This work was supported by a Wisconsin Partnership Program New Investigator Award (ID 2832), a National Heart, Lung, Blood Institute R01 Grant (HL-068673) and a T32 training Grant (HL-110853). We thank Dr. Melina Kibbe&#8217;s group at Northwestern University for providing helpful information.

NOTA: Etica Dichiarazione: Tutte le procedure sono conformi alla Guida per la cura e l&#39;uso di animali da laboratorio (National Academies Press, 8 ° edizione, 2011), e dei protocolli approvati dalla cura e l&#39;uso degli animali Comitato Istituzionale presso l&#39;Università del Wisconsin. Tutti gli interventi chirurgici sono stati eseguiti in anestesia isoflurano (attraverso inalazione, portata 2 ml / min), e sono stati fatti tutti gli sforzi per ridurre al minimo le sofferenze. Gli animali sono stati sacrificati in una camera progressivamente riempita con CO 2. 1. L&#39;induzione di anestesia generale e incisione cutanea <ol><li> Utilizzare maschio C57BL / 6 topi con un&#39;età di 12-16 settimane e peso di 23-28 g. Anestetizzare l&#39;animale da isoflurano attraverso un apparato anestesia a circuito chiuso. Verificare il corretto anestesia pizzicando la sua punta. Applicare un po &#39;lacrime artificiali pomata sugli occhi per prevenire la secchezza. </li><li> Posizionare il mouse in posizione supina con dell&#39;arto posteriore sinistro leggermente addotto e il ginocchio sl congiuntaightly flesso. Radersi i capelli intorno alla regione coscia sinistra e disinfettare la pelle con clorexidina, applicato tre volte utilizzando cotone sterile applicatori con punta. Utilizzare una perlina sterilizzatrice calda per mantenere gli strumenti sterilizzati durante l&#39;intervento chirurgico. </li><li> Posizionare un drappo garza sterile sulla gamba sinistra. Effettuare una retta 1,5 centimetri, incisione cutanea longitudinale sulla coscia mediale sinistro dal ginocchio all&#39;inguine (Figura 1A). </li></ol> 2. L&#39;esposizione di dall&#39;arteria femorale e Filiali NOTA: La figura 1B mostra l&#39;anatomia vascolare lordo nella coscia superiore. L&#39;arteria femorale superficiale (SFA) può essere osservato attraverso un microscopio da dissezione quando l&#39;incisione cutanea è correttamente effettuata lungo la linea mediana della coscia mediale. <ol><li> Aprire la sottile fascia sovrastante la SFA con le pinzette sottili e poi avvolgere il SFA con 9-0 nylon sutura. NOTA: In questo processo, il nervo femorale è facilmente messo comeide, ma la vena femorale adiacente richiede molta attenzione perché la sua parete è così sottile che fora e sanguina facilmente. La tecnica chiave è quello di concentrarsi sulla arteria stessa; finché la dissezione avviene vicino all&#39;arteria, danni accidentali vena è evitabile. </li><li> Una volta che la SFA è in loop, tenere la sutura con una pinza di zanzare e tirarla leggermente verso il basso. Questa manovra rende ulteriormente dissezione più facile, ma per evitare di danneggiare l&#39;arteria non tirare troppo forza. </li><li> Continuare dissezione dell&#39;arteria prossimale per esporre e ciclo l&#39;arteria femorale comune (CFA) con 9-0 nylon sutura. NOTA: In genere, looping il CFA in un punto distale all&#39;arteria epigastrico (Figura 1B) è sufficiente per l&#39;inserimento del filo. Tenere il ciclo di sutura CFA con pinze zanzara nello stesso modo. </li><li> Tirare l&#39;anello di sutura CFA verso l&#39;alto e il ciclo di sutura SFA verso il basso per scoprire la biforcazione di SFA e profonda arteria femorale (DFA). Il DFAE, la principale filiale del TUF,va verso il muscolo della coscia (Figura 1B). NOTA: Il filo verrà inserito dal DFA tardi. </li><li> Loop la DFA con cautela perché la vena adiacente è aggrovigliato sotto l&#39;arteria. In caso di sanguinamento dalla vena, un 30- a 60 sec compressione semplice con una garza di solito è sufficiente a produrre l&#39;emostasi. </li><li> Una volta che il DFAE è in loop con 9-0 sutura in nylon, assicurarsi che tutti e tre i cicli di sutura sono al loro corrette posizioni (Figura 2A). </li><li> Procedere con la dissezione del DFA distalmente per legare l&#39;arteria in un punto più lontano possibile dalla biforcazione. Tagliare sutura in più, ma lasciare una certa lunghezza in modo che le due estremità possono essere tenuti con una pinza di zanzara, che stabilizzano il DFAE rende l&#39;inserimento filo più facile. </li></ol> 3. Creazione Wire Injury <ol><li> Inserire Wire via DFA <ol><li> Scolare le suture CFA, SFA, e DFA di stabilire un emostatico temporanea. </li><li> Fai un piccolo foro nel DFA con microscissors. Inserire le punte delle microtweezers curvi per dilatare il foro abbastanza grande per un filo di diametro 0,015 pollici (Figura 2B mostra la differenza di dimensioni tra l&#39;arteria e il filo). <ol><li> Prima di fare un buco nel DFA, allentare il cappio di sutura CFA e delicatamente bloccare / spremere il DFA più volte con microtweezers sordo-punta. Questa manovra si espande il diametro delle arterie notevolmente per facilitare l&#39;inserimento del filo. Inumidire accuratamente il filo con PBS è anche importante per un inserimento scorrevole. </li><li> Quando si effettua un foro nel DFA, non tagliare la parete arteriosa, ma fare un piccolo morso a forma di V e pizzicare la patta con microtweezers taglienti a punta per la manipolazione. </li></ol></li><li> Inserire il filo attraverso il foro adeguato, dilatato in DFA. Avanzare con delicatezza il filo verso l&#39;arteria iliaca mentre allentando l&#39;anello di sutura intorno al CFA. 5-8 mm è sufficiente a coprire tutta la lunghezza CFA in molti casi (Figura 2C </strong&gt;). Non inserire il filo con forza come una perforazione arteriosa solito si traduce in perdita del mouse. Accorciando il filo a circa 15 mm di lunghezza aiuta con movimentazione. </li></ol></li><li> Lasciare filo all&#39;interno per 1 min <ol><li> Dopo aver inserito il filo alla lunghezza ottimale, lasciare per 1 min per deformare eccessivamente la parete arteriosa. Inumidire il filo e le arterie con PBS per evitare l&#39;essiccazione. Un&#39;altra sutura 9-0 nylon può essere collocato intorno prossimale DFA al punto di inserimento filo durante questo tempo di attesa. Questo sutura verrà utilizzato successivamente per chiudere il foro sul DFA dopo la rimozione del filo. </li></ol></li><li> Recuperare Wire e riprendere il flusso di sangue <ol><li> Tenere il filo con una pinza nave incannulamento, e tirarlo indietro delicatamente; il filo deve essere recuperato senza problemi. Per superare alcuna resistenza, di solito causato dalla aderenza del filo alla parete arteriosa, tirando indietro il filo con rotazione dolce è utile. Ancora una volta, una manovra forzata potrebbe provocare la perdita animali. </li><li> Laopo il filo recuperato, legare il DFA nel punto di biforcazione con 9-0 sutura di nylon. Non legare troppo vicino alla biforcazione, che metterebbe a repentaglio il deflusso di sangue al SFA. </li><li> Allentare gli anelli di sutura SFA e CFA di riprendere il normale flusso sanguigno. Si noti che il CFA è ben espansa-by inserimento del filo (Figura 2D). </li></ol></li></ol> 4. Pelle Chiusura e postoperatoria cura <ol><li> Controllo sanguina. Stillicidio Minor può essere fermato con una semplice compressione; alcuni sanguinamenti maggiori arterie richiedono punti di sutura con una sutura 11-0 nylon. Queste arterie suturate finirà per determinare occlusione arteriosa. </li><li> Chiudere la pelle ferita con cucitrici di pelle (di solito 3-4 punti metallici). Mantenere l&#39;area ferita sterilizzata applicando soluzione chirurgica clorexidina. </li><li> Applicare trattamenti post-chirurgici. Controllare il dolore del mouse con iniezioni sottocutanee di buprenorfina. Tenere il mouse sul tappetino di riscaldamento fino a che non ha recuperato sufciente coscienza per mantenere decubito sternale. Casa in una gabbia pulita senza compagnia di altri animali fino pienamente recuperato. </li></ol>

