This work was supported by Karolinska Institutet, a project grant from the Swedish Research Council VR (Dnr 2014-2794) and a KID Doctoral Grant from Karolinska Institutet (All to A.G.R). The funders had no role in study design, data collection and analysis, decision to publish, or preparation of the manuscript.

NOTA: C67BL / 6 topi sono stati usati per gli esperimenti riportati in questo manoscritto. Questi animali erano casa sotto specifiche condizioni esenti da organismi patogeni presso l&#39;impianto animale MTC, Karolinska Institutet, Stoccolma, Svezia. Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo le direttive e gli orientamenti del Consiglio svedese per l&#39;agricoltura, l&#39;Agenzia per la protezione degli animali svedese e Karolinska Institutet. Gli esperimenti sono stati approvati dal Nord Animal Consiglio Etico di Stoccolma. 1. Preparazione degli stock e dei bagagli CFSE <ol><li> Preparare un 5 mM magazzino di 5 e 6 carboxyfluorescein diacetato succinimidyl ester (CFSE) in dimetilsolfossido. Vortice. Dispensare aliquote di 100 microlitri in sterili, 0,5 ml vite microtubi cap. Aliquote conservare a -80 ° C. </li></ol> 2. I topi <ol><li> Utilizzare maschi inbred o topi di sesso femminile tra 8 e 12 settimane di età. animali per sesso e della stessa età sono preferiti. Assicurarsi che i necessari permessi etici animali are al suo posto prima dell&#39;inizio degli esperimenti. </li></ol> 3. immobilizzazione degli animali con isoflurano Gas anestesia <ol><li> Caricare l&#39;unità di anestesia con isoflurano. Riempire la siringa di vetro da 10 ml a tenuta di gas con isoflurano. Evitare l&#39;introduzione di bolle d&#39;aria. Collegare la siringa e l&#39;ingresso del liquido con il tubo in dotazione e spostare lo spintore in avanti fino a quando il liquido nel tubo di collegamento è visibilmente solo per entrare nel vaporizzatore. NOTA: Non conservare isoflurano nella siringa quando non in uso. </li><li> Anestetizzare animali con isoflurano nella camera di induzione, con un flusso d&#39;aria mantenuta a circa 400 - 500 ml / min e la concentrazione di isoflurano a 3,5%. NOTA: L&#39;unità non funziona senza il flusso d&#39;aria. </li><li> Una volta che gli animali dormono, girare il rubinetto di arresto dell&#39;unità di anestesia per instradare il gas isoflurano al pezzo maschera. Controllare che il pezzo maschera è intatto al fine di evitare perdite di gas. Il flusso d&#39;aria può essere mantenuta a 400 ml / min, alternativamente diminuita a 200 ml / min. Ridurre la concentrazione di isoflurano al 2,6%. NOTA: effetto anestetico può essere aumentato e / o diminuito regolando la portata. </li></ol> 4. BCG Iniezioni e recupero <ol><li> Visivamente confermare e effettuare test, come la punta pinch test reflex per accertare che i topi sono immobilizzati / addormentato sul pezzo maschera isoflurano prima di eseguire iniezioni. </li><li> Seminare nella zampa posteriore, 1 x 10 6 unità formanti colonia di Mycobacterium bovis Bacille Calmette-Guérin (BCG) in 30 ml di PBS usando una siringa con un 29 G x ½ pollice ago. NOTA: La generazione di scorte micobatteri è brevemente descritto nella descrizione originale di questa procedura 3, e in sostanziale dettagliatamente altrove 6. BCG è anche facilmente disponibili da fonti commerciali. Gli autori raccomandano che BCG sia impulsi sonicato o passata attraverso una siringa per interrompere grumi prima della sua inoculation in topi. BCG è ripetuto qui come stimoli microbici dato il suo impiego nella descrizione originale del presente protocollo 3, ma gli autori certamente incoraggiano la sperimentazione di altri stimoli microbici. </li><li> Eseguire la stessa procedura descritta sopra per l&#39;iniezione di PBS in topi di controllo. </li><li> Monitorare gli animali dopo le iniezioni di confermare che il recupero dall&#39;anestesia è successo e che gli animali possono sostenersi in iniettato, zampa posteriore. </li></ol> 5. CFSE Iniezioni <ol><li> Preparazione di CFSE per preparazioni iniettabili: <ol><li> Scongelare una fiala di 5 mm CFSE soluzione di riserva da -80 ° C. Diluire il CFSE 10 volte in PBS. Risospendere la soluzione accuratamente prima di riempire la siringa in preparazione per l&#39;iniezione. </li></ol></li><li> CFSE iniezione e ripristino: <ol><li> Ripetere la procedura per anestetizzare gli animali nel capitolo 3 Iniettare 20 ml di 0,5 mm CFSE nella zampa posteriore che in precedenza ha ricevuto BCG o PBS. <br/&gt; Nota: L&#39;iniezione di CFSE deve essere effettuata il giorno prima (24 ore) la data prevista per il sacrificio. </li></ol></li></ol> 6. La rimozione chirurgica di poplitea Lymph Node (PLN) NOTA: l&#39;uso di strumenti chirurgici sterilizzati e la loro decontaminazione ripetuto nel 70% di etanolo sono incoraggiati nel corso di questo passo. <ol><li> Euthanize i topi. Spruzzare l&#39;animale con il 70% di etanolo. Pin l&#39;animale in posizione dorsale, su una tavola di dissezione. NOTA: Gli autori possono consigliare l&#39;eutanasia attraverso dislocazione cervicale. </li><li> fare attenzione un incisione verticale nella coscia posteriore. muscolare chiaro e il grasso con le forbici e pinzette per esporre e di conseguenza asportare le PLN Situato in profondità nel sacchetto grasso, nell&#39;incavo del ginocchio. </li><li> Trasferire il pln a 0,5 ml di PBS sterile, sul ghiaccio. </li></ol> 7. Generazione di cella singola sospensione da PLN <ol><li> Omogeneizzare il pln attraverso un 70 micron colino cella placEd in un 6 pozzetti contenenti 5 ml di PBS o cella a fluorescenza-attivato (FACS) tampone (PBS contenente 2% siero fetale di vitello (FCS), 5 mm di acido etilendiamminotetraacetico (EDTA), e 1 mm di sodio azide). Omogeneizzare attraverso il filtro utilizzando l&#39;estremità posteriore di una siringa da 3 ml. NOTA: sodio azide è tossico e deve essere maneggiato con cautela. </li><li> Lavare il filtro con altri 5 ml di PBS o FACS tampone, raccogliere il materiale in una provetta da 15 ml e agglomerare le cellule a 277 xg (1.200 rpm, R = 172 millimetri) per 5 min, 4 ° C. In alternativa, omogeneizzare pLNs direttamente in provette da microcentrifuga utilizzando omogeneizzatori polipropilene. </li><li> In base alle dimensioni del pellet, risospendere la sospensione pln in un volume appropriato di PBS o di tampone FACS, ad esempio, 200 - 1,000 microlitri. Utilizzare una camera di conteggio per quantificare il numero totale di cellule ottenute da ogni sospensione LN. Utilizzare trypan blu per escludere / cellule morenti morte. </li></ol> 8. cellulare colorazione e Citometria a Flusso <ol><li> Transfer 1 - 10 x 10 6 cellule a 5 ml provette di polistirene a fondo rotondo. Lavare con FACS tampone, e pellet per centrifugazione a 277 g (1.200 rpm, R = 172 millimetri) per 5 minuti, 4 ° C. </li><li> Eliminare il surnatante e risospendere il pellet in 50 - 100 ml di cocktail di anticorpi (vedi cellule dendritiche [CC] marcatori utilizzati per la colorazione superficiale, Materiali Table) contenente 0,5 - 1 mg di anti-topo CD16 / CD32 (per bloccare Fc-mediata non specifico interazioni) in FACS buffer per 30 - 45 minuti, su ghiaccio. Proteggere i campioni dalla luce. </li><li> Dopo l&#39;incubazione, lavare le cellule con tampone di FACS e pellet per centrifugazione a 277 g (1.200 rpm, R = 172 millimetri) per 5 minuti, 4 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 50 - 100 microlitri di tampone FACS. Acquisire dati su un citofluorimetro 7-10. NOTA: Per ottime recensioni su citometria a flusso rimandiamo il lettore alle seguenti pubblicazioni che trasmettono sia informazioni teoriche e pratiche su questo metodo. </li></ol>

