Vorremmo ringraziare Amie Regan per un&#39;attenta lettura del manoscritto. Questo lavoro è stato sostenuto da NGFN Inoltre concessione # 01GS0801, MRC comunione concessione G1002523 e NHSBT concessione WP11-05 al LD ​​e DFG concessione FR2938/1-1 alla CCF

1. Marcatura metabolica con 4 thiouridine Fare un piano dettagliato del setup sperimentale / programma, ad esempio, quando aggiungere il 4SU di coltura cellulare e quando raccogliere i campioni. Piano per almeno 5 minuti tra ogni condizione. Solo il trattamento di cellule di una condizione alla volta. Maneggiare max. 3-5 piatti in un dato momento. Maneggiare le cellule più rapidamente possibile per ridurre al minimo i cambiamenti di temperatura e livelli di CO 2. Evitare di esporre le cellule alla luce dopo 4SU viene aggiunto in quanto ciò potrebbe causare la reticolazione di RNA 4SU-etichettati per le proteine ​​cellulari. Avvio di etichettatura <ol><li> Scongelare a 4 thiouridine (4SU) subito prima dell&#39;uso e pipetta quantità necessaria di 4SU per ogni condizione in un tubo Falcon sterile. </li><li> Prendete la quantità di mezzo di coltura cellulare (5 ml per 10 cm di piatto) fuori i piatti e aggiungere al 4SU contenenti tubo Falcon e mescolare accuratamente. Rimuovere e gettare la media residua dai piatti. </li> &lt;li&gt; Applicare 4SU contenente schienale medio per i piatti. </li></ol> Fine di etichettatura <ol start="4"><li> Rimuovere coltura cellulare da cellule. Aggiungere 5 ml di Trizol per ogni piatto. Per gli esperimenti complessi, tra cui più punti o condizioni di tempo, questo passo è fatto meglio da due persone, una rimozione del mezzo, l&#39;altra aggiungendo Trizol e raccogliendo il lisato. </li><li> Incubare per 5 minuti a temperatura ambiente per lisi cellulare completa. </li><li> Utilizzare una pipetta da 10 ml per lavare il piatto con cura con il Trizol aggiunto. Questo favorisce la lisi cellulare completo e il recupero del campione. Maneggiare con cura, come Trizol è estremamente pericoloso al contatto con la pelle o con gli occhi! Avere antidoto per le ustioni fenolo a portata di mano (per esempio polietilenglicole 300 o 400 in alcool denaturato industriale (70:30)). Campioni di trasferimento a tubi di polipropilene. Si prega di notare che i tubi Falcon standard non resistere a queste forze elevate g). I campioni possono essere conservati a -20 ° C per almeno un mese fino RNA totale is preparato. </li></ol> 2. RNA Preparazione Utilizzo Modificata Trizol protocollo <ol><li> Aggiungere 1 ml di cloroformio (0.2 ml per ml Trizol) e agitare vigorosamente per 15 sec. Incubare a temperatura ambiente per 2 - 3 min. </li><li> Centrifugare a 13.000 xg per 15 min a 4 ° C. </li><li> Trasferire fase superiore acquosa (contenente l&#39;RNA) in una nuova provetta di polipropilene 15 ml. </li><li> Aggiungere ½ il volume di reazione di precipitazione sia RNA tampone e isopropanolo (3 ml per es surnatante aggiungere 1,5 ml di tampone RNA precipitazione e 1,5 ml di isopropanolo). </li><li> Mescolare bene. Incubare a temperatura ambiente per 10 min. </li><li> Centrifugare a 13.000 xg per 10 min a 4 ° C. Scartare il surnatante. </li><li> Centrifugare brevemente (5.000 × g per 30 sec) e rimuovere residui di isopropanolo con pipetta 200 microlitri. </li><li> Aggiungere un uguale volume di etanolo 75% e agitare fino a quando il tubo stacca pellet. Evitare di romperlo in tanti piccoli pezzi come questo può rendere la rimozione di residuil difficile etanolo. </li><li> Centrifugare a 13.000 xg per 10 min a 4 ° C. Scartare il surnatante. </li><li> Spin down RNA brevemente ed eliminare l&#39;etanolo residuo con una pipetta 200 microlitri. Ripetere il passaggio ed eliminare l&#39;etanolo residuo con una pipetta 20 ml. Dopo questi due passaggi, senza ulteriori asciugatura del pellet dovrebbero essere eseguite. </li><li> Aggiungere 100 ml di H 2 O a 100 pg di RNA rendimento atteso e mescolare bene pipettando su e giù 5 - 6 volte per aiutare nella dissoluzione del RNA. </li><li> Sciogliere e denaturare RNA mediante riscaldamento a 65 ° C per 10 min (agitatore) ed immediatamente posto sul ghiaccio. </li><li> Misurare la concentrazione di RNA a 260 nm utilizzando uno spettrofotometro NanoDrop, seguendo le istruzioni del produttore. Questo RNA può essere conservato a -80 ° C per almeno un mese. </li></ol> 3. Tiolo-specifica Biotinilazione di recente RNA trascritto <ol><li> Inizia con 60 - 80 mg di RNA cellulare totale. </li><li> Costituiscono etichettatura reazione. Pipettare nella seguenteordine (per RNA mcg): <ol class="lalpha"><li> 1 ml 10x Buffer Biotinilazione </li><li> 7 RNA microlitri (contenente 1 RNA mcg diluito in nucleasi H 2 O) </li><li> 2 microlitri biotina-HPDP (1 mg / ml di DMF) </li></ol></li></ol> Aggiungere sempre la biotina-HPDP scorso e mescolare immediatamente da pipettaggio. Nel caso la biotina precipita, contenuti DMF può essere aumentata a una concentrazione finale del 40%. <ol start="3"><li> Incubare a temperatura ambiente per 1,5 ore con rotazione. </li><li> Aggiungere un uguale volume di cloroformio. Mescolare energicamente. Incubare per 2-3 minuti fino a quando le fasi cominciano a separarsi e bolle iniziano a scomparire. </li><li> Centrifugare a 20.000 xg per 5 minuti a 4 ° C. Trasferire accuratamente la fase superiore acquosa in una nuova provetta. </li><li> Ripetere i passi 3.4 e 3.5 una volta. Si consiglia di eseguire questo passaggio in 2 ml di blocco Gel tubi pesanti fase per ridurre la perdita di RNA. </li><li> RNA precipitazione: add 1/10 del volume di 5 M NaCl e un volume uguale diisopropanolo alla fase acquosa. </li><li> Centrifugare a 20.000 xg per 20 min a 4 ° C. Scartare il surnatante. </li><li> Aggiungere un uguale volume di etanolo 75%, centrifugare a 20.000 xg per 10 min a 4 ° C, scartare il surnatante. </li><li> Spin brevemente ed eliminare l&#39;etanolo residuo con 200 microlitri pipetta. </li><li> Spin brevemente ed eliminare l&#39;etanolo residuo con 20 microlitri pipetta. </li><li> Non permettere che l&#39;RNA si asciughino. Risospendere in 50 - 100 ml H 2 O (~ 1 ml per 1 mg di input RNA). Mescolare bene pipettando su e giù per 5-6 volte. </li><li> Verificare la qualità dell&#39;RNA mediante analisi electrophoretical per escludere la degradazione dell&#39;RNA. </li></ol> 4. Dot Blot Analisi di 4SU-incorporazione (Opzionale) Incorporazione 4SU può essere facilmente determinata da analisi dot blot di RNA biotinilato. Questo è un passaggio facoltativo che consente la risoluzione dei problemi e la stima dei tassi di incorporazione 4SU relativi a un controllo biotinilato oligo DNA. Per questo test abbiamo recommend utilizzando iodoacetyl-biotina invece di biotina-HPDP per biotinilazione di RNA 4SU-etichettati in fase 3.2. Ciò si traduce in un biotinilazione irreversibile di 4SU-RNA. Pertanto, (ad es RNeasy) possono essere utilizzati metodi basati colonna per il recupero di molto più piccole quantità di RNA biotinilato (ad esempio 5 mg). Mentre