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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Accurate assessment of anti-inflammatory effects is of utmost importance for the evaluation of potential new drugs for the treatment of inflammatory bowel disease. Digital holographic microscopy provides assessment of inflammation in murine and human colonic tissue samples as well as automated multimodal evaluation of epithelial wound healing in vitro.

Abstract

L'incidenza della malattia infiammatoria intestinale, cioè, la malattia di Crohn e la colite ulcerosa, è notevolmente aumentato negli ultimi dieci anni. L'eziologia della IBD rimane sconosciuta e strategie terapeutiche attuali si basano sulla soppressione aspecifica del sistema immunitario. Lo sviluppo di trattamenti che colpiscono specificamente l'infiammazione intestinale e epiteliale guarigione della ferita potrebbe migliorare in modo significativo la gestione di IBD, ma questo richiede un rilevamento accurato di alterazioni infiammatorie. Attualmente, i potenziali candidati di droga sono solitamente valutati utilizzando modelli animali in vivo o con tecniche basate su colture cellulari in vitro. L'esame istologico di solito richiede le cellule oi tessuti di interesse per essere macchiati, che possono alterare le caratteristiche del campione e, inoltre, l'interpretazione dei risultati può variare dalla competenza investigatore. microscopio olografico digitale (DHM), basato sul rilevamento di ottica percorso ritardo di lunghezza, permette-Macchia libera di imaging a contrasto di fase quantitativa. In questo modo i risultati di essere direttamente correlati con i parametri biofisici assoluti. Si dimostra come la misurazione delle variazioni di densità dei tessuti con DHM, basato sulla misurazione dell'indice di rifrazione, in grado di quantificare le alterazioni infiammatorie, senza colorazione, in diversi strati di campioni di tessuto del colon da topi e nell'uomo con colite. Inoltre, abbiamo dimostrato il monitoraggio senza etichetta multimodale continuo di epiteliale guarigione delle ferite in vitro, possibile utilizzando DHM attraverso la semplice determinazione automatica della zona ferita e la determinazione simultanea di parametri morfologici come la massa secca e spessore dello strato di cellule che migrano. In conclusione, DHM rappresenta un prezioso, romanzo e strumento quantitativo per la valutazione di infiammazione intestinale con valori assoluti per i parametri possibili, la quantificazione semplificata di epiteliale guarigione delle ferite in vitro e quindi ha un elevato potenziale di u diagnostica traslazionaleSE.

Introduzione

Le malattie infiammatorie intestinali (IBD), vale a dire, la colite ulcerosa (UC) e la malattia di Crohn (CD) sono malattie infiammatorie idiopatiche del tratto gastrointestinale 1. La ricerca sulla fisiopatologia delle IBD e la valutazione dei potenziali nuovi farmaci o nuovi approcci diagnostici è particolarmente importante. Sia nella ricerca di base e la gestione clinica dei pazienti IBD, la mucosa intestinale è diventato un centro dell'attenzione 2,3. La mucosa rappresenta un contorno anatomico, in cui l'interazione tra batteri commensali, cellule epiteliali e vari componenti cellulari del sistema immunitario intestinale orchestrare budello omeostasi 4,5. Tuttavia, nei pazienti con malattia infiammatoria intestinale, infiammazione intestinale incontrollata e persistente conduce alla mucosa danni, rilevabile come ulcerazioni o stenosi, che possono finalmente culminare nella composizione della funzione di barriera epiteliale, che a sua volta aggrava infiammazione locale 6.

