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Abbiamo sviluppato un nuovo approccio di perdita di funzione che prevede l'introduzione e l'integrazione genomica di sequenze di micro-RNA artificiali in embrioni di pulcino utilizzando l'elettroporazione in ovo e il sistema di trasposoni Tol2. Questa tecnica fornisce una metodologia di knockdown genico robusta e stabile per gli studi sulla funzione genica durante lo sviluppo.
La retina del pulcino è stata a lungo un importante sistema modello nella neurobiologia dello sviluppo, con vantaggi tra cui le sue grandi dimensioni, il rapido sviluppo e l'accessibilità per la visualizzazione e le manipolazioni sperimentali. Tuttavia, il suo principale limite tecnico era la mancanza di solidi approcci di perdita di funzione per le analisi della funzione genica. Questo protocollo descrive una metodologia di silenziamento genico nella retina del pulcino in via di sviluppo che coinvolge l'espressione transgenica di microRNA artificiali (miRNA) utilizzando il sistema di trasposoni Tol2. In questo approccio, un plasmide trasposone Tol2 che contiene una cassetta di espressione per il marcatore EmGFP (proteina fluorescente verde smeraldo) e sequenze pre-miRNA artificiali contro un gene bersaglio viene introdotto nella retina embrionale del pulcino con un costrutto di espressione della trasposasi Tol2 mediante elettroporazione in ovo . Nelle cellule retiniche trasfettate, la trasposasi catalizza l'escissione della cassetta di espressione dal vettore trasposone e la sua integrazione nei cromosomi dell'ospite, portando all'espressione stabile dei miRNA e della proteina EmGFP. Nel nostro studio precedente, abbiamo dimostrato che l'espressione di Nel, una glicoproteina che esercita molteplici funzioni nello sviluppo neurale, può essere significativamente soppressa nella retina del pulcino in via di sviluppo utilizzando questa tecnica. I nostri risultati indicano che questa metodologia induce una soppressione stabile e robusta dell'espressione genica e quindi fornisce un approccio efficiente alla perdita di funzione per gli studi sullo sviluppo della retina.
La retina dei vertebrati è un importante sistema modello per lo studio dello sviluppo neurale. Nonostante la sua posizione periferica, la retina è anatomicamente e dal punto di vista dello sviluppo un'estensione del sistema nervoso centrale e il nervo ottico, costituito da assoni di cellule gangliari retiniche, rappresenta un tratto all'interno del sistema nervoso centrale. La retina del pulcino presenta vantaggi significativi come sistema modello per studiare il meccanismo molecolare dello sviluppo neurale: è grande e si sviluppa rapidamente; presenta somiglianze strutturali e funzionali con la retina umana; È altamente accessibile per la visualizzazione e le manipol....
1. Costruzione di vettori di espressione dei miRNA
NOTA: Le procedure per la costruzione di vettori di espressione di miRNA (passaggi 1.1-1.3, 1.5-1.6.) sono ottimizzate per il kit di espressione di miRNA, kit di espressione di miRNA Block-iT Pol II miR con EmGFP, come descritto in precedenza15,16. Il kit fornisce il vettore di espressione progettato per consentire l'espressione di miRNA (pcDNA6.2-GW/EmGFP-miRNA), un vettore di controllo (plasmide di controllo pcDNA6.2-GW/EmGFP-miRNA-negativo), reagenti accessori e istruzioni per produrre vettori di espressione di miR....
Costruzione di costrutti di trasposoni Tol2 per l'espressione di miRNA artificiali contro Nel
Nel (Neural Epidermal growth factor (EGF)-Like; noto anche come Nell2) è una glicoproteina extracellulare. Ha somiglianze strutturali con la trombospondina-1 ed è prevalentemente espressa nel sistema nervoso20,21. Abbiamo precedentemente dimostrato che Nel regola la differenziazione e la sopravvivenza delle cellule gangliari ret.......
Questo protocollo fornisce una guida dettagliata al silenziamento genico nella retina del pulcino in via di sviluppo mediante l'espressione transgenica di miRNA artificiali utilizzando l'elettroporazione in ovo e il sistema di trasposone Tol2.
