עבודה זו נתמכה על ידי משרד החינוך, התרבות, הספורט, המדע והטכנולוגיה מספר מענק [23390072].

במחקר זה נעשה שימוש בתאי iPS אנושיים שהושגו באופן מסחרי (זן 253G1) (ראו טבלת חומרים).
1. תחזוקה של תאי iPS אנושיים
<ol><li>שמור על תאי iPS אנושיים בתנאים נטולי הזנה בתווך AK02 על צלחות תרבית מצופות 0.25 מיקרוגרם/ס"מ2 iMatrix-511 (ראה טבלת חומרים).</li>
</ol>2. התמיינות בכבד של תאי iPS אנושיים בתרביות דו-ממדיות
הערה: עיין באיור 1A עבור לוח הזמנים היומי של התמיינות הכבד. לאורך כל התהליך השתמשו בצלחות תרבית של 6 בארות והוסיפו 2 מ"ל של מדיום השטיפה או התרבית הייעודי לכל באר. שמור על מצב תרבית התאים ב 100% לחות, 5% CO2, ו 20% O2 ב 37 ° C.
<ol><li>מצפים כל באר של צלחת 6 בארות עם 1 מ"ל של מטריצת קרום מרתף (מדולל 1/25 PBS (-)), ודגרים ב 37 ° C במשך 1 שעה.</li>
	<li>מעבר תאי iPS אנושיים לצלחת המצופה בצפיפות של 20,000-30,000 תאים לסמ"ר באמצעות מדיום AK02N בתוספת מעכב ROCK של 10 מיקרומטר (Y-27632) (ראה טבלת חומרים). החליפו את המדיום ללא Y-27632 למחרת ואת התרבית למשך יומיים נוספים.</li>
	<li>לשטוף את התאים פעם אחת עם RPMI-1640 בינוני. התחל התמיינות אנדודרם על ידי החלפת המדיום עם RPMI-B27-Glu (RPMI-1640 + 2% B27 אינסולין + 1% דיפפטיד L-Alanyl-L-גלוטמין) בתוספת 3-6 מיקרומטר CHIR-99021 ו 100 ng / mL Activin A במשך 24 שעות (ראה טבלה של חומרים).</li>
	<li>החלף את המדיום עם RPMI-B27-Glu בתוספת 50 ng/mL Activin A למשך 24 שעות.</li>
	<li>כדי לגרום להבדיל אב כבד, להחליף את המדיום עם RPMI-B27-Glu בתוספת 1% dimethyl sulfoxide (DMSO) במשך 5 ימים.</li>
	<li>כדי לקדם את הבשלת הכבד, עבור למדיום הבשלת הפטוציטים: מדיום L-15 של לייבוביץ' המכיל 10 מיקרומטר הידרוקורטיזון 21-המיסוקצינאט, 8.3% מרק טריפטוז פוספט, 100 ננומטר דקסמתזון (DEX), 50 מיקרוגרם/מ"ל נתרן-L-אסקורבט, 0.58% אינסולין-טרנספרין-סלניום (ITS), 8.3% סרום בקר עוברי (FBS), 2 מילימטר דיפפטיד L-Alanyl-L-גלוטמין, ו-100 ננומטר N-הקסנואית-נסה-איל-איל-(6)-אמינו הקסנואית אמיד (Dihexa) (ראה טבלת חומרים).</li>
	<li>שנה את המדיום כל יומיים במשך 20 יום. מיין את התאים כ -27 ימים לאחר תחילת ההתמיינות.</li>
</ol>3. הכנת תאים לטיהור הפטוציטים שמקורם בתאי iPS אנושיים
<ol><li>לשטוף תאים ממוינים בכבד עם 2 מ"ל PBS (-) לכל באר.</li>
	<li>הוסף תמיסת אנזים 1 מ"ל לכל באר, הכוללת 0.1% collagenase, 0.083% טריפסין, 10 μM מעכב ROCK (Y-27632), 20 ננומטר ciclosporin A ו- 50 μg/mL נתרן-L-אסקורבט במאגר המודעות (116 mM NaCl, 12.5 mM NaH2PO4, 20 mM HEPES, 5.4 mM KCl, 5.6 mM גלוקוז ו- 0.8 mM MgSO4; pH 7.35) (ראה טבלת חומרים). נתק תאים מהלוחות על ידי סיבוב אופקי ב 37 ° C במשך כ 2 שעות.</li>
	<li>לאחר אישור כי התאים מנותקים ומעוגלים תחת מיקרוסקופ, לפזר אותם לתאים בודדים על ידי pipetting עדין, ולאסוף אותם בצינור 50 מ"ל.</li>
	<li>תאי צנטריפוגה ב 200 x גרם במשך 5 דקות ב 18 ° C כדי pellet אותם. הסר את supernatant באמצעות אספירטור.</li>
	<li>לצבוע את המיטוכונדריה של התאים על ידי פיזורם ב 5 מ"ל של מדיום הבשלת הפטוציטים המכיל 100 ננומטר TMRM (tetramethylrhodamine, אסטר מתל) (ראה טבלת חומרים). יש לדגור במשך 30 דקות בטמפרטורה של 37°C תוך הגנה מפני אור על ידי עטיפה ברדיד אלומיניום.</li>
	<li>צנטריפוגה את התאים ב 200 x גרם במשך 5 דקות ב 18 ° C כדי pellet אותם. הסר את supernatant.</li>
	<li>השהה מחדש את התאים עם 1-5 מ"ל של מאגר מודעות קר המכיל 2% FBS.</li>
	<li>ספור את מספר התא באמצעות תמיסה כחולה טריפאן 0.4% ולוח ספירת תאים.</li>
	<li>צנטריפוגה את התאים ב 200 x גרם במשך 5 דקות ב 4 ° C כדי pellet אותם. הסר את supernatant.</li>
	<li>לדלל נוגדן anti-ALCAM (נוגדן ראשוני, ראה טבלת חומרים) ביחס של 1:50 במאגר מודעות, ולהוסיף 100 μL של הנוגדן המדולל לכל 106 תאים. מכתימים את התאים למשך 50 דקות על קרח. הכינו תאים שאינם מוכתמים בנוגדן הראשוני כבקרה שלילית.</li>
