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  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.

要約

ワイル・ブレークスリーのconchotomeを使用して、経皮的筋生検はよく両方の臨床と研究の実践において確立されています。それは、安全で効果的かつ良好な忍容手法です。 6ミリメートル幅の広い中空 - ワイル・ブレークスリーのconchotomeは4シャープな痛烈な先端を有します。これは、5を通って挿入される - 10mMの皮膚切開と制御組織浸透のために操作することができます。先端が開閉組織内に、次に筋肉を切断する90 -180°回転されます。繰り返しサンプリング後に得られた筋肉の量は、20mgのから組織学および分子生物学的研究の両方のために処理することができる290 mgまで変化させることができます。傷は活動の正常レベルは、手順の直後に再起動することができますが、約72時間の最小に抑え、乾燥し、活発な身体活動を保つ必要があります。細心の注意を被験者、完全な無菌状態とポスト手続きのケアの選択に支払わされている場合、この手順は、安全かつ効果的です。左右両方Vastusの外側のは、参加者の好みに応じて生検に適しています。

概要

ミオパシーおよび他の神経筋変性疾患の診断のための骨格筋を取得することは許容され、患者1に無能力化されない安全で効率的な方法に依存しています。歴史的に、分析のための筋肉組織を得る方法は、全身麻酔下または死後から実行オープン生検が含まれていました。これらの技術は、筋肉の直接可視化を可能にし、筋肉の大きい作品は生検することが許可しました。これらの技術は入院と回復の点で患者に持っている潜在的な欠点を考えると、経皮的な「セミオープン」筋生検法は、代替として導入されました。この技術は、最初にトロカール自己構築針を使用し、全身麻酔2せずに生体からの筋肉サンプルを得ることができたデュシェンヌ(1806から1875)により行いました。その後、生検針の様々な形態は、3,4,5使用されています。しかし、生検nは1962年にバーグストロムによって開発eedleは、最も一般的に臨床で使用されています。両方の子供と大人でだけでなく、研究6,7,8,9,10インチこれは、組織のポスト生検を追放するために鋭利なトロカール、切断カニューレとプッシュロッドを有しています。この手順から得られた筋肉の収率は繰り返しサンプリング11,9後25 -293ミリグラムの範囲であると報告されています。

Henrikssonは、代替セミオープン筋生検法( 1)12として1979年にワイル・ブレークスリーのconchotomeを導入しました。機器はバーグストロムとは異なり、単一の構造の構築であり、シャープな痛烈な先端を有する鉗子のように設計されています。チップサイズを4mmの幅が6mmの範囲であることができます。痛烈な先端の2つの縁部が反対した場合、中空は筋肉のキャプチャを確実に形成されています。 conchotome 5を通って挿入される - 10mMの皮膚切開とscalpeなどの筋肉とその上の筋膜を貫通するためのトロカールのための必要性を回避しますLは、筋肉への追跡を行うために使用することができます。

この方法は、操作性13,14度の高い組織浸透を制御することができます。これは、過度の圧力が潜在的に神経血管または基礎骨構造などを破損する恐れがあります。、前脛骨15,14の部位でのサイトのために特に有用です。 conchotomeを使用して、筋肉の収率が可変することができ、私たちの実際に20 - 筋の200 mgを繰り返しサンプリングした後に得られています。ベルイストロームの針の上conchotomeの1つの潜在的な利点は、それが提供する機動性の高い程度に加えて、痛烈な先端が先鋭化やバーグストロムのトロカール16を構築ほど頻繁に交換する必要がないことです。

ワイルブレークスリーのconchotomeを使用して、筋生検の全体的な目標は、診断およびresearの両方のための組織化学および分子分析を可能にするために筋肉組織の十分な量を得ることですchの研究。これは、簡単に学ぶことができる簡単で安全な手技です。この技術では、生検に適した筋肉は上腕二頭筋、三頭筋、三角筋、腓腹筋、前脛骨筋、ヒラメ筋とsacrospinals 17,15,7,18,14が含まれています。それは太もも内の主な神経血管構造を回避するように外側広筋の最も外側の部分は、生検のために使用される最も一般的なサイトです。これは、上前腸骨棘と膝蓋骨を結合する仮想線の下の約3分の2に識別されます。筋肉形状データは、 広筋由来例myofibreエリア、myofibre比率、毛細血管密度のためのサンプリングは研究11,19間の比較を可能にする文献で ​​広く入手可能である外側の

