ライブセル蛍光顕微鏡を用いた細菌毒素誘導される応答の可視化

要約

組換え体からコレステロール結合毒素ストレプトリジンOの精製方法 E大腸菌のと可視化が記載されている。毒素の局所送達は、毒素の生物学の新たな側面を明らかに標的細胞における迅速かつ複雑な変化を誘導する。

要約

細菌毒素は、細胞内容物と外部環境からの物質の流入の漏洩を可能に孔を形成し、膜中のコレステロールと結合する。セルは、アクティブ膜修復プロセスを必要とするこの侮辱から回復、または他の毒素曝露や細胞タイプ¹の量に応じて、死ぬことができます。さらに、これらの毒素は、炎症性サイトカインの配列^2を産生^するマクロファージなどの免疫細胞の活性化を介して感染したホスト内の強い炎症反応を誘導する。多くのグラム陽性菌は、主に特徴づけられていないメカニズムを介してそれらの病原性に寄与することが示されているコレステロール結合毒素を産生する。

これらの毒素に曝露した細胞の形質膜における形態学的変化は本質的な細胞防御を示唆し、細胞外空間に流すことができ、コレステロールに富んだ表面突起、に彼らの隔離を含む機構^3,4。このプロセスは、代謝活性の不在下で、すべてのセルで発生し、化学的固定^4の後にEMを使用して可視化することができる。そのような毒素曝露に応答して炎症を媒介マクロファージなどの免疫細胞は、誘導される膜小胞はIL-1ファミリーのサイトカインを含むことが示唆されており、毒素を流し、これらの炎症性サイトカイン^5,6,7を広めるための両方の責任があるかもしれません。両方とも⁸カスパーゼ1依存プロセスであるとして、IL-1β放出および細胞死の特定の種類の間にリンクと呼ばれるpyroptosisが、示唆されている。膜小胞の毒素結合、脱粒、サイトカイン放出、および潜在的に細胞死を含むこのマクロファージ応答の複雑さを整理するために、我々には、毒素 - 細胞間の相互作用のリアルタイム可視化を可能にラベリング手法や蛍光顕微鏡法を開発した機能不全と死の測定（ 図1）。使用ライブセルイメージングの他の技術の制限のために必要です。フローサイトメトリーは、個々の細胞の高分解能、リアルタイム可視化を提供していないながら、生化学的アプローチは、個々の細胞で発生する効果を解決することはできません。ここで説明する方法は、細胞内の複雑な表現型の変化を伴うその他の刺激によって誘導される応答の動態解析に適用することができます。

プロトコル

1。ストレプトリジンO（SLO）の精製

1. 0.5LのLBブロスにプラスミドpBADgIII ^SLOhis-9を含むBL21 GOLDの細胞を20mlの一晩培養物を接種し、500μlの50 mg / mlのアンピシリンを追加します。 37℃で225rpmで振とう培養し、OD ₆₀₀ = 0.6になるまでには、通常1.5時間を〜。 10,000 5分xgで1 mlの細菌（T ₀と見なされます）遠心し、140μlの1×SDSサンプルバッファー/ 1 ODでペレットを溶解し、タンパク質の純度分析用せん断DNAに超音波洗浄します。
2. 文化〜5mlの20％のアラビノースを添加して細菌を誘導し、3時間室温で225rpmで振とうする。細菌の1ミリリットルを収集し、純度分析用のT ₃の時点について、上記の1×SDSサンプルバッファーで遠心し、溶解する。
3. 500mlの遠心ボトルに残っている細菌を収集し、4℃（8500回転ソーバルGS-3ローター）で12分間、12,000×gで遠心する。必要であれば℃で一晩以上-80℃で上清、店舗ペレットをデカントします。
4. frを再懸濁400μlの25パーセントのトリトンX-100、100μlの100 mg / mlのリゾチーム、50で補足10ミリリットル/洗浄溶解緩衝液（50mMのNaH ₂ PO _4、300mMのNaCl、10mMイミダゾール、pH8.0）中で氷上ozenペレットμlの200 mMのフッ化フェニルメチルスルホニルフルオリド（PMSF）。 50ミリリットルオークリッジ管に再懸濁ペレットを転送します。
5. 30秒間隔で、氷上で30秒間5回ライセートを超音波洗浄します。スピンは4℃（18,000 rpmのソーバルSS-34ローター）で20分間39000×gでオークリッジ管で溶解液を超音波処理した。
6. ライセートが回転しているときに、4℃で5分間1200 rpmで洗う/溶解バッファーとスピン10mlで1ミリリットルNi-NTAアガロースを洗浄℃に（それ以降のすべての洗浄/溶出は、これらの条件下で遠心分離を使用します）。洗浄を吸引します。
7. ステップ1.5からNi-NTAアガロースに細菌の上清を追加し、4℃で2.5時間穏やかに振とう℃、上清を回収するためにスピン。 10μ4X SDSサンプルバッファーで上清30μlを組み合わせると純度分析のために保存。洗浄/溶解緩衝液中で、オンビーズを4回洗うトリス/塩緩衝液（50mM Tris、300mMのNaCl、pH8.0）にCE。
8. 、ビーズに1 mlの溶出バッファー（トリス/塩緩衝液中の250mMイミダゾール）および5μlの1Mのジチオスレイトール（DTT）を添加すること、氷上で10分間インキュベートし、紡績、上清を収集することにより、3回溶出する。 SLOは非常にレドックス感受性タンパク質であり、常に氷上に維持しなければなりません。でも、時間の短い期間に、37℃に加温した場合、一度減少し、タンパク質は急速にその活性を失うことになる。
9. 溶出緩衝液で500μlのポリミキシン共役アガロース、4℃で1分を500μlのCを再懸濁し、10,000 xgでスピンを洗う。エンドトキシンを枯渇させるために、それぞれの溶出に200μlのビーズを追加して、30分間、4℃を振る。 1 4時分℃、上清を保存し、10,000 xgでスピン。 SDS-PAGE解析のために、10μlの4X SDSサンプルバッファーで各溶出液30μlを兼ね備えています。
10. SDS-PAGEによる溶出の純度をテストします。沸騰サンプルは5分間95℃でゲル解析するために保存し、10％ゲルで10μlをロードします。 GEを染色蛋白質を可視化するクマシー付きL（ 図2A）。 SLOは69 kDaである。 （典型的な収率は、最初の2つの溶出のために4 mg / mlのですが、使用する細菌株およびプラスミドによって異なる場合があります）タンパク質濃度を決定するために、ブラッドフォードアッセイを行う。
11. それぞれの溶出の溶血活性をテストします（下記参照）。純度、濃度、溶血活性が良好であるプールの溶出。シングルユースのアリコート（通常5〜10μL）にアリコートSLOは、-80℃でドライアイスと℃で保存時にフリーズ

