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前部コンパートメントの筋肉への神経筋電気刺激(NMES)、安全かつ安価な治療モダリティのマウスモデルは、記載されています。このモデルは、マウスでターゲットを絞った特定の筋肉の収縮を誘発する目的のために容易に利用可能な臨床デバイスを変更できるという利点があります。
神経筋電気刺激(NMES)が広く2を維持したり、3月5日筋肉機能的能力を向上させ、1を復元するために使用される一般的な臨床検査法の一つである。骨格筋の皮の表面の刺激、それによってモータユニットとその周辺の筋線維の興奮を誘発し、カソードとアノード間の電流の流れが含まれます。
NMESは、いくつかの理由により骨格筋の適応応答を評価するための魅力的なモダリティである。最初に、そのような筋線維hypertophyや筋肉の強化6、血管新生7-9、成長因子の分泌9-11、および筋前駆細胞の活性化12のような生理的な適応は、十分に文書化された再現可能な実験モデルを提供しています。このような生理的反応は、慎重に刺激の異なるパラメータを(コクラン·レビューのために、13を参照) を使用して滴定することができます。さらに、新兵をNMES運動単位の非選択的及び空間的に固定されており、時間的に同期的に14で、すべての繊維上の治療効果を発揮するという利点を提供し、関係なく、繊維の種類。末梢静脈疾患や悪性腫瘍などの臨床集団におけるNMESに指定された禁忌がありますが、例えば、NMESは病気、そして/または、寝たきりの人のために、厳密な運動が挑戦されるかもしれない集団に対しても、安全で実現可能である。
ここでは、市販の電極を適応させるとマウスモデルを使用してNMESプロトコルを実行するためのプロトコルを示しています。この動物モデルは、臨床的に使用可能なデバイスを利用し、必要な筋肉の収縮効果を引き出すための電極の位置については即座にフィードバックを提供するという利点があります。本稿の目的のために、我々はマウスの後肢の前方コンパートメントの筋肉の筋肉を刺激するためのプロトコルについて説明します。
1。電極の調製
2。動物の準備
3。刺激
4。代表的な結果
野生型(B6/10)、B6.SCIDおよびMDX / SCIDマウス:この資料に記載されているNMESプロトコルを含むいくつかのマウス系統で実装されています。 MDX / SCID古い3から5ヶ月で4週間(20セッション)上で実行NMESの代表的な結果が表示されます。
動物は人道的に麻酔下ながら頸椎脱臼により安楽死させた。前脛骨筋は、2 - メチルブタン液体窒素で事前に冷却し、-80℃で保存で収穫し、直ちに凍結させたシリアルクロスセクション(10μm)を取得し、スライド上にマウントされた。統計分析は、標準的な統計ソフトウェアパッケージ(SPSS、v19.0ソフトウェア)を用いて行った。最初に、レーベンのテストはそこでWAかどうかを評価するために使用されたの分散の平等。独立したサンプルのt検定は、その後NMESとコントロール群間の差を調べるために行われた。
ヘマトキシリンおよびエオシン(H&E)汚れはNMESプロトコルがジストロフィー筋で増加した傷害につながるかどうかを調べるために行われた。つのセクションが選択され、写真は光学顕微鏡(ニコンエクリプスE800、ニコン、日本)を用いて得られた。再生指数の有意な増加が(一元的に核線維の数はありませんでした開発した画像解析ソフトウェア、イメージJ. - 繊維や中心部の核を有する繊維の数の合計数は、手動で国立衛生研究所(NIH)を用いてカウントした繊維/総数)NMESに提出された動物では、などのコントロール(P = 0.802に比べて、 図1)。これは、NMESのアプリケーションがジストロフィーの動物で観察された変性·再生のカスケードを増加させないことを示唆しているため、そうではありません増加した筋肉の損傷を誘発することができます。
CD31のための免疫蛍光染色は、筋肉の血管に4週間NMESプロトコルの効果を調べるために行われた。簡単に言えば、筋肉のセクションは4%ホルマリンで固定し、5%ウマ血清(HS)を使用してブロックした。セクションは、ラット抗マウス一次抗体(5%HSで1:300希釈)と共にインキュベートし、555標識ヤギ抗ラット二次抗体(5%HSで1:300希釈)で処理した。 CD31陽性細胞の合計数を定量化するために、一つのセクションを選択し、蛍光顕微鏡(ニコンエクリプスE800、日本)を使用して撮影しました。毛細血管の合計数が手動で北Eclipseのソフトウェア(Empixイメージング社)を用いて計数した。 NMESプロトコルとして骨格筋の血管新生を促進し説明したことを示す、コントロール(図2のP <0.01)に比べNMESに提出された動物のCD31陽性細胞数の有意な増加がありました。
