Microarray analisi per Saccharomyces cerevisiae</em

Riepilogo

In questo protocollo, l'espressione genica nel lievito ( Saccharomyces cerevisiae) È cambiata dopo l'esposizione a stress ossidativo indotto con l'aggiunta di perossido di idrogeno (H ₂ O ₂), Un agente ossidante.

Abstract

In questo protocollo, l'espressione genica nel lievito (Saccharomyces cerevisiae) è cambiata dopo l'esposizione a stress ossidativo indotto con l'aggiunta di perossido di idrogeno (H ₂ O _2), un agente ossidante. Nell'esperimento, lievito è cresciuto per 48 ore in 1/2X brodo YPD contenenti glucosio 3X. La cultura è diviso in un gruppo di controllo e trattati. La cultura esperimento viene trattata con 0,5 mm H ₂ O ₂ in Hanks Buffered Saline (HBSS) per 1 ora. La cultura del controllo è trattata con HBSS solo. RNA totale è estratto da entrambe le culture e viene convertito in un biotina marcata cRNA prodotto attraverso un processo a più fasi. Il prodotto finale di sintesi viene riportato al Fondo UVM Nucleo Microarray e ibridato a GeneChip il lievito di Affymetrix. La risultante dati di espressione genica sono stati caricati nel software di analisi bioinformatica dei dati.

Protocollo

1. Isolamento RNA totale da Saccharomyces cerevisiae Utilizzando Lysis enzimatica

1. Preparare un RNasi-free area di lavoro utilizzando RNasi ZAP (Ambion).
2. Preparare fresca reagente liticasi di lavoro con l'aggiunta di 1 ml di acqua RNase-free direttamente al flacone liticasi per ottenere una soluzione di lavoro finale di 10 U / ul. Vortex bene e capovolgere più volte per assicurare la completa miscelazione. Questo 10 unità / ul di soluzione è stabile per 12 ore.
3. Preparare fresca DNasi soluzione che ho utilizzando il kit Qiagen DNasi e memorizzare sul ghiaccio.
4. Etichettare una provetta 1,7 ml con le vostre informazioni di identificazione. Trasferire 1,5 ml della coltura di lievito appropriato nel tubo.
5. Centrifugare la provetta a 5000 g (circa 3 / 4 pieno regime) per 2 minuti a temperatura ambiente. Rimuovere con attenzione il sopranatante (senza disturbare pellet) utilizzando una micropipetta e scartare il surnatante.**** Ripetere il punto 4 se la dimensione pellet è troppo piccolo o se indicato dal docente .****
6. Aggiungi 1000 microlitri di acqua DEPC al pellet, vortex e centrifugare a 5000 xg per 2 minuti. Scartare il surnatante. Rimuovere la maggior quantità di liquido possibile dal pellet lievito.
7. Aggiungere quanto segue il lievito pellet e vortex per miscelare.
   
