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マウスの胚のエチレングリコールベースのガラス化法が説明されています。それは、そのシンプルさと低胚毒性の他の方法に有利であるため、近交系や遺伝子改変マウスを含むマウスの多くの株、に広く適用することができます。
マウス胚の凍結保存は、マウスの多くの菌株は遺伝的改変によって生成されており、数は一貫して年々増加しているため、生物医科学をサポートする技術基盤です。その技術開発は、その後1980年代後半2で開発されたガラス化法に続いて、1970年代1で緩慢凍結の方法で起動しています。一般に、後者の技法は、その迅速、シンプル、そして回収された胚の高い生存性に有利である。しかし、含まれる凍結保護剤は、非常に有毒であり、その後の胚発生に影響を及ぼす可能性があります。したがって、技術のソリューションを4に冷却されている場合でも、マウスの特定の系統に適用できませんでした° C胚の処理中に毒性影響を軽減する。理研バイオリソースセンターでは、異なる遺伝的背景と表現型と5000以上のマウス系統では3を維持しているため、我々は、ガラス化TEを最適化して我々は周囲温度4でガラス化して(またはより正確に、液化)融解後の高い胚の生存の利点と、マウスの多くの異なる株から胚を凍結保存することができるとchnique。
ここで、我々が正常に当センターで使用されているマウスの胚のガラス化法を提案する。凍結保存液は、胚を5に毒性を最小限にする代わりにDMSOのエチレングリコールが含まれています。また、それぞれ、フィコールと失透と浸透圧調整の防止のためのショ糖が含まれています。胚は、室温で処理し、5分以内に液体窒素に転送することができます。オリジナルのメソッドはコンテナとしてプラスチック製のストロー用に最適化されているので、我々は若干の研究室でより簡単にアクセスし、物理的な損害に対してより耐性があるクリオチューブ、のためのプロトコルを変更しました。それが重要なステレオなので、我々はまた、詳細にガラス化胚の融解の手順を説明生きたマウスの効率的な回収のためのp。これらの手法は、安全かつ費用効果の高い方法で後で使用するためのマウス系統の保存を必要とする研究者や技術者に参考になる。
実験の全体的なスキームを図に示します。 1。
1。試薬の調製
MW | mMの | mg/100ml | |
NaClを | 58.4 | 136.98 | 800.0 |
塩化カリウム | 74.6 | 2.68 | 20.0 |
KH 2 PO 4 | 136.1 | 1.47 | 20.0 |
のNa 2 HPO 4 0.12 H 2 O | 358.14 | 8.04 | 288.1 |
のMgCl 2 · 6H 2 O | 203.3 | 0.49 | 10.0 |
グルコース | 180.2 | 5.56 | 100.0 |
Naのピルビン酸 | 110 | 0.33 | 3.6 |
のCaCl 2、2H 2 O | 147 | 0.9 | 13.2 |
ペニシリンG | 6.0(約) |
フィコール70 | 6.0グラム |
スクロース | 3.424グラム |
BSA | 42.0ミリグラム |
EFS20ソリューション | EFS40ソリューション | |
エチレングリコール | 1ミリリットル | 2ミリリットル |
FSのソリューション | 4ミリリットル | 3ミリリットル |
2。 2セルのマウス胚のガラス化
3。ビトリファイド2セルのマウス胚を融解
4。代表的な結果:
解凍は、表1と表2に示されており、胚の in vivo開発の後で- in vitroで 。このプロトコルの利点は、マウスの異なる系統に解凍し、その広範な適用後の胚の高い生存性があります。
ひずみ | チューブの合計数 | ガラス化胚の数 | (番号(%))を回収 | 形態的に正常(第(%)) | 胚盤胞への開発(第(%)) |
C57BL/6J | 20 | 400 | 397(99) | 394(99) | 342(87) |
BALB / cAの | 15 | 300 | 296(99) | 282(95) | 238(84) |
ICR | 24 | 480 | 474(99) | 443(93) | 398(90) |
表1。一般的なマウス系統におけるガラス化融解胚の体外開発で
胚の状態 | 受信者女性の数 | 転送された胚の数 | 着床部位(番号(%)) | 子孫を生きる(第(%)) |
新鮮な | 12 | 180 | 141(78.3) | 110(61.1) |
ガラス固化 | 16 | 242 | 202(83.5) | 125(51.7) |