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</ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

noDCs sono cellule specializzate che presentano l&#39;antigene in grado di rispondere alla sfida microbica alle superfici del corpo con l&#39;acquisizione di antigene microbica e la migrazione a DLN via linfatica. Ci, DC presentano questo antigene alle cellule T in modo che guida le risposte T-cellulari primarie. Il processo di migrazione DC da tessuto a DLN è quindi estremamente importante per comprendere come si avvia una risposta T-cellulare produttivo. Metodi per misurare la migrazione DC sono quindi molto utili nel dispiegamento sopra. Un modello di topo è stato impiegato per studiare pelle migrazione CC per DLN dopo infezione con BCG, un vaccino vivo che viene iniettato clinicamente nella pelle. In linea, BCG viene iniettato nella zampa posteriore di imitare questo percorso cutanea della vaccinazione. Un semplice test è stato sviluppato e quindi incorporato in questo modello per studiare la migrazione di pelle DC sottopopolazioni dal sito di inoculazione BCG nella pelle zampa al pln drenaggio. Questo protocollo relies sulla iniettare il fluorocromo CFSE nella stessa zampa che precedentemente ricevuto BCG e quindi isolare il drenaggio PLN 24 ore dopo per analizzare la presenza di cellule CFSE etichettati mediante citometria di flusso. Anche se non è descritto nel protocollo, LNs da questa configurazione possono anche essere preparati per l&#39;analisi al microscopio confocale, per studiare i processi di migrazione, come il posizionamento delle cellule migratorie nel LN 3. Inoltre, i risultati simili in materia di migrazione DC pelle BCG-triggered sono stati ottenuti utilizzando sia BCG Pasteur 1173P2 3 e BCG SSI 1331 14. CFSE è comunemente usato per etichettare le cellule in vitro e per tenere traccia di tali cellule marcate in vivo dopo i trasferimenti di cella 15. Nel protocollo attuale, però, è stato utilizzato per etichettare direttamente le cellule della pelle in situ. La base molecolare di etichettatura CFSE è simile a FITC, che è anche un colorante fluorescente ammina reattiva. CFSE è comunque preferibile rispetto FITC per coniugazione come creAtes obbligazioni carbossamide molto stabili 16. Inoltre, CFSE è altamente membrana permeabile e diffonde passivamente nelle cellule. Una volta dentro, si forma ammina intracellulare (fluorescente) coniugati che vengono conservati nella cella con l&#39;etichetta 15. Il test di migrazione CFSE-based sviluppato dagli autori consente l&#39;identificazione delle cellule trasferirsi dalla pelle a DLN entro un periodo di 24 ore in risposta alla BCG. Misura quindi la migrazione acuta nel corso di un periodo di tempo definito e permette di indagare la capacità di diverso, iniettato stimoli per innescare la migrazione. Questo test è diverso dalla tecnica classica di FITC pittura pelle, che misura un evento di migrazione cumulativa innescato da cutanea, applicazione topica di un agente contatto sensibilizzante. Così, il saggio di migrazione CFSE-based può essere impiegato per identificare DC pelle migratori o altre cellule che ospita il pln dopo l&#39;iniezione di microbi, prodotti microbici o altri stimoli infiammatori nel footpad. Infatti, entrambi i neutrofili e γ: δ cellule T hanno dimostrato di trasferirsi dalla pelle al DLN in risposta al BCG 17,18. In realtà, il test è stato recentemente utilizzato in un ambiente co-infezione per dimostrare che una infezione nematode gut-localizzato potrebbe disattivare migrazione DC pelle BCG-triggered per DLN 14. Migrazione DC è spesso valutato tra i 24 a 72 ore a FITC pittura pelle in quanto coniugati con fluoresceina DC sono difficili da individuare 4 o 5 giorni dopo la verniciatura 19. Perdita del segnale CFSE su etichetta DC non è un problema nel test qui presentata poiché l&#39;analisi della migrazione è stato limitato a 24 ore; La ragione di questo è che gli autori hanno voluto studiare specificamente &quot;di notte&quot; eventi di migrazione. Altri interessati a questo test sono comunque invitati a verificare precedenti o anche più tardi punti di tempo per il monitoraggio CFSE-based. Inoltre, poiché CFSE è introdotto per iniezione può essere somministrato in qualsiasi tempo definito. Questa flessibilità ha permesso l&#39;unauthors per valutare la migrazione continua tra il giorno 5 e 6 dopo l&#39;infezione BCG (Figura 2C) 3. Iniettare CFSE potrebbe potenzialmente limitare i tipi di cellule accessibili in situ per la reazione di marcatura. Ad esempio cellule di Langerhans (LCS), che sono cellule dendritiche che risiedono nello strato superiore della pelle, l&#39;epidermide, migrano male in risposta al BCG nel test di migrazione CFSE-based (Figura 3) 3. Tuttavia, durante FITC pittura pelle, DC posizionati nel derma, lo strato sotto l&#39;epidermide, sono facilmente etichettati e migrare verso il DLN più veloce di LC 20,21. Questo suggerisce che le cellule possono diventare fluorocromo marcato senza necessariamente dover localizzare allo strato di pelle in cui viene applicata la