-prone mice, surgical methods of lesion induction, and dietary modification has dramatically improved understanding of the mechanisms that contribute to disease development and the potential of new treatments.
Classically, analysis of lesions is performed ex vivo using 2-dimensional histological techniques. This article describes application of optical projection tomography (OPT) to 3-dimensional quantitation of arterial lesions. As this technique is non-destructive, it can be used as an adjunct to standard histological and immunohistochemical analyses.
Neointimal lesions were induced by wire-insertion or ligation of the mouse femoral artery whilst atherosclerotic lesions were generated by administration of an atherogenic diet to apoE-deficient mice.
Lesions were examined using OPT imaging of autofluorescent emission followed by complementary histological and immunohistochemical analysis. OPT clearly distinguished lesions from the underlying vascular wall. Lesion size was calculated in 2-dimensional sections using planimetry, enabling calculation of lesion volume and maximal cross-sectional area. Data generated using OPT were consistent with measurements obtained using histology, confirming the accuracy of the technique and its potential as a complement (rather than alternative) to traditional methods of analysis.
This work demonstrates the potential of OPT for imaging atherosclerotic and neointimal lesions. It provides a rapid, much needed ex vivo technique for the routine 3-dimensional quantification of vascular remodelling.

Ex vivo analysis of arterial lesions from animal models of cardiovascular disease classically relies on histological and immunohistochemical techniques. These provide 2-dimensional measurements in 3-dimensional lesions. This manuscript describes the generation of arterial lesions for quantitative analysis in 3-dimensions using optical projection tomography.

דור וQuantitation 3 ממדים של עורקי פצעים בעכברים באמצעות טומוגרפיה הקרנה אופטית

The generation and analysis of vascular lesions in appropriate animal models is a cornerstone of research into cardiovascular disease, generating ...

Murine Model of Femoral Artery Wire Injury with Implantation of a Perivascular Drug Delivery Patch

Percutaneous interventions including balloon angioplasty and stenting have been used to restore blood flow in vessels with occlusive vascular disease. While these therapies lead to the rapid restoration of blood flow, these technologies remain limited by restenosis in the case of bare metal stents and angioplasty, or reduced healing and possibly enhanced risk of thrombosis in the case of drug eluting stents. A key pathophysiological mechanism in the formation of restenosis is intimal hyperplasia caused by the activation of vascular smooth muscle cells and inflammation due to arterial stretch and injury. Surgeries that induce arterial injury in genetically modified mice are useful for the mechanistic study of the vascular response to injury but are often technically challenging to perform in mouse models due to the their small size and lack of appropriate sized devices. We describe two approaches for a surgical technique that induces endothelial denudation and arterial stretch in the femoral artery of mice to produce robust neointimal hyperplasia. The first approach creates an arteriotomy in the muscular branch of the femoral artery to obtain vascular access. Following wire injury this arterial branch is ligated to close the arteriotomy. A second approach creates an arteriotomy in the main femoral artery that is later closed through localized cautery. This method allows for vascular access through a larger vessel and, consequently, provides a less technically demanding procedure that can be used in smaller mice. Following either method of arterial injury, a degradable drug delivery patch can be placed over or around the injured artery to deliver therapeutic agents.

We describe a surgical technique that produces wire injury in the femoral artery of mice to induce neointimal hyperplasia to serve as a model testing system for the perivascular delivery of therapeutic compounds for the inhibition of restenosis.

דגם Murine של עורק הירך חוט פגיעה בהשרשה של perivascular החדרת תרופות תיקון

Percutaneous interventions including balloon angioplasty and stenting have been used to restore blood flow in vessels with occlusive vascular disease. ...

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The "Wire-Injury" Model

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. Moreover, by rupture of the defective vascular wall, atherosclerosis induces occlusive thrombus formation, which represents the main cause of myocardial infarction or stroke and the most frequent cause of death. Despite the advances in the cardiovascular field, many questions remain unanswered, and additional basic research is essential to improve our understanding of the molecular mechanisms during atherosclerosis and its effects. Due to limited clinical studies, there is a need for representative animal models recreating atherosclerotic conditions such as neointima formation after stent implantation, balloon angioplasty, or endarterectomy. Since the mouse presents many advantages and is the most frequently used model for studying molecular processes, the current study proposes an invasive procedure of endothelial denudation, also known as the wire-injury model, which is representative of the human condition of neointima formation in arteries after revascularization procedures.