2。溶血アッセイ

1. RBCアッセイ緩衝液（0.3％ウシ血清アルブミン（BSA）、2mMのCaCl _2、10mMのHepes、pH7.4）で5分間1200 rpmでスピンでヒツジ赤血球（RBC）を洗浄し、2.5％の赤血球における懸濁する10ミリリットルのRBCアッセイバッファー。
2. /ウェル氷上で96ウェルV底プレートに10μlのRBCのアッセイバッファーを追加します。直列二連で各溶出を薄める。典型的な希釈範囲は1:512,000に1:1000である。 10でない毒素を持つ3つのウェルと3つのウェルを含むそれぞれ、最小と最大の井戸としてTriton X-100を2パーセントずつ。
3. 37℃で30分間インキュベートし、プレートをカバーしています。 5分間1,200 rpmで遠心分離します。平底96ウェルプレートに上清70μlを。 _405を読ん_でください。 1単位は、RBCの50％溶解するために必要な毒素の希釈である。毒素活性を1ユニット*希釈factor/0.01 mlである。

3。細胞溶解アッセイ

1. 細胞を回収し、カウント、スピン。 2×10 ⁶バッファR / B（2mMのCaCl ₂を含むRPMI、0.5％BSA）および20μg/ mlのヨウ化プロピジウムで/ mlで再懸濁する。 96ウェルV底プレートに100μlの細胞を追加します。
2. シリアルバッファR / Bで最終濃度が2倍にSLOを希釈し、細胞に100μlの毒素または100μlバッファR / Bを追加します。 5分間37℃でインキュベートするU / mlの2000から31.25 U / mlの最終濃度に典型的な範囲です。
3. フローサイトメーター上でセルを実行し、フィコエリトリン（PE）のためのフィルタを使用してデータを収集します。 1ログシフトは一過透過処理セルを表しますLS 3ログシフトは死んだ細胞^4を示している。次のように、実験（％PIの^高い _EXP）からの制御で死んだ細胞の割合（％PIの^高い _CTL）を差し引くことにより、細胞の特異的溶解を計算する：特異的溶解=（％PIの^高い _EXP - ％PIの^高い _CTL） /（100 - ％PIの^高い _CTL）* 100