RNA biotinilato utilizzando biotina-HPDP è adatto anche per questo saggio, il segnale risultante è più debole e il rapporto segnale-rumore meno favorevole (Figura 3). <ol><li> Seguire il protocollo per 4SU-etichettatura e l&#39;isolamento di RNA cellulare totale, come descritto nelle sezioni 1 e 2. </li><li> Biotinylate 4SU marcato RNA come descritto nel capitolo 3 sostituendo biotina-HPDP con iodoacetyl-biotina ed effettuare due estrazioni cloroformio per rimuovere completamente i residui di iodoacetyl-biotina eccessivi. </li><li> Recuperare RNA biotinilati da isopropanolo / etanolo precipitazione come descritto o con un approccio basato su colonne (es RNeasy) nel caso di piccole quantità di RNA (&lt;10 mcg) Sono utilizzati. </li><li> Incubare la membrana Zeta in acqua priva di nucleasi con dondolo per 10 min. </li><li> Prendere la membrana fuori dall&#39;acqua nucleasi e rimuovere i liquidi eccessivi mettendo membrana tra due tovaglioli di carta puliti e premendo con decisione. Aria di essiccazione la membrana per 5 minuti si tradurrà in punti più belli. </li><li> Per ogni campione, preparare 20 ml di RNA 200 ng / ml usando ghiaccio freddo dot blot tampone di legame (10 mM NaOH, 1 mM EDTA). Applicare 5 ml di questa diluizione (cioè 1 mg di RNA) e tre successive diluizioni di 10 volte (cioè 100, 10, e 1 ng di RNA, rispettivamente) alla membrana Zeta pipettando. Pipettaggio attraverso un rack vuoto di puntali possono essere impiegati per fornire spaziatura uniformemente distribuito. In alternativa, utilizzare un apparato di dot blot secondo le istruzioni del produttore. </li><li> Applicare 5 pl della biotina marcato DNA oligo a concentrazioni comprese tra 20 ng / ml a 20 pg / ml (ossia 100-0,1 ng oligo) come cont positivorol alla membrana mediante pipettaggio. Utilizzare un biotinilato, campione 4SU naive come controllo negativo. </li><li> Far asciugare la membrana per 5 min. </li><li> Incubare la membrana per 30 minuti in 40 ml di tampone di bloccaggio con dondolo. </li><li> Incubare la membrana con 10 ml di 1:1.000 streptavidina-perossidasi di rafano per 15 min (5 ml di PBS + 5 ml di 20% SDS + 10 pl streptavidina-perossidasi di rafano) </li><li> Lavare membrana due volte in 40 ml di PBS + 10% SDS (20 ml di PBS + 20 ml di 20% SDS) per 5 min. </li><li> Lavare membrana due volte in 40 ml di PBS + 1% SDS (38 ml PBS + 2 ml di 20% SDS) per 5 min. </li><li> Lavare membrana due volte in 40 ml di PBS + 0,1% SDS (40 ml PBS + 200 microlitri 20% SDS) per 5 min. </li><li> Rimuovere il liquido eccessivo mettendo membrana tra due tovaglioli di carta puliti e premendo su di loro con fermezza. </li><li> Visualizza legata alla membrana HRP utilizzando ECL le istruzioni del produttore. </li><li> Trasferire la membrana in pellicola plastica / sacchetto, rimuovere le bolle d&#39;aria e incubare per 2 minuti al buio. </li><li> Esporre membranapellicola per 1-5 min. </li></ol> 5. Separazione di RNA etichettati e senza etichetta Uso rivestite di streptavidina biglie magnetiche <ol><li> Calore tampone di lavaggio (3 ml per campione) a 65 ° C in un bagno d&#39;acqua. </li><li> Preparare fresco 100 mM ditiotreitolo (DTT) in nucleasi H 2 O. Fatelo per decantazione 15-30 mg di polvere DTT in un ambiente pulito tubo da 50 ml Falcon collocato sulla scala ultra-fine. Pesare e aggiungere la quantità necessaria di nucleasi H 2 O. </li><li> Calore biotinilato campioni di RNA a 65 ° C per 10 minuti per denaturare ed immediatamente posto sul ghiaccio. </li><li> Luogo μMacs colonne nel supporto magnetico. Si raccomanda di non elaborare più di 12 campioni per volta (6-8 campioni sono ottimali). </li><li> Pre-equilibrare colonne MILTENYI con 1 ml di tampone di lavaggio temperatura ambiente. Questo richiederà circa 15 min. </li><li> Nel frattempo, aggiungere 100 ml di perline streptavidina a 50 - 100 ml di RNA biotinilato. Incubare a temperatura ambiente per 15 min con rotazione. </li> &lt;<html> li&gt; Se una qualsiasi delle colonne non ha avviato drenante ormai questo può essere facilitato da una leggera pressione sulla parte superiore della colonna con un dito guantato. Una volta che il flusso è avviato colonne drenano facilmente. </li><li> Applicare le RNA / branelli per le colonne. Gettare il flow-through a meno che non si desidera recuperare la frazione di RNA non marcato (vedi sezione 7). </li><li> Lavare tre volte con 0,9 ml di 65 ° C tampone di lavaggio (1 ml puntali si restringono quando pipettaggio buffer a 65 ° C). </li><li> Lavare tre volte con 0,9 ml di tampone di lavaggio temperatura ambiente. </li><li> Pipetta 700 microlitri Buffer RLT (RNeasy MinElute Cleanup Kit, Qiagen) in nuovi ml provette 2 e metterli sotto le colonne. </li><li> Eluire l&#39;RNA appena trascritto nel buffer RLT con l&#39;aggiunta di 100 ml di 100 mM DTT alle colonne. </li><li> Eseguire una eluizione secondo turno 3 minuti più tardi nella stessa provetta con l&#39;aggiunta di altri 100 ml di 100 mM DTT. </li></ol> 6. Recupero di recente RNA trascritto ontent &quot;&gt; Continua con la Pulitura MinElute RNeasy (Qiagen) protocollo seguendo le istruzioni del produttore. Elute in 25 H 2 O. concentrazioni di RNA Misura nucleasi microlitri utilizzando uno spettrofotometro NanoDrop. Per evitare la necessità di scongelare e ricongelare RNA prima di presentare ad un saggio ad alta prestazione, si consiglia di preparare cDNA subito dopo la nuova trascritto RNA è purificato. Utilizzare 2,5 ml di RNA appena trascritto in 20 microlitri mix sintesi del DNA per la sintesi del DNA seguendo le istruzioni del produttore. Eseguire controlli di RT-PCR quantitativa utilizzando 1 : 10 diluizioni del mix cDNA Conservare RNA a -80 ° C.. 7. Recupero di Senza etichetta, Unbound RNA (Opzionale) Nel caso l&#39;RNA non associato devono essere recuperati; raccogliere e combinare il flusso passante (dopo l&#39;aggiunta della soluzione perline RNA-streptavidina alle colonne) ed il primo lavaggio per successiva precipitazione. Di solito è sufficiente per far precipitare solo il 50% del non legato RNA come this conterrà&gt; 80% del materiale di partenza. <ol><li> Aggiungere un uguale volume di isopropanolo (senza sale deve essere aggiunto come tampone di lavaggio contiene già 1 M NaCl). </li><li> Centrifugare a 20.000 xg per 20 min a 4 ° C. Scartare il surnatante. </li><li> Aggiungere un uguale volume di etanolo 75%, centrifugare a 20.000 xg per 10 min a 4 ° C, scartare il surnatante. </li><li> Spin brevemente ed eliminare l&#39;etanolo residuo con 200 microlitri pipetta. </li><li> Spin brevemente ed eliminare l&#39;etanolo residuo con 20 microlitri pipetta. </li><li> Non permettere che l&#39;RNA si asciughino. Risospendere in 100 ml H 2 O. Mescolare bene pipettando su e giù per 5-6 volte. Incubare a 65 ° C per 10 minuti con agitazione e trasferire direttamente su ghiaccio. </li><li> Verificare la qualità dell&#39;RNA mediante analisi electrophoretical per escludere la degradazione dell&#39;RNA. </li></ol>