8. Incubare per 30 minuti a temperatura ambiente.
9. Far ruotare delicatamente il tubo ogni 10 minuti per generare sferoplasti. Sferoplasti devono essere trattati con delicatezza. Esaminare il lievito al microscopio per osservare spheroplasting completo. Nell'esaminare il lievito sul vetrino, aggiungere una piccola quantità del 0,1% SDS a causare il lievito a gonfiarsi e formare sfere perfette (anche per le cellule in erba). Ciò indica che le pareti cellulari sono stati digeriti.
10. Aggiungere 350 microlitri b-RLT tampone nella provetta e miscelare Vigorosamente Per 1 minuto. Verificare che il tubo sia ben chiusa tenendo il coperchio chiuso, mentre vortex. Questa procedura lisare il sferoplasti.
11. Aggiungere 250 microlitri di etanolo al 100% per il tubo e agitare brevemente. Un precipitato può formare dopo l'aggiunta di etanolo, ma ciò non pregiudica la raccolta di RNA.
Raccolta l'RNA: una colonna di spin RNeasy con la vostra identificazione informationand attentamente trasferire tutta la soluzione dal punto 10 alla colonna di girare utilizzando una micropipetta. Fare attenzione a non toccare la membrana di silice con la punta della pipetta. Chiudere il tubo e centrifugare per 15 secondi a piena velocità. L'RNA del campione aderirà alla membrana di silice della colonna.
12. Rimuovere la colonna rotazione dal tubo di raccolta. Pipettare il passaggio liquido (il liquido nel tubo di raccolta) di nuovo sul Spin Column e centrifugare di nuovo. Eliminare il tubo di raccolta (con il flusso attraverso fluido) e posizionare la colonna girare in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta.
13. Aggiungere 350 microlitri di buffer RW1 alla colonna di spin. Questa soluzione viene utilizzata per lavare l'RNA e rimuovere i sali disciolti e detriti cellulari. Chiudere il tubo e centrifugare per 15 secondi a piena velocità.
Digerire il DNA: Rimuovere la colonna rotazione dalla centrifuga, aprire il coperchio del tubo e aggiungere 80 ml di soluzione di DNasi I al centro della membrana colonna. Questo passo digerire qualsiasi gDNA nel campione. Chiudere il coperchio della colonna e incubare a temperatura ambiente per 15 minuti.
14. Trasferire la colonna di selezione per un nuovo tubo di raccolta 2 ml.
Pulizia e lavaggio del RNA: Aggiungere 350 microlitri di buffer RW1 alla colonna e centrifugare girare a pieno regime per 15 secondi.
15. Eliminare il tubo di raccolta e posto la colonna di spin in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta.
16. Aggiungere 500 microlitri di buffer RPE alla colonna di selezione per lavare l'RNA sulla membrana di silice. Chiudere il tubo e centrifugare per 15 secondi alla massima velocità.
17. Eliminare il tubo di raccolta e posto la colonna di spin in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta.
18. Lavare la membrana di silice di nuovo con l'aggiunta di altri 500 microlitri di buffer RPE alla colonna di spin. Chiudere il tubo e centrifugare per 15 secondi a piena velocità.
19. Posizionare la colonna di girare in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta e centrifugare in una microcentrifuga a tutta velocità per 1 minuto per assicurare ogni residuo di liquido viene rimosso dalla membrana di silice.
Ripristino del RNA: Trasferire la colonna RNeasy di selezione per un nuovo tubo di 1,7 ml microcentrifuga che è stata marcata con i tuoi dati di esempio. Si noti che il tappo del nuovo tubo rimarrà aperta per i passi successivi.
20. Attenzione pipetta 30 microlitri di acqua RNase-free Direttamente sul centro Della membrana di silice. Non toccare la membrana di silice con la punta della pipetta (vedi schema). Guardare da vicino come si esegue questo passaggio. Con entrambe le mani per guidare la pipetta. Assicurarsi che l'acqua è distribuita uniformemente sulla membrana.
21. Incubare la colonna di spin a temperatura ambiente per 1 minuto. Centrifugare a massima velocità per 30 secondi.
22. Attenzione trasferire il 30 microlitri che viene recuperata nel tubo 1,7 ml di nuovo sul centro della membrana di silice della colonna rotazione stessa al punto 22 della presente sentenza. Montare la colonna di ritorno nello stesso tubo 1,7 ml di raccolta e incubare per 1 minuto a temperatura ambiente. Centrifugare per 1 minuto alla massima velocità. Questo eluizione doppio assicura che la quantità massima di RNA viene recuperato dalla membrana.
due nuovi tubi microcentrifuga 1,7 ml, con le vostre informazioni di identificazione e il trasferimento di tutti i campioni di RNA recuperato a uno di questi tubi.
23. Trasferire 4 ml di questo campione per l'altro tubo etichettati. Questo esempio sarà trasportato indietro UVM NanoDrop per la quantificazione e valutazione qualitativa di RNA (questo è per convalidare l'analisi di RNA quantitativa e qualitativa effettuata in loco presso gli istituto).
24. Mettere tutti i campioni sul ghiaccio.
RNA quantificazione: Utilizzo del BioPhotometer Eppendorf, misurare l'assorbanza del campione di RNA sullo spettrofotometro a una diluizione 1 su 50 (1ml campione + 49μl H ₂ O).
25. Valutare la qualità dell'RNA utilizzando l'E-Gel (Invitrogen) 1,2% prefabbricati in gel di agarosio per l'elettroforesi.
RNA Analisi qualitativa: Impostare la E-gel elettroforesi apparato. Pre-eseguire il gel per 2 minuti in base alla procedura del produttore. Dopo la pre-corsa, rimuovere il pettine gel e aggiungere 14 ml di acqua per ogni pozzetto seguito da 1ml di ciascun campione in ciascun pozzetto. Mescolare bene pipettando su e giù. Utilizzare un appropriato DNA Ladder dimensioni in un unico bene per il confronto dimensioni più tardi (Bioline Ladder Facile ho formato standard o Novagen PCR marker). Record che è campione in ogni corsia. Esegui il gel per 20 minuti.
26. Scattare una foto del gel.