I seguenti fattori sono di fondamentale importanza per eseguire con successo questa tecnica. In primo luogo, è fondamentale utilizzare sequenze di miRNA che hanno dimostrato di esercitare robusti effetti di knockdown. Prima di applicarli per l'.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
I vettori pT2K-CAGGS e pCAGGS-T2TP sono stati gentilmente forniti rispettivamente da Yoshiko Takahashi (Università di Kyoto, Kyoto, Giappone) e Koichi Kawakami (Istituto Nazionale di Genetica, Mishima, Giappone). Ringraziamo Michael Berberoglu per la sua lettura cruciale del manoscritto. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni della Royal Society e del Biotechnology and Biological Sciences Research Council (BBSRC) (Regno Unito) a M.N.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
18 G needle, 2" | VWR | 89219-320 | |
AP-TAG kit A and AP-TAG kit B | GenHunter Corp | Q201 and Q202 | Plasmid vectors for making AP fusion proteins (https://www.genhunter.com/products/ap-tag-kit-a.html, https://www.genhunter.com/products/ap-tag-kit-b.html) |
Block-iT RNAi Designer | Invitrogen | An online tool to choose target sequences and design pre-miRNA sequences (https://rnaidesigner.thermofisher.com/rnaiexpress/) | |
BSA 10 mg | Sigma-Aldrich | A2153 | |
C115CB cables | Sonidel | C115CB | https://www.sonidel.com/product_info.php?products_id¼254 |
C117 cables | Sonidel | C117 | https://www.sonidel.com/product_info.php?products_id¼252 |
Capillary tubes with omega dot fiber (Micropipette needles) | FHC | 30-30-1 | 1 mm O.D. 0.75 mm I.D |
CUY21 square wave electroporator | Nepa Gene | CUY21 | |
Diethanolamine (pH 9.8) | Sigma-Aldrich | D8885 | |
Dissecting microscope | |||
Egg incubator | Kurl | B-Lab-600-110 | https://www.flemingoutdoors.com/kuhl%2D%2D-600-egglaboratory-incubator%2D%2D-b-lab-600-110.html |
Electrode holder | Sonidel | CUY580 | https://www.sonidel.com/product_info.php?products_id¼85 |
Electrodes | Nepa Gene | CUY611P3-1 | https://www.sonidel.com/product_info.php?products_id¼94 |
Electromax DH10B | Invitrogen | 18290-015 | Electrocompetent E. coli cells |
Fast green FCF | Sigma-Aldrich | F7258 | |
Fertilized chicken eggs (Gallus gallus) | Obtained from commercial vendors (e.g. Charles River) or local farmers | ||
Gooseneck fiber light source | |||
FuGene 6 transfection reagent | Promega | E2691 | |
Hamilton syringe (50 μL) | Sigma-Aldrich | 20715 | Hamilton Cat No 80901 |
Hanks' balanced salt solution | Sigma-Aldrich | H6648 | |
Heavy mineral oil | Sigma-Aldrich | 330760 | |
HEPES | GIBCO | 15630080 | |
L-Homoarginine | Sigma-Aldrich | H10007 | |
MgCl2 | Sigma-Aldrich | 13112 | |
Micromanipulator | Narishige (Japan) | MM3 | http://products.narishige-group.com/group1/MM-3/electro/english.html |
Micropipette puller | Shutter Instrument | P97 | |
p-Nitrophenylphosphate | Sigma-Aldrich | 20-106 | |
PBS | Sigma-Aldrich | D8662 | |
pCAGGS-T2TP vector | Tol2 transposase expression plasmid. A generous kind gift of Koichi Kawakami (National Institute of Genetics, Japan). Also available from Addgene. | ||
Pfu | ThermoFisher | F566S | |
Picospritzer (Optional) | Parker | Pressure microinjection system | |
Plasmid maxi kit | Qiagen | 12163 | Plasmid maxiprep kit |
pT2K-CAGGS vector | Tol2 transposon vector. Kindly provided by Yoshiko Takahashi (Kyoto University, Japan) | ||
PVC tubing | VWR (UK) | 228-3830 | |
Spectinomycin | Sigma-Aldrich | S9007-5 | |
T4 DNA ligase | Promega | M1801 | |
The BLOCK-iT Pol II miR RNA expression kit with EmGFP | Invitrogen | K493600 | Contains the miRNA expression vector (pcDNA6.2-GW/EmGFP-miRNA), a control vector (pcDNA6.2-GW/EmGFP-miRNA-negative control plasmid), accessory reagents, and instructions (https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/K493600?SID.srch-hj-K4936-00) |
Thermal cycler |
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