This study describes an invasive procedure for the induction of accelerated atherosclerosis in mice. In comparison to other methods using electric- or cryo-induced injury, mechanical-induced injury mimics the human condition of restenosis after revascularization therapies and is ideal for the study of the molecular mechanisms involved.

אינדוקציה של טרשת עורקים מואצת בעכברים: מודל "פגיעת חוט"

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These complications can be attributed to impairments in re-endothelialization within the wound margins. Yet, the cellular and molecular mechanisms of re-endothelialization remain to be defined. While several animal models to study re-endothelialization after arterial denudation are available, few are performed in the mouse because of surgical limitations. This undermines the opportunity to exploit transgenic mouse lines and investigate the contribution of specific genes to the process of re-endothelialization. Here, we present a step-by-step protocol for creating a highly reproducible murine model of arterial denudation injury in the infrarenal abdominal aorta using external vascular clamping. Immunocytochemical staining of injured aortas for fibrinogen and &#946;-catenin demonstrate the exposure of a pro-thrombotic surface and the border of intact endothelium, respectively. The method presented here has the advantages of speed, excellent overall survival rate, and relative technical ease, creating a uniquely practical tool for imposing arterial denudation injury in transgenic mouse models. Using this method, investigators may elucidate the mechanisms of re-endothelialization under normal or pathological conditions.

Understanding the cellular and molecular mechanisms of re-endothelialization following arterial denudation injury is of paramount importance in preventing thrombosis and restenosis of arteries. Here we describe a protocol for reproducible arterial denudation injury of the infrarenal abdominal aorta. The procedure was developed to investigate the underlying mechanisms that regulate endothelial regeneration using mouse models.

פגיעת denudation עורקים לשחזור על ידי infrarenal בטן אב העורקים Clamping במודל Murine

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the luminal surface area in arteries thereby reducing adequate blood flow to organs and distal tissues. Clinically, revascularization procedures such as balloon angioplasty with or without stent placement aim to restore blood flow. Although these procedures reestablish blood flow by reducing plaque burden, they damage the vessel wall, which initiates the arterial healing response. The prolonged healing response causes arterial restenosis, or re-narrowing, ultimately limiting the long-term success of these revascularization procedures. Therefore, preclinical animal models are integral for analyzing the pathophysiological mechanisms driving restenosis, and provide the opportunity to test novel therapeutic strategies. Murine models are cheaper and easier to operate on than large animal models. Balloon or wire injury are the two commonly accepted injury modalities used in murine models. Balloon injury models in particular mimic the clinical angioplasty procedure and cause adequate damage to the artery for the development of restenosis. Herein we describe the surgical details for performing and histologically analyzing the modified, pressure-controlled rat carotid artery balloon injury model. Additionally, this protocol highlights how local periadventitial application of therapeutics can be used to inhibit neointimal hyperplasia. Lastly, we present light sheet fluorescence microscopy as a novel approach for imaging and visualizing the arterial injury in three-dimensions.

The rat carotid artery balloon injury mimics the clinical angioplasty procedure performed to restore blood flow in atherosclerotic vessels. This model induces the arterial injury response by distending the arterial wall, and denuding the intimal layer of endothelial cells, ultimately causing remodeling and an intimal hyperplastic response.

עכברוש עורק הראש מבוקר לחץ על פגיעה בבלון מגזרי עם יישום טיפולי Periadventitial

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Multiphoton Intravital Imaging for Monitoring Leukocyte Recruitment during Arteriogenesis in a Murine Hindlimb Model