2. Strand prima sintesi del DNA

1. Etichettare una provetta da 0,5 ml PCR con le vostre informazioni di identificazione. Dalla concentrazione di RNA determinato dall'esperimento, calcolare il volume del campione per ottenere 3,0 ug. Trasferire tale somma al tubo. Aggiungere abbastanza acqua RNasi-free per portare il volume a 11,0 ul.
2. Aggiungere 1,0 microlitri T7 oligo (dT) ₂₄ Reagente al tubo. Assicurati di prestare particolare attenzione al volume punta della pipetta durante questa fase per garantire che tutti i reagenti è stato trasferito. Vortex il tubo e centrifugare a massima velocità per 5 secondi. Posizionare il tubo in un termociclatore a 70 ° C per 10 minuti.
3. Mentre i 70 ° C di incubazione è in corso, preparare il primo master mix filo in un tubo nuovo. Assicurarsi di aggiungere i seguenti reagenti IN ORDINE, Vortex e centrifugare alla massima velocità per 5 secondi e posizionare il tubo in ghiaccio.
   

SGbuffer	10 microlitri
Lyticasesolution (10u/μl)	30 microlitri

Usa una micropipetta P2 per misurare i volumi di 2 microlitri o meno.
27. Dopo l'incubazione a 70 ° C al punto 2 è completo, aggiungere 8 ml di mix primo maestro filone made in fase 3 per il tubo ed incubare in un termociclatore a 42 ° C per 60 minuti. La prima volta di incubazione sintesi filamento è finito, posto il tubo sul ghiaccio. Durante questa incubazione, preparare il secondo master mix filamento.

3. Strand Synthesis secondo cDNA

1. Crea il seguente secondo master mix filo in un tubo nuovo. Tenerlo in ghiaccio. Vortex e centrifugare tutti i reagenti prima dell'uso. Aggiungere i reagenti nell'ordine elencato.
   

Primo aspetto master mix:
FirstStrandBuffer5X	4 microlitri
0.1MDTT	2 microlitri
10mMdNTP	1 ml
SuperscriptII	1 ml

Ecoli Ecoli DNA polimerasi I (10U/ul) Ecoli RNasi H (2U/ul)
28. Vortex il tubo e centrifugare per 5 secondi a piena velocità.
29. Quando l'° 42 C di incubazione è terminato, il trasferimento di tutti i 130 microlitri della miscela secondo filone principale alla provetta contenente l'RNA e reagenti prima parte. Vortex e centrifugare per 5 secondi a temperatura ambiente. Incubare la provetta per 2 ore a 16 ° C in un termociclatore.
30. Al termine della incubazione 2 ore e mentre il campione è ancora a 16 ° C, aggiungere 2μl reagente T4 DNA polimerasi al tubo. Mescolare brevemente nel vortex e centrifugare la provetta ed incubare a 16 ° C per non più di 5 minuti supplementari. L'incubazione più lungo di 5 minuti possono ridurre la qualità del cDNA dovuta all'attività 5'exonuclease 3'to della polimerasi T4.
31. Alla fine della 5 minuti di incubazione, aggiungere 10 microlitri 0,5 M EDTA per fermare la reazione T4 DNA polimerasi. Conservare il tubo a -20 ° C.

4. Precipitare la cDNA

1. Centrifugare una serratura tubo di fase gel a tutta velocità per un minuto per assicurarsi il gel è al fondo della provetta. NON VORTEX TUBI BLOCCO FASE.
2. Aggiungere 162 microlitri della Strato inferiore Dal pH 8.0-Tris tamponata fenolo / cloroformio / alcool isoamilico (PCI) per il contenuto del secondo tubo di sintesi del DNA reazione filo e vortex per 5 secondi per mescolare il contenuto (il volume totale della fase di sintesi di cDNA dall'esperimento sopra è di 162 ul. Il passo PCI richiede volumi uguali di miscele acquose e organiche).
3. Trasferisci tutti i cDNA-PCI miscela al tubo di gel fase di bloccare con una micropipetta. NON VORTEX Il blocco del tubo fase gel.
a piena velocità per 2 minuti.
4. Etichetta di una nuova provetta 1,7 ml. Utilizzare una micropipetta per trasferire lo strato superiore del tubo di gel fase di blocco per la nuova etichetta del tubo 1,7 ml. Prova a raccogliere il maggior numero dello strato il più possibile.
5. Aggiungere quanto segue il tubo 1,7 ml microcentrifuga e vortice.
   