soluzione di etichettatura. Come modello per l&#39;infezione BCG, l&#39;orecchio del mouse fornisce una via intradermica in buona fede di inoculazione che è più in linea con l&#39;amministrazione clinica di BCG come vaccino tubercolosi. foiniezione otpad invece, è probabile che una combinazione di intradermica e via sottocutanea. Detto questo, richiede abilità e formazione correttamente e riproducibile fornire BCG al derma 22, quindi in pratica clinica non sempre può essere dato veramente intradermica bensì sottocutanea o una combinazione di entrambi. Come un sito di inoculazione della zampa ha due vantaggi molto chiari sopra l&#39;orecchio che il merito di nota. Innanzitutto, la risposta immunitaria viene concentrato a PLN scarico dopo un&#39;iniezione zampa e questo facilita l&#39;esame delle risposte. Gli autori di questo rapporto ha trovato il pln di essere il primo e principale LN scaricare la zampa 3. Altri hanno suggerito di drenaggio spaccatura tra i poplitea e subiliac LNs dopo l&#39;iniezione di Evan di blu 23. Tuttavia, per quanto riguarda l&#39;orecchio, vi è più di un orecchio DLN nei topi e questi possono non essere presenti regolarmente o facile da individuare 24. Quest&#39;ultimo presenta chiaramente un liability in studi che cercano di indagare le risposte a DLN. In secondo luogo, i volumi più grandi possono essere inoculati nella zampa (10 - 50 ml), rispetto per l&#39;orecchio. Questo a sua volta riduce al minimo sia la responsabilità di introdurre importanti modifiche nel flusso linfatico e di dover lavorare con molto piccoli volumi di iniezione, che è di per sé un problema quando si tratta di inoculando grandi quantità di micobatteri. In dell&#39;orecchio dove volumi di iniezione devono essere piccoli (1-10 ml), anche 5 microlitri possono alterare il flusso linfatico e potenzialmente forzare una maggiore quantità di materiale iniettato direttamente nel DLN in modo incontrollato. È quindi importante tenere conto di volumi di iniezione. Ciò è particolarmente importante in esperimenti affrontano il contributo delle cellule in traghettare batteri alla LN. Nel modello zampa BCG, alcuni BCG può aver raggiunto il DLN in assenza di trasporto cellulare. Questo si basa sull&#39;osservazione che si può ancora rilevare BCG nel DLN di topi in cui migrazione delle cellule dal piedepad è stato interamente ablated da iniezione locale di tossina della pertosse 3. Se questa è un&#39;indicazione che BCG può accedere direttamente linfatici e raggiungere il DLN in maniera veramente acellulare resta da determinare poiché non si può escludere che i micobatteri in questo caso dato accesso linfatici forza del volume iniettato. Una considerazione pratica per vaccinazioni nell&#39;orecchio o zampa è che gli animali devono essere adeguatamente immobilizzato per iniezioni da effettuare correttamente e in modo riproducibile. gas isoflurano è descritto nel protocollo corrente come metodo per trattenere gli animali in preparazione per iniezioni zampa. I tempi di induzione e di recupero relativamente rapido per l&#39;anestesia isoflurano mediata rendono un metodo popolare, ma simile ad altri agenti anestetici, colpisce la fisiologia, che può interferire con i risultati sperimentali 25. Infatti, anestetici sia volatili e iniettabili diminuiscono il flusso linfatico attraverso l&#39;abolizionemovimenti muscolari volontari, riducendo il tono muscolare, e la diminuzione linfangione contrazione 26. Inoltre, una riduzione di 5 volte nella migrazione a DLN delle DC adoptively trasferito nella zampa è stato riportato in animali anestetizzati 27. Ciò premesso, e poiché le procedure di manipolazione prima dell&#39;anestesia sono suscettibili di causare più stress per gli animali che l&#39;iniezione stessa, che è rapida da gestire e non richiede una fase di recupero, la possibilità di trattenere adeguatamente l&#39;animale senza anestesia dovrebbe essere considerato. Un dispositivo di immobilizzazione del mouse personalizzato per iniezioni zampa, dove l&#39;animale può essere rapidamente portato ad una posizione immobilizzato e inoculata nella zampa in 30 a 40 sec sarebbe ideale per iniettare il mouse nella zampa posteriore senza alterare altri aspetti della sua fisiologia nel processo e sarebbe estremamente utile in studi che riguardano la migrazione delle cellule attraverso i vasi linfatici. In conclusione, questo rapportomette in evidenza un nuovo protocollo per il monitoraggio DC pelle durante la loro mobilitazione per il DLN utilizzando un test che controlla migrazione durante una finestra di 24 ore definito. Questo test migrazione CFSE-based permette la rilevazione e l&#39;analisi di cellule migranti mediante citometria di flusso, come descritto qui, nonché mediante microscopia confocale 3. Esso fornisce una piattaforma flessibile per studiare una varietà di stimoli iniettati e la loro capacità di attivare la migrazione DC, e soprattutto, può essere impiegato per monitorare non solo controller, ma anche altre popolazioni spostano dalla pelle al DLN durante diverse impostazioni sperimentali.

