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Per un'analisi meccanicistica approfondita della sintesi dell'RNA del virus respiratorio sincrezionale (RSV), segnalamo un protocollo di utilizzo della fosfoproteina chaperone (P) per la coespressione della nucleoproteina priva di RNA (N0)per il successivo assemblaggio in vitro dei nucleocapsidi specifici del virus (NC).
L'uso di un autentico modello di RNA è fondamentale per far progredire la conoscenza fondamentale della sintesi dell'RNA virale che può guidare sia la scoperta meccanicistica che lo sviluppo di saggi in virologia. Il modello di RNA dei virus dell'RNA a senso negativo non commentati (NNS), come il virus respiratorio sincrezionale (RSV), non è una molecola di RNA da sola ma piuttosto un complesso di ribonucleoproteina encapsidata di nucleoproteina (N). Nonostante l'importanza dell'autentico modello di RNA, la generazione e l'assemblaggio di un tale complesso di ribonucleoproteina rimangono sofisticati e richiedono una spiegazione approfondita. La sfida principale è che l'RSV N sovraespresso si lega non specificamente agli RNA cellulari per formare particelle casuali simili a nucleocapside (NCLP). Qui, abbiamo stabilito un protocollo per ottenere N (N0)privo di RNA prima co-esprimendo N con una fosfoproteina chaperone (P), quindi assemblando N0 con oligo di RNA con la sequenza di RNA specifica della RSV per ottenere nucleocapsidi specifici del virus (NC). Questo protocollo mostra come superare la difficoltà nella preparazione di questo complesso di ribonucleoproteina virale tradizionalmente impegnativo.
I virus dell'RNA a senso negativo (NNS) non commentati includono molti agenti patogeni umani significativi, come rabbia, Ebola e virus respiratorio sincrezionale (RSV)1,2. Rsv è la principale causa di malattie respiratorie come bronchiolite e polmonite nei bambini piccoli e negli adulti più grandi in tutto ilmondo 3. Attualmente, non sono disponibili vaccini efficaci o terapie antivirali per prevenire o trattare RSV4. Come parte del ciclo di vita, il genoma RSV funge da modello per la replicazione da parte dell'RNA polimerasi dipendente dall'RNA RSV per produrre ....
1. Clonazione molecolare
NOTA: La clonazione indipendente ligasi (LIC) è stata utilizzata per creare un costrutto di coespressione bi-cistronica RSV plasmide. Il LIC è un metodo sviluppato nei primi anni '90, che utilizza l'attività 3'-5' Exo della DNA polimerasi T4 per creare sporgenze con complementarietà tra il vettore e l'inserto del DNA21,22. I costrutti sono stati realizzati utilizzando il DNA vettoriale 2BT-10, che consiste in un tag 10x His all'N-terminale dell'Open Reading Frame (ORF) (Figura 1).
Purificazione della proteina N0P priva di RNA
Con questo protocollo, è possibile ottenere un complesso eterodimerico solubile RSV N0P su larga scala. L'intera lunghezza della parte terminale N e N delle proteine P è stata co-espressa con 10X His-Tag sulla proteina N in E. coli. N0P è stato purificato usando una colonna di cobalto, scambio ionico e cromatografia ad esclusione di dimensioni. N0P contiene sia il terminale N che N a tutta lunghezza P.......
Le strutture note di particelle nucleocapside-simili (NCLP) dei virus RNA a senso negativo non commentati (NNS) mostrano che gli NLP assemblati sono il complesso N con RNA cellulari ospiti quando sovraespresso nei sistemi di espressione batterica o eucariotica15,16,17,18,19. Studi precedenti hanno tentato di ottenere l'N privo di RNA con una varietà di metodi.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
I programmi di ricerca nel laboratorio Liang di Emory sono supportati dal National Institute of General Medical Sciences (NIGMS) degli Stati Uniti, dal National Institutes of Health (NIH) con il numero di premio R01GM130950 e dal Research Start-Up Fund presso la Emory University School of Medicine. L'autore riconosce i membri del laboratorio Liang per il supporto utile e la discussione critica.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Agarose | SIgma | A9539-500G | making construct using LIC method |
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit | Millipore | UFC901024 | concentrate the protein sample |
Ampicillin sodium | GOLD BIOTECHNOLOGY | 5118.111317A | antibiotic for cell culture |
AseI | NEB | R0526S | making construct using LIC method |
Cobalt (High Density) Agarose Beads | Gold Bio | H-310-500 | For purification of His-tag protein |
Corning LSE Digital Dry Bath Heater | CORNING | 6885-DB | Heate the sample |
dCTP | Invitrogen | 10217016 | making construct using LIC method |
dGTP | Invitrogen | 10218014 | making construct using LIC method |
Glycerol | Sigma | G5516-4L | making solution |
HEPES | Sigma | H3375-100G | making solution |
HiTrap Q HP | Sigma | GE29-0513-25 | Protein purification |
Imidazole | Sigma | I5513-100G | making solution |
IPTG (Isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside) | GOLD BIOTECHNOLOGY | 1116.071717A | induce the expression of protein |
Microcentrifuge Tubes | VWR | 47730-598 | for PCR |
Misonix Sonicator XL2020 Ultrasonic Liquid Processor | SpectraLab | MSX-XL-2020 | sonicator for lysing cell |
Negative stain grids | Electron Microscopy Sciences | CF400-Cu-TH | For making negative stain grids |
New Brunswick Innova 44/44R | eppendorf | M1282-0000 | Shaker for culturing the cell |
Nonidet P 40 Substitute | Sigma | 74385-1L | making solution |
OneTaq DNA Polymerase | NEB | M0480L | PCR |
QIAquick Gel Extraction Kit | QIAGEN | 28706 | Purify DNA |
SSPI-HF | NEB | R3132S | making construct using LIC method |
Superose 6 Increase 10/300 GL | Sigma | GE29-0915-96 | Protein purification |
T4 DNA polymerase | Sigma | 70099-3 | making construct using LIC method |
Thermo Scientific Sorvall RC 6 Plus Centrifuge | Fisher Scientific | 36-101-0816 | Centrifuge, highest speed 20,000 rpm |
Trizma hydrochloride | Sigma | T3253-250G | making solution |
Uranyl Formate | Electron Microscopy Sciences | 22451 | making negative stain solution |
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