epiteliale la guarigione della ferita è quindi fondamentale per la rigenerazione epiteliale dopo l'infiammazione, ma è anche un requisito fondamentale per la guarigione delle ulcere gastrointestinali o perdite anastomotica dopo la chirurgia gastrointestinale 7. Epiteliale guarigione della ferita può essere simulato in vitro ferita healing in vitro e in modelli murini di infiammazione intestinale 8,9. Sia in vitro e in vivo approcci hanno inconvenienti, che limitano la precisione della valutazione sperimentale. Saggi in vitro, come saggi scratch classici, richiedono procedure di colorazione prolungata o trasfezione con cromofori fluorescenti. Essi sono spesso limitati dalla loro monitoraggio discontinuo di proliferazione e migrazione cellulare che non può essere automatizzato 10. In vivo modelli, come destrano solfato sodico (DSS) colite indotta, spesso mancano robusti read-out, in parte dovuta alla variazione significativa visto in marker di laboratorio, mare tali marcatori inadeguati per valutare la colite gravità 11,12. L'analisi istologica della mucosa infiammata è attualmente ancora l'approccio più valido per determinare la gravità colite ma questo, come saggi di guarigione della ferita epiteliali in vitro, richiede colorazione e dipende dalla perizia del ricercatore 13.

Recentemente digitale microscopio olografico (DHM), una variante della fase di microscopia quantitativa 14, è stato identificato come strumento utile per la valutazione dei epiteliale la guarigione delle ferite in vitro e in vivo 15. DHM permette valutazione della densità del tessuto misurando cammino ottico ritardo di lunghezza (OPD) , che la diagnosi di cancro prospettive romanzo 16-18 e la quantificazione dei relativi infiammazione alterazioni dei tessuti 19. Inoltre, DHM consente il monitoraggio delle dinamiche morfologia delle cellule per determinare lo spessore delle cellule, cellule superficie coperta e intracellulare (proteine) la quantità di contenuti 15,20. In saggi in vitro, DHM consente anche l'analisi dei processi fisiologici, ad esempio, permeabilità cellulare valutando variazioni di volume delle cellule e spessore 21,22. Inoltre, le misure DHM possono essere automatizzate che impedisce pregiudizi campione investigatore associato.

Qui, dimostriamo l'uso di DHM in un modello murino di infiammazione intestinale, e applichiamo anche DHM per l'analisi dei campioni di tessuti umani per il monitoraggio quantitativo di guarigione della ferita come un test in vitro senza etichetta. In primo luogo, valutiamo le alterazioni infiammatorie delle diverse pareti del colon-strati nei topi colitici e sezioni di tessuto da esseri umani con IBD. Dopo aver descritto la procedura di imaging fase quantitativa DHM, forniamo istruzioni dettagliate per l'uso dei componenti del microscopio, la preparazione di sezioni di tessuto e anche descrivere la valutazione delle immagini acquisite fase quantitativa.

Successivamente, dimostriamo che DHM può essere utizato per il monitoraggio continuo multimodale di epiteliale guarigione delle ferite in vitro, e descrivere l'analisi delle caratteristiche cellulari come spessore dello strato di cellule, massa secca e volume cellulare dare visione indotta da farmaci e cellule fisiologica alterazioni.

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Protocollo

Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal comitato regionale di etica (il Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz, LANUV, Germania) in base alla legge tedesca sulla protezione degli animali. Il comitato etico locale dell'Università di Münster ha approvato l'uso di tessuti umani per l'analisi istologica e microscopio.

1. Gli animali e materiali

  1. Utilizzare femminile o topi maschi del ceppo DSS-sensibili richiesto che pesano da 20 a 25 g, e la casa in base alla legislazione cura degli animali locale. Fornire chow speciale per i roditori e autoclavato bere acqua ad libitum.
  2. Indurre la colite DSS acuta con la somministrazione di 3% w / v destrano solfato di sodio (DSS, peso molecolare: 36,000-50,000 Da) in acqua di rubinetto in autoclave per 5 giorni.
    NOTA: La potenza del DSS è molto variabile a seconda del produttore e batch. Metti alla prova la tua DSS fornitore-ha fornito prima per l'induzione dell'attività della malattia, per la quale dail peso corporeo glia è un indicatore affidabile e oggettivo.
  3. Per la valutazione istologica di campioni di tessuto del colon, eutanasia topi di CO 2 insufflazione (o come specificato dalle direttive nazionali ed istituzionali) alla fine dell'esperimento.