DC localizzati nelle superfici Body Sense microbi o dei loro prodotti, e così facendo mobilitare tramite vasi linfatici alla LN drenaggio (DLN) 1,2. Questo trasferimento è necessario per il trasporto di antigene microbica al DLN e la conseguente innesco delle risposte immunitarie al microbo invasore. Infatti, il blocco o il fallimento di DC di migrare dal tessuto infetto al DLN disattiva la risposta delle cellule T 3-5. Di conseguenza, saggi progettati per monitorare la migrazione a livello di singola cellula sono utili per aiutare attribuire la funzione migratoria ad un dato sottoinsieme DC. C&#39;è una grande quantità di dati sulla mobilizzazione delle cellule dendritiche pelle al DLN. La seconda rappresenta il gran parte delle conoscenze sulla migrazione DC infiammate o infette siti 2. Ciò non è sorprendente poiché la pelle ospita una grande popolazione di DC ed è una superficie altamente accessibile per sperimentazione nel topo di laboratorio. Diverse tecniche sono state così sviluppato per valutarela migrazione delle cellule dendritiche murini dalla pelle al DLN 2. FITC pittura pelle è di gran lunga l&#39;approccio più comunemente usato. In questo test il fluorocromo fluoresceina-5-isotiocianato (FITC) viene preparato in una miscela di acetone e irritante contatto. Questo cocktail è applicato alla pelle depilata o rasata e l&#39;accumulo di cellule FITC marcate è a sua volta analizzato nel DLN. La migrazione può anche essere studiata iniettando la pelle con nano o microparticelle fluorocromo-tag, che permette il monitoraggio dei fagociti che hanno interiorizzato le particelle fluorescenti nella pelle. I vasi linfatici possono anche essere cannulate per estrarre direttamente DC migrazione da linfa. Questo è però tecnicamente impegnativo, soprattutto nei topi. Il numero di cellule dendritiche ottenute per successiva analisi è anche un fattore limitante. Nonostante molti studi precedenti sulle migrazioni DC pelle, rimane una scarsità di informazioni per quanto riguarda la pelle DC mobilitazione per DLN seguente Vaccinazione con bacillo di Calmette-Guérin (BCG), il live, ceppo attenuato di Mycobacterium bovis utilizzato per la vaccinazione contro M. la tubercolosi. BCG viene inoculato nella pelle, causando un&#39;infezione limitata che innesca una T helper di tipo 1-cell risposta. Entrambe le sottopopolazioni DC che mobilitano al DLN dalla pelle BCG-infettati e dei fattori che regolano la loro migrazione durante questo processo non sono pienamente compresi. Alla luce di quanto sopra, un metodo semplice ma novella stato sviluppato dove il fluorocromo 5 e 6 carboxyfluorescein estere diacetato succinimidyl (CFSE) viene iniettato in situ per monitorare la migrazione delle DC nel DLN 3. Topi C57BL / 6 vengono iniettate nella zampa posteriore con un inoculo di BCG e il giorno prima del sacrificio, gli animali vengono iniettati nella stessa zampa con un&#39;alta concentrazione di CFSE. Ventiquattro ore più tardi gli animali vengono sacrificati e il drenaggio popliteo LN (PLN) rimossi e preparati per citometria a flusso. Questo test consente l&#39;IDEntification di cellule che migrano overnight dalla pelle zampa al DLN (Figura 1). Inoltre, i topi del gene-mirati possono essere utilizzati per aiutare a identificare i fattori necessari per le cellule di mobilitarsi per la DLN. Usando questo test, di questo rapporto gli autori hanno scoperto che in precedenza EpCAM basso CD11b alta migratoria trasporto DC pelle BCG alla DLN in un processo regolato da recettore dell&#39;interleuchina-1 e l&#39;adattatore intracellulare molecola MyD88 3. Il protocollo per questo saggio la migrazione CFSE-based che ha origine dalla relazione di cui sopra da Bollampalli et al. 3 dove citometria di flusso è stato utilizzato per rilevare e analizzare DC pelle migratori, viene qui descritto. I vantaggi e svantaggi di questo test sono discussi.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>Baxter</td><td>1001936060</td><td></td></tr><tr><td>5- and 6-carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester&lt;br/&gt; (CFSE)</td><td>Invitrogen</td><td>C1157</td><td></td></tr><tr><td>Dimethyl sulphoxide (DMSO)</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum (FBS)</td><td>Sigma</td><td>F7524</td><td></td></tr><tr><td>Bacille Calmette-Gu&amp;eacute;rin (BCG)</td><td></td><td></td><td>strain Pasteur, in house</td></tr><tr><td>Trypan blue solution</td><td>Sigma</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td></td><td></td><td>In house</td></tr><tr><td>Sodium azide</td><td>Sigma</td><td>S2002</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td></td><td></td><td>In house</td></tr><tr><td>Filtered water</td><td></td><td></td><td>In house</td></tr><tr><td>BD Plastipak 3 ml syringe</td><td>BD Medical Surgical Systems</td><td>309658</td><td>alternative: 5 ml syringe&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>6 well plates</td><td>TPP</td><td>92006</td><td></td></tr><tr><td>15 ml centrifuge tubes</td><td>TPP</td><td>91015</td><td>Polypropylene</td></tr><tr><td>5 ml round bottom tubes</td><td>BD Falcon</td><td>3272948</td><td>Polystyrene</td></tr><tr><td>Univentor 400 anesthesia unit</td><td>Univentor</td><td>8323001</td><td></td></tr><tr><td>Monojet 3/10 ml syringe</td><td>Medicarrier</td><td>8881511144</td><td>29 G x 1/2 in.</td></tr><tr><td>Sterile filter unit</td><td>TPP</td><td>99500</td><td>PES membrane&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>EPPI-Pistill homogenizer</td><td>Schuett biotech</td><td>3.200 512</td><td>Polypropylene</td></tr><tr><td>Allegra X-30R centrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>B01145</td><td></td></tr><tr><td>B&amp;uuml;rker counting chamber</td><td>VWR</td><td>631-0920</td><td></td></tr><tr><td>0.5 ml screw cap microtube&amp;nbsp;</td><td>Sarstedt</td><td>72.730</td><td>Polypropylene</td></tr><tr><td>1.5 ml Eppendorf microcentrifuge tube</td><td>VWR</td><td>700-5239</td><td>Polypropylene</td></tr><tr><td>70 micron cell strainers</td><td>VWR</td><td>734-0003</td><td></td></tr><tr><td>BD LSR-II flow cytometer, operated with FACSDiva software</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>Discontinued. Other Flow cytometers available, minimum detection of 6 fluorochromes needed</td></tr><tr><td>FlowJo cell analysis software</td><td>Tree Star</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Antibody&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Clone&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td></td></tr><tr><td>MHC-II I-A/I-E&amp;nbsp;</td><td>M5/114.15.2</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>CD11b</td><td>M1/70</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>CD11c</td><td>HL3</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>CD16/CD32 (Fc-block)</td><td>2.4G2</td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>CD326/EpCAM</td><td>G8.8</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD103</td><td>2E7</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD80</td><td>16-10A1</td><td>Biolegend</td><td></td></tr><tr><td>CD86</td><td>GL-1</td><td>Biolegend</td><td></td></tr></tbody></table>

a cfse-based assay to study the migration of murine skin dendritic cells into draining lymph nodes during infection with mycobacterium bovis bacille calmette-gu&#233;rin