	<li>שטפו את התאים עם מאגר מודעות קר המכיל 2% FBS פעמיים.</li>
	<li>יש לדלל חמור מסוג Alexa Fluor 488 Anti-Goat IgG (נוגדן משני, ראה טבלת חומרים) ביחס של 1:100 במאגר מודעות, ולהוסיף 100 μL של הנוגדן המדולל לכל 106 תאים. מכתימים את התאים למשך 30 דקות על קרח. תאי צביעה שלא הוכתמו בנוגדן הראשוני באמצעות הנוגדן המשני.</li>
	<li>שטפו את התאים עם מאגר מודעות קר המכיל 2% FBS פעמיים.</li>
	<li>השעה מחדש את התאים במאגר המודעות וסנן אותם דרך מסננת תאי מכסה הצמדה (רשת שינוי של 35 מיקרומטר) ממש לפני מיון לפי FACS כדי להסיר גושי תאים גדולים ולכלוך.</li>
</ol>4. ניתוח FACS ומיון של תאי iPS אנושיים שמקורם בהפטוציטים
<ol><li>הגדר את התקן FACS למיון תאים בהתאם להוראות היצרן (ראה טבלת חומרים). הערה: השתמש בגודל זרבובית של 85 מיקרומטר או 100 מיקרומטר ובמסנן ND של 2.0 עבור הפטוציטים. השתמש בערוץ FITC לזיהוי קמח אלקסה 488 עבור ALCAM ובערוץ PE לזיהוי פלואורסצנטיות TMRM עבור מיטוכונדריה.</li>
	<li>כוונן את מתחי FSC (פיזור קדימה) ו- SSC (פיזור צד) כדי להמחיש כראוי את אוכלוסיית התא.</li>
	<li>התאם את המתחים של התעלות הפלואורסצנטיות FITC ו- PE. התחל עם תאים ללא תווית ומרכז את אוכלוסיית התאים בתחתית כל תרשים ערוץ. ודא שהתאים המסומנים מסומנים ממוקמים כראוי בתוך התווייה.</li>
	<li>השתמש באסטרטגיית gating נפוצה כדי למנוע כפילויות: שער FSC-A העיקרי לעומת אוכלוסיית SSC-A (איור 2A), ואחריה אוכלוסיית FSC-H לעומת -W, ולאחר מכן SSC-H לעומת . -W (איור 2B,C).</li>
	<li>שער את אוכלוסיית TMRMhi ו-ALCAM+ (P2 באיור 2E) כדי למיין הפטוציטים. שער את אוכלוסיית TMRMhi ו- ALCAM (P1 באיור 2E) כדי למיין שאינם הפטוציטים. לאסוף hepatocytes ממוין non-hepatocytes ב 15 מ"ל צינורות איסוף המכילים hepatocyte התבגרות בינוני.</li>
	<li>צנטריפוגה צינור האיסוף המכיל את התאים ממוינים ב 200 x גרם במשך 5 דקות ב 18 ° C.</li>
	<li>הסר את supernatant ו resuspend את התאים במדיום התבגרות hepatocyte.</li>
	<li>זרעו את התאים על פיברובלסטים עובריים של עכברים (MEFs) שטופלו במיטומיצין C או מטריצת קרום מרתף דמוית ג'ל עם מדיום הבשלת הפטוציטים בתוספת 10 מיקרומטר Y-27632 ו-20 ננומטר ציקלוספורין A. תרבית את התאים באינקובטור CO2 של 37 מעלות צלזיוס למשך 5 ימים.</li>
</ol>5. אימונוציטוכימיה לאיתור הפטוציטים שמקורם בתאי iPS אנושיים
<ol><li>לשטוף את התאים בתרבית במשך 5 ימים לאחר מיון עם PBS (-).</li>
	<li>תקן את התאים עם 4% paraformaldehyde במשך 5 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>שטפו את התאים עם חיץ TBS-T (1x TBS עם 1% Tween 20) פעמיים כדי להסיר את הפרפורמלדהיד.</li>
	<li>יש לדגור על התאים עם חיץ TBS-T מדולל של 0.1% Triton X-100 למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>שטפו את התאים עם חיץ TBS-T פעמיים כדי להסיר את Triton X-100.</li>
	<li>הוסף פתרון חסימה זמין מסחרית (ראה טבלת חומרים) לתאים למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>הוסף נוגדנים ראשוניים נגד אלבומין (סמן הפטוציטים) ואנטיגן גרעיני אנושי (hNA, ראה טבלת חומרים), מדולל 1:50 בתמיסת חסימה.</li>
	<li>לדגור על התאים ב 4 ° C במשך הלילה. שטפו את התאים עם מאגר TBS-T פעמיים.</li>
	<li>הוסף נוגדנים משניים: Alexa Fluor 488 חמור נגד ארנב IgG ו- Alexa Fluor 546 חמור נגד עכבר IgG, מדולל 1:100 בתמיסת חסימה (ראה טבלת חומרים).</li>
	<li>דוגרים על התאים בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות. שטפו את התאים עם מאגר TBS-T פעמיים.</li>
	<li>הערך את טוהר הכבד על ידי ספירת תאים חיוביים לאלבומין ו- hNA חיוביים תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי. חשב את אחוז התאים החיוביים לאלבומין לכל תא חיובי ל-hNA עבור אוכלוסיות P1 ו-P2.</li>
</ol>