Secondo aspetto master mix
DEPC Acqua	91 ul
Buffer 5X Strand Seconda	30 ul
DNTP (10mm)	3 ul
1 ul
4 ul
1 ul

DNA ligasi (10U/ul)
32. Porre il tubo in centrifuga con la cerniera del tubo rivolto verso l'esterno e centrifugare alla massima velocità per 20 minuti a temperatura ambiente.
33. Rimuovere delicatamente il tubo dalla centrifuga stando attenti a non disturbare il cDNA pellet. Il pellet deve essere rosa e circa le dimensioni di un chicco di sale e sul lato del tubo sotto la cerniera. Luogo il ghiaccio e subito passare alla fase successiva.

5. Pulizia del cDNA Pellet

1. Usando una micropipetta P1000, rimuovere con cura tutti i surnatante dal tubo. Fare attenzione a non disturbare il pellet. Ricordate che il pellet è il vostro campione!
2. Aggiungere 500μl di etanolo 80% freddo (-20 memorizzati in ^° Congelatore C) al tubo. Delicatamente il tubo tappo e capovolgere lentamente più volte. Guarda i tuoi pellet molto da vicino. Se la pallina si stacca, posizionare il tubo indietro nel rack e lasciare che il pellet depositano sul fondo. In alternativa, è possibile centrifugare la provetta a pieno regime per 15 secondi per ottenere il pellet di nuovo verso il fondo della provetta.
3. Usando una micropipetta P1000, rimuovere con attenzione l'etanolo essere molto attenti a non disturbare il pellet. Punta il tubo per consentire la rimozione di quanto più liquido possibile.
4. Ripetere i punti 2 e 3 con una nuova aliquota del 80% di etanolo.
5. Infine, rimuovere tutte le etanolo possibile grazie ad un micropipetta P1000. Centrifugare la provetta a piena velocità per 5 secondi e con una P20 micropipetta, rimuovere l'ultima pochi microlitri di etanolo. L'obiettivo è quello di rimuovere l'etanolo più possibile senza disturbare il pellet.
6. Posizionare il tubo aperto in un rack o box di asciugatura per 10-20 minuti per far evaporare l'etanolo residuo. La secca pellet è facilmente perso una volta che è asciutto. Attenti a gestire il tubo dolcemente. Al termine, chiudere il tappo. Visualizza la secca pellet per confermare che è presente nel tubo.
7. Risospendere il pellet in 22 ml di acqua RNase-free e posizionare il tubo in ghiaccio.

6. InVitroTranscription (IVT)

1. Il ENZO bioarray kit contiene tutti i reagenti necessari per preparare biotina cRNA etichettati da cDNA.
   Un mixfor padroneggiare l'intera classe verrà preparato come istruttore follows.The preparerà questo mix o designare qualcuno dalla classe. Questo deve essere fatto in un RNasi-free.
   

Etanolo (100%)	405 ul
NH 4 OAc	80 ul
Pellet Vernice	1 ul

NOTA:
34. Etichettare una provetta da 0,5 ml PCR. Combina le seguenti nel tubo e pipettare su e giù parecchie volte per mescolare. Spin in una centrifuga a piena velocità per 5 secondi per avere tutti i reagenti al fondo della provetta.
    