Le cellule dendritiche (DC) sono importanti per l&#39;avvio risposte immunitarie, in parte attraverso la loro capacità di acquisire e l&#39;antigene navetta per il linfonodo drenante (DLN). La mobilitazione delle DC al DLN è complesso e deve ancora essere completamente chiarito durante l&#39;infezione. Qui descritto è l&#39;uso di un innovativo, semplice test che si basa sulla fluorocromo 5 e 6 carboxyfluorescein diacetato succinimidyl ester (CFSE) per monitorare la migrazione delle cellule dendritiche durante l&#39;infezione da Mycobacterium bovis zampa Bacille Calmette-Guérin (BCG) in C57BL / 6 topi. Questo test consente la caratterizzazione di pelle DC sub-popolazioni che trasferiscono attivamente il drenaggio, LN poplitea in risposta al BCG. Questo protocollo ha origine da un modello in cui BCG DC pelle migratori sono stati identificati mediante citometria a flusso. Il saggio è amabile per lo studio e l&#39;identificazione di DC o di altre cellule che ospita la LN popliteo dopo l&#39;inoculazione di microbi, i loro metaboliti o altri infiammatoriastimoli nella zampa, e di conseguenza per studiare i fattori che regolano la migrazione di queste cellule.

Il test di migrazione CFSE-based (figura 1) è stato utilizzato insieme con citometria a flusso per rilevare e caratterizzare le cellule CFSE-marcate che appaiono nel infezione pln dopo BCG nella zampa. Una gran parte di etichettatura CFSE nel PLN si trova su MHC-II ad alta e CD11c + / cellule bassi (Figura 2A), in linea con i controller della pelle che sono migrati a pelle DLN 11. Sia la frequenza e il numero totale di CFSE marcato, MHC-II ad alta CD11c + / cellule bassi sono aumentati in pLNs da topi BCG-infetti rispetto ai controlli PBS-iniettati (Figura 2B-C), il che suggerisce che BCG migliora il trasferimento di questi celle a DLN. Dal momento che questa migrazione misure di analisi nel corso di un periodo di 24 ore, è stato possibile stabilire che le cellule dendritiche della pelle sono ancora entrando l&#39;infezione DLN 5 giorni dopo (Figura 2C). Questo si estende la migrazione DC nel modello di corrente ben oltre la linea temporale per activati ​​inizialesu di cellule antigene-specifiche T CD4 + nel pln 3. Inoltre, DC pelle migratori esprimono livelli elevati di molecole co-stimolatorie CD80 e CD86 (Figura 2D). Ciò è coerente con precedenti osservazioni provenienti da culture espianto di pelle e la pelle FITC pittura 11, sostenendo il concetto che DC migratori sono cellule attivate. DC È importante sottolineare che, sia LN-residenti (alti cellule MHC-II + CD11c) e DCS plasmacitoidi (MHC-II basso CD11c cellule bassi PDCA-1 +), che entrano LNs infiammate attraverso alti venule endoteliali e non i linfatici afferenti a 12, dove negativo per CFSE (Figura 2EF), suggerendo anzi che l&#39;etichettatura CFSE si è verificato soprattutto nella zampa. Dato che MHC-II ad alta CD11c + / cellule bassi non rappresentano uno ma più sottopopolazioni DC 13, i marcatori di superficie CD103 supplementari, EpCAM (CD326) e CD11b sono stati inclusi nel pannello di colorazione degli anticorpi utilizzati per la rilevazione mediante citometria a flusso (Materiali tabella) per caratterizzare ulteriormente la popolazione di cellule dendritiche migratori (Figura 3). In tal modo, una sotto-popolazione di cellule CD11b bassa elevata EpCAM è stato identificato come il principale pelle migratoria DC sottoinsieme in risposta alle infezioni BCG (Figura 3). I dati di citometria a flusso mostrato qui è stato acquisito in un citofluorimetro dotato di 4 laser (488, 532, 640 e 405 nm). I dati sono stati analizzati con il software di analisi delle cellule. Altri citometri a flusso multi-colore rispetto a quello indicato nella tabella I materiali possono essere impiegati per l&#39;individuazione dei marcatori indicati negli studi di cui sopra, o il rilevamento di altri marcatori, su altri tipi di cellule per quella materia. Per il protocollo qui descritto, un citometro in grado di rilevare 6 fluorocromi differenti è necessario. È importante sottolineare che i cloni per ogni anticorpo utilizzati sono specificati (Materials Table). La scelta di coniugato fluorocromo deve essere considerato come questo può dipendere dalle laser e canali di rilevamento sul citofluorimetro disponibili. Analogamente, gli anticorpi devono essere titolati per determinare le diluizioni più appropriati per la colorazione. frequenze Popolazione nel BCG- e campioni di PBS-iniettate sono stati rappresentati graficamente e utilizzati insieme con conta di cellule totali per calcolare i numeri assoluti di definito, sottoinsiemi gated di DC. La significatività delle differenze di mezzi gruppo di dati è stata analizzata con Student &#39;st prova o ANOVA se del caso, con un cut-off di p &lt;0.05. I valori anomali sono stati esclusi dall&#39;analisi seguente test di Grubbs s &#39;per valori anomali. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/54620/54620fig1.jpg" /> Figura 1. Schema: BCG Footpad InfezioneModello e CFSE-Based Migration Assay. BCG viene inoculato nella zampa posteriore del C57BL / 6 topi. In diversi momenti dopo l&#39;infezione, e 24 ore prima del sacrificio, il fluorocromo CFSE viene iniettato nella stessa zampa che in precedenza ricevuto BCG. Il drenaggio, linfonodo popliteo è isolato e le cellule caratterizzate da flussi CFSE-etichettato citometria. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54620/54620fig1large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="figura 2" src="/files/ftp_upload/54620/54620fig2.jpg" /> Figura 2. DC pelle migratori sono una popolazione maggiore trasferirsi al DLN Dopo BCG Footpad infezione. C57BL / 6 topi sono stati infettati con 1 x 10 6 CFU di BCG nella zampa. Ventiquattro ore prima del sacrificio, gli animali sono stati iniettati con 0,5 mM CFSE nella stessa zampa. LNs poplitea sono state raccolte, omogeneizzatiin cella singola sospensioni e sottoposti a citometria a flusso. Per misurazioni effettuate 1 giorno dopo BCG, CFSE è stato iniettato 2 ore dopo BCG. (A e B) trame Zebra che mostrano espressione predominante di CFSE su MHCII alte e CD11c + / bassi cellule in BCG-drenante PLN 3 giorni dopo l&#39;infezione. (C) frequenza e il numero totale di CFSE marcato alta CD11c MHCII + / bassi cellule in PLN da BCG- e topi PBS-iniettati sono state rappresentate graficamente in diversi momenti. (D) di fluorescenza media intensità (MFI) per CD80 e CD86 è stato determinato sulla + / DC bassi della pelle in PLN 3 giorni dopo l&#39;infezione BCG CFSE + e CFSE Neg MHC-II ad alta CD11c. (E) espressione CFSE entro DC pelle (MHC-II ad alta CD11c + / basso), LN residente DC (MHC-II + CD11c alto) e (F) DC plasmacitoidi (MHC-II basso CD11c basso PDCA-1 +)è stata determinata mediante citometria di flusso 3 giorni dopo BCG. Per ogni esperimento, almeno 5 topi sono stati usati per gruppi BCG-infetti e 3 per controlli PBS-iniettati. Barre indicano l&#39;errore standard della media. Numero totale di cellule CFSE-etichettati all&#39;interno di ciascun sottogruppo sono indicati nella Bollampalli et al, PLoS Pathog 2015, 11:. E1005206 3. * Indica differenze statisticamente significative tra i controlli BCG-infetti e PBS. Uno dei due esperimenti indipendenti indicati. Figura adattato da Bollampalli et al, PLoS Pathog 2015, 11:... E1005206 3, con il permesso dell&#39;editore <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54620/54620fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54620/54620fig3.jpg" /> Figura 3. EpCAM basso CD11b alti DC sono la pelle principale cc sottoinsieme Traffickzione alla DLN Dopo BCG Footpad infezione. C57BL / 6 topi sono stati iniettati con BCG e CFSE come in Figura 2. trame (A) Zebra mostrando gating strategia utilizzata (pannello superiore) e la frequenza di + cellule CFSE all&#39;interno di ogni sottoinsieme definita diverso punti di tempo dopo l&#39;infezione BCG (pannelli in basso). Frequenze all&#39;interno di ogni sottoinsieme possono variare a seconda del punto di tempo dopo l&#39;infezione. Dopo 3 giorni di BCG ci si può aspettare di trovare circa lo 0,2% MHC-II ad alta CD11c + / bassi cellule tra tutte le cellule LN. Di questi, circa il 6% sono CD103 + cellule. Per i sottoinsiemi trovati all&#39;interno della alta CD103 porta negativo MHC-II, si possono trovare circa 42% ad alta EpCAM cellule bassi CD11b, 27% CD11b basso EpCAM bassi cellule e il 7% LC. (B) viene visualizzato il numero totale di CFSE + cellule all&#39;interno di ciascuna, sottoinsieme definito in diversi momenti dopo l&#39;infezione BCG. Per ogni experiment, almeno 5 topi sono stati usati per gruppi BCG-infette e 3 per i controlli PBS. Barre indicano l&#39;errore standard della media. * Indica differenze statisticamente significative rispetto ai controlli PBS-iniettate. Uno dei tre esperimenti indipendenti visualizzati. Figura ri-stampato dal Bollampalli et al, PLoS Pathog 2015, 11:.. E1005206 3, con il permesso dell&#39;editore <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54620/54620fig3large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a>