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Marcatura metabolica di nuova trascritto RNA aumenta sensibilmente la potenza delle tecnologie high-throughput, come microarrays e RNA-Seq fornendo modelli più adeguati per affrontare la questione biologica di interesse. Il presente protocollo ha subito ottimizzazione vasta. Permette&gt; 1.000 volte arricchimento di RNA appena trascritto e fornisce risultati altamente riproducibili. Il disegno sperimentale di un esperimento 4SU-tagging è di importanza cruciale come RNA trascritto appena si...

Profili di espressione genica è uno strumento chiave utilizzata per lo studio dei processi cellulari e la rete associata complessa interazione. Studi su mRNA abbondanza sono stati in genere il metodo di scelta per ottenere intuizioni fondamentali sui meccanismi molecolari sottostanti. Lo sviluppo di microarrays intero trascrittoma-1 e, più recentemente, di sequenziamento di nuova generazione di RNA (RNA-Seq) 2-4 alimentato questo approccio. Mentre queste tecnologie hanno rivoluzionato la nostra comprensione della complessità di espressione genica cellulare, si trovano ad affrontare gravi limitazioni dovute alle proprietà intrinseche delle loro campione modello, cioè RNA cellulare totale. In primo luogo, i cambiamenti a breve termine dei livelli totali di RNA non corrispondono a variazioni dei tassi di trascrizione, ma sono intrinsecamente dipendente dalla RNA emivita delle rispettive trascrizioni. Mentre un quintuplo induzione di un trascritto di breve durata, per esempio codifica per un fattore di trascrizione, sarà prontamente rilevabile in RNA totaleentro un&#39;ora, la stessa induzione di una trascrizione vita lunga, ad esempio la codifica per un enzima metabolico, rimane praticamente invisibile. Inoltre, anche un completo spegnimento (&gt; 1.000 volte down-regulation) del tasso di trascrizione di un gene medio con un RNA emivita di cinque ore sarà semplicemente prendere cinque ore per i suoi livelli di RNA totale di diminuire solo del duplice . Pertanto, l&#39;analisi di RNA totale favorisce l&#39;individuazione di up-regolazione di trascritti di breve durata, molti dei quali codificano per fattori di trascrizione e geni con funzioni regolatrici 5. Inoltre, la vera cascata cinetica di regolazione è oscurata e segnalazione di eventi primari non può essere differenziata da secondario. Entrambi, a loro volta, possono generare una distorsione nella valle analisi bioinformatica. In secondo luogo, alterazioni nei livelli totali di RNA non può essere attribuito a cambiamenti nella sintesi di RNA o di decadenza. Misurazioni di quest&#39;ultimo richiedono approcci invasivi cellule, ad esempio bloccanti trascrizionisull&#39;uso actinomicina D 6, e il monitoraggio prolungato di continuo decadimento RNA nel tempo. Con un mRNA emivita media nelle cellule di mammifero di 5-10 ore 5,7, i livelli di mRNA della maggior parte dei geni saranno solo sono diminuiti di meno di due volte a seguito di diverse ore di arresto trascrizionale. Piuttosto queste piccole differenze determinare misurazioni grossolanamente imprecise di mRNA emivite per la maggioranza dei geni cellulari a causa della natura esponenziale delle equazioni matematiche sottostanti. Infine, mentre l&#39;RNA-Seq di RNA cellulare totale ha rivelato che circa la metà dei nostri geni sono soggetti ad eventi alternative splicing 8, la cinetica di fondo, nonché i meccanismi dinamici che guidano tessuto e contesto-specifica regolamentazione del trattamento RNA sono ancora limitate. Inoltre, il contributo di RNA elaborazione per l&#39;espressione genica differenziale, in particolare per RNA non codificanti, rimane da determinare. Complessivamente, queste limitazioni rappresentano i principali ostacoli permodellazione cinetica bioinformatica dei meccanismi molecolari sottostanti. Recentemente abbiamo sviluppato un approccio, definito ad alta risoluzione profili di espressione genica, per superare questi problemi 5,7,9. Si basa sulla marcatura metabolica di RNA appena trascritto utilizzando 4 thiouridine (4SU-tagging), un derivato uridina naturale, e offre accesso diretto alle trascrizioni appena trascritto con la minima interferenza nella crescita cellulare e l&#39;espressione genica (vedi Figura 1) 5, 10-12. L&#39;esposizione delle cellule eucariotiche ai risultati 4SU nella sua rapida diffusione, la fosforilazione di 4SU-trifosfato, e l&#39;incorporazione in RNA appena trascritto. Dopo aver isolato RNA cellulare totale, la frazione di RNA 4SU marcato è tiolo specificamente biotinilato generando un legame disolfuro tra biotina e l&#39;RNA appena trascritto. &#39;RNA cellulare totale&#39; può quindi essere quantitativamente separati in etichetta (&#39;appena trascritto&#39;) e senza etichetta (&#39;pre-existing &#39;), l&#39;RNA con elevata purezza utilizzando biglie magnetiche rivestite di streptavidina. Infine, etichettato RNA viene recuperato dalle perline semplicemente aggiungendo un agente riducente (ad esempio ditiotreitolo) scindere il legame disolfuro e libera gli RNA appena trascritto dalle perline. Recentemente trascritto RNA raffigura l&#39;attività trascrizionale di ogni gene durante il periodo di tempo di esposizione 4SU. 4SU-tagging nella scala temporale di minuti quindi fornisce una fotografia istantanea di espressione genica eucariotica e un modello ideale per a valle bioinformatici analisi (ad esempio l&#39;analisi del promotore). Nei casi in cui le condizioni di steady-state possono essere assunte, i rapporti di recente trascritto / totale, appena trascritte / senza etichetta e senza etichetta / RNA totale forniscono l&#39;accesso non invasivo per RNA precise emivita 7,13. Inoltre, è importante notare che l&#39;RNA appena trascritto purificato dopo appena 5 minuti di 4SU-tagging (5 min 4SU-RNA) è più giovane di 15 e 60 min 4SU-RNA.Quando si esegue entrambi ultra-corta e progressivamente più 4SU-tagging in una singola impostazione sperimentale combinato con RNA-Seq, la cinetica di trasformazione dell&#39;RNA vengono rivelati alla risoluzione nucleotide 9. Infine, l&#39;analisi tempo-corso di RNA appena trascritto e totale in combinazione con modelli computazionali consentono un&#39;analisi integrativa di sintesi di RNA e di decadimento 14. In conclusione, questo approccio permette l&#39;analisi diretta della dinamica di sintesi dell&#39;RNA, trasformazione e degradazione nelle cellule eucariotiche. È applicabile in tutti i principali organismi modello tra cui mammiferi, insetti (Drosophila), anfibi (Xenopus), e lievito 5,15,16. Esso è direttamente compatibile con microarray analisi 5,17, RNA-Seq 9,13,14, ed è applicabile in vivo 12,15. Qui, abbiamo dettaglio la metodologia di etichettare, isolare e purificare l&#39;RNA appena trascritto in cellule di mammifero in coltura. Inoltre, potenziometrosono discussi Al problemi e le insidie.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Name</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>4-thiouridine</td>
 <td>Carbosynth</td>
 <td>T4509</td>
 <td>Prepare 50 mM stock in sterile H2O, store at -20 &deg;C in aliquots of 50-500 &mu;l, discard unused reagent, do not refreeze.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Trizol</td>
 <td>Invitrogen</td>
 <td>15596026 (100 ml), 15596018 (200 ml)</td>
 <td>WARNING - CORROSIVE and HAZARDOUS TO HEALTH! Ensure immediate access to Phenol antidote (PEG-Methanol); Store at 4 &deg;C.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Chloroform</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>372978</td>
 <td>WARNING - HAZARDOUS TO HEALTH</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Isopropanol</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>650447</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Sodium citrate, nuclease-free</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>C8532</td>