	Amt / campione	# Campioni	Totale
Reagente 1 [tampone di reazione 10x]	4μl
Reagente 2 [Biotinnucleotides 10x]	4μl
Reagente 3 [DTT 10x]	4μl
Reagente 4 [inibitore RNAsi 10x]	4μl
Reagente 5 [20x T7 RNA polimerasi]	2μl
Volume totale	18 microlitri

Preparare mix sufficiente master per il numero di campioni più uno. Ciò contribuirà a garantire a sufficienza per scopi pipettaggio.
35. Incubare la provetta a 37 ° C for16 ore nel termociclatore. Quando la reazione è completa, conservare il campione a -20 ° C

7. Pulizia del biotinilato cRNA

1. Trasferire l'intero campione cRNA a un nuovo tubo di 1,7 ml microcentrifuga. Aggiungere 60 ml di acqua RNase-free e 350 microlitri di buffer RLT e vortex per 5 secondi.
2. Aggiungere 250 microlitri di etanolo al 100% e di nuovo vortice.
3. Etichetta una colonna RNeasy spin e trasferire l'intero campione cRNA alla colonna. Fare attenzione a non toccare la punta della pipetta alla membrana di silice. Chiudere il coperchio e centrifugare per 15 secondi a piena velocità.
4. Rimuovere la colonna rotazione dal tubo di raccolta. Pipettare il passaggio liquido (il liquido nel tubo di raccolta) di nuovo sul Spin Column e centrifugare ancora per 15 secondi.
5. Porre la colonna girare in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta e pipetta 500 microlitri di tampone RPE sulla colonna. Chiudere il tubo e centrifugare per 15 secondi a piena velocità. Eliminare tubo di raccolta e il passaggio del liquido. Porre la colonna girare in un nuovo 2 ml di tubo di raccolta.
6. Aggiungi altri 500 microlitri di buffer RPE alla colonna di spin.
7. Trasferire la colonna di spin in un tubo nuova collezione e di eseguire una colonna spin "asciugatura" a tutta velocità per 2 minuti.
8. Etichetta di una nuova provetta 1,7 ml con le vostre informazioni di identificazione. Trasferire la colonna di selezione per questo tubo.
9. Pipettare 30 microlitri RNase-free acqua sulla membrana RNeasy silice centro e incubare a temperatura ambiente per 1 minuto. Tappare la provetta e centrifugare per 1 minuto alla massima velocità.
10. Attenzione trasferire il 30 microlitri che viene recuperata nel tubo 1,7 ml di nuovo sul centro della membrana di silice RNeasy della colonna rotazione stessa. Posizionare la colonna indietro allo stesso tubo di 1,7 ml di raccolta e incubare per 1 minuto a temperatura ambiente. Centrifugare per 1 minuto alla massima velocità. Questo eluizione doppio assicura che la quantità massima di cRNA viene recuperato dalla membrana.
11. Trasferire questa pulito biotina marcata cRNA a un nuovo tubo di 1,7 ml per centrifuga e l'etichetta in modo appropriato.
12. Determinare la concentrazione cRNA utilizzando la stessa procedura di cui sopra durante la procedura di isolamento del RNA. Si registra la concentrazione e il rapporto 260/280.

8. Frammentare il cRNA per la preparazione dei target

1. Etichettare una provetta da 0,5 ml PCR con le vostre informazioni di identificazione. Trasferire 5 ug di una quantità equivalente di cRNA al tubo. Aggiungere abbastanza acqua RNasi-free per portare il volume totale a 16,0 ul, e quindi aggiungere 4,0 ml di tampone 5X frammentazione al tubo. Il volume totale del tubo deve essere 20,0 ul.
2. Vortex il tubo e centrifugare per 10 secondi. Incubare la provetta a 94 ° C per 30 minuti in un termociclatore. Mettere in ghiaccio dopo l'incubazione.

9. Valutare il cRNA frammentati e non frammentati con gel

1. Impostare la E-gel elettroforesi apparato utilizzando un prefabbricato 1,2% gel di agarosio. Pre-eseguire il gel per 2 minuti in base alle raccomandazioni per la fabbricazione di
2. Aggiungi 14 ml di acqua per ogni bene sulla E-gel.
3. Aggiungi 2μl di ciascun campione in ogni pozzetto e pipettare su e giù per mescolare bene. Analizzare sia il cRNA frammentato e non frammentato di ogni campione. E 'meglio per caricare i campioni (frammentata e non frammentati) in corsie vicine. Registrazione dell'identità di ciascun campione in ogni corsia.
4. Aggiungere 4 ml di una scala del DNA (Ladder Bioline Facile ho formato standard o Novagen PCR marker) a una corsia del gel
5. Esegui il gel per 20 minuti.
6. Visualizza la E-gel su un transilluminatore. Scattare una foto gel.