2. Setup sperimentale per DSS-colite e in vitro la guarigione della ferita Assays

  1. Colture cellulari e la creazione di test di guarigione delle ferite.
    1. Grow cellule Caco-2 in una umidità del 95% e 5% CO 2 ambiente a 37 ° C. Utilizzare media RPMI con siero fetale bovino al 10% (FBS) e 1% di penicillina / streptomicina.
    2. Seme cellule Caco-2 con una densità di 4 x 10 5 cellule / cm 2 a 35 mm Petri con alta cultura Inserisci (Figura 4A).
      NOTA: L'inserto genera due aree di celle coperte che sono separati con uno spazio libero cellulare definito che rappresenta l'area ferito da analizzare.
    3. Cambiare media due giorni dopo seeding. Eseguire per prima aspirazione di media residua con detriti cellulari utilizzando una pipetta automatica, sciacquare con 100 ml di tampone fosfato (PBS) e aggiungere media RPMI fresco o medio di siero-privato.
    4. celle di coltura per 24 ore in media di siero-privati ​​(0,1% FBS) integrata con 20 ng EGF / siero ml o 2 mg mitomicina c / ml di siero di rilevare alterazioni nel comportamento delle ferite guarigione. Aggiungere normale media RPMI per controllare le cellule per 24 ore.
    5. Dopo 24 ore di cultura, rimuovere ed eliminare gli inserti cultura come descritto al punto 3.4 ed eseguire DHM.
  2. Induzione della colite acuta DSS
    1. Sciogliere 3 g di DSS in 100 ml di acqua in autoclave per ottenere un 3% (w / v) DSS. Fornire questa soluzione al posto di acqua potabile per i topi ad libitum per 7 giorni. Calcolare 5 ml di DSS-soluzione per topo / giorno. Fornire acqua autoclavato senza DSS per topi di controllo ad libitum.
  3. Preparazione delle sezioni criostatiche di murine e colon umano
    1. Euthanize topi di CO 2 insufflazione alla fine dell'esperimento.
    2. Sezionare addome agli animali, laparotomia 23. Rimuovere l'intero colon accuratamente con una pinzetta e tagliare l'estremità ileale e del retto con le forbici chirurgiche. Tagliare il colon con una forbice longitudinalmente dalla cecale al fine rettale e aprire il colon. Rimuovere tutte le feci dal campione con una pinzetta seguita da lavaggio con PBS 24.
    3. Preparare rotoli svizzeri arrotolando l'intero colon con un cotone gemma longitudinalmente dalla cecale alla fine del retto con la mucosa curvato verso l'interno. Incorpora campioni del colon in temperatura ottimale di taglio (OCT) composto e tenere congelato a -80 ° C fino a nuovo uso.
    4. Incorpora tessuti del colon umano dal pezzo operatorio in ottimali di taglio di temperatura ottobre composto e tenere congelato a -80 ° C fino a nuovo uso.
    5. sezioni tagliate di 7 micron di spessore dei campioni OCT-composti-embedded con l'aiuto di un cryotome solo prima dell'esame.
      NOTA: Lo spessore del campione ottimale dipende dalla proprietà di diffusione del tipo di tessuto in esame persistenza e. Per gli esperimenti descritti utilizzando tessuti del colon, spessore della fetta> 10 micron causa importante aumento del rumore a causa di dispersione della luce in immagini quantitativi contrasto di fase DHM, mentre i campioni di spessore <5 micron mostrano un più alto rischio di danno indotto manufatti dal processo di taglio crio.
    6. Trasferimento sezioni su di un vetrino oggetto vettore.