 <td>Prepare 1.6 M stock solution using nuclease-free water.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>5M nuclease-free NaCl</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>71386</td>
 <td>Stock solution</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Nuclease-free H2O</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>W4502</td>
 <td>Make 1 ml aliquots in nuclease-free tubes.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>RNA precipitation buffer</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>1.2 M NaCl, 0.8 M sodium citrate in nuclease free water. Prepare in advance under strictly nuclease-free conditions. Store at room temperature in 50 ml falcon tubes.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ethanol</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>459844</td>
 <td>Use with nuclease-free water to prepare 80% ethanol, store at -20 &deg;C.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>1 M nuclease-free Tris Cl, pH 7.5</td>
 <td>Lonza</td>
 <td>51237</td>
 <td>Stock solution</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>500 mM nuclease-free EDTA, pH 8.0</td>
 <td>Invitrogen</td>
 <td>15575-020</td>
 <td>Stock solution</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>10x Biotinylation Buffer (BB)</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>100 mM Tris pH 7.4, 10 mM EDTA in nuclease-free water, make aliquots of 1 ml.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Dimethylformamide (DMF)</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>D4551</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>EZ-Link biotin-HPDP</td>
 <td>Pierce</td>
 <td>21341</td>
 <td>Prepare 1 mg/ml stock solution by dissolving 50 mg biotin-HPDP in 50 ml DMF. Gentle warming enhances solubilisation. Store at 4 &deg;C in aliquots of 1 ml.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Phase Lock Gel Heavy tubes 2.0 ml</td>
 <td>Eppendorf</td>
 <td>0032 005.152</td>
 <td>Optional for the chloroform extraction step.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Zeta membrane</td>
 <td>BIORAD</td>
 <td>162-0153</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>10x Dot blot binding buffer</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>100 mM NaOH, 10 mM EDTA</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Biotin-oligo</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>5'-biotin, 25 nucleotides, any sequence</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Sodium dodecyl sulphate</td>
 <td>Fisher</td>
 <td>BPE9738</td>
 <td>For 100 ml 20% stock solution, add 20 g SDS to 80 ml PBS pH 7-8 and adjust volume to 100 ml. Keep all high-percentage SDS solutions above 20 &deg;C. Warm the solutions slightly should SDS precipitate.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>EZ-Link Iodoacetyl-LC-Biotin</td>
 <td>Pierce</td>
 <td>21333</td>
 <td>Prepare 1 mg/ml stock solution by dissolving 50 mg iodoacetyl-biotin in 50 ml DMF. Gentle warming enhances solubilisation. Store at 4 &deg;C in aliquots of 1 ml. Generates irreversible, thiol-specific biotinylation.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Phosphate buffer saline</td>
 <td>Gibco</td>
 <td>10010-015</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Dot blot blocking buffer</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>Mix 20 ml 20% SDS with 20 ml 1 x PBS pH 7-8 and add EDTA to the final concentration of 1 mM.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Streptavidin-horseradish peroxidase </td>
 <td>Vector Laboratories</td>
 <td>SA5004</td>
 <td>Store at -20 &deg;C. Mix 10 ml 20% SDS with 10 ml 1 x PBS. Add 20 &mu;l Streptavidin-HRP before use. </td>
 </tr>
 <tr>
 <td>ECL reagent</td>
 <td>GE Healthcare</td>
 <td>RNP2109</td>
 <td>Use following the manufacturer's instructions.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Super RX, X-RA Film, 18x24 cm</td>
 <td>Fujifilm</td>
 <td>47410 19236</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>&mu;Macs Streptavidin Kit</td>
 <td>Miltenyi</td>
 <td>130-074-101</td>
 <td>Store the beads at 4 &deg;C.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Tween 20</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>P1379</td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Washing buffer</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>100 mM Tris pH 7.4, 10 mM EDTA, 1 M NaCl, 0.1% Tween 20 in nuclease-free H2O.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Dithiothreitol (DTT)</td>
 <td>Sigma</td>
 <td>43817</td>
 <td>Prepare as 100 mM DTT in nuclease-free H2O, always prepare fresh before use.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>RNeasy MinElute Kit</td>
 <td>Qiagen</td>
 <td>74204</td>
 <td>Store columns at 4 &deg;C, remaining components of the kit at room temperature.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>1.5 ml screw-top polypropylene tubes</td>
 <td>Sarstedt</td>
 <td>72.692.005</td>
 <td>Compatible with Dimethylformamide</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>2.0 ml screw-top polypropylene tubes</td>
 <td>Sarstedt</td>
 <td>72.694.005</td>
 <td>Compatible with Dimethylformamide</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>15 ml tubes</td>
 <td>BD Falcon</td>
 <td>352096</td>
 <td>Compatible with Dimethylformamide</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>50 ml tubes</td>
 <td>BD Falcon</td>
 <td>352070</td>
 <td>Compatible with Dimethylformamide</td>
 </tr>
 <tr>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>All solutions/reagents should be stored at room temperature unless otherwise specified.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>Equipment </td>
 </tr>
 <tr>
 <td>UV/VIS spectrophotometer</td>
 <td>Thermo Scientific</td>
 <td>NanoDrop 1000</td>
 <td>Or equivalent. Use low volume (1-2 &mu;l) for measurements of low RNA concentrations to avoid excessive sample loss.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Polypropylene 15 ml centrifuge tubes</td>
 <td>VWR International</td>
 <td>525-0153</td>
 <td>In contrast to standard 15 ml tubes, these tolerate up to 15,000 &times; g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>High-speed centrifuge</td>
 <td>Beckman Coulter</td>
 <td>Avanti J-25</td>
 <td>Or equivalent equipment capable of reaching 13,000&times;g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>High-speed rotor</td>
 <td>Beckman Coulter</td>
 <td>JLA-16250</td>
 <td>Or equivalent equipment capable of reaching 13,000&times;g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Adaptors for 15 ml tubes</td>
 <td>Laborger&auml;te Beranek</td>
 <td>356964</td>
 <td>Or equivalent equipment capable of reaching 13,000&times;g</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Refrigerated table-top centrifuge</td>
 <td>Eppendorf</td>
 <td>5430 R</td>
 <td>Or equivalent.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Thermomixer</td>
 <td>Eppendorf</td>
 <td>Thermomixer compact</td>
 <td>Or equivalent.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Magnetic stand</td>
 <td>Miltenyi Biotec</td>
 <td>130-042-109</td>
 <td>One stand holds 8 &mu;Macs columns.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Waterbath</td>
 <td>Grant</td>
 <td>SUB Aqua 5</td>
 <td>Or equivalent.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ultra-fine scale</td>
 <td>A&amp;D</td>
 <td>GR-202</td>
 <td>Or equivalent.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>E-Gel iBase Power System</td>
 <td>Invitrogen</td>
 <td>G6400UK</td>
 <td>For RNA gels; or equivalent.</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>E-Gel EX 1% agarose precast gels</td>
 <td>Invitrogen</td>
 <td>G4020-01</td>
 <td>For RNA gels; or equivalent.</td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