טיהור הפטוציטים שמקורם ב-iPSC בבני אדם על ידי מיון מיטוכונדריאלי-ALCAM

<ol>
	<li>Yamamoto, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+potential+of+pluripotent+stem+cells+correlates+to+the+level+of+CHD7.">Differentiation potential of pluripotent stem cells correlates to the level of CHD7.</a> Scientific Reports. 8 (1), 241 (2018).</li><li>Laco, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unraveling+the+inconsistencies+of+cardiac+differentiation+efficiency+induced+by+the+GSK3&#946;+inhibitor+CHIR99021+in+human+pluripotent+stem+cells.">Unraveling the inconsistencies of cardiac differentiation efficiency induced by the GSK3&#946; inhibitor CHIR99021 in human pluripotent stem cells.</a> Stem Cell Reports. 10 (6), 1851-1866 (2018).</li><li>Anderson, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Balancing+serendipity+and+reproducibility:+Pluripotent+stem+cells+as+experimental+systems+for+intellectual+and+developmental+disorders.">Balancing serendipity and reproducibility: Pluripotent stem cells as experimental systems for intellectual and developmental disorders.</a> Stem Cell Reports. 16 (6), 1446-1457 (2021).</li><li>Chen, C. X. -. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardized+quality+control+workflow+to+evaluate+the+reproducibility+and+differentiation+potential+of+human+iPSCs+into+neurons.">Standardized quality control workflow to evaluate the reproducibility and differentiation potential of human iPSCs into neurons.</a> bioRxiv. , (2021).</li><li>Duinsbergen, D., Salvatori, D., Eriksson, M., Mikkers, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumors+originating+from+induced+pluripotent+stem+cells+and+methods+for+their+prevention.">Tumors originating from induced pluripotent stem cells and methods for their prevention.</a> Annals of the New York Academy of Sciences. 1176, 197-204 (2009).</li><li>Nori, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+safety+issues+of+iPSC-based+cell+therapy+in+a+spinal+cord+injury+model:+oncogenic+transformation+with+epithelial-mesenchymal+transition.">Long-term safety issues of iPSC-based cell therapy in a spinal cord injury model: oncogenic transformation with epithelial-mesenchymal transition.</a> Stem Cell Reports. 4 (3), 360-373 (2015).</li><li>Hentze, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Teratoma+formation+by+human+embryonic+stem+cells:+evaluation+of+essential+parameters+for+future+safety+studies.">Teratoma formation by human embryonic stem cells: evaluation of essential parameters for future safety studies.</a> Stem Cell Research. 2 (3), 198-210 (2009).</li><li>Anderson, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transgenic+enrichment+of+cardiomyocytes+from+human+embryonic+stem+cells.">Transgenic enrichment of cardiomyocytes from human embryonic stem cells.</a> Molecular Therapy. 15 (11), 2027-2036 (2007).</li><li>Hidaka, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chamber-specific+differentiation+of+Nkx2.5-positive+cardiac+precursor+cells+from+murine+embryonic+stem+cells.">Chamber-specific differentiation of Nkx2.5-positive cardiac precursor cells from murine embryonic stem cells.</a> The FASEB Journal. 17 (6), 740-742 (2003).</li><li>Gassanov, N., Er, F., Zagidullin, N., Hoppe, U. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelin+induces+differentiation+of+ANP-EGFP+expressing+embryonic+stem+cells+towards+a+pacemaker+phenotype.">Endothelin induces differentiation of ANP-EGFP expressing embryonic stem cells towards a pacemaker phenotype.</a> The FASEB Journal. 18 (14), 1710-1712 (2004).</li><li>Duan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+and+enrichment+of+hepatocyte-like+cells+from+human+embryonic+stem+cells+in+vitro+and+in+vivo.">Differentiation and enrichment of hepatocyte-like cells from human embryonic stem cells in vitro and in vivo.</a> Stem Cells. 25 (12), 3058-3068 (2007).</li><li>Takayama, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enrichment+of+high-functioning+human+iPS+cell-derived+hepatocyte-like+cells+for+pharmaceutical+research.">Enrichment of high-functioning human iPS cell-derived hepatocyte-like cells for pharmaceutical research.</a> Biomaterials. 161, 24-32 (2018).</li><li>Hattori, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nongenetic+method+for+purifying+stem+cell-derived+cardiomyocytes.">Nongenetic method for purifying stem cell-derived cardiomyocytes.</a> Nature methods. 7, 61-66 (2009).</li><li>Yamashita, H., Fukuda, K., Hattori, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hepatocyte-like+cells+derived+from+human+pluripotent+stem+cells+can+be+enriched+by+a+combination+of+mitochondrial+content+and+activated+leukocyte+cell+adhesion+molecule.">Hepatocyte-like cells derived from human pluripotent stem cells can be enriched by a combination of mitochondrial content and activated leukocyte cell adhesion molecule.</a> JMA Journal. 2 (2), 174-183 (2019).</li><li>Fernandez-Vizarra, E., Enr&#237;quez, J., P&#233;rez-Martos, A., Montoya, J., Fern&#225;ndez-Silva, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-specific+differences+in+mitochondrial+activity+and+biogenesis.">Tissue-specific differences in mitochondrial activity and biogenesis.</a> Mitochondrion. 11, 207-213 (2010).</li><li>Swart, G. W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activated+leukocyte+cell+adhesion+molecule+(CD166/ALCAM):+Developmental+and+mechanistic+aspects+of+cell+clustering+and+cell+migration.">Activated leukocyte cell adhesion molecule (CD166/ALCAM): Developmental and mechanistic aspects of cell clustering and cell migration.</a> European Journal of Cell Biology. 81 (6), 313-321 (2002).</li><li>Peters, D. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asialoglycoprotein+receptor+1+is+a+specific+cell-surface+marker+for+isolating+hepatocytes+derived+from+human+pluripotent+stem+cells.">Asialoglycoprotein receptor 1 is a specific cell-surface marker for isolating hepatocytes derived from human pluripotent stem cells.</a> Development. 143 (9), 1475-1481 (2016).</li><li>Kamiya, A., Inagaki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+and+progenitor+cell+systems+in+liver+development+and+regeneration.">Stem and progenitor cell systems in liver development and regeneration.</a> Hepatology Research. 45 (1), 29-37 (2015).</li><li>Yanagida, A., Ito, K., Chikada, H., Nakauchi, H., Kamiya, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+In+vitro+expansion+system+for+generation+of+human+ips+cell-derived+hepatic+progenitor-like+cells+exhibiting+a+bipotent+differentiation+potential.">An In vitro expansion system for generation of human ips cell-derived hepatic progenitor-like cells exhibiting a bipotent differentiation potential.</a> PLOS One. 8 (7), e67541 (2013).</li><li>Siller, R., Greenhough, S., Naumovska, E., Sullivan, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small-molecule-driven+hepatocyte+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells.">Small-molecule-driven hepatocyte differentiation of human pluripotent stem cells.</a> Stem Cell Reports. 4 (5), 939-952 (2015).</li><li>Hirata, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ALCAM+(CD166)+is+a+surface+marker+for+early+murine+cardiomyocytes.">ALCAM (CD166) is a surface marker for early murine cardiomyocytes.</a> Cells, Tissues, Organs. 184 (3-4), 172-180 (2006).</li><li>Tohyama, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+metabolic+flow+enables+large-scale+purification+of+mouse+and+human+pluripotent+stem+cell-derived+cardiomyocytes.">Distinct metabolic flow enables large-scale purification of mouse and human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes.</a> Cell Stem Cell. 12 (1), 127-137 (2013).</li></ol>

