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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Un metodo semplice per determinare primario murino organoide tumore colon è descritto. Questo metodo utilizza la funzione che le cellule tumorali del colon sopravvivere e crescere in organoidi in terreni contenenti fattori di crescita limitate, mentre colon normale epiteliale non lo fanno.

Abstract

Sono state create diverse linee di cellule tumorali di colon umano e murino, l'integrità fisiologica dei tumori del colon, come gli strati multipli delle cellule basali, polarità-apicale, la capacità di differenziare e anoikis non vengono mantenute nel cancro linee cellulari derivate colon. Il presente studio dimostra un metodo per la coltura principale del mouse colon organoidi tumorali adattato da Sato T et al. 1, che conserva importanti funzioni fisiologiche di tumori del colon. Questo metodo consiste colon raccolta topo tessuto tumorale, adiacente normale epitelio dissociazione colon, colon cellule tumorali digestione in singole cellule, incorporando le cellule tumorali del colon in matrigel, e la coltura selettivo basato sul principio che le cellule tumorali mantenere la crescita sul limitare condizioni di nutrienti rispetto al normale cellule epiteliali.

Le organoidi tumore primario, se isolate da topi geneticamente modificati, forniscono un sistema molto utile per valutare Funz autonomo tumoreione di geni specifici. Inoltre, i organoidi tumorali sono suscettibili di manipolazione genetica da virus meditato la consegna del gene; percorsi quindi di segnalazione coinvolte nella tumorigenesi del colon potrebbero essere ampiamente studiati da sovraespressione o atterramento. Primaria cultura organoidi tumorale fornisce un fisiologici relativi mezzi e fattibile per studiare i meccanismi e le modalità terapeutiche per la tumorigenesi del colon.

Introduzione

Le cellule epiteliali intestinali proliferano e si girano a una velocità straordinaria, superando tutti gli altri tessuti del corpo dei vertebrati 2,3. Le cellule in divisione, comprese le cellule staminali intestinali (ISC) e cellule di transito-amplificazione si differenziano in due secretoria (calice, Paneth e enteroendocrine) cellule o enterociti 3. L'ISC si trova alla base della cripta. Cellule Paneth spostano verso il fondo delle cripte e sono di lunga durata, mentre altri lignaggi migrano verso l'alto per i villi 3,4. Qui le cellule sono esposte ai contenuti intestinali tra cui microbiota e si staccano dalle punte dei villi, attraverso un meccanismo apoptotico anoikis indotta. Sebbene il colon manca villi e cellule Paneth, il meccanismo per il mantenimento dell'omeostasi è simile 4.

La via di segnalazione Wnt è stata implicata nel giocare un ruolo cruciale nella proliferazione intestinale e ISC manutenzione 4. Soppressione del secoloe fattore di trascrizione TCF4, un effettore a valle di segnalazione Wnt, porta alla perdita di cellule staminali intestinali e la successiva ripartizione del tessuto 5. Analogamente, l'espressione transgenica dell'inibitore DKK1 Wnt riduce la proliferazione epiteliale e impoverisce linee cellulari secretorie 6. Viceversa, l'iperespressione di agonista Wnt R-spondina-1 induce potente e rapida proliferazione di cellule intestinali cripta 7.