現場収縮試験で以下の四週間NMESプロトコルが完了した後、前方のコンパートメントの筋肉の収縮試験は 、in situ試験装置(モデル809B、オーロラ科学社、カナダ)、刺激(モデル701C、オーロラ科学社で使用して行った。 、カナダ)、力変換器(オーロラ科学社、カナダ)。簡単に言うと、麻酔動物の腓骨神経は膝の外側の小さな切開口から単離した。マウスは、プラットフォーム上で仰臥位に置かれた、テストされている足底板上に配置されました。テストに使用される後肢を膝や足に布テープで安定化させた。筋肉が皮膚の下に挿入されたフック電極を用いて刺激した。筋強直性収縮は、4週間のNMESプロトコルは筋力の改善を誘導するかどうかを調べるために350ミリ秒のために150Hzの周波数でテストされています。結果はぬれた筋肉の重量に正規化した。 tetan約30%の増加があった記述されているプロトコルを示唆しているコントロール(P = 0.005)( 図3)に比べNMESに提出された動物のICの収縮は、MDX / SCID動物の骨格筋の強さを向上させます。
NMESの4週間後)に未処理の対照、B): 図ジストロフィーの1ヘマトキシリン&エオジン骨格筋染色(MDX)/免疫不全マウス(4-5ヶ月)(10×倍率)。
図2ジストロフィーの骨格筋(MDX)/免疫不全マウス(4-5ヶ月)(20倍の倍率)A)未処理のコントロールの骨格筋血管のマーカーとして、CD31免疫蛍光(赤)、B)の4週間後NMES。
図3収縮試験4週間NMESで処理した対照と動物の前部コンパートメントの筋肉。カタログ掲載=ミリニュートンメートル。 拡大図を表示するには、ここをクリックしてください 。
これらの結果は、NMESの我々の開発したモデルマウスは、骨格筋の血管新生( 図2)高強度化( 図3)を促進するが、骨格筋の損傷( 図1)を誘発しないことを示唆している。
それはここで説明する刺激パラメータが前方コンパートメントの筋肉に過負荷を筋肉を誘導するように設計されていることに留意すべきである。臨床シナリオのケースがそうであるように、電極の配置は、NMESに筋肉の応答は繊維の種類組成に応じて、異なるかもしれませんが、他の筋群を刺激するように調整することができる。 NMES期間、治療セッションの合計数、および繰り返しの合計数は、デザインを学びに応じて変更されることがあります。
任意のプロトコルと同様に、このメソッドは、留意すべき制限があります。本研究では、刺激は深腓骨神経を介して行われた。しかし、クリニックでは、刺激Isは一般的にモータユニットで投与する。動物モデルでは、神経の刺激は、完全な筋収縮を誘発するために、低い強度を必要とするであろう。提示されたモデルのもう一つの制限は、私たちは動物が麻酔をかけていることを与えられたNMESの適用中に快適さのレベルに関する情報を入手することができないということです。したがって、臨床の人口に匹敵する強度の忍容性を評価するのは困難です。しかし、我々の組織の結果は説明したように、筋肉の損傷を誘発しない、私たちのNMESモデルを示唆している。
一般診療所で実装された様式を模倣する動物モデルの開発は、治療介入の細胞および分子応答の理解の向上を可能にする有用な研究ツールを提供してくれる。さらに、このようなモデルは、既存のリハビリプロトコルを改良し、新たな適応症を開発するために、両方の前臨床試験を実施するために有用である。
我々は、開示することは何もありません。
この作品は、国立衛生研究所(NIH)によるリハビリテーション研究研修における物理的および作業療法士、包括的な機会(K12 HD055931)、理学療法およびピッツバーグクロードD.ペッパー古いアメリカ人の独立性センター(P30 AG024827財団のためにK12を資金を供給された。)
Name | Company | Catalog Number | Comments |
試薬の名前 | 会社 | カタログ番号 | |
二股はんだ端子付きベクトルワイヤラップポスト | ニューアーク | T68 | |
ベクトル回路基板 | ニューアーク | 3662から2 | |
ポモナのパッチコード | ニューアーク | P-36から0 | |
5分エポキシ | VOベイカー(株) | 4001 | |
スペクトル360の電極ジェル | ミリケン医療 | MR41217 | |
ポータブル神経筋刺激装置 | EMPI | 300pv |
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