למחברים אין מה לחשוף.

בשל תפקודם במטבוליזם של חומרי מזון וניקוי רעלים, לפטוציטים יש מספר גדול יחסית של מיטוכונדריה בהשוואה לסוגי תאים אחרים15. ALCAM הוא חבר במשפחת האימונוגלובולינים וממלא תפקיד בהידבקות תאים ובנדידה. הוא מתבטא בסוגי תאים שונים, כולל כבד, אפיתל, לימפוציטים, מיאלואידים, פיברובלסטים ות?...

תאי גזע עובריים ופלוריפוטנטיים מושרים (ES ו- iPS, בהתאמה) נחשבים למקורות תאים מבטיחים לטיפולים רגנרטיביים. עם זאת, היעילות של התמיינות תאים אלה לסוגי תאי יעד ספציפיים יכולה להשתנות, גם כאשר משתמשים באותו קו תאים, פרוטוקול ונסיין 1,2,3,4. ניתן לייחס שונות זו לרגישות הגבוהה של תאי ES/iPS אנושיים לסביבתם. לכן, כיום קשה להשיג באופן עקבי תאי מטרה טהורים. כדי להשיג רפואה רגנרטיבית בטוחה ביותר, חיוני לחסל תאים מתרבים ותאי גזע לא ממוינים בתאים טיפוליים, וטכנולוגיית טיהור מתקדמת לתאי מטרה חיונית 5,6,7.
ממיין תאים הוא מכשיר המנתח באופן מיידי תאים בודדים וממיין תאים חיים בעלי עניין בהתבסס על עוצמות האות הפלואורסצנטי, ומציע פתרון מבטיח. ניתן להשיג זאת באמצעות צביעת נוגדנים של סמנים ספציפיים לסוג התא או על ידי שימוש בביטויי גנים ספציפיים לסוג התא. באמצעות טכניקה זו, ישנם מספר דיווחים על שיטות לטיהור קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים 8,9,10 והפטוציטים11,12. Hattori et al. פיתחו שיטת טיהור מיטוכונדריאלית חדשנית באמצעות ממיין תאים13. תוך ניצול העובדה שלקרדיומיוציטים יש דרישות אנרגיה גבוהות באמצעות פעילות מיטוכונדריאלית, ניתן להשתמש בצביעת התאים בצבע המיטוכונדריה החי TMRM (טטרמתילרודאמין מתיל אסטר) כדי לתייג ולטהר מאוד קרדיומיוציטים על ידי FACS מגופי עוברים אנושיים שמקורם בתאי ES המכילים סוגי תאים שונים. היעדר הגידול אושר על ידי בדיקות היווצרות טרטומה עם קרדיומיוציטים מטוהרים. יתר על כן, ימאשיטה ועמיתיו גילו באופן בלתי צפוי שיטה לטיהור הפטוציטים מגופי עובר אנושיים שמקורם בתאי ES על ידי בידוד שברים בעלי פעילות מיטוכונדריאלית גבוהה וביטוי חיובי ALCAM14. הרציונל לשיטה זו הוא שלהפטוציטים יש גם מספר גבוה יחסית של מיטוכונדריה בשל הצריכה הגבוהה של ATP למטבוליזם תזונתי וניקוי רעלים15, והפטוציטים מבטאים ALCAM, חבר במשפחת האימונוגלובולינים, הממלא תפקיד בהידבקות תאים ונדידת16.
שיטות טיהור גבוהות קודמות עבור הפטוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים דרשו שינויים גנטיים, ושיטות טיהור לא גנטיות היו בעלות יעילות נמוכה17. השיטה המיטוכונדריאלית הלא גנטית היא בעלת ערך להשגת טוהר גבוה. כאשר יש צורך בתאי אב בכבד, ניתן לבחור בשיטות מבוססות CD133 ו- CD13 או Dlk118,19. למרות שהדיוק של טכנולוגיית עריכת הגנום התקדם, לא ניתן לבטל לחלוטין את הסיכון הפוטנציאלי לשינויים גנומיים בלתי צפויים (למשל, קרצינוגנזה). שיטות המבוססות על פעילות מיטוכונדריאלית, ללא שינוי גנטי, יכולות להיות חופשיות מסיכונים כאלה.
כתוצאה מבדיקת אינדיקטורים מיטוכונדריאליים שונים בקרדיומיוציטים של חולדות יילודים, TMRM נצפה נעלם לחלוטין תוך 24 שעות, בעוד שצבעים אחרים נשארו לפחות 5 ימים13. יתר על כן, חשוב לציין כי TMRM ו- JC-1 לא השפיעו על כדאיות התא כאשר הוערכו עם בדיקת 3-(4,5-dimethyl-thiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT), בעוד שצבעים אחרים הדגימו השפעות שונות על כדאיות התא13. TMRM מדגים בטיחות גבוהה יותר.
עד כה, פותחו מספר שיטות התמיינות דו-ממדיות (דו-ממדיות) כגישות יעילות יותר לגרימת התמיינות בהשוואה ליצירת גוף עוברי תלת-ממדי (תלת-ממדי). הסיבה לכך היא שתרכובות או ציטוקינים הגורמים להתמיינות באופן הדרגתי יכולים להינתן באופן אחיד לתאים במישור דו-ממדי, ולא במרחב תלת-ממדי. במחקר זה, שיטה20 שדווחה בעבר שונתה כדי לגרום להתמיינות לתאי iPS אנושיים. כאן מתוארים פרטי ההליכים להתמיינות וטיהור דו-ממדיים עדכניים של הפטוציטים שמקורם בתאי iPS אנושיים.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>253G1 human iPS cell line</td>
			<td>RIKEN BioResource Research Center</td>
			<td>HPS0002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>163-20145</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Activin A Solution, Human, Recombinant</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>18585</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-Nuclei Antibody, clone 235-1</td>
			<td>Chemicon</td>
			<td>MAB1281</td>
			<td>Antibody against human nuclear antigen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>B-27 Supplement (50x), serum free</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>17504044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSAria III</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td></td>