10. Ibridazione al lievito GeneChip 2,0

Rappresentante dei risultati:

Figura 1. Una scansione Affymetrix GeneChip lievito immagine (Affymetrix GeneChip software operativo (GCOS))

Figura 2. Scatter plot 2D di tutte le trascrizioni genetiche (~ 6.700 geni), confrontando un controllo e di dati trattati lievito. Ogni punto rappresenta un singolo gene. I geni colorata in viola indicano geni che sono espressi in modo differenziale, mentre i geni colorati in rosso non lo sono. Descrizioni per i geni differenzialmente espressi sono etichettati nella leggenda corrispondente e la maggior parte sono coinvolti nel controllo del ciclo cellulare in questo esempio. (Affymetrix GeneChip operativo Software (GCOS))

Figura 3. Questo diagramma di flusso illustra in modo differenziato i geni espressi in un percorso di affetti biologico. I geni indicati con una stella rossa indicano il down-regolato geni del pathway meiotica. (Il database per l'annotazione, visualizzazione e Integrated Discovery (DAVID)

Figura 4. Risultati rappresentante di un grafico a Vulcano. Campioni di controllo e trattati sono stati confrontati con un p-value tagliato di 0,05 e un cambiamento di espressione 1,5 volte tagliato fuori. Questo grafico è stata generata utilizzando il software Genesifter Geospiza è gentilmente donato agli studenti per scopi didattici.

Miscela di cDNA	22μl
Enzomastermix [fromabove]	18μl
TotalVolume	40μl

Discussione

Applicazioni e significato.

Il Vermont Genetica Network programma di sensibilizzazione, presso l'Università del Vermont, conduce al raggiungimento dei college universitari partner di otto diploma di maturità in tutto lo stato. L'obiettivo del VGN Nucleo Outreach è quello di esporre laureandi nello stato del Vermont a state-of-the-art della tecnologia scientifica e risorse con esperienze pratiche. Il modulo di microarray descritto è stato sviluppato nel 2003 e successivi aggiornamenti. E 'stato offerto come un mini-corso o integrato nel programma di studi di laboratorio esistente presso gli istituti partecipanti.

Il progetto, tra i core ricerca universitaria e collegi universitari, promuove collaborazioni nel campo dell'istruzione e della ricerca. Microarray di sensibilizzazione in tutto lo stato ha migliorato curriculum e creato di ricerca e opportunità di networking per le strutture di base, docenti e studenti.

Come docenti universitari adottare il programma sono invitati a progettare esperimenti unica condizione che vi siano adeguati Affymetrix GeneChip e annotazione a disposizione. Tutte le informazioni per questo modulo compreso il manuale di laboratorio, i riferimenti e le presentazioni in PowerPoint sono disponibili online (Vermont Genetica Network, 2008).

Passaggi critici:

Spheroplasting: E 'importante osservare spheroplasting successo al microscopio. L'uso di SDS è molto utile in quanto provoca il gonfiore lievito conseguente sferoidi. E 'importante osservare che le cellule in erba forma sferoidi pure. Se spheroplasting parziale si osserva, un trattamento esteso con liticasi è raccomandato.

Pellet pulizia: Durante la reazione di precipitazione e la successiva fase di lavaggio l'etanolo, è molto facile perdere il cDNA pellet. Estrema cura e meticolosa attenzione al pellet è un imperativo.

Applicando l'acqua al centro della membrana: Durante la fase di eluizione RNA dalla membrana, è importante "squirt" il 30 microlitri di acqua direttamente al centro della membrana di silice. Se questo non è compiuto, la colonna può essere centrifugati e il elutant risultante può essere ri-applicato alla membrana di silice di nuovo. Questo può essere ripetuto tante volte quanto necessario.