metabolic labeling of newly transcribed rna for high resolution gene expression profiling of rna synthesis, processing and decay in cell culture

Lo sviluppo di microarrays intero trascrittoma e sequenziamento di nuova generazione ha rivoluzionato la nostra comprensione della complessità di espressione genica cellulare. Insieme a una migliore comprensione dei meccanismi molecolari coinvolti, misure precise della cinetica sottostanti sono diventati sempre più importanti. Qui, questi potenti metodologie incontrano notevoli limitazioni dovute alle proprietà intrinseche dei campioni template studiano, cioè RNA cellulare totale. In molti casi cambiamenti RNA cellulare totale verificano o troppo lentamente o troppo velocemente per rappresentare gli eventi molecolari sottostanti e la loro cinetica con risoluzione sufficiente. Inoltre, il contributo delle alterazioni della sintesi dell&#39;RNA, elaborazione e decadimento non sono facilmente differenziate. Recentemente abbiamo sviluppato ad alta risoluzione-profili di espressione genica di superare queste limitazioni. Il nostro approccio si basa sulla marcatura metabolica di nuova RNA trascritto con 4 thiouridine (quindi anche denominato 4SU-tagging) seguita da una rigorosa purificazione dell&#39;RNA trascritto recente utilizzando biotinylation tiolo-specifici e biglie magnetiche rivestite di streptavidina. È applicabile ad una vasta gamma di organismi vertebrati, compresi Drosophila e lieviti. Abbiamo applicato con successo 4SU-tagging per studiare la cinetica in tempo reale delle attività di fattore di trascrizione, di fornire misure precise di RNA emivita, e ottenere nuove informazioni sulle cinetiche di trasformazione dell&#39;RNA. Infine, modellazione computazionale può essere impiegato per generare un, analisi completa integrata dei meccanismi molecolari sottostanti.