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A CFSE-based Assay to Study the Migration of Murine Skin Dendritic Cells into Draining Lymph Nodes During Infection with Mycobacterium bovis Bacille Calmette-Gu&#233;rin

An assay in mice to track cell migration from skin to draining lymph node is described which enables the characterization of skin Dendritic cells mobilized to the lymph node after footpad infection with Bacille Calmette-Gu&#233;rin.

Un test CFSE-based per studiare la migrazione delle cellule dendritiche murini della pelle in drenanti linfonodi durante l&#39;infezione con<em&gt; Mycobacterium bovis</em&gt; Bacille Calmette-Guérin

Dendritic cells (DCs) are important for initiating immune responses, in part through their ability to acquire and shuttle antigen to the draining lymph ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

12.1K Views.  Karolinska Institutet. An assay in mice to track cell migration from skin to draining lymph node is described which enables the characterization of skin Dendritic cells mobilized to the lymph node after footpad infection with Bacille Calmette-Guérin.

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Monitoring Dendritic Cell Migration using 19F / 1H Magnetic Resonance Imaging

Continuous advancements in noninvasive imaging modalities such as magnetic resonance imaging (MRI) have greatly improved our ability to study physiological or pathological processes in living organisms. MRI is also proving to be a valuable tool for capturing transplanted cells in vivo. Initial cell labeling strategies for MRI made use of contrast agents that influence the MR relaxation times (T1, T2, T2*) and lead to an enhancement (T1) or depletion (T2*) of signal where labeled cells are present. T2* enhancement agents such as ultrasmall iron oxide agents (USPIO) have been employed to study cell migration and some have also been approved by the FDA for clinical application. A drawback of T2* agents is the difficulty to distinguish the signal extinction created by the labeled cells from other artifacts such as blood clots, micro bleeds or air bubbles. In this article, we describe an emerging technique for tracking cells in vivo that is based on labeling the cells with fluorine (19F)-rich particles. These particles are prepared by emulsifying perfluorocarbon (PFC) compounds and then used to label cells, which subsequently can be imaged by 19F MRI. Important advantages of PFCs for cell tracking in vivo include (i) the absence of carbon-bound 19F in vivo, which then yields background-free images and complete cell selectivityand(ii) the possibility to quantify the cell signal by 19F MR spectroscopy.

Monitoring Dendritic Cell Migration using 19F / 1H Magnetic Resonance Imaging

Tracking of cells using MRI has gained remarkable attention in the past years. This protocol describes the labeling of dendritic cells with fluorine (19F)-rich particles, the in vivo application of these cells, and monitoring the extent of their migration to the draining lymph node with 19F/1H MRI and 19F MRS.

Monitoraggio migrazione delle cellule dendritiche usando<sup&gt; 19</sup&gt; F /<sup&gt; 1</sup&gt; H Magnetic Resonance Imaging

Continuous  advancements in noninvasive imaging modalities such as magnetic resonance  imaging (MRI) have greatly improved our ability to study ...