			<td>Cell sorter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CHIR-99021</td>
			<td>MedChemExpress</td>
			<td>HY-10182&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ciclosporin A</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>035-18961</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>034-22363</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354230</td>
			<td>Gel-like basement membrane matrix</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CultureSure Y-27632</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>036-24023</td>
			<td>ROCK inhibitor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>047-18863</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethyl sulfoxide (DMSO)</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>047-29353</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Donkey anti-Goat IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-11055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Donkey anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 546</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A10036</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21206</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon 5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Cell Strainer Snap Cap</td>
			<td>Corning</td>
			<td>352235</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Biowest</td>
			<td>51820-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GlutaMAX Supplement</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>35050061</td>
			<td>Dipeptide L-Alanyl-L-Glutamine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human/Mouse/Rat/Canine ALCAM/CD166 Antibody</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>AF1172</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrocortisone 21-hemisuccinate sodium salt</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H2270</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iMatrix-511 silk</td>
			<td>Nippi</td>
			<td>892021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImmunoBlock</td>
			<td>KAC</td>
			<td>CTKN001</td>
			<td>Blocking solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ITS-G Supplement(&#215;100)</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>090-06741</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 Medium</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>128-06075</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N-Hexanoic-Try-Ile-(6)-amino Hexanoic amide (Dihexa)</td>
			<td>Toronto Research Chemicals</td>
			<td>H293745</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyclonal Rabbit Anti-Human Albumin</td>
			<td>Dako</td>
			<td>A0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyoxyethylene Sorbitan Monolaurate (Tween 20)</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>28353-85</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI-1640</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation</td>
			<td>189-02025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium L-Ascorbate</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>03422-32</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>StemFit AK02N</td>
			<td>REPROCELL</td>
			<td>RCAK02N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TBS (10x)</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>12748-31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetramethylrhodamine, methyl ester (TMRM)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T668</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>28229-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue Solution</td>
			<td>NACALAI TESQUE, INC.</td>
			<td>20577-34</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRYPSIN 250</td>
			<td>Difco</td>
			<td>215240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tryptose phosphate broth solution</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T8159</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

application of live mitochondria staining in cell-sorting to purify hepatocytes derived from human induced pluripotent stem cells