Modifiche e sostituzioni del prodotto:

1. Alternativa RNA pulizia colonne possono essere sostituiti. Esempi sono la preparazione USB-agio e l'Invitrogen Pure link RNA kit, e l'Omega RNA clean-up kit per citarne alcuni.
2. Schizosaccharomyces pombe è un lievito opzionale. La Affymetrix GeneChip contiene sia genomi sullo stesso chip
3. Vari trattamenti e gli orari possono essere utilizzati. Questo può includere trattamenti farmacologici, trattamenti di temperatura, anti-ossidanti, tempi di trattamento ecc può anche essere modificato.
4. Trattamento DNasi potrebbe non essere necessario, perché i metodi descritti impiegano l'uso di un (dT) primer Oligo.
5. Non è necessario eseguire una eluizione doppio del RNA al largo della colonna con la stessa aliquota 30 microlitri. Una volta che è quasi sempre adeguato. Questo è suggerito per assicurare che un recupero completo si ottiene. Inoltre, l'acqua utilizzata per l'RNA eluire dalla colonna può essere pre-riscaldato a 65 ° C per migliorare ulteriormente la capacità di recuperare RNA dalla colonna di silice.
Molti sono a disposizione per quantificare l'RNA. La Eppendorf e NanoDrop sono stati solo scelti per la loro facilità d'uso e testato precisione.
6. Agarosio elettroforesi su gel di molte essere eseguita con attrezzature standard di laboratorio. L'E-Gel non è richiesto, ma è auspicabile perché è RNasi libera e non richiede tempo di solidificazione del gel di attesa.
7. Informazioni per l'ordinazione dei prodotti è stato fornito. Tuttavia, molti reagenti generale può essere ordinato da più fornitori.
8. Un ciclo di reagenti cDNA può essere acquistato separatamente se questo è più conveniente.
9. Ci sono altri metodi di preparazione di destinazione, ma ci sentiamo questo offre la possibilità di insegnamento in più per lo studente.

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
Spetrophotometer
Thermocyler
Microcentrifuga
Vortex
Mescolare Piastre (2)
P-10s pipette
P-20 di pipette:
P-200 di pipette:
P-1000 di pipette:
Fotocamera e transilluminatore
E-Gel Apparatus Invitrogen G6000-08
E-Gel Invitrogen G6018-02
Axygen 1,7 ml. Chiaro Krackler 383-MCT175C
Axygen provette da 0,5 ml chiaro Krackler 383-MCT060C
Axygen 2ml catturare tubi Krackler 383-MCT200NC
Scatole di P-10 suggerimenti ARTE: CLP BT10XL
Scatole di P-100 suggerimenti ARTE: CLP BT200
Scatole di P-20 Suggerimenti ART: CLP BT20
Scatole di P-1000 Suggerimenti ART: CLP BT1000
Lievito Chips
25 ml, pipette sterili monouso
5ml pipette sterili monouso
Microcentrifugare portaprovette
Kimwipes:
Laboratorio Cappotti
Mescolare bar
Cultura fiaschi
Loop Innoculating
Sharpies
Guanti
Nastro Autoclave
Agitatore bar
Perossido di idrogeno al 30% EMD Millipore 386790
HBSS senza Ca, Mg, o tintura Sigma-Aldrich H6648-100ml
Qiagen RNeasy Mini Kit: Qiagen 74104
Qiagen DNasi Kit: Qiagen 79254
RNase Remover Denville scientifico D1180
Harleco Alcohol 100% EMD Millipore 65347
ENZO IVT Kit ENZO ENZ-42655-10
Liticasi: una bottiglia VWR IC19012310
Acqua, Cultura grado cella EMD Millipore 4,86505
Lievito cultura: ATCC 18824
YPD brodo in polvere EMD Millipore 4,8504
D (+) glucosio, anidro EMD Millipore 346351
Sorbitolo EMD Millipore 56755
EDTA EMD Millipore 4005
Soluzione di SDS, 20% EMD Millipore 7990-OP
Pellet Vernice EMD Millipore 69049
PCI DNasi RNasi libero (7 aliquote): Fisher AC32711-500
7.5M NH4OAc Fisher ICN1987 5980
Frammentazione del buffer (200 mM Tris-acetato, pH 8.1, 500 mM KOAc, 150 mM MgOA)
Trizma Base Fiaher 50-899-90034
KOAc Fisher NC9757725
MgOA Fisher NC9681042
Colorante di caricamento Invitrogen 10482055
Marcatori PCR EMD Millipore 69278-3
Phase Lock Gel Fisher FP2302820
Un ciclo Kit cDNA Invitrogen A10752-030
Comprende;
E. coli DNA Pol
DNTP
Pol DNA T4.
T-7 oligod (T)
0,5 ml EDTA pH 8,0
Buffer Strand First
E. Coli RNaseH
Secondo Strand Buffer
E. Coli DNA ligasi
SuperScript II
DTT