Ricerca

Immunologia e infezioni

Imaging CD4 T Cell Interstitial Migration in the Inflamed Dermis

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral tissues through an as-yet undefined mechanism. The application of multiphoton microscopy to the study of the immune system provides a tool to measure the dynamics of immune responses within intact tissues. Here we present a protocol for non-invasive intravital multiphoton imaging of CD4 T cells in the inflamed mouse ear dermis. Use of a custom imaging platform and a venous catheter allows for the visualization of CD4 T cell dynamics in the dermal interstitium, with the ability to interrogate these cells in real-time via the addition of blocking antibodies to key molecular components involved in motility. This system provides advantages over both in vitro models and surgically invasive imaging procedures. Understanding the pathways used by CD4 T cells for motility may ultimately provide insight into the basic function of CD4 T cells as well as the pathogenesis of both autoimmune diseases and pathology from chronic infections.

The mechanisms that govern the interstitial motility of CD4 effector T cells at sites of inflammation are relatively unknown. We present a non-invasive approach to visualize and manipulate in vitro-primed CD4 T cells in the inflamed ear dermis, allowing for study of the dynamic behavior of these cells in situ.

Imaging CD4 T cellule interstiziali migrazione nel derma infiammate

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral ...

Myeloid Cell Isolation from Mouse Skin and Draining Lymph Node Following Intradermal Immunization with Live Attenuated Plasmodium Sporozoites

Malaria infection begins when the sporozoite stage of Plasmodium is inoculated into the skin of a mammalian host through a mosquito bite. The highly motile parasite not only reaches the liver to invade hepatocytes and transform into erythrocyte-infective form. It also migrates into the skin and to the proximal lymph node draining the injection site, where it can be recognized and degraded by resident and/or recruited myeloid cells. Intravital imaging reported the early recruitment of brightly fluorescent Lys-GFP positive leukocytes in the skin and the interactions between sporozoites and CD11c+ cells in the draining lymph node. We present here an efficient procedure to recover, identify and enumerate the myeloid cell subsets that are recruited to the mouse skin and draining lymph node following intradermal injection of immunizing doses of sporozoites in a murine model. Phenotypic characterization using multi-parametric flow cytometry provides a reliable assay to assess early dynamic cellular changes during inflammatory response to Plasmodium infection.

Myeloid Cell Isolation from Mouse Skin and Draining Lymph Node Following Intradermal Immunization with Live Attenuated Plasmodium Sporozoites

We describe here a protocol for isolating myeloid cells from mouse skin and draining lymph node following intradermal injection of Plasmodium sporozoites. Flow cytometry of collected cells provides a reliable assay to characterize the skin and draining lymph node inflammatory response to the parasite.

Mieloide isolamento delle cellule da topo pelle e drenante linfonodi seguito intradermica immunizzazione con vivo attenuato<em&gt; Plasmodium</em&gt; sporozoiti

Malaria infection begins when the sporozoite stage of Plasmodium is inoculated into the skin of a mammalian host through a mosquito bite. The highly ...

Isolation and Activation of Murine Lymphocytes

B and T cells, with their extremely diverse antigen-receptor repertoires, have the ability to mount specific immune responses against almost any invading pathogen1,2. Understandably, such intricate abilities are controlled by a large number of molecules involved in various cellular processes to ensure timely and spatially regulated immune responses3. Here, we describe experimental procedures that allow rapid isolation of highly purified murine lymphocytes using magnetic cell sorting technology. The resulting purified lymphocytes can then be subjected to various in vitro or in vivo functional assays, such as the determination of lymphocyte signaling capacity upon stimulation by immunoblotting4 and the investigation of proliferative abilities by 3H-thymidine incorporation or carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester (CFSE) labeling5-7. In addition to comparing the functional capacities of control and genetically modified lymphocytes, we can also determine the T cell stimulatory capacity of antigen-presenting cells (APCs) in vivo, as shown in our representative results using transplanted CFSE-labeled OT-I T cells.

Lymphocytes are the major players in adaptive immune responses. Here, we present a lymphocyte purification protocol to determine the physiological functions of the desired molecules in lymphocyte activation in vitro and in vivo. The described experimental procedures are suitable for comparing functional capacities between control and genetically modified lymphocytes.

L&#39;isolamento e l&#39;attivazione di linfociti murini

B and T cells, with their extremely diverse antigen-receptor repertoires, have the ability to mount specific immune responses against almost any invading ...

Quantifying Human Monocyte Chemotaxis In Vitro and Murine Lymphocyte Trafficking In Vivo

Chemotaxis is migration along a specific chemical gradient1. Chemokines are chemotactic cytokines that promote cellular trafficking with anatomic and temporal specificity2. Chemotaxis is a critical function of lymphocytes and other immune cells that can be quantitatively assessed in vitro. This manuscript describes methods that permit the evaluation of chemotaxis, both in vitro and in vivo, for diverse cell types including cell lines and native cells. The in vitro, plate-based format permits the comparison of several conditions simultaneously in real-time, and can be completed within 1-4 h. In vitro assay conditions can be manipulated to introduce agonists and antagonists, as well as differentiate chemotaxis from chemokinesis, which is random movement. For in vivo trafficking assessments, immune cells can be labeled with multiple fluorescent dyes and used for adoptive transfer. The differential labeling of cells allows for mixed cell populations to be introduced into the same animal, thereby decreasing variance and reducing the number of animals required for an adequately powered experiment. Migration into lymphoid tissue occurs in as little as 1 h, and multiple tissue compartments can be sampled. Flow cytometry following tissue harvest allows for a rapid and quantitative analysis of the migratory patterns of multiple cell types.

Quantifying Human Monocyte Chemotaxis In Vitro and Murine Lymphocyte Trafficking In Vivo

Protocols for quantitative assessment of lymphocyte chemotaxis and migration are important tools for immunology research. Here, an in vitro protocol is described that permits real-time, multiplexed evaluation of cell migration, as well as a complementary in vivo technique enabling tracking of native cells to spleen.

Quantificazione del linfocita murino traffico In Vivo e chemiotassi del monocito umano In Vitro

Chemotaxis is migration along a specific chemical gradient1. Chemokines are chemotactic cytokines that promote cellular trafficking with anatomic and ...