לתאי גזע עובריים אנושיים (ES) ולתאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPS) יש יישומים פוטנציאליים ברפואה רגנרטיבית מבוססת תאים לטיפול באיברים חולים קשה בשל ההתרבות הבלתי מוגבלת שלהם ותכונותיהם הפלוריפוטנטיות. עם זאת, התמיינות תאי ES/iPS אנושיים לסוגי תאי מטרה טהורים ב-100% היא מאתגרת בשל רגישותם הגבוהה לסביבה. גידולים לאחר ההשתלה נגרמים על ידי תאים מזוהמים, מתרבים ובלתי ממוינים, מה שהופך את טכנולוגיית הטיהור הגבוהה לחיונית למימוש בטוח של רפואה רגנרטיבית. כדי להפחית את הסיכון לגידולים, פותחה טכנולוגיית טיהור גבוהה עבור הפטוציטים שמקורם בתאי iPS אנושיים. השיטה משתמשת ב-FACS (מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות) באמצעות שילוב של תכולת מיטוכונדריה גבוהה וסמן פני התא ALCAM (מולקולת היצמדות תאי לויקוציטים פעילים) ללא שינוי גנטי. 97% ± 0.38% (n = 5) מהפטוציטים המטוהרים בשיטה זו הציגו ביטוי חלבון אלבומין. מאמר זה נועד לספק נהלים מפורטים עבור שיטה זו, כפי שהיא מיושמת בשיטת ההתמיינות הדו-ממדית העדכנית ביותר עבור תאי iPS אנושיים להפטוציטים.

Embryonic and induced pluripotent stem cells (ES and iPS, respectively) are considered promising cell sources for regenerative therapies. However, the efficiency of differentiating these cells into specific target cell types can vary, even when using the same cell line, protocol, and experimenter1,2,3,4. This variability may be attributed to the high sensitivity of human ES/iPS cells to their environment. Therefore, it is currently difficult to consistently obtain pure target cells. To achieve highly safe regenerative medicine, it is crucial to eliminate proliferative cells and undifferentiated stem cells in therapeutic cells, and advanced purification technology for target cells is essential5,6,7.
A cell sorter is a device that instantaneously analyzes individual cells and sorts live cells of interest based on the fluorescent signal strengths, offering a promising solution. This can be accomplished through antibody staining of cell type-specific surface markers or by utilizing cell type-specific reporter gene expressions. Using this technique, there are several reports on methods for purifying pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes8,9,10 and hepatocytes11,12. Hattori et al. developed an innovative mitochondrial purification method using a cell sorter13. Taking advantage of the fact that cardiomyocytes have high energy demands through mitochondrial activity, staining the cells with the live mitochondria-indicative dye TMRM (tetramethylrhodamine methyl ester) can be used to label and highly purify cardiomyocytes by FACS from human ES cell-derived embryoid bodies containing various cell types. The absence of tumorigenicity was confirmed by teratoma formation assays with the purified cardiomyocytes. Furthermore, Yamashita et al. unexpectedly discovered a method to purify hepatocytes from human ES cell-derived embryoid bodies by isolating fractions with high mitochondrial activity and ALCAM-positive expression14. The rationale for this method is that hepatocytes also have a relatively high number of mitochondria due to their high consumption of ATP for nutrient metabolism and detoxification15, and hepatocytes express ALCAM, a member of the immunoglobulin superfamily, which plays a role in cell adhesion and migration16.
Previous highly purifying methods for pluripotent stem cell-derived hepatocytes required genetic modifications, and non-genetic purification methods had low efficiency17. The mitochondrial non-genetic method holds merit for achieving high purity. When hepatic progenitor cells are needed, CD133 and CD13- or Dlk1-based methods18,19 can be chosen. Although the accuracy of genome editing technology has advanced, the potential risk of unforeseen genomic changes (e.g., carcinogenesis) cannot be entirely eliminated. Methods based on mitochondrial activity, without involving genetic modification, can be free from such risks.
As a result of examining various mitochondrial indicators in neonatal rat cardiomyocytes, TMRM was observed to disappear completely within 24 h, whereas other dyes remained for at least 5 days13. Moreover, it is important to note that TMRM and JC-1 did not impact cell viability when assessed with the 3-(4,5-dimethyl-thiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay, while other dyes demonstrated varying effects on cell viability13. TMRM demonstrates higher safety.
To date, several two-dimensional (2D) differentiation methods have been developed as more efficient approaches for inducing differentiation compared to three-dimensional (3D) embryoid body formation. This is because step-wise differentiation-inducing compounds or cytokines can be uniformly administered to cells on a 2D plane, rather than in a 3D space. In this study, the previously reported method20 was modified to induce differentiation into human iPS cell-derived hepatocytes. Here, the details of the procedures for the up-to-date 2D differentiation and purification of hepatocytes derived from human iPS cells are described.