Data l'importanza della segnalazione Wnt per l'omeostasi intestinale, le mutazioni di Wnt sono frequentemente osservate nel cancro del colon 8. Il cancro del colon è la terza causa di morte per cancro negli Stati Uniti 9. Assunzione in eccesso di carne rossa e alcool, ridotta attività fisica, e ha ereditato e mutazioni somatiche sono considerati fattori di rischio di tumore del colon 10,11. La poliposi coli (Apc) gene adenomatosa, un fattore chiave di segnalazione Wnt, è mutato in una maggioranza di papazienti con familiare, sporadica, e il cancro del colon colite associata a 12,13. Le mutazioni di altri fattori coinvolti nella via di segnalazione Wnt compresi Axin2 e β-catenina si osservano anche nel cancro del colon 14,15. Tuttavia, il meccanismo preciso ed efficace terapia per il cancro al colon sono ancora carenti. Per facilitare la ricerca dei meccanismi molecolari per il cancro del colon, le linee cellulari tumorali di colon umano che rappresentano diverse fasi della progressione del cancro da un benigno a un tipo di cellule aggressive sono state stabilite 16-18. Mouse linee cellulari di carcinoma del colon con diverse proprietà metastatiche sono disponibili anche 19,20. Tuttavia, le cellule primarie o culture organoide sono preferite rispetto alle linee cellulari trasformate, perché strettamente imitano lo stato in vivo e generano più fisiologicamente rilevanti di dati 21. Maggior colon-cancro linee cellulari derivate crescere come monostrato fissata sulla piastra o come sospensioni cellulari, Lacking di orientamento apicale-basolaterale e giunzioni strette tra le cellule. Inoltre, le cellule epiteliali intestinali normali e tumorali in vivo sottoposti a una forma spontanea di apoptosi anoikis definito come le cellule differenziate raggiungono le punte dei villi e sono capannone 22. Queste caratteristiche sono difficili da ricapitolare in linee cellulari, ma sono importanti nel processo di sviluppo del cancro al colon 23. Queste caratteristiche vengono mantenute in organoidi primari. Inoltre, le culture organoide tumorali forniscono un sistema efficiente per valutare funzioni autonome di geni tumorali rispetto a studi in vivo. Manipolazione genetica in vivo dell'intestino è un processo che richiede tempo principalmente attraverso la creazione transgenici e / o topi knockout utilizzando driver intestino-specifici. Tuttavia, i organoidi tumorali sono facilmente suscettibili di manipolazioni genetiche virali mediata e quindi un ottimo strumento per valutare i meccanismi molecolari precisi. Primari intestinali tumorali organoide culture have stato dimostrato di essere una tecnica fattibile e potente. Coltura di cellule intestinali primaria può stabilire organoidi intestinali funzionali con struttura cripta-villi in vitro da un singolo adulto LGR5 + cellule staminali 24. Questi organoidi possono essere trapiantati e innestate nel tessuto danneggiato del colon per la rigenerazione 25. Ulteriore adeguamento delle condizioni di coltura aveva fatto organoidi epiteliali simili da colon mouse e piccolo intestino umano e del colon fattibile 1. Per il normale epitelio del colon cultura primaria, terreno di coltura così come fattori di crescita tra cui EGF, Zucca, R-spondina e Wnt3a sono essenziali, mentre è sufficiente per la coltivazione del mouse colon organoidi tumore primario 1 terreno di coltura e di EGF. Qui si descrive un protocollo dettagliato per isolare, la cultura, e generare organoidi del tumore del colon.

Protocollo

1. Tumore del colon Isolamento e dissociazione cellulare

  1. Tumori intestinali possono essere isolati da qualsiasi modello di cancro al colon sporadico oppure indotta dal trattamento. I topi devono essere sacrificati con CO 2. I due punti vengono poi raccolti, lavati con freddo PBS (PBS) e aperto longitudinalmente. Identificare le regioni contenenti i tumori utilizzando uno stereomicroscopio, sezionare fuori con un paio di forbici, e lavare con PBS freddo.
  2. Incubare frammenti intestinali contenenti tumori nel buffer di chelazione EDTA (2 mM EDTA, 5,6 mmol / L di Na 2 HPO 4, 8.0 mmol / L KH 2 PO 4, 96,2 mmol / L di NaCl, 1,6 mmol / L KCl, 43,4 mmol / L di saccarosio, 54.9 mmol / L D-sorbitolo, 0,5 mmol / L di DL-ditiotreitolo in acqua distillata) per 60 min in ghiaccio.
  3. Dopo chelazione, la maggior parte delle normali cellule epiteliali intestinali sarà rimosso, mentre le cellule tumorali rimane collegata mesenchima. Aspirare il tampone di chelazione contenente cellule epiteliali normalie lavare il tumore residuo frammenta ancora una volta con 5 ml di tampone chelazione freddo.
  4. Aspirare il tampone di chelazione, lavare frammenti di tumore con 5 ml di freddo 1x PBS.
  5. Aspirare il PBS 1x off, incubare frammenti di tumore in tampone di digestione (2.5% siero fetale bovino, 1 unità / ml di penicillina, 1 mg / ml di streptomicina, e 2,5 ng / ml di amfotericina B, 200 U / ml di collagenasi di tipo IV, 125 mg / ml di tipo II dispasi in Dulbecco Modified Eagle Medium) per 2 ore a 37 ° C.
  6. Lasciare che il frammento di tumore a stabilirsi per gravità normale per 1 minuto e raccogliere il surnatante in una provetta Falcon 15. Pellet la singola cellula tumorale sospensione surnatante mediante centrifugazione a 200 xg per 3 min e lavare una volta con 5 ml di PBS mediante centrifugazione a 200 xg per 3 min.