3. Attrezzatura tecnica, software e le procedure per l'acquisizione e la valutazione di ologrammi digitali

  1. Microscopio olografico digitale per cellulare quantitativa e imaging dei tessuti
    1. Utilizzare un sistema di microscopia fuori asse Mach-Zehnder digitale olografica per l'imaging cellulare dal vivo 25, come mostrato in Figura 1. Assicurarsi che il microscopio è dotato di un10X microscopio lente, un palco microscopio con un supporto per diapositive carrier oggetti in vetro e piastre di Petri con diametro di 35 mm, una camera di riscaldamento per preservare temperatura fisiologica a 37 ° C e software per l'imaging fase quantitativa 25.
      NOTA: per esempio, come descritto in Kemper et al 26 e Langehanenberg et al 27...
      NOTA: In alternativa, utilizzare un sistema simile che è in grado di eseguire luminoso microscopia campo dell'imaging fase quantitativa delle cellule viventi e diapositive tessuto sezionato.
    2. Pulire la lente del microscopio e condensatore con carta di pulizia lente e un detergente (ad esempio, etanolo) come raccomandato dal produttore del microscopio per rimuovere polvere o altre contaminazioni.
    3. Avviare il software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM, selezionare "campo chiaro" modalità di imaging e l'interruttore "on" illuminazione luce bianca. Garantire Köhler-illuminzione del campione come raccomandato dal produttore del microscopio osservando il campione nella finestra di imaging in tempo reale del software di acquisizione immagini (in alternativa un software di acquisizione immagini standard può essere utilizzato in questa fase).
      NOTA: L'intensità dell'immagine deve essere distribuito omogeneamente nel campo di vista e la posizione del campione non deve muoversi durante rifocalizzazione ottica con l'unità di messa a fuoco del microscopio.
    4. Selezionare la modalità "DHM" delle immagini, ruotare "off" illuminazione a luce bianca e l'interruttore "on" la luce laser. Verificare che l'illuminazione con luce laser è omogenea (cioè che l'intensità della luce è omogeneamente distribuito nella finestra di imaging in tempo reale del software di acquisizione di immagini del microscopio DHM) e osservare che il vettore modello frangia di interferenza fuori asse appare con sufficiente contrasto nel immagini catturate (ologrammi digitali).
  2. Preparazione di sezioni al criostato per l'imagingcon DHM
    1. Prendere (sezione criostato su un vettore oggetto di vetro, spessore: 7 micron, come descritto al punto 2.3) del campione dal congelatore. Scongelare il campione per circa 5 minuti a temperatura ambiente e l'atmosfera normale.
    2. Aggiungere 50 - 100 microlitri tampone fosfato salino (PBS) come mezzo di inclusione sulla sezione di tessuto usando una pipetta finché non è completamente coperto con tampone. Coprire il campione con una copertura di slittamento di vetro pulito (spessore del vetro 170 micron).
      NOTA: Over-essiccazione può indurre cambiamenti significativi dell'indice di rifrazione e proprietà dispersive del campione.
    3. Assicurarsi che la parte inferiore del supporto di vetro e il vetrino vengono puliti da polvere e altri contaminanti che possono indurre la dispersione della luce. Il campione è pronto per le indagini con campo chiaro microscopia e DHM.
  3. l'imaging fase quantitativa delle sezioni di tessuto con DHM
    1. Accendere il microscopio olografico digitale, scegliere la lente del microscopio 10X per l'imaging. Avviare l'isoftware di acquisizione mago del microscopio DHM e selezionare la modalità di imaging di file luminosi.
    2. Posizionare il vetrino tessuto come descritto in 2) nel supporto microscopio, con lo slittamento coperchio rivolto l'obiettivo del microscopio.
    3. Switch "sul" campo dell'illuminazione luminosa del microscopio DHM. Posizionare il campione con la fase di microscopio e verificare che l'area tessuto di interesse è visibile nella finestra di monitoraggio in tempo reale. Migliorare la nitidezza dell'immagine utilizzando l'unità di messa a fuoco del microscopio.
      NOTA: Oltre alla zona di interesse, una superficie di scorrimento senza tessuto dovrebbero essere presenti nel campo visivo.
    4. Catturare un'immagine campo chiaro del campione fortemente focalizzato utilizzando il software di acquisizione delle immagini.