プロトコル

倫理の声明:我々は我々の施設内に従う筋生検手順の説明は、現在次の。筋生検手順は、ハートフォードシャー州調査委員会番号07 / Q0204 / 68によって承認されたハートフォードシャー州サルコペニア研究で使用されています。すべての参加者は書面によるインフォームドコンセント20を与えました。
注:単一のオペレータは、不安を軽減し、彼らはすべての回で快適であることを確実にするために、会話の中で参加者を従事することができアシスタントによって助け手順を実行することができます。処置室は、シンク、高さ調節可能なソファ、清浄な表面と手順トロリーに装備する必要があります。

1.参加者を準備します(図2)

  1. ソファの上に仰向け、快適に配置するために参加者を確認して下さい。鼠径部の折り目から優先太ももを公開します。露出した太ももの下に使い捨て吸収性シートを広げます。脚は手順を通してまっすぐでリラックスしたままであることを確認しますが、太ももは、 外側広筋の概要説明するために一時的に緊張されています。
  2. マーク約2/3膝蓋骨に前腸骨棘から仮想線ダウン手順サイト。

2.スキンを準備し(図2)

  1. 無菌のシェービング刃で提案された生検部位を囲む直径約4 cmの皮膚を剃るとアルコール綿で皮膚をきれいに。
    注:これは、治癒過程中の創傷における後続の毛捕捉を防止するためです。このステップは、操作者の好みに応じて任意です。
  2. 局所麻酔薬で皮膚と上に筋膜を潜入。その後、23 G針で皮下組織に深く浸透し、2%のリドカインの皮下ブレブを上げるために25 G針を使用してください。生検部位での皮下組織含有量に応じて1インチに少なくとも半分に浸透することを目指しています。この深さは、上にFASを確実にするために十分であるべきですCIAは麻酔されています。アクションへの麻酔薬のために5分 - 2を許可します。針または手術用メスの刃の先端で軽く肌をプロービングすることによって麻酔を確認してください。

3.滅菌野を準備します(図2)

  1. 石鹸で手を洗い、滅菌ガウンを着用されるまで、清潔な手を維持します。手順トロリーに滅菌フィールドを作成する前に滅菌手袋と手をカバーしています。
  2. 2%クロルヘキシジン/イソプロピルアルコール溶液またはヨウ素ベースの皮膚の消毒剤と生検部位を滅菌します。生検部位を露出させるだけでなく、無菌領域を維持するために、接着剤開口部と滅菌ドレープを適用します。

4.手順を実行します(図2)

  1. ダウンとその上の筋膜を介して、皮膚上の10ミリメートルの切開 - サイズ11メスで、5を作ります。深さ平均の半分に1インチに、大腿骨の長軸に対して直角に切開を通してconchotomeの閉じた痛烈な先端を挿入します。必要な使用している場合conchotomeの先端は、筋肉内に開閉される一方で、生検部位の周囲の大腿部を保持し、サポートするために、フリーハンド。
  2. 筋肉をカットして180° - 90を介してconchotomeを回転させます。 conchotomeを撤回し、無菌生理食塩水によって減衰滅菌ガーゼ上に先端を開きます。必要に応じて十分な筋肉組織を得るために、単一の創傷部位内の手順を繰り返します。氷の上に置かれた容器の中にガーゼを転送します。地元の機関のプロトコルに従って筋肉を処理するための準備室にコンテナを転送します。

5.ポスト​​手順(図2)

  1. 最大5分間創傷に直接圧力を適用します。直角とは対照的にsteriストリップが誤って削除された場合、潜在的に瘢痕組織を除去し、傷を再び開く回避するために、創傷に平行に配置してsteri-ストリップで傷口を閉じます。 steriストリップに滅菌吸収性包帯を置き、二層を結びます圧縮のために包帯やテープで固定します。
  2. 4日手順の後 - 彼らは3ドレッシングの変更を実行する必要がありますよう参加者に創傷ドレッシング方法を説明します。参加者は後でその夜寝る前に圧迫包帯を削除していることを確認してください。

6.ポスト生検を見ます

  1. 穏やかな運動( 例えば 、歩行)によって緩和することができるいくつかの太ももの剛性を体験することが一般的であることを参加者に通知します。アセトアミノフェンなどの単純な鎮痛を使用してください。 2週間まで持続し得る生検部位の周りの過渡しびれだけでなく、創傷感染の潜在的な合併症についての参加者を警告します。