מחבר זרקור: קידום טיהור הפטוציטים מתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי האדם לרפואה רגנרטיבית

יישום צביעת מיטוכונדריה חיה במיון תאים לטיהור הפטוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם

The scope of our research is to purify human induced pluripotent stem cell-derived hepatocytes, using without genetic modification. We aim to address the issue of the tumorigenic risk associated with the undifferentiated cells, among those differentiated from human iPS cells. One of the current experimental challenges is a low cell purity, due to the mechanical storage of sorting.We are developing a new purification method, that utilizes the unique metabolism features of hepatocytes, for large-scale purification. One non-cell sorting method for hepatic progenitor cells cannot obtain pure hepatocytes. Another one for mature hepatocytes can only treat a small fraction of hepatocytes, because of the limited expression of the marker protein.In contrast, our approach can obtain hepatocytes at different maturation levels with a higher eve. Human iPS cell-derived hepatocytes are extremely immature, and show more reduced hepatocyte macro expression after purification. Our future goal is to enhance hepatocyte modulation using organoidal technology and day-to-day advancements to regenerative medicine and drug discovery.

ציר הזמן של התהליכים שגורמים לתאי iPS אנושיים להתמיין להפטוציטים באמצעות תרבית דו-ממדית (איור 1A) ותכונות תאים מייצגות (איור 1B) מוצגים. בערך ביום ההתמיינות ה-12 החלו התאים להציג צורות תאים מצולעים וגרעינים עגולים, האופייניים להפטוציטים. חלק מהפטוציטים הציגו גם...

Watch this Scientific Journal Video about Application of Live Mitochondria Staining in Cell-Sorting to Purify Hepatocytes Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells at JoVE.com

ניתן לטהר הפטוציטים שמקורם בתאי גזע פלוריפוטנטיים באמצעות מיון תאים, באמצעות שילוב של צביעת מולקולת הידבקות תאי לויקוציטים מיטוכונדריאלית ופעילה (ALCAM, הידועה גם בשם CD166).

Human embryonic stem (ES) and induced pluripotent stem (iPS) cells have potential applications in cell-based regenerative medicine for treating severely ...

היקף המחקר שלנו הוא לטהר הפטוציטים המושרים על ידי תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים, תוך שימוש ללא שינוי גנטי. אנו שואפים לטפל בסוגיית הסיכון הגידולי הקשור לתאים הבלתי ממוינים, בקרב אלה שהתמיינו מתאי iPS אנושיים. אחד האתגרים הניסיוניים הנוכחיים הוא טוהר תאים נמוך, בשל האחסון המכני של המיון.אנו מפתחים שיטת טיהור חדשה, המנצלת את תכונות חילוף החומרים הייחודיות של הפטוציטים, לטיהור בקנה מידה גדול. שיטת מיון אחת שאינה תאית עבור תאי אב בכבד אינה יכולה להשיג הפטוציטים טהורים. עוד אחד עבור hepatocytes בוגר יכול לטפל רק חלק קטן של hepatocytes, בגלל ביטוי מוגבל של חלבון הסמן.לעומת זאת, הגישה שלנו יכולה להשיג הפטוציטים ברמות הבשלה שונות עם ערב גבוה יותר. הפטוציטים שמקורם בתאי iPS אנושיים הם מאוד לא בשלים, ומראים ביטוי מאקרו מופחת יותר של הפטוציטים לאחר טיהור. המטרה העתידית שלנו היא לשפר את אפנון הפטוציטים באמצעות טכנולוגיה אורגנואידית והתקדמות יומיומית לרפואה רגנרטיבית וגילוי תרופות.

application-live-mitochondria-staining-cell-sorting-to-purify

Research

JoVE Journal

Biology

Application of Live Mitochondria Staining in Cell-Sorting to Purify Hepatocytes Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells

347 Views.  Kansai Medical University. היקף המחקר שלנו הוא לטהר הפטוציטים המושרים על ידי תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים, תוך שימוש ללא שינוי גנטי. אנו שואפים לטפל בסוגיית הסיכון הגידולי הקשור לתאים הבלתי ממוינים, בקרב אלה שהתמיינו מתאי iPS אנושיים. אחד האתגרים הניסיוניים הנוכחיים הוא טוהר תאים נמוך, בשל האחסון המ?...

Video: מחבר זרקור: קידום טיהור הפטוציטים מתאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי האדם לרפואה רגנרטיבית

Human embryonic stem (ES) and induced pluripotent stem (iPS) cells have potential applications in cell-based regenerative medicine for treating severely diseased organs due to their unlimited proliferation and pluripotent properties. However, differentiating human ES/iPS cells into 100% pure target cell types is challenging due to their high sensitivity to the environment. Tumorigenesis after transplantation is caused by contaminated, proliferating, and undifferentiated cells, making high-purification technology essential for the safe realization of regenerative medicine. To mitigate the risk of tumorigenesis, a high-purification technology has been developed for human iPS cell-derived hepatocytes. The method employs FACS (fluorescence-activated cell sorting) using a combination of high mitochondrial content and the cell-surface marker ALCAM (activated leukocyte cell adhesion molecule) without genetic modification. 97% &plusmn; 0.38% (n = 5) of the purified hepatocytes using this method exhibited albumin protein expression. This article aims to provide detailed procedures for this method, as applied to the most current two-dimensional differentiation method for human iPS cells into hepatocytes.