    5. Selezionare "DHM" modalità di imaging, girare "off" la luce di illuminazione bianca e girare "on" l'illuminazione luce laser. Selezionare il "tempo di esposizione" per la registrazione ologramma di sotto del 3 ms, osservare che holographic fuori asse frange di interferenza appaiono con un adeguato contrasto nella finestra di imaging dal vivo del software di acquisizione delle immagini e catturare un ologramma digitale.
    6. Ripetere i punti 3.3.3 - 3.3.5 fino a quando sono stati registrati un numero sufficiente di immagini in campo chiaro e ologrammi digitali di diverse aree campione. acquisizione Ologramma è ora completa.
  4. Preparazione del test guarigione della ferita per l'imaging DHM
    1. Accendere il Petri camera di riscaldamento piatto del microscopio DHM circa 1 - 3 ore prima dell'inizio dell'esperimento di assicurare condizioni di temperatura stabili durante le misure DHM.
    2. Preparare banco di lavoro con le attrezzature necessarie (piastra Petri per ferita saggio guarigione è descritto al punto 2.3): pipette, pinzette, coperchio in vetro per la capsula di Petri, 4- (2-idrossietil) Acido -1-piperazineethanesulfonic (HEPES) tamponata terreno di coltura cellulare con fisiologica temperatura (37 ° C) per la preparazione del campione in ambiente sterile.
      NOTA: Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) è composto da 10% di siero fetale calve (FCS), 20 mM HEPES (4- (2-idrossietil) -1-acido piperazineethanesulfonic), e 850 mg / L NaHCO 3.
    3. Rimuovere il coperchio di plastica dalla piastra di Petri e rimuovere il mezzo di coltura cellulare con una pipetta. Rimuovere l'inserto dal fondo piatto Petri usando pinzette.
    4. Lavare il campione 1 - 2 volte con 1 ml tamponata con HEPES terreno di coltura delle cellule per rimuovere le cellule morte e restanti componenti cellulari (per esempio, siero) nell'area della ferita. Aggiungere 2 ml di HEPES tamponato mezzo di coltura cellulare e tappare la piastra di Petri con il coperchio in vetro.
    5. Assicurarsi che il coperchio in vetro e il piatto fondo di Petri sono state pulite da polvere e altre contaminazioni. Campione è pronto per l'osservazione lasso di tempo con DHM.
  5. Monitoraggio multimodale continuo di guarigione della ferita in vitro con DHM
    1. Accendere il Petri camera di riscaldamento piatto del microscopio DHM circa 1 - 3 ore primaall'inizio dell'esperimento di assicurare condizioni di temperatura stabili durante le misure DHM.
    2. Switch "a" microscopio olografico digitale, selezionare la lente del microscopio 10X per l'imaging. Avviare il software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM e selezionare "campo chiaro" modalità di imaging. Assicurarsi che la camera di riscaldamento per il piatto Petri opera una temperatura fisiologica (37 ° C).
    3. Porre la capsula di Petri con la guarigione della ferita test, preparato come descritto in 4), nella camera di riscaldamento del microscopio DHM.
    4. Selezionare la modalità di imaging campo luminoso e posizionare il campione con palco microscopio osservando nella finestra di monitoraggio dal vivo del software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM. Si osservi che l'area desiderata del campione appare fortemente concentrata sotto illuminazione luce bianca.
    5. Cattura immagini luminose di campo di diverse aree del campione (zona della ferita e le zone circostanti con le cellule confluenti) sotto biancoilluminazione a luce con il software di acquisizione immagini e l'aspetto del documento, densità cellulare e omogeneità.
    6. Selezionare "campo chiaro" modalità di imaging del microscopio DHM. Scegliere la zona della ferita sotto la luce di illuminazione bianca nella finestra di sorveglianza in tempo reale con il software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM. Assicurarsi che la zona della ferita è libera da cellule morte e non resti siero, e assicurarsi che entrambe le parti comprendono un singolo strato di cellule omogenee, preferibilmente con i bordi dritti.
    7. Catturare un'immagine luce bianca della ferita iniziale in modalità campo dell'imaging luminoso con il software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM.