<ol>
	<li>Dzau, V. J., Braun-Dullaeus, R. C., Sedding, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+proliferation+and+atherosclerosis:+new+perspectives+and+therapeutic+strategies.">Vascular proliferation and atherosclerosis: new perspectives and therapeutic strategies.</a> Nat Med. 8 (11), 1249-1256 (2002).</li><li>Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intimal+hyperplasia+in+murine+models.">Intimal hyperplasia in murine models.</a> Curr Drug Targets. 9 (3), 251-260 (2008).</li><li>Ferns, G. A., Avades, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mechanisms+of+coronary+restenosis:+insights+from+experimental+models.">The mechanisms of coronary restenosis: insights from experimental models.</a> Int J Exp Pathol. 81 (2), 63-88 (2000).</li><li>Sata, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+of+vascular+injury+that+induces+rapid+onset+of+medial+cell+apoptosis+followed+by+reproducible+neointimal+hyperplasia.">A mouse model of vascular injury that induces rapid onset of medial cell apoptosis followed by reproducible neointimal hyperplasia.</a> J Mol Cell Cardiol. 32 (11), 2097-2104 (2000).</li><li>Xu, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+arteriosclerosis:+from+arterial+injuries+to+vascular+grafts.">Mouse models of arteriosclerosis: from arterial injuries to vascular grafts.</a> Am J Pathol. 165 (1), 1-10 (2004).</li><li>Lv, L., Meng, Q., Ye, M., Wang, P., Xue, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=STAT4+deficiency+protects+against+neointima+formation+following+arterial+injury+in+mice.">STAT4 deficiency protects against neointima formation following arterial injury in mice.</a> J Mol Cell Cardiol. 74C, 284-294 (2014).</li><li>Zhu, B., Kuhel, D. G., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Apolipoprotein+E+inhibits+neointimal+hyperplasia+after+arterial+injury+in+mice.">Apolipoprotein E inhibits neointimal hyperplasia after arterial injury in mice.</a> Am J Pathol. 157 (6), 1839-1848 (2000).</li><li>Fu, Y., Duru, E. A., Davies, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+metabolic+syndrome+on+the+response+to+arterial+injury.">Effect of metabolic syndrome on the response to arterial injury.</a> J Surg Res. , (2014).</li><li>Kuhel, D. G., Zhu, B., Witte, D. P., Hui, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinction+in+genetic+determinants+for+injury-induced+neointimal+hyperplasia+and+diet-induced+atherosclerosis+in+inbred+mice.">Distinction in genetic determinants for injury-induced neointimal hyperplasia and diet-induced atherosclerosis in inbred mice.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 22 (6), 955-960 (2002).</li><li>Cooley, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+strain+differential+neointimal+response+in+vein+grafts+and+wire-injured+arteries.">Mouse strain differential neointimal response in vein grafts and wire-injured arteries.</a> Circ J. 71 (10), 1649-1652 (2007).</li><li>Ishigami, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deficiency+of+CuZn+superoxide+dismutase+promotes+inflammation+and+alters+medial+structure+following+vascular+injury.">Deficiency of CuZn superoxide dismutase promotes inflammation and alters medial structure following vascular injury.</a> J Atheroscler Thromb. 18 (11), 1009-1017 (2011).</li></ol>