Hepatocytes derived from pluripotent stem cells can be purified through cell sorting, using a combination of mitochondrial and activated leukocyte cell adhesion molecule (ALCAM, also known as CD166) staining.

Hepatic Differentiation of Human-Induced Pluripotent Stem Cells in 2D Cultures

To begin, coat each well of a six-well plate with one milliliter of basement membrane matrix and incubate at 37 degrees Celsius for one hour. Remove the coated matrix from the plate and add human-induced pluripotent stem cells prepared in AK02N medium supplemented with 10 micromolar ROCK inhibitor. Incubate the cells at 37 degrees Celsius and 5%carbon dioxide for three days.After three days, on day zero of the initiating hepatic differentiation, wash the cells once with RPMI 1640 medium. Next, to initiate endoderm differentiation, add RPMI B27 GlutaMAX supplemented with three to six micromolar CHIR 99021 and 100 nanograms per milliliter Activin A into the plate. Incubate the cells at 37 degrees Celsius and 5%carbon dioxide for 24 hours.On day one, replace the existing medium with RPMI B27 GlutaMAX supplemented with 50 nanograms per milliliter of Activin A.Incubate the cells at 37 degrees Celsius and 5%carbon dioxide for 24 hours. On day two, to induce hepatic progenitor differentiation, replace the existing medium with RPMI B27 GlutaMAX medium supplemented with 1%dimethyl sulfoxide, and continue incubation for up to five days. On day seven, to initiate hepatocyte maturation, switch to hepatocyte maturation medium and incubate for 20 days at 37 degrees Celsius and 5%carbon dioxide.On day 27, human-induced pluripotent stem cells displayed polygonal cell shapes and rounded nuclei, characteristics of hepatocytes.

התמיינות כבד של תאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי אדם בתרביות דו-ממדיות

Cell Preparation for Purification of Human-Induced Pluripotent Stem Cells-Derived Hepatocytes

After 27 days of initiating hepatic differentiation of human induced pluripotent stem cells, wash the cells with two milliliters of PBS per well. Prepare the enzyme solution in ADS buffer using the given components. Add one milliliter of solution per well of a six well plate.Place the plate at 37 degrees Celsius on a rotating shaker for about two hours to detach the cells from the plate. Confirm the cell detachment under a microscope, then pipette the cell suspension to disperse into single cells, and collect them in a 50 milliliter tube containing the hepatocyte maturation medium. Centrifuge the cell suspension at 200G for five minutes at 18 degrees Celsius.And using an aspirator, remove the supernatant. To stain the mitochondria of cells, resuspend the pellet in five milliliters of hepatocyte maturation medium containing 100 nanomolar TMRM. Incubate the cells for 30 minutes at 37 degrees Celsius while protecting them from light.Again, centrifuge the cell suspension and resuspend the pellet in one to five milliliters of cold ADS buffer containing 2%FBS. After cell counting, aliquot 500, 000 cells to a 1.5 milliliter tube and label it as the no primary antibody control. Centrifuge the remaining cell suspension at 200G for five minutes at four degrees Celsius, and remove the supernatant.Add 100 microliters of diluted primary antibody per one million cells. Transfer the cell suspension to a 1.5 milliliter tube and incubate on ice for 50 minutes. After incubation, centrifuge the cell suspension and wash the cells twice with cold ADS buffer containing 2%FBS.Now add 100 microliters of diluted secondary antibody per one million cells to the primary antibody, stained or unstained cells, and incubate for 30 minutes on ice. Again, centrifuge the cell suspension and wash the cells twice with cold ADS buffer containing 2%FBS. After resuspending the cells in ADS buffer, filter them through a snap cap cell strainer and place the tube on ice.

הכנת תאים לטיהור תאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם - הפטוציטים שמקורם בבני אדם

Fluorescence-Activated Cell Sorting of Hepatocytes Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells

To begin, set up the fluorescence-activated cell sorting, or FACS machine, for cell sorting following the manufacturer's instructions. Place the sample tube on the FACS machine and load it. Gate TMRM-high and ALCAM negative population in the P1 region to sort non-hepatocytes.Then gate the TMRM high and ALCAM positive population in the P2 region to sort hepatocytes. Collect sorted cells in 15-milliliter collection tubes containing hepatocyte maturation medium. After sorting, remove the collection tube from the FACS machine.Centrifuge the sorted cell suspension at 200 G for five minutes at 18 degrees Celsius. Remove the supernatant, and re-suspend the pellet in two milliliters of hepatocyte maturation medium with 10 micromolar rock inhibitor and 20 nanomolar cyclosporine A.Seed the cells on mitomycin C-treated mouse embryonic fibroblasts with hepatocyte maturation medium in a six-well plate. Culture the cells in a 37-degree Celsius carbon dioxide incubator for five days before immuno staining for hepatocyte purity test.FACS analysis conducted on day 27 of hepatic differentiation revealed TMRM high and ALCAM positive population. The immunohistochemical staining of P1 and P2 cells cultured on mouse embryonic fibroblasts after sorting is shown. A purity test by counting albumin-positive cells showed 0%of P1, and approximately 97%of P2 cells were hepatocyte-like cells.