2. Cultura di tumore intestinale

  1. Risospendere il pellet di cellule tumorali con 500 microlitri di PBS, contare le cellule tumorali isolate singole utilizzando un emocitometro.
  2. Pellet cellule tumorali di centorifuging a 200 xg per 3 min, e li risospendere in 5 mg / ml Matrigel su ghiaccio e piastra in piastre da 24 pozzetti a 15.000 cellule per 50 pl di Matrigel per pozzetto.
  3. Lasciare la Matrigel polimerizzare per 15 min a 37 ° C e aggiungere 500 microlitri / pozzetto basale terreno di coltura (1 unità / ml di penicillina, 1 mg / ml di streptomicina, e 2,5 ng / ml di amfotericina B, 10 mmol / L HEPES , 2mm Glutamax, 1x supplemento N2, 1x B27 supplemento, 1 mmol / L N-acetilcisteina in avanzata a Dulbecco Modified Eagle Medium/F12) contenente 50 ng / ml di EGF murino.

3. Manutenzione di organoidi Fondata

  1. Cambiare terreno di coltura contenente FEG ogni 2 giorni e passaggio organoidi 01:05 una volta alla settimana.
  2. Per passaging, sostituire il terreno di coltura con terreno di coltura fresco. Disturbare meccanicamente organoidi e Matrigel utilizzando una pipetta P1000 con punte tagliate e trasferire in una provetta Falcon 15. Un'ulteriore dissociazione meccanica viene ottenuta utilizzando un incendio lucidato Pasteur tubotte.
  3. Lavare organoidi dissociate con 5 ml di terreno di coltura e centrifugare a 200 xg per 2 min.
  4. Scartare il surnatante, risospendere il pellet con Matrigel e aggiungere mezzo di coltura come descritto sopra.

4. Conservazione e ripristino di organoidi Fondata

  1. Per la conservazione a lungo termine, congelare organoidi a liquido N 2 che sono stabili per almeno 2 anni. Per organoidi congelamento, può interferire con una pipetta P1000 con punte tagliate e trasferire in una provetta Falcon 15.
  2. Lavare organoidi dissociate con 5 ml di terreno di coltura e centrifugare a 200 xg per 2 min.
  3. Scartare il surnatante, risospendere il pellet con Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) contenente 20% di siero fetale bovino (FBS) e 10% di dimetilsolfossido (DMSO).
  4. Trasferire le cellule in 1,5 ml cryotubes, poi mettere i tubi in un Mr. Frosty contenitore congelamento Nalgene e conservare in un freezer -80 ° C per ottenere una velocità di raffreddamentodi -1 ° C / min. Dopo una notte di incubazione, trasferire i tubi in liquido N 2.
  5. Per il recupero, i organoidi congelati vengono scongelati rapidamente a 37 ° C a bagnomaria, lavare con terreno di coltura, centrifugare, risospendere in Matrigel e cultura con le condizioni sopra descritte.