1. Materiale di partenza e di rendimenti attesi A seguito di 1 ora (ora) di 4SU-esposizione appena trascritto RNA rappresenta circa il 1-4% del totale RNA cellulare. Questa sarà la più bassa in cellule di crescita-arrestati in quanto sintetizzano più RNA per conto per la crescita cellulare / replica. Quando l&#39;etichettatura per 1 ora, si consiglia di iniziare il test con 60 - 80 mg di RNA totale. Partendo con meno di 30 microgrammi di RNA totale risultati in piccoli pellet di RNA che sono...

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Metabolic Labeling of Newly Transcribed RNA for High Resolution Gene Expression Profiling of RNA Synthesis, Processing and Decay in Cell Culture

L&#39;RNA cellulare totale fornisce un modello povero per studiare variazioni a breve termine in sintesi dell&#39;RNA e il decadimento nonché la cinetica di RNA processing. Qui, descriviamo marcatura metabolica di RNA trascritto recente con 4 thiouridine seguito da biotinylation tiolo-specifica e purificazione dell&#39;RNA trascritto appena consentano di superare queste limitazioni.

Marcatura metabolica di RNA recentemente trascritto per Alta Risoluzione profili di espressione genica di RNA di sintesi, trattamento e Decay in coltura cellulare

The development of whole-transcriptome microarrays and next-generation sequencing has revolutionized our understanding of the complexity of cellular gene ...

metabolic-labeling-newly-transcribed-rna-for-high-resolution-gene

Research

JoVE Journal

Biology

27.0K Views.  Max von Pettenkofer Institute. L'RNA cellulare totale fornisce un modello povero per studiare variazioni a breve termine in sintesi dell'RNA e il decadimento nonché la cinetica di RNA processing. Qui, descriviamo marcatura metabolica di RNA trascritto recente con 4 thiouridine seguito da biotinylation tiolo-specifica e purificazione dell'RNA trascritto appena consentano di superare queste limitazioni.

Video: Metabolic Labeling of Newly Transcribed RNA for High Resolution Gene Expression Profiling of RNA Synthesis, Processing and Decay in Cell Culture

The Preparation of Primary Hematopoietic Cell Cultures From Murine Bone Marrow for Electroporation

It is becoming increasingly apparent that electroporation is the most effective way to introduce plasmid DNA or siRNA into primary cells. The Gene Pulser MXcell  electroporation system and Gene Pulser  electroporation buffer were specifically developed to transfect nucleic acids into mammalian cells and difficult-to-transfect cells, such as primary and stem cells.This video demonstrates how to establish primary hematopoietic cell cultures from murine bone marrow, and then prepare them for electroporation in the MXcell system. We begin by isolating femur and tibia. Bone marrow from both femur and tibia are then harvested and cultures are established. Cultured bone marrow cells are then transfected and analyzed.

This procedure describes how to establish primary hematopoietic cell cultures from murine bone marrow and is followed by transfection using the Gene Pulser MXCell electroporation system.

La preparazione di colture primarie di cellule emopoietiche dal midollo osseo murino per elettroporazione

It is becoming increasingly apparent that electroporation is the most effective way to introduce plasmid DNA or siRNA into primary cells. The Gene Pulser ...

Ricerca

Biologia

RNA Isolation from Embryonic Zebrafish and cDNA Synthesis for Gene Expression Analysis

Many important and complex laboratory procedures require an input of high quality, intact RNA.  A degraded sample or the presence of impurities can lead to disastrous results in downstream experimental applications.  It is therefore, of utmost importance to use solid techniques with numerous safeguards and quality control checks to ensure a superior sample.  Herein, we detail a protocol to isolate total RNA from whole zebrafish embryos using a commercially available chemical denaturant and subsequent cleanup to remove traces of DNA and impurities using a commercial RNA isolation kit. As RNA is relatively unstable and easily prone to cleavage by RNAses, most protocols assay gene expression using a cDNA product that is directly synthesized from an RNA template. We detail a procedure to convert RNA into the more stable cDNA product using a commercially available kit. Throughout these procedures there are numerous quality control checks to ensure that the sample is not degraded or contaminated.  The end product of these protocols is cDNA that is suitable for microarray analysis, RT-PCR or long-term storage.    

The isolation of high quality, intact RNA is an essential step in many laboratory protocols. Here, we demonstrate RNA extraction from whole zebrafish embryos and cDNA synthesis for subsequent application in various experimental procedures including gene expression microarray analysis.

Isolamento RNA da embrionali Sintesi Zebrafish e cDNA per l&#39;analisi di espressione genica

Many important and complex laboratory procedures require an input of high quality, intact RNA.  A degraded sample or the presence of impurities can lead ...

Using an Automated Cell Counter to Simplify Gene Expression Studies: siRNA Knockdown of IL-4 Dependent Gene Expression in Namalwa Cells

The use of siRNA mediated gene knockdown is continuing to be an important tool in studies of gene expression.  siRNA studies are being conducted not only to study the effects of downregulating single genes, but also to interrogate signaling pathways and other complex interaction networks.  These pathway analyses require both the use of relevant cellular models and methods that cause less perturbation to the cellular physiology.  Electroporation is increasingly being used as an effective way to introduce siRNA and other nucleic acids into difficult to transfect cell lines and primary cells without altering the signaling pathway under investigation. There are multiple critical steps to a successful siRNA experiment, and there are ways to simplify the work while improving the data quality at several experimental stages.  To help you get started with your siRNA mediated gene knockdown project, we will demonstrate how to perform a pathway study complete from collecting and counting the cells prior to electroporation through post transfection real-time PCR gene expression analysis.  The following study investigates the role of the transcriptional activator STAT6 in IL-4 dependent gene expression of CCL17 in a Burkitt lymphoma cell line (Namalwa).  The techniques demonstrated are useful for a wide range of siRNA-based experiments on both adherent and suspension cells.  We will also show how to streamline cell counting with the TC10 automated cell counter, how to electroporate multiple samples simultaneously using the MXcell electroporation system, and how to simultaneously assess RNA quality and quantity with the Experion automated electrophoresis system.

This procedure describes a quick and easy workflow to introduce siRNA into difficult to transfect cell lines and follow gene expression by real-time PCR. Use of an automated cell counter, multi-well electroporation plate, and automated electrophoresis station provide quick and reliable results without the need for expensive robotic handling.