    8. Turn "off" illuminazione a luce bianca, selezionare la modalità "DHM" e l'interruttore "on" illuminazione laser. Selezionare un tempo di esposizione di sotto di 3 ms per la registrazione di ologramma (osservare che olografica fuori asse frange di interferenza appaiono con un adeguato contrasto nella finestra di imaging dal vivo del software di acquisizione immagini di tegli DHM microscopio) e catturare un ologramma digitale.
    9. Cattura un ologramma campione in modalità DHM con il software di acquisizione immagini e ricostruire un'immagine quantitativa fase con il software di ricostruzione del microscopio DHM per controllare la qualità dell'immagine.
    10. Selezionare un adeguato intervallo di tempo (ad esempio, 3-5 min) per l'acquisizione ologramma time-lapse con il software di acquisizione delle immagini del microscopio DHM.
    11. Selezionare la modalità di acquisizione time-lapse del software di acquisizione delle immagini in cui il campione è illuminato solo con la luce laser durante l'acquisizione ologramma.
    12. Avviare l'osservazione DHM time-lapse del test guarigione delle ferite.
    13. Fermare l'acquisizione time-lapse dopo il tempo previsto, selezionare la modalità di imaging campo luminoso e documentare l'aspetto finale del campione in immagini luce bianca.
  6. Ricostruire ologrammi digitali dei tessuti sezionati e determinare l'indice medio di rifrazione come parametro per quantificaredensità dei tessuti
    1. Ricostruire immagini fase quantitativa dai ologrammi digitali dei tessuti sezionati con il software del microscopio DHM, ad esempio, come descritto in Kemper et al. 26 e Langehanenberg et al. 27.
    2. Determinare il contrasto di fase Δφ media in diversi strati di tessuto (epitelio, sottomucosa, stroma) nelle regioni opportunamente scelti di interesse (ROI) 19.
    3. Determinare l'indice di rifrazione del mezzo di inclusione utilizzando un rifrattometro oppure utilizzando un valore appropriato dalla letteratura. (valori di indice di rifrazione per tipico dei media incorporamento: n acqua = 1.334 28, n tampone fosfato (PBS) = 1.337 29, n mezzo di coltura cellulare = 1,337-1,339 29,30).
    4. Calcolare gli indici di rifrazione diversi strati di tessuto da valori del contrasto di fase media 19
      figure-protocol-16499 (1)
      NOTA: In Eq. 1 λ è la lunghezza d'onda della luce laser (qui: λ = 532 nm), D lo spessore dei tessuti sezionati (qui: 7 micron) e n media è l'indice di rifrazione del mezzo di inclusione (qui: n medium = n PBS = 1.337, determinato da un Abbe-Rifrattometro).
  7. Ricostruire e valutare ologrammi digitali dal time-lapse la guarigione della ferita osservazione serie
    1. Ricostruire immagini fase quantitativa della serie lasso ologramma tempo ottenuto durante l'osservazione guarigione della ferita con il software microscopio DHM 26,27.
    2. Normalizzare ogni serie di immagini fase quantitativa per l'immagine con il massimo contrasto di fase.
    3. Determinare l'area S c che è coperto dalle cellule nelle immagini fase quantitativa DHM di segmentazione delle immagini, che può essere performato usando la cella di profiler del software libero (www.cellprofiler.org 31).
    4. Calcolare il contrasto di fase media della cellule cellule Δφ nella zona S c.
    5. Recuperare il DM massa secca cellulare dalla media contrasto di fase Δφ cella nella zona S c 15
      figure-protocol-17910 (2)
      NOTA: In Equazione 2 DM indica la massa secca cellulare, S c presenta l'area che è occupato dalle cellule e α = 0,002 m 2 / kg.
    6. Determinare il cellulare rifrazione cellule indice n integrale e l'indice di rifrazione del mezzo n mezzo di coltura cellulare. Determinare cella n separatamente sperimentalmente da cellule in sospensione come descritto nel 30 e misurare media n con un rifrattometro. Alternavamente utilizzare i valori di letteratura per la cella n 30 e n media 29,30.
    7. Calcolare il d cellulare medio spessore cellulare da λ, cellule Δφ, n cellulare e n media 26,32
      figure-protocol-18895 (3)
      NOTA: In Eq. 3 la cella parametro d è lo spessore medio delle cellule, λ denota la luce di lunghezza d'onda della luce laser, cellule Δφ indica il contrasto di fase media, e n cellulare e n medie sono l'indice di rifrazione cellulare integrato e l'indice di rifrazione del mezzo circostante.