5. Estrazione di RNA, estrazione di proteine ​​ed immunoistochimica

  1. Estrazione dell'RNA: Le cellule vengono raccolti come descritto sopra per il passaggio. RNA è isolato con PicoPure TM RNA Isolation Kit secondo le istruzioni del produttore.
  2. Proteine ​​di estrazione: pellet cellulari sono raccolti come descritto sopra e lisate in 100 microlitri tampone radioimmunoprecipitazione (RIPA; 50 mmol / L Tris-HCl pH 7.5, 150 mmol / L di NaCl, 2 mmol / L di EDTA, 1% NP-40, 0,1 % SDS) con 1x inibitore della proteasi.
  3. Immunoistochimica: Aspirare off mezzo di coltura cellulare, trasferire organoidi tumorali con P1000 pipetta con punte tagliate in Cryo-stampo e congelare immediatamente in tiscitare in giudizio medio congelamento (OCT) con ghiaccio secco. Sezioni congelate sono state tagliate a 7 ​​micron e colorati come descritto in precedenza 26.

Risultati

La durata di un tumore del colon organoide da una formazione di tre mesi Apc min / + topo è mostrato in Figura 1. Al giorno 0, singole cellule potrebbero essere osservati diverse ore dopo la placcatura (Figura 1A). Al giorno 1, sopravvissero colon cellule epiteliali tumorali con nuclei refrattaria poteva essere rispettato. Al giorno 3, la dimensione delle cellule raddoppiato. Al giorno 6, il formato di organoide espansa più di dieci volte e ha mostrato segni di apo...

Discussione

Le procedure sperimentali descritte in questo protocollo permetterà di isolamento e la coltura di tumori al colon murini primari. Il protocollo è stato adattato dal lavoro seminale condotto dal Dott. gruppo Clevers 1,24,27. Abbiamo ottimizzato il tempo di digestione e la concentrazione di collagenasi per ottenere una migliore resa di organoidi tumorali. I punti critici sono la digestione delle cellule tumorali in cellule singole, Matrigel risospensione e cultura selettiva. Per la digestione delle cellule tu...

Divulgazioni

Non abbiamo nulla da rivelare.

Riconoscimenti

Questo studio è stato sostenuto da sovvenzioni a YMS dal National Institutes of Health (CA148828), L'Università del Michigan gastrointestinale Peptide Center e Jeffrey A. Colby Colon Cancer Research e Tom Liu Memorial Fondi della University of Michigan Comprehensive Cancer Center.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Matrigel Basement Membrane MatrixBD Biosciences3562345 mg/ml
Collagenase Type IVWorthingtonLS004188375U/mg
DispaseGibco17105-0411.8U/mg
Advanced DMEM/F12Invitrogen12634010
Epidermal Growth Factor (EGF), Murine, NaturalInvitrogen53003-018
N2 SupplementInvitrogen17502-048100 x
B27 SupplementInvitrogen17504-04450 x
Glutamax-IGibco35050-079100x
N-AcetylcysteineSigmaA9165-5G
Dulbecco's Modified Eagle MediumInvitrogen11965-092
PicoPureTM RNA Isolation KitInvitrogenKIT0204