L&#39;utilizzo di un contatore automatico cella per semplificare gli studi sull&#39;espressione genica: Knockdown siRNA di IL-4 genica dipendente nelle celle Namalwa

The use of siRNA mediated gene knockdown is continuing to be an important tool in studies of gene expression.  siRNA studies are being conducted not only ...

Induction and Testing of Hypoxia in Cell Culture

Hypoxia is defined as the reduction or lack of oxygen in organs, tissues, or cells. This decrease of oxygen tension can be due to a reduced supply in oxygen (causes include insufficient blood vessel network, defective blood vessel, and anemia) or to an increased consumption of oxygen relative to the supply (caused by a sudden higher cell proliferation rate). Hypoxia can be physiologic or pathologic such as in solid cancers 1-3, rheumatoid arthritis, atherosclerosis etc&#x2026; Each tissues and cells have a different ability to adapt to this new condition. During hypoxia, hypoxia inducible factor alpha (HIF) is stabilized and regulates various genes such as those involved in angiogenesis or transport of oxygen 4. The stabilization of this protein is a hallmark of hypoxia, therefore detecting HIF is routinely used to screen for hypoxia 5-7. 
In this article, we propose two simple methods to induce hypoxia in mammalian cell cultures and simple tests to evaluate the hypoxic status of these cells.

Here we propose simple methods to induce hypoxia in cell cultures and simple tests to evaluate the hypoxic status of the cultures.

Induzione e test di ipossia in coltura cellulare

Hypoxia is defined as the reduction or lack of oxygen in organs, tissues, or cells.  This decrease of oxygen tension can be due to a reduced supply in ...

In vitro Transcription and Capping of Gaussia Luciferase mRNA Followed by HeLa Cell Transfection

In vitro transcription is the synthesis of RNA transcripts by RNA polymerase from a linear DNA template containing the corresponding promoter sequence (T7, T3, SP6) and the gene to be transcribed (Figure 1A). A typical transcription reaction consists of the template DNA, RNA polymerase, ribonucleotide triphosphates, RNase inhibitor and buffer containing Mg2+ ions.
Large amounts of high quality RNA are often required for a variety of applications. Use of in vitro transcription has been reported for RNA structure and function studies such as splicing1, RNAi experiments in mammalian cells2, antisense RNA amplification by the "Eberwine method"3, microarray analysis4 and for RNA vaccine studies5. The technique can also be used for producing radiolabeled and dye labeled probes6. Warren, et al. recently reported reprogramming of human cells by transfection with in vitro transcribed capped RNA7. The T7 High Yield RNA Synthesis Kit from New England Biolabs has been designed to synthesize up to 180 &mu;g RNA per 20 &mu;l reaction. RNA of length up to 10kb has been successfully transcribed using this kit. Linearized plasmid DNA, PCR products and synthetic DNA oligonucleotides can be used as templates for transcription as long as they have the T7 promoter sequence upstream of the gene to be transcribed.
Addition of a 5' end cap structure to the RNA is an important process in eukaryotes. It is essential for RNA stability8, efficient translation9, nuclear transport10 and splicing11. The process involves addition of a 7-methylguanosine cap at the 5' triphosphate end of the RNA. RNA capping can be carried out post-transcriptionally using capping enzymes or co-transcriptionally using cap analogs. In the enzymatic method, the mRNA is capped using the Vaccinia virus capping enzyme12,13. The enzyme adds on a 7-methylguanosine cap at the 5' end of the RNA using GTP and S-adenosyl methionine as donors (cap 0 structure). Both methods yield functionally active capped RNA suitable for transfection or other applications14 such as generating viral genomic RNA for reverse-genetic systems15 and crystallographic studies of cap binding proteins such as eIF4E16.
In the method described below, the T7 High Yield RNA Synthesis Kit from NEB is used to synthesize capped and uncapped RNA transcripts of Gaussia luciferase (GLuc) and Cypridina luciferase (CLuc). A portion of the uncapped GLuc RNA is capped using the Vaccinia Capping System (NEB). A linearized plasmid containing the GLuc or CLuc gene and T7 promoter is used as the template DNA. The transcribed RNA is transfected into HeLa cells and cell culture supernatants are assayed for luciferase activity. Capped CLuc RNA is used as the internal control to normalize GLuc expression.

In vitro Transcription and Capping of Gaussia Luciferase mRNA Followed by HeLa Cell Transfection

This method describes high yield in vitro synthesis of both capped and uncapped mRNA from a linearized plasmid containing the Gaussia luciferase (GLuc) gene. The RNA is purified and a fraction of the uncapped RNA is enzymatically capped using the Vaccinia virus capping enzyme. In the final step, the mRNA is transfected into HeLa cells and cell culture supernatants are assayed for luciferase activity.

Trascrizione in vitro e tappatura mRNA Luciferase Gaussia Seguito da cellule HeLa Transfection

In vitro transcription is the synthesis of RNA transcripts by RNA polymerase from a linear DNA template containing the corresponding promoter sequence ...

Metabolic Labeling of Leucine Rich Repeat Kinases 1 and 2 with Radioactive Phosphate

Leucine rich repeat kinases 1 and 2 (LRRK1 and LRRK2) are paralogs which share a similar domain organization, including a serine-threonine kinase domain, a Ras of complex proteins domain (ROC), a C-terminal of ROC domain (COR), and leucine-rich and ankyrin-like repeats at the N-terminus. The precise cellular roles of LRRK1 and LRRK2 have yet to be elucidated, however LRRK1 has been implicated in tyrosine kinase receptor signaling1,2, while LRRK2 is implicated in the pathogenesis of Parkinson's disease3,4. In this report, we present a protocol to label the LRRK1 and LRRK2 proteins in cells with 32P orthophosphate, thereby providing a means to measure the overall phosphorylation levels of these 2 proteins in cells. In brief, affinity tagged LRRK proteins are expressed in HEK293T cells which are exposed to medium containing 32P-orthophosphate. The 32P-orthophosphate is assimilated by the cells after only a few hours of incubation and all molecules in the cell containing phosphates are thereby radioactively labeled. Via the affinity tag (3xflag) the LRRK proteins are isolated from other cellular components by immunoprecipitation. Immunoprecipitates are then separated via SDS-PAGE, blotted to PVDF membranes and analysis of the incorporated phosphates is performed by autoradiography (32P signal) and western detection (protein signal) of the proteins on the blots. The protocol can readily be adapted to monitor phosphorylation of any other protein that can be expressed in cells and isolated by immunoprecipitation.