4。培養皿で細胞への毒素のマイクロピペットデリバリー

1. コラーゲンコートガラスボトム35mmディッシュの実験は、プレート^{2×10 5}のマクロファージへの1日前。
2. 顕微鏡やマイクロインジェクターをオンにします。加熱ステージ時間は37℃に温め許可顕微鏡の選択は、通常、ローカルで使用可能であるかに依存します。顕微鏡は、倒立ステージ37に選ばれた染料と、物理的に微量注入器を接続するためのスペースに適し℃、励起/蛍光フィルターキューブを皿を加熱することができる段階を必要とします。バートランドレンズマイクロインジェクションのために役立ちますが、必須ではありません。顕微鏡を駆動するコンピュータは、データを収集し、保存するための十分なメモリが必要です。
3. 37℃染料で30分間標識細胞℃、アッセイに応じて、標識は、1ミリリットルのフルメディアにAM 1 mlのPBSまたは2μlのカルセインで午前5μlのFura2で行うことができる。 Fura2は、励起/発光は510分の340 nmと510分の380 nmのために収集され、380分の340の信号の比は、カルシウムフラックスを決定します。エチジウムホモは620分の525 nmで、APCは660分の650 nmである一方カルセインは、励起/発光は515分の495 nmである。他のラベルも同様に選択することができる。
4. 2mMのCaCl ₂を補充した1ミリリットルRPMIにPBSおよび場所で細胞を洗浄。顕微鏡にマウントします。
5. 4℃、20,000×gで10分で毒素およびデキストラン水中で、遠心分離を薄める典型的には、1μlのSLOと4μlの10 mg / mlのデキストラン-555は6μlの水で希釈する。デキストランまたは別の蛍光液相分子は、フェムト先端が詰まっていないことを確認するために使用されており、麟蹄CTSは、必要に応じて。
6. microloaderを使用して希釈された毒素の0.07μlの背面からフェムト先端をロードします。
7. マイクロインジェクターにフェムト先端をロードします。先端はすべての方向に移動する部屋を有する細胞の中心上に座りますようにインジェクタの角度を調整します。 z軸の制限をクリアします。注入の設定は20psiの背圧は120 psiで0.5秒間注入する必要があります。それは、媒体に入るまで先端を下げる。
8. バートランドレンズ、中央先端を使用して、それを細胞に近い下げられるように先端に従ってください。一度フォーカスを失い、通常の光学系に切り替えます。針の影は、フィールドには明らかであろう。セルの上でピントを合わせ、それが焦点になるまで、ニードルを下げてください。細胞上にバックフォーカスと慎重にセルに隣接する針を持参。注射用のz-limitを設定します。所望の位置に先端を移動し、撮影を開始し、所望の時点で毒素を解放するために注入する。針を上げ、細胞の新しい領域に移動して注入します。望ましくないことを防止するためにホームポジションに針を動かす針から毒素漏れ。

結果

典型的には10 ^{7〜10 8} U / mlのSLOは4 mg / mlのタンパク質濃度を求めることができる。細胞溶解に必要な毒素の量は、細胞の種類によって異なりますが、通常125から500 U / mlのSLO（ 図2B）です。他人（特にT細胞株）は、より敏感であるけれどもマクロファージ様細胞型（4000 U / ml）を、より耐性があることができます。これらの感応度は市販のSLOに対応しています。毒素活性は?...

ディスカッション

技術は細菌毒素に対する免疫細胞の反応の検査を可能にする、ここで説明。最も重要なステップは、毒素の取り扱いと投薬です。毒素活性はさらにそのもろさのために、同じ製剤の異なるアリコートの間、非常に可変にすることができます。これは、いずれかの基準セルラインや赤血球に対する毒素の各アリコートをテストする、または毒素のグラデーションを使用する必要が生じて。毒素?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
試薬の名称	会社	カタログ番号	コメント（オプション）
Ni-NTAアガロース	キアゲン	30210
ポリミキシン-アガロース	シグマ	P1411-5ML
Zeba脱塩スピンCOL	フィッシャー	PI-89891
ヒツジ赤血球	フィッシャー	50-415-688
pBADgIII-SLO	N / A	N / A	refは9を参照してください
Cy5の単反応性染料	GEヘルスケア	PA25001
Fura2-AM	ライフテクノロジーズ	F1221
カルセインAM / EThidiumホモダイマー	ライフテクノロジーズ	L3224
抗CD11c-APC	BD Biosciences社	550261
コラーゲンコートガラスボトムディッシュ	マテック	P35GCol-1.5-10-C
フェムト先端II	フィッシャー	E5242957000
Microloader	フィッシャー	E5242956003
デキストランアレクサ555	ライフテクノロジーズ	D34679
Injectman NI 2	エッペンドルフ	920000029
FemtoJet	エッペンドルフ	5247 000.013
			特定の試薬 ​​および設備を導入の表1。リストとソースENTが必要。会社とカタログ番号と一緒に、このプロトコルで使用される特定の機器や試薬は、記載されています。
			バッファ 構図 使用されるステップ 溶解/洗浄 の50mMのNaH 2 PO 4 300mMのNaCl 10mMイミダゾール、pH8.0の 1.4 トリス/塩 50mMのトリス、pH8.0 300mMのNaCl 1.7 溶出緩衝液 50mMのトリス、pH8.0 300mMのNaCl 250mMイミダゾール 1.8 RBCアッセイバッファー 0.3パーセントのBSA 2mMのCaCl 2 10mMのHEPES、pH7.4の 2.1 バッファR / B RPMI培地細胞培養培地 2mMのCaCl 2 0.5％BSA 3.1
			このプロトコルで使用されるバッファの表2。一覧。使用されるバッファは、その組成とは、プロトコルで使用されるときの最初のステップが記載されています。