Riferimenti

  1. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology. 141, 1762-1772 (2011).
  2. Creamer, B., Shorter, R. G., Bamforth, J. The turnover and shedding of epithelial cells. I. The turnover in the gastro-intestinal tract. Gut. 2, 110-118 (1961).
  3. Crosnier, C., Stamataki, D., Lewis, J. Organizing cell renewal in the intestine: stem cells, signals and combinatorial control. Nat. Rev. Genet. 7, 349-359 (2006).
  4. Medema, J. P., Vermeulen, L. Microenvironmental regulation of stem cells in intestinal homeostasis and cancer. Nature. 474, 318-326 (2011).
  5. Korinek, V., et al. Depletion of epithelial stem-cell compartments in the small intestine of mice lacking Tcf-4. Nat. Genet. 19, 379-383 (1998).
  6. Pinto, D., Gregorieff, A., Begthel, H., Clevers, H. Canonical Wnt signals are essential for homeostasis of the intestinal epithelium. Genes Dev. 17, 1709-1713 (2003).
  7. Kim, K. A., et al. Mitogenic influence of human R-spondin1 on the intestinal epithelium. Science. 309, 1256-1259 (2005).
  8. Reya, T., Clevers, H. Wnt signalling in stem cells and cancer. Nature. 434, 843-850 (2005).
  9. Siegel, R., Naishadham, D., Jemal, A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J. Clin. 62, 10-29 (2012).
  10. Sesink, A. L., Termont, D. S., Kleibeuker, J. H., Vander Meer, R. Red meat and colon cancer: the cytotoxic and hyperproliferative effects of dietary heme. Cancer Res. 59, 5704-5709 (1999).
  11. Fearon, E. R. Molecular genetics of colorectal cancer. Annu. Rev. Pathol. 6, 479-507 (2011).
  12. Nishisho, I., et al. Mutations of chromosome 5q21 genes in FAP and colorectal cancer patients. Science. 253, 665-669 (1991).
  13. Xue, X., et al. Hypoxia-inducible factor-2alpha activation promotes colorectal cancer progression by dysregulating iron homeostasis. Cancer Res. 72, 2285-2293 (2012).
  14. Liu, W., et al. Mutations in AXIN2 cause colorectal cancer with defective mismatch repair by activating beta-catenin/TCF signalling. Nat. Genet. 26, 146-147 (2000).
  15. Morin, P. J., et al. Activation of beta-catenin-Tcf signaling in colon cancer by mutations in beta-catenin or APC. Science. 275, 1787-1790 (1997).
  16. Brattain, M. G., Fine, W. D., Khaled, F. M., Thompson, J., Brattain, D. E. Heterogeneity of malignant cells from a human colonic carcinoma. Cancer Res. 41, 1751-1756 (1981).
  17. Leibovitz, A., et al. Classification of human colorectal adenocarcinoma cell lines. Cancer Res. 36, 4562-4569 (1976).
  18. Willson, J. K., Bittner, G. N., Oberley, T. D., Meisner, L. F., Weese, J. L. Cell culture of human colon adenomas and carcinomas. Cancer Res. 47, 2704-2713 (1987).
  19. Brattain, M. G., Strobel-Stevens, J., Fine, D., Webb, M., Sarrif, A. M. Establishment of mouse colonic carcinoma cell lines with different metastatic properties. Cancer Res. 40, 2142-2146 (1980).
  20. Ikubo, A., Aoki, Y., Nagai, E., Suzuki, T. Highly metastatic variant of a mouse colon carcinoma cell line, LM17 and its response to GM-CSF gene therapy. Clin. Exp. Metastasis. 17, 849-855 (1999).
  21. Basant, S. K., Rinesh, K. Principles Of Animal Cell Culture. Student Compendium. Textbook Student Edition. 6, 61-96 (2008).
  22. Vachon, P. H., et al. Differentiation state-selective roles of p38 isoforms in human intestinal epithelial cell anoikis. Gastroenterology. 123, 1980-1991 (2002).
  23. Darido, C., et al. Defective claudin-7 regulation by Tcf-4 and Sox-9 disrupts the polarity and increases the tumorigenicity of colorectal cancer cells. Cancer Res. 68, 4258-4268 (2008).
  24. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459, 262-265 (2009).
  25. Yui, S., et al. Functional engraftment of colon epithelium expanded in vitro from a single adult Lgr5(+) stem cell. Nat. Med. 18, 618-623 (2012).
  26. Anderson, E. R., Xue, X., Shah, Y. M. Intestinal hypoxia-inducible factor-2alpha (HIF-2alpha) is critical for efficient erythropoiesis. J. Biol. Chem. 286, 19533-19540 (2011).
  27. Sato, T., et al. Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature. 469, 415-418 (2011).
  28. Kondo, J., et al. Retaining cell-cell contact enables preparation and culture of spheroids composed of pure primary cancer cells from colorectal cancer. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 6235-6240 (2011).
  29. Clevers, H., Nusse, R. Wnt/beta-catenin signaling and disease. Cell. 149, 1192-1205 (2012).

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