Leucine rich repeat kinases 1 and 2 (LRRK1 and LRRK2) are multidomain proteins which encode both GTPase and kinase domains and which are phosphorylated in cells. Here, we present a protocol to label LRRK1 and LRRK2 in cells with 32P orthophosphate, thereby providing a means to measure their overall cellular phophorylation levels.

Metabolica Etichettatura di leucina Rich Repeat chinasi 1 e 2 con Radioactive fosfato

Leucine rich repeat kinases 1 and 2 (LRRK1 and LRRK2) are paralogs which share a similar domain organization, including a serine-threonine kinase domain, ...

Analysis of Global RNA Synthesis at the Single Cell Level following Hypoxia

Hypoxia or lowering of the oxygen availability is involved in many physiological and pathological processes. At the molecular level, cells initiate a particular transcriptional program in order to mount an appropriate and coordinated cellular response. The cell possesses several oxygen sensor enzymes that require molecular oxygen as cofactor for their activity. These range from prolyl-hydroxylases to histone demethylases. The majority of studies analyzing cellular responses to hypoxia are based on cellular populations and average studies, and as such single cell analysis of hypoxic cells are seldom performed. Here we describe a method of analysis of global RNA synthesis at the single cell level in hypoxia by using Click-iT RNA imaging kits in an oxygen controlled workstation, followed by microscopy analysis and quantification.&nbsp; Using cancer cells exposed to hypoxia for different lengths of time, RNA is labeled and measured in each cell. This analysis allows the visualization of temporal and cell-to-cell changes in global RNA synthesis following hypoxic stress.

We describe a technique for analysis of global RNA synthesis in hypoxia using imaging. Click-chemistry labeling of RNA has not previously been performed under hypoxia and allows visualization of global RNA changes at the single cell level. This approach complements the existing averaged RNA techniques, allowing direct visualization of cell-to-cell changes in global RNA synthesis.

Analisi globale di RNA Sintesi a livello di singola cellula seguente ipossia

Hypoxia or lowering of the oxygen availability is involved in many physiological and pathological processes. At the molecular level, cells initiate a ...

Measurement of Metabolic Rate in Drosophila using Respirometry

Metabolic disorders are a frequent problem affecting human health. Therefore, understanding the mechanisms that regulate metabolism is a crucial scientific task. Many disease causing genes in humans have a fly homologue, making Drosophila a good model to study signaling pathways involved in the development of different disorders. Additionally, the tractability of Drosophila simplifies genetic screens to aid in identifying novel therapeutic targets that may regulate metabolism. In order to perform such a screen a simple and fast method to identify changes in the metabolic state of flies is necessary. In general, carbon dioxide production is a good indicator of substrate oxidation and energy expenditure providing information about metabolic state. In this protocol we introduce a simple method to measure CO2 output from flies. This technique can potentially aid in the identification of genetic perturbations affecting metabolic rate.

Measurement of Metabolic Rate in Drosophila using Respirometry

Metabolic disorders are among one of the most common diseases in humans. The genetically tractable model organism D. melanogaster can be used to identify novel genes that regulate metabolism. This paper describes a relatively simple method which allows studying the metabolic rate in flies by measuring their CO2 production.

Misurazione del tasso metabolico in<em&gt; Drosophila</em&gt; Utilizzando respirometria

Metabolic disorders are a frequent problem affecting human health. Therefore, understanding the mechanisms that regulate metabolism is a crucial ...

Targeted RNA Sequencing Assay to Characterize Gene Expression and Genomic Alterations

RNA sequencing (RNAseq) is a versatile method that can be utilized to detect and characterize gene expression, mutations, gene fusions, and noncoding RNAs. Standard RNAseq requires 30 - 100 million sequencing reads and can include multiple RNA products such as mRNA and noncoding RNAs. We demonstrate how targeted RNAseq (capture) permits a focused study on selected RNA products using a desktop sequencer. RNAseq capture can characterize unannotated, low, or transiently expressed transcripts that may otherwise be missed using traditional RNAseq methods. Here we describe the extraction of RNA from cell lines, ribosomal RNA depletion, cDNA synthesis, preparation of barcoded libraries, hybridization and capture of targeted transcripts and multiplex sequencing on a desktop sequencer. We also outline the computational analysis pipeline, which includes quality control assessment, alignment, fusion detection, gene expression quantification and identification of single nucleotide variants. This assay allows for targeted transcript sequencing to characterize gene expression, gene fusions, and mutations.

We describe a targeted RNA sequencing-based method that includes preparation of indexed cDNA libraries, hybridization and capture with custom probes and data analysis to interrogate selected transcripts for gene expression, mutations, and gene fusions. Targeted RNAseq permits cost-effective, rapid evaluation of selected transcripts on a desktop sequencer.

Mirati RNA Sequencing test per caratterizzare espressione genica e genomica Alterazioni

RNA sequencing (RNAseq) is a versatile method that can be utilized to detect and characterize gene expression, mutations, gene fusions, and noncoding ...

Detection of RNA-binding Proteins by In Vitro RNA Pull-down in Adipocyte Culture

RNA-binding proteins (RBPs) are emerging as a regulatory layer in the development and function of adipose. RBPs play a key role in the gene expression regulation at posttranscriptional levels by affecting the stability and translational efficiency of target mRNAs. RNA pull-down technique has been widely used to study RNA-protein interaction, which is necessary to elucidate the mechanism underlying RBPs&#39; as well as long non-coding RNAs&#39; (lncRNAs) function. However, the high lipid abundance in adipocytes poses a technical challenge in conducting this experiment. Here a detailed RNA pull-down protocol is optimized for primary adipocyte culture. An RNA fragment from androgen receptor&#39;s (AR) 3&#39; untranslated region (3&#39;UTR) containing an adenylate-uridylate-rich elementwas used as an example to demonstrate how to retrieve its RBP partner, HuR protein, from adipocyte lystate. The method described here can be applied to detect the interactions between RBPs and noncoding RNAs, as well as between RBPs and coding RNAs.

Detection of RNA-binding Proteins by In Vitro RNA Pull-down in Adipocyte Culture

An RNA pull-down protocol is optimized here for detection of interactions between RNA-binding proteins (RBPs) and noncoding as well as coding RNAs. An RNA fragment from androgen receptor (AR) was used as an example to demonstrate how to retrieve its RBP from lystate of primary brown adipocytes.

Rilevamento di RNA-binding proteins by<em&gt; In Vitro</em&gt; RNA a tendina nella cultura degli adipociti

RNA-binding proteins (RBPs) are emerging as a regulatory layer in the development and function of adipose. RBPs play a key role in the gene expression ...