The authors declare no competing financial interests.

La procedura lesioni filo è applicabile a tutti i ceppi di topi, purché le strutture anatomiche sono simili. 4 In questo lavoro, abbiamo utilizzato maschio C57BL / 6 topi con un&#39;età di 12-16 settimane. Come abbiamo imparato dai nostri studi preliminari, le arterie femorali di topi più giovani di 10 settimane sono spesso così piccole che l&#39;inserimento del filo è molto impegnativo. D&#39;altra parte, l&#39;inserimento del filo in topi vecchi a 16 settimane è tecnicamente più semplice, ma tende a...

In the era of expanded application of endovascular treatments for various cardiovascular diseases, restenosis after angioplasty is one of the major problems for patients undergoing such treatments. Damage to the vascular endothelium at the time of angioplasty, in concert with the atherosclerotic background, induces excessive smooth muscle cell proliferation in the medial layer, resulting in neointimal hyperplasia.1,2 A viable animal model that recapitulates post-angioplasty neointimal hyperplasia is, thus, important not only for the investigation of disease mechanisms but also for the development of effective therapeutics to treat this pathology.
Mice represent an excellent model animal to recapitulate neointimal hyperplasia for the following reasons: the genetic backgrounds of experimental mice are well established; a wide variety of genetically-modified strains are available;2 obtaining littermates of the same background is easy; and the cost of the animals is relatively low. Arterial ligation model and wire injury model are the two most common mouse models of mechanically-induced neointimal hyperplasia. The arterial ligation model is easy to create, but physiologically dissimilar to the actual angioplasty procedure. The wire injury model closely mimics actual angioplasty procedures but is technically difficult due to the small size of mouse arteries.2,3 Sata et al. first described a wire injury method for mouse femoral arteries based on the anatomical structure of the vasculature and the use of proper-sized flexible wire. Utilizing this technique, they succeeded in reproducibly inducing neointimal hyperplasia in various strains of mice.4
Although femoral wire injury is a well-established model, some of the technical aspects of the technique are highly challenging compared to other models such as ligation.5 The purpose of this paper is to describe our mouse wire injury model procedures in detail, which is a modified version of Sata&#8217;s original method. We have made two main modifications: 1) Looping only the arteries, and 2) No lidocaine use.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="644">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:101px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:208px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Fixed Core Wire Guide</td>
			<td style="width:101px;">Cook</td>
			<td style="width:119px;">G02426</td>
			<td>Diameter 0.015 inch, Straight</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Dilation Forceps</td>
			<td style="width:101px;">Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-4927</td>
			<td>Curved, blunt tips</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Dumont Tweesers #5</td>
			<td style="width:101px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">14095</td>
			<td>Straight, sharp tips</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Dumont Vessel Cannulation Forceps</td>
			<td style="width:101px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">503373</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">McPherson-Vannas Scissors</td>
			<td style="width:101px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">501234</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Mosquito Forceps</td>
			<td style="width:101px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:119px;">501291</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Ethilon Nylon Suture 9-0</td>
			<td style="width:101px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">7717G</td>
			<td>9-0, Black Nylon Monofilament</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Micro AROSuture, Sterile 11-0, 70 Microns, MET Point</td>
			<td style="width:101px;">AROSurgical</td>
			<td style="width:119px;">VT4A00N07</td>
			<td>11-0, Black Nylon Monofilament</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">3M Precise Multi-Shot DS Disposable Skin Stapler</td>
			<td style="width:101px;">3M</td>
			<td style="width:119px;">DS-25</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a murine model of arterial restenosis: technical aspects of femoral wire injury