Arteriogenesis strongly depends on leukocyte and platelet recruitment to the perivascular space of growing collateral vessels. The standard approach for analyzing collateral arteries and leukocytes in arteriogenesis is ex vivo (immuno-) histological methodology. However, this technique does not allow the measurement of dynamic processes such as blood flow, shear stress, cell-cell interactions, and particle velocity. This paper presents a protocol to monitor in vivo processes in growing collateral arteries during arteriogenesis utilizing intravital imaging. The method described here is a reliable tool for dynamics measurement and offers a high-contrast analysis with minimal photo-cytotoxicity, provided by multiphoton excitation microscopy. Prior to analyzing growing collateral arteries, arteriogenesis was induced in the adductor muscle of mice by unilateral ligation of the femoral artery.
After the ligation, the preexisting collateral arteries started to grow due to increased shear stress. Twenty-four hours after surgery, the skin and subcutaneous fat above the collateral arteries were removed, constructing a pocket for further analyses. To visualize blood flow and immune cells during in vivo imaging, CD41-fluorescein isothiocyanate (FITC) (platelets) and CD45-phycoerythrin (PE) (leukocytes) antibodies were injected intravenously (i.v.) via a catheter placed in the tail vein of a mouse. This article introduces intravital multiphoton imaging as an alternative or in vivo complementation to the commonly used static ex vivo (immuno-) histological analyses to study processes relevant for arteriogenesis. In summary, this paper describes a novel and dynamic in vivo method to investigate immune cell trafficking, blood flow, and shear stress in a hindlimb model of arteriogenesis, which enhances evaluation possibilities notably.

The recruitment of leukocytes and platelets constitutes an essential component necessary for the effective growth of collateral arteries during arteriogenesis. Multiphoton microscopy is an efficient tool for tracking cell dynamics with high spatio-temporal resolution in vivo and less photo-toxicity to study leukocyte recruitment and extravasation during arteriogenesis.

הדמיה תוך-חיונית מולטיפוטון לניטור גיוס לויקוציטים במהלך דלקת עורקים במודל מורין גפיים אחוריות

Arteriogenesis strongly depends on leukocyte and platelet recruitment to the perivascular space of growing collateral vessels. The standard approach for ...

Murine Aortic Crush Injury: An Efficient In Vivo Model of Smooth Muscle Cell Proliferation and Endothelial Function

Arterial reconstruction, whether angioplasty or bypass surgery, involves iatrogenic trauma causing endothelial disruption and vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation. Common murine models study small vessels such as the carotid and femoral arteries. Herein we describe an in vivo system in which both VSMC proliferation and endothelial barrier function can be simultaneously assessed in a large vessel. We studied the infrarenal aortic response to injury in C57BL/6 mice. The aorta was injured from the left renal vein to the aortic bifurcation by 30 transmural crushes of 5-seconds duration with a cotton-tipped applicator. Morphological changes were assessed with conventional histology. Aorta wall thickness was measured from the luminal surface to the adventitia. EdU integration and counter staining with DAPI and alpha-actin was used to demonstrate VSMC proliferation. Activation of ERK1/2, a known moderator of intimal hyperplasia formation, was determined by Western Blot analysis. The effect of inflammation was determined by immunohistochemistry for B-cells, T-cells, and macrophages. En face sections of endothelium were visualized with scanning electron microscopy (SEM). Endothelial barrier function was determined with Evans Blue staining. Transmural injury resulted in aortic wall thickening. This injury induced VSMC proliferation, most prominently at 3 days after injury, and early activation of ERK1/2 and decreased p27kip1 expression. Injury did not result in increased B-cells, T-cells, or macrophages infiltration in the vessel wall. Injury caused partial endothelial cell denudation and loss of cell-cell contact. Injury resulted in a significant loss of endothelial barrier function, which returned to baseline after seven days. The murine transmural blunt aortic injury model provides an efficient system to simultaneously study both VSMC proliferation and endothelial barrier function in a large vessel.

Murine Aortic Crush Injury: An Efficient In Vivo Model of Smooth Muscle Cell Proliferation and Endothelial Function

Restenosis following cardiovascular procedures (bypass surgery, angioplasty, or stenting) is a significant problem reducing the durability of these procedures. An ideal therapy would inhibit smooth muscle cell (VSMC) proliferation while promoting regeneration of the endothelium. We describe a model for simultaneous assessment of VSMC proliferation and endothelial function in vivo.

Murine אבי העורקים למחוץ פגיעה: יעיל<em&gt; בויבו</em&gt; מודל של תאים שרירים חלקה תפוצת ו אנדותל פונקציה

Arterial reconstruction, whether angioplasty or bypass surgery, involves iatrogenic trauma causing endothelial disruption and vascular smooth muscle cell ...