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Risultati

Configurazione tipica per DHM Imaging per Digital olografico microscopia (DHM)

Per eseguire l'imaging campo chiaro e imaging quantitativo contrasto di fase DHM, abbiamo applicato un microscopio rovesciato come illustrato in Figura 1 B. Il sistema è stato modificato collegando un modulo DHM, come descritto in precedenza 25. Ologrammi digitali so...

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Discussione

Abbiamo dimostrato che DHM fornisce una valutazione accurata del danno istologico in modelli murini colite e campioni ex vivo di tessuto del colon umano. Inoltre, abbiamo mostrato DHM può monitorare continuamente epiteliale guarigione della ferita mentre fornendo allo stesso tempo informazioni multimodale su alterazioni cellulari. In DHM, la ricostruzione di ologrammi catturate digitalmente viene eseguita numerico 32. Pertanto, in confronto al campo chiaro microscopia, contrasto di fase Zer...

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Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Riconoscimenti

We thank Faekah Gohar for proofreading the manuscript. We thank Sonja Dufentester and Elke Weber for expert technical assistance.

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Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
Azoxymethane (AOM)Sigma - Aldrich, Deisenhofen, GermanyA5486
Cell Culture FlaskGreiner Bio-One, Frickenhausen, Germany658170
Costar StripetteCorning Inc., New York, USA4488
Dextran sulphate sodium (DSS)TdB Consulatancy, Uppsala, SwedenDB001
DMEM/Ham's F12PAA Laboratories - Pasching - AustriaE15-813
EGFSigma - Aldrich, Deisenhofen, GermanySPR3196
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)Sigma - Aldrich, Deisenhofen, GermanyE 9884
Falcon Tube 50 mlBD Biosciences, Erembodegem, Belgium352070
Isopentane (2-Methylbutane)Sigma - Aldrich, Deisenhofen, GermanyM32631-1L
Methylene blueMerck, Darmstadt, Germany1159430025
Mitomycin CSigma - Aldrich, Deisenhofen, GermanyM4287
Microscope SlidesG. Menzel, Braunschweig, GermanyJ1800AMNZ
O.C.T. Tissue Tek compound                                 Sakura, Zoeterwonde, Netherlands4583
Pen/Strep/Amphotericin BLonza, Verviers, Belgium1558
Phosphate buffered saline, PBSLonza, Verviers, Belgium4629
RPMI 1640Lonza, Verviers, Belgium3626
Sodium Chloride 0.9%Braun, Melsungen, Germany5/12211095/0411
Standard dietAltromin, Lage, Germany1320
Tissue-Tek CryomoldSakura, Leiden, Netherlands4566
Trypsin EDTALonza, Verviers, Belgium7815
Vitro – CludR. Langenbrinck, Teningen, Germany04-0002 
 µ-Dish 35 mm with Culture-Insert, highibidi GmbH, Munich, Germany81176
DIC Lid for µ-Dishes, with a glass insertibidi GmbH, Munich, Germany80050
Equipment
MICROM HM550Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, USA46320
Digital holographic microscope
ComponentModelCompany
Inverted MicroscopeiMICTill Photonics, Graefelfing, Germany
LaserCompass 315MCoherent GmbH, Luebeck, Germany
Microscope lensZeiss EC Plan Neofluar 10x/0.3Zeiss, Goettingen, Germany
CCD cameraDMK 41BF02The Imaging Source, Bremen, Germany

Riferimenti

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