Le malattie cardiovascolari causate da aterosclerosi è la principale causa di morte nel mondo sviluppato. Restringimento del lume del vaso, a causa dello sviluppo della placca aterosclerotica o la rottura delle placche stabiliti, interrompe il normale flusso di sangue che porta a varie patologie, come l&#39;infarto del miocardio e ictus. Nella clinica procedure endovascolari, come l&#39;angioplastica sono comunemente eseguiti per riaprire il lume. Tuttavia, questi trattamenti inevitabilmente danneggiano la parete del serbatoio, nonché l&#39;endotelio vascolare, innescando una risposta guarigione eccessivo e lo sviluppo di una targa neointimale che si estende nel lume causando restenosi nave (ri-restringimento). Restenosi resta una delle principali cause di fallimento di trattamenti endovascolari per l&#39;aterosclerosi. Così, modelli animali preclinici di restenosi sono di vitale importanza per lo studio dei meccanismi fisiopatologici e traslazionale approcci per interventi vascolari. Tra diversi experime murinomodelli ntale, lesioni filo arteria femorale è ampiamente accettata come il più adatto per gli studi di restenosi post-angioplastica perché assomiglia da vicino la procedura di angioplastica che danneggia sia endotelio e parete del serbatoio. Tuttavia, molti ricercatori hanno difficoltà utilizzando questo modello grazie al suo elevato grado di difficoltà tecnica. Ciò è dovuto soprattutto un filo metallico deve essere inserito nell&#39;arteria femorale, che è circa tre volte più sottile il filo, per generare lesioni sufficiente ad indurre neointima prominente. Qui, descriviamo i dettagli chirurgici essenziali per superare efficacemente le maggiori difficoltà tecniche di questo modello. Seguendo le procedure presentate, eseguendo il pregiudizio del mouse filo femorale diventa più facile. Una volta familiarizzato, l&#39;intera procedura può essere completata entro 20 min.

Quattro settimane dopo l&#39;intervento, raccolgono l&#39;arteria femorale filo-feriti e rendono esemplare di blocco una paraffina per analizzare la formazione neointima. Indurre anestesia generale come descritto sopra. Aprire immediatamente il torace e inserire un calibro 20 farfalla ago al ventricolo sinistro. Collegare la linea ad una bottiglia di infusione. Eseguire la fissazione perfusione per infusione a goccia di PBS seguito da 4% paraformaldeide (di solito 10-20 ml, ciascuno). La bottiglia di infusione ...

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A Murine Model of Arterial Restenosis: Technical Aspects of Femoral Wire Injury

Il mouse filo arteria femorale modello di lesione di restenosi è tecnicamente impegnativo. In questo protocollo vi mostriamo i principali dettagli tecnici essenziali per eseguire con successo danno filo da indurre neointima coerente per gli studi di restenosi.

Un modello murino di restenosi arteriosa: aspetti tecnici del femore Wire Injury

Cardiovascular disease caused by atherosclerosis is the leading cause of death in the developed world. Narrowing of the vessel lumen, due to ...

a-murine-model-arterial-restenosis-technical-aspects-femoral-wire

Research

JoVE Journal

Medicine

19.9K Views.  University of Wisconsin School of Medicine and Public Health.  Il mouse filo arteria femorale modello di lesione di restenosi è tecnicamente impegnativo. In questo protocollo vi mostriamo i principali dettagli tecnici essenziali per eseguire con successo danno filo da indurre neointima coerente per gli studi di restenosi. 