件名POST手順7.手順

  1. (このような登山、ランニング、重い物を持ち上げるように)72時間精力的な活動を避けるために、参加者を確認して下さい。 72時間 - 48水に浸漬を避けるために、参加者を確認して下さい。しかし、participanを指示ドレッシングの乾燥を保つためにシャワーを有するときに生検部位の周りにラップフィルムまたは類似をラップするトン。
  2. 4日と1週間後steriストリップを削除 - 3の後にドレッシングを変更するには、参加者を確認して下さい。
    注:参加者は、ポスト生検ケアのための説明書、予備のドレッシングや手順を実行を担当するチームの緊急連絡先の詳細を与えられるべきです。

結果

上記の手順は、両方の臨床と研究の設定において安全かつ許容可能です。生検が診断プロセスの一部として実行されると、筋肉が患者の症状や筋力低下の兆候に応じて選択すべきです。生検部位は、前の傷害、拘縮または計測21,1から自由でなければなりません。研究では、糖尿病患者の空腹時又は除外のような標準化された条件は、19を必要とするこ...

ディスカッション

参加者の安全を確保し、効率的に筋生検を行うためには、プロトコル内の重要なステップに注意を払うことが重要です。

参加者は慎重に、このような出血や創傷治癒不良などの合併症を避けるために除外基準を考慮した後に選択する必要があります。手順全体で厳格な無菌状態が不可欠です。正しい技術の適用は、参加者の快適性を確保参加者の組織に不要な外傷を最?...

開示事項

None declared.

謝辞

We wish to thank the study participants for making this work possible and the staff at the NIHR Southampton Biomedical Research Centre and the Wellcome Trust Clinical Research Facility, University Hospital Southampton for assistance with study measurements.

This work was supported by the NIHR Southampton Biomedical Research Centre, Nutrition, the MRC Lifecourse Epidemiology Unit and the University of Southampton. This report is independent research by the NIHR BRC Funding Scheme. The views expressed in this publication are those of the authors and not necessarily those of the NHS, the NIHR or the Department of Health. AMB is supported by a NIHR Clinical Research Fellowship, HPP is supported by the NIHR Southampton Biomedical Research Centre.

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Weil-Blakesley conchotomeGebrüder Zepf Medizintechnik, Dürbheim, GermanyNone6 mm biting tip
5 ml 2% lidocaineGeneric useNoneOne 5 ml vial should suffice for adequate anaesthesia
Alcohol swabGeneric useNone
5 ml syringeGeneric useNone
25 G and 23 G sterile needlesGeneric useNone
Sterile scalpel size 11Generic useNone
Sterile gauze squaresGeneric useNone
Sodium chloride 0.9% 10 mlFannin1122/002/001
Steri-Drape™ Small Drape with Adhesive Aperture3M1020
ChloraPrep 2% w/v /70% v/v cutaneous solution CareFusion270400Two
Steri-Strip™ 1/4 inch x 3 inch Reinforced Adhesive Skin Closures3MR1541
PRIMAPORE sterile dressing 15 cm x 8 cmSmith & 
Nephew
66000318
Cotton crepe bandage Hospicrepe 233 7,5 cm x 4,5 mHartmann915562
Flexible cohesive bandage Co-Plus LFBSN medical2904565
Disposable absorbent sheetGeneric useNone
Micropore or transpore tapeGeneric useNone
Sterile gown with sterile paper towelsGeneric useNone
Sterile glovesGeneric useNone