Development and Functional Characterization of Murine Tolerogenic Dendritic Cells

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state against self-antigens as well as antigens derived from commensal organisms. The disruption of this immune homeostasis can lead to chronic inflammation and to the development of autoimmunity. Dendritic cells (DCs) are the professional antigen-presenting cells of the innate immune system involved in activating na&#239;ve T cells to initiate immune responses against foreign antigens. However, DCs can also be differentiated into TolDCs that act to maintain and promote T cell tolerance and to suppress effector cells contributing to the development of either autoimmune or chronic inflammation conditions. The recent advancement in our understanding of TolDCs suggests that DC tolerance can be achieved by modulating their differentiation conditions. This phenomenon has led to tremendous growth in developing TolDC therapies for numerous immune disorders caused due to break in immune tolerance. Successful studies in preclinical autoimmunity murine models have further validated the immunotherapeutic utility of TolDCs in the treatment of autoimmune disorders. Today, TolDCs have become a promising immunotherapeutic tool in the clinic for reinstating immune tolerance in various immune disorders by targeting pathogenic autoimmune responses while leaving protective immunity intact. Although an array of strategies has been proposed by multiple labs to induce TolDCs, there is no consistency in characterizing the cellular and functional phenotype of these cells. This protocol provides a step-by-step guide for the development of bone marrow-derived DCs in large numbers, a unique method used to differentiate them into TolDCs with a synthetic triterpenoid 2-cyano-3,12-dioxooleana-1,9-dien-28-oic acid-difluoro-propyl-amide (CDDO-DFPA), and the techniques used to confirm their phenotype, including analyses of essential molecular signatures of TolDCs. Finally, we show a method to assess TolDC function by testing their immunosuppressive response in vitro and in vivo in a preclinical model of multiple sclerosis.

Here, we present a protocol to develop and characterize tolerogenic dendritic cells (TolDCs) and evaluate their immunotherapeutic utility.

Sviluppo e caratterizzazione funzionale delle cellule dendritiche tollerogeniche murino

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state ...

Medicina

Cell Migration and Cell Adhesion Assays to Investigate Leishmania-Host Cell Interaction

Leishmania is an intracellular protozoan parasite that causes a broad spectrum of clinical manifestations, ranging from self-resolving localized cutaneous lesions to a highly fatal visceral form of the disease. An estimated 12 million people worldwide are currently infected, and another 350 million face risk of infection. It is known that host cells infected by Leishmania parasites, such as macrophages or dendritic cells, can migrate to different host tissues, yet how migration contributes to parasite dissemination and homing remains poorly understood. Therefore, assessing these parasites' ability to modulate host cell response, adhesion, and migration will shed light on mechanisms involved in disease dissemination and visceralization. Cellular migration is a complex process in which cells undergo polarization and protrusion, allowing them to migrate. This process, regulated by actin and tubulin-based microtubule dynamics, involves different factors, including the modulation of cellular adhesion to the substrate. Cellular adhesion and migration processes have been investigated using several models. Here, we describe a method to characterize the migratory aspects of host cells during Leishmania infection. This detailed protocol presents the differentiation and infection of dendritic cells, the analysis of host cell motility and migration, and the formation of adhesion complexes and actin dynamics. This in vitro protocol aims to further elucidate mechanisms involved in Leishmania dissemination within vertebrate host tissues and can also be modified and applied to other cell migration studies.

<meta charset="utf8"></head><body>Saggi di migrazione cellulare e adesione cellulare per studiare l'interazione Leishmania-cellula ospite

Here we study implications of Leishmania-host interaction by exploring Leishmania-infected dendritic cells migration. The differentiation and infection of dendritic cells, migration analysis, and the evaluation of adhesion complexes and actin dynamics are described. This method can be applied to other host cell migration studies when infected with Leishmania or other intracellular parasite species.

Saggi di migrazione cellulare e adesione cellulare per studiare l'interazione Leishmania-cellula ospite

Leishmania is an intracellular protozoan parasite that causes a broad spectrum of clinical manifestations, ranging from self-resolving localized cutaneous ...

In vivo Function of Differential Subsets of Cutaneous Dendritic Cells to Induce Th17 Immunity in Intradermal Candida albicans Infection

The skin is the outermost barrier organ in the body, which contains several types of dendritic cells (DCs), a group of professional antigen-presenting cells. When the skin encounters invading pathogens, different cutaneous DCs initiate a distinct T cell immune response to protect the body. Among the invading pathogens, fungal infection specifically drives a protective interleukin-17-producing Th17 immune response. A protocol was developed to efficiently differentiate Th17 cells by intradermal Candida albicans infection to investigate a subset of cutaneous DCs responsible for inducing Th17 immunity. Flow cytometry and gene expression analyses revealed a prominent induction of Th17 immune response in skin-draining lymph nodes and infected skin. Using diphtheria toxin-induced DC subset-depleting mouse strains, CD301b+ dermal DCs were found to be responsible for mounting optimal Th17 differentiation in this model. Thus, this protocol provides a valuable method to study in vivo function of differential subsets of cutaneous DCs to determine Th17 immunity against deep skin fungal infection.

<meta charset="utf8"></head><body>Funzione in vivo di sottogruppi differenziali di cellule dendritiche cutanee per indurre l'immunità Th17 nell'infezione intradermica da Candida albicans

Here, we demonstrate the in vivo function of cutaneous dendritic cell subsets in Th17 immunity of deep dermal Candida albicans infection.

In vivo Funzione di sottogruppi differenziali di cellule dendritiche cutanee nell'induzione dell'immunità Th17 nell'infezione intradermica da Candida albicans

The skin is the outermost barrier organ in the body, which contains several types of dendritic cells (DCs), a group of professional antigen-presenting ...

Un test CFSE-based per studiare la migrazione delle cellule dendritiche murini della pelle in drenanti linfonodi durante l'infezione con

Riepilogo

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Monitoraggio migrazione delle cellule dendritiche usando

Imaging CD4 T cellule interstiziali migrazione nel derma infiammate

Mieloide isolamento delle cellule da topo pelle e drenante linfonodi seguito intradermica immunizzazione con vivo attenuato

L'isolamento e l'attivazione di linfociti murini

Quantificazione del linfocita murino traffico In Vivo e chemiotassi del monocito umano In Vitro

Sviluppo e caratterizzazione funzionale delle cellule dendritiche tollerogeniche murino

Saggi di migrazione cellulare e adesione cellulare per studiare l'interazione Leishmania-cellula ospite

Saggi di migrazione cellulare e adesione cellulare per studiare l'interazione Leishmania-cellula ospite

In vivo Funzione di sottogruppi differenziali di cellule dendritiche cutanee nell'induzione dell'immunità Th17 nell'infezione intradermica da Candida albicans

In vivo Funzione di sottogruppi differenziali di cellule dendritiche cutanee nell'induzione dell'immunità Th17 nell'infezione intradermica da Candida albicans