表2。C57BL/6Jマウスにおけるガラス化融解後の胚のin vivoで開発中 。
図1。胚の平衡化、ガラス化、融解を含む実験の全体的なスキーム。
図2凍結融解の各段階で胚の形態。
図3。胚の手順を解凍。すべての手順は室温で実施されています。 ()、クライオチューブにTS1(37℃)850μlを加え、プラスチック製の皿にクライオチューブ内の溶液のボリューム全体を転送する。この時点では、胚は、 図1のように腫れて見える。 2B。 (B)、軽く揺することで皿の表面上にソリューションを広げる。 (C)、プラスチック製の皿にTS2の三50μlの滴を入れます。 (D)、TS2の最初のドロップに胚を移す。 図に示すように3分後、胚はshurunken見える。 2C。 (E)、それらをシリアル転送残りのTS2の滴にし、培養培地にLY。
1985年2におけるRallとFahyによるマウス胚のガラス化の最初の報告以来、いくつかの技術的改良が融解後の胚の生存性を高めるために行われています。最も成功した変更の一つは、その低毒性と高い膜透過性の凍結保護剤としてエチレングリコールを使用することによって達成された。このような利点は、私たちは、室温4℃凍結胚を処理することができますが、他のガラス化法は、クーラーの温度で渡す胚を必要とし、常にBALB / cの6を含むマウスのいくつかの株には適用されません。第一エチレングリコールベースのガラス化は、笠井らによって開発されました。 1990年5,7インチオリジナルのメソッドはコンテナとしてプラスチック製のストロー用に最適化されているので、我々は若干の研究室でより簡単にアクセスし、物理的な損害に対してより耐性があるクリオチューブ、のためのプロトコルを変更しました。したがって、ここで説明するガラス化法は、アプリケーション可能性があります研究のモデルとしてマウスを用いた多くの研究室にlicable。同じ方法は、桑実胚と胚盤胞の段階8およびラットの胚9時、マウスの胚にも使用できます。しかし、我々は最近、クリオチューブの質が凍結融解後の胚の生存率に影響を与える可能性があることを発見した。従って、それはガラス化胚(;特定の試薬や機器の表で参照など)の前にその滑らかさのためにクリオチューブの内側表面を調べるために不可欠です。
ガラス化法は、従来の緩慢凍結法に比べて多くの利点がありますが、それらは本質的に輸送の目的に関しての欠点を有している。ガラス固化体胚を° Cがその生存を維持するために、以下の-120で保管されるべきであるとして、ドライシッパーは、一般的にそれらの安全輸送に使用されます。特に国際輸送のために、ドライシッパーは重くてかさばるであり、その往復は高価です。我々は、現在で新しいガラス化法を開発していますそのガラス固化体の胚は少なくとも7日間10分間ドライアイス温度(-80℃程度)で保存することができる。このメソッドは、次の世代のガラス化する必要があります。
我々は、開示することは何もない。
この研究は、日本、スポーツ、科学技術、文化、教育省、ナショナルバイオリソースプロジェクトと協力して実施されました。
試薬の名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント(省略可能) |
ウシ血清アルブミン | メルクバイオサイエンス(Calbiochem社) | 12657 | |
エチレングリコール | 和光純薬 | 058から00986 | |
フィコール70 | GEヘルスケア | 17-0310-10 | |
グルコース | 和光純薬 | 041から00595 | |
NaClを | 和光純薬 | 191から01665 | |
塩化カリウム | 和光純薬 | 163から03545 | |
KH 2 PO 4 | 和光純薬 | 169から04245 | |
のNa 2 HPO 4 · 12H 2 O | 和光純薬 | 500から04195 | |
のMgCl 2 · 6H 2 O | 和光純薬 | 135から00165 | |
のCaCl 2 · 2H2O | 和光純薬 | 031から00435 | |
ペニシリンG | シグマアルドリッチ | P - 4687 | |
ピルビン酸ナトリウム | シグマアルドリッチ | P - 8574 | |
スクロース | 和光純薬 | 196から00015 | |
M16培地 | シグマアルドリッチ | M7292 | |
M2培地 | シグマアルドリッチ | M7167 | |
クライオチューブ | 住友ベークライト | MS - 4501 | "極低温バイアル" |
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