参考文献

  1. Dubowitz, V., Sewry, C. A., Oldfords, A. . Muscle Biopsy: A Practical Approach. , (2013).
  2. Parent, A. Duchenne De Boulogne: a pioneer in neurology and medical photography. Can J Neurol Sci. 32 (3), 369-377 (2005).
  3. Hayot, M., Michaud, A., Koechlin, C., Caron, M. A., Leblanc, P., Prefaut, C., Maltais, F. Skeletal muscle microbiopsy: a validation study of a minimally invasive technique. Eur Respir J. 25 (3), 431-440 (2005).
  4. O'Rourke, K. S., Blaivas, M., Ike, R. W. Utility of needle muscle biopsy in a university rheumatology practice. J Rheumatol. 21 (3), 413-424 (1994).
  5. O'Rourke, K. S., Ike, R. W. Muscle biopsy. Curr Opin Rheumatol. 7 (6), 462-468 (1995).
  6. Bergstrom, J. Muscle electrolytes in man. Scand J Clin Lab Invest. 14, (1962).
  7. Edwards, R., Young, A., Wiles, M. Needle biopsy of skeletal muscle in the diagnosis of myopathy and the clinical study of muscle function and repair. N Engl J Med. 302 (5), 261-271 (1980).
  8. Edwards, R. H. Percutaneous needle-biopsy of skeletal muscle in diagnosis and research. Lancet. 2 (7724), 593-595 (1971).
  9. Edwards, R. H., Round, J. M., Jones, D. A. Needle biopsy of skeletal muscle: a review of 10 years experience. Muscle Nerve. 6 (9), 676-683 (1983).
  10. Shanely, R. A., Zwetsloot, K. A., Triplett, N. T., Meaney, M. P., Farris, G. E., Nieman, D. C. Human skeletal muscle biopsy procedures using the modified Bergstrom technique. J Vis Exp. (91), e51812 (2014).
  11. Coggan, A. R. Muscle biopsy as a tool in the study of aging. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 50, 30-34 (1995).
  12. Henriksson, K. G. 'Semi-open' muscle biopsy technique. A simple outpatient procedure. Acta Neurol Scand. 59 (6), 317-323 (1979).
  13. Dorph, C., Nennesmo, I., Lundberg, I. E. Percutaneous conchotome muscle biopsy. A useful diagnostic and assessment tool. J Rheumatol. 28 (7), 1591-1599 (2001).
  14. Poulsen, M. B., Bojsen-Moller, M., Jakobsen, J., Andersen, H. Percutaneous conchotome biopsy of the deltoid and quadricep muscles in the diagnosis of neuromuscular disorders. J Clin Neuromuscul Dis. 7 (1), 36-41 (2005).
  15. Dietrichson, P., Mellgren, S. I., Skre, H. Muscle biopsy with the percutaneous conchotome technique. J Oslo City Hosp. 30 (5), 73-79 (1980).
  16. Dietrichson, P., Coakley, J., Smith, P. E., Griffiths, R. D., Helliwell, T. R., Edwards, R. H. Conchotome and needle percutaneous biopsy of skeletal muscle. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 50 (11), 1461-1467 (1987).
  17. Andonopoulos, A. P., Papadimitriou, C., Melachrinou, M., Meimaris, N., Vlahanastasi, C., Bounas, A., Georgiou, P. Asymptomatic gastrocnemius muscle biopsy: an extremely sensitive and specific test in the pathologic confirmation of sarcoidosis presenting with hilar adenopathy. Clin Exp Rheumatol. 19 (5), 569-572 (2001).
  18. Helliwell, T. R., Coakley, J., Smith, P. E., Edwards, R. H. The morphology and morphometry of the normal human tibialis anterior muscle. Neuropathol Appl Neurobiol. 13 (4), 297-307 (1987).
  19. Patel, H. P., Jameson, K. A., Syddall, H. E., Martin, H. J., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Developmental influences, muscle morphology, and sarcopenia in community-dwelling older men. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 67 (1), 82-87 (2012).
  20. Patel, H. P., Syddall, H. E., Martin, H. J., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Hertfordshire Sarcopenia Study: design and methods. BMC Geriatrics. 10 (1), 43 (2010).
  21. Anderson, J. R. Recommendations for the biopsy procedure and assessment of skeletal muscle biopsies. Virchows Arch. 431 (4), 227-233 (1997).
  22. Patel, H. P., Syddall, H. E., Martin, H. J., Cooper, C., Stewart, C., Sayer, A. A. The Feasibility and Acceptability of Muscle Biopsy in Epidemiological Studies: Findings from the Hertfordshire Sarcopenia Study (HSS). J Nutr Health Aging. 15 (1), 10-15 (2011).
  23. Charifi, N., Kadi, F., Feasson, L., Costes, F., Geyssant, A., Denis, C. Enhancement of microvessel tortuosity in the vastus lateralis muscle of old men in response to endurance training. J Physiol. 554 (Pt 2), 559-569 (2004).
  24. Frontera, W. R., Suh, D., Krivickas, L. S., Hughes, V. A., Goldstein, R., Roubenoff, R. Skeletal muscle fiber quality in older men and women. Am J Physiol Cell Physiol. 279 (3), C611-C618 (2000).
  25. He, J., Watkins, S., Kelley, D. E. Skeletal muscle lipid content and oxidative enzyme activity in relation to muscle fiber type in type 2 diabetes and obesity. Diabetes. 50 (4), 817-823 (2001).
  26. Patel, H. P., Al-Shanti, N., Davies, L. C., Barton, S. J., Grounds, M. D., Tellam, R. L., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Lean mass, muscle strength and gene expression in community dwelling older men: findings from the Hertfordshire Sarcopenia Study (HSS). Calcif Tissue Int. 95 (4), 308-316 (2014).
  27. Peterson, C. M., Johannsen, D. L., Ravussin, E. Skeletal muscle mitochondria and aging: a review. J Aging Res. 2012, 194821 (2012).

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