Method Article
EM のネガティブ染色は高分子構造を可視化するための強力な技術が、さまざまな染色技術サンプル依存方法でさまざまな結果が生じます。ここでいくつかの否定的な染色方法、挑戦的なシステムの可視化に取り組むため初期ワークフローを提供するために詳しく説明します。
ネガティブ染色電子顕微鏡検査 (EM) は、高分子及び高分子錯体の染色試薬を高めるコントラストを使用して比較的簡単かつ迅速な観察を可能します。18 〜 20 の最大解像度で限られている Å、ネガティブ染色 EM は、さまざまな生物学的問題に役立ち、クライオ電子顕微鏡法 (Cryoem) のサンプルを評価するための迅速な手段ともなります。ネガティブ染色ワークフローは直接的な方法;サンプルは、基板上に吸着し、汚れを適用、ブロット、乾燥粒子が埋め込まれた電子密度の高い染色の薄い層を生成します。個々 のサンプルはできます、しかし、変化する染色条件下で著しく異なる方法で動作します。これは多種多様な基板前処理技術、染色試薬、洗浄及びブロッディング ・ テクニック グリッド負の開発につながっています。それぞれの個々 のサンプルの最も適切な手法を決定するは、ケースバイ ケースに基づいて行う必要があります、顕微鏡使用の最高品質否定的な汚れの結果を達成するためにさまざまな技術のさまざまなアクセス必要があります。2 つ別下地調整方法の異なる 3 つのしみが付く技術詳細なプロトコルが提供され、使用方法によって著しく異なる結果を示すサンプルの例です。さらに、それぞれの使用に関する議論といくつかの共通の否定的な染色試薬と 2 つの新規ランタニド ベースの汚れの準備を説明します。
解像度に最近注意にもかかわらず強力な手法と電子とツールボックスの重要なコンポーネントに EM ままに染色クライオ電子顕微鏡1 (Cryoem)、負の著しい進歩がもたらす革命。クライオ グリッド条件2を最適化する前に、サンプルの迅速な評価に最適な方法はまだ否定的な汚損します。高コントラストと負のステンド グラス サンプル調製されたグリッドの速度はそれにサンプル純度、濃度、コンフォーメーション柔軟性3の不均一性を評価するための理想。多くの有益な生物学的構造に起因したテクニックの解像度 〜 18 Å 分解能4,5,6に限定されているにもかかわらず、否定的な汚れの再建といくつかのサンプルは、良い結果をもたらすさまざまな理由から7の Cryoem より染色で
EM のネガティブ染色に興味の粒子は EM グリッドの表面に吸着、電子密度の高い染色化合物の非晶質マトリックスに包まれています。背景とされて周囲の汚れ8よりも少ないの電子密な粒子、興味の粒子の相対的なハイコントラストが生成されます。粒子より多くの電子を散乱し、暗く密な周囲の汚れを基準にして低電子散乱力のため明るい領域として表示されます。粒子の微視的組織の機能は、汚れは任意の隙間に浸透し、不規則なコントラスト詳細9を生成結果画像の詳細な検討から推測することができます。
否定的な汚損プロセス サンプル粒子をキャプチャがサポート基板の作製とサポートされている乾燥汚れの層から始まります。最も一般的に使用される支持基板は、時々 ポリ (例えばホルムバール) または硝酸セルロース (例えばコロジオン) ポリマーの薄い層によって支持された、非晶質炭素の層です。これらの基板は、市販または社内以下のプロトコルを使用して準備できます。
支持基板を準備した後サンプルを適用することができますと余分なソリューションを消されました。サンプルは、ネガティブ染色法の適切なバッファーで中断する必要があります。リン酸バッファーおよび供試体を隠すことが結晶の析出物を生じさせることができる高い塩の集中の使用を回避することをお勧めします。還元剤や洗剤、スクロース、グリセリン、ヌクレオチドの高濃度も避けなければならない汚れ品質4にも影響を与える。水と EM グリッドの表面を洗浄バッファー組成を変更ことはできませんまたは吸着後と前の染色により適切なバッファーを削減可能性がありますバッファーの形成関連する成果物と一般に染色背景を改善します。場合はバッファーのアーティファクトが疑われ、染色バッファー成分観測成果物のソースであるかを決定するためのバッファー専用グリッドを形成できます。
サンプルは、吸着し消され、必要ならば洗浄、染色試薬が適用されます。効果的な否定的な汚れ (表 1) であること様々 な試薬が発見されているが、サンプルに合わせて汚れを選択する必要があります。「ハロー」汚れ形態の粒子の周辺汚れ分子変位による疎水性領域でタンパク質として反発のグループの追加料金。したがって、染色は、蛋白質の潜在的な請求グループのプロトン化状態が同じ作業 ph 染色するように選ばれなければなりません。反対の蛋白質の表面の電荷は肯定的な染色に貢献できる効果は、独自の右の10の有用なテクニックで本稿の範囲ではありませんが。最も一般的に使用される否定的な染色試薬は、酢酸ウランとウラニル ギ酸です。これらの汚れがある比較的微細結晶粒 (4-5 Å)9リン酸化タングステン (8-9 Å 粒)9,11、アンモニウム モリブデン酸11、いくつかなどの他の汚れをより高い解像度の画像を提供してランタン ベース12 をを汚れ。ミリ秒時間スケール13日に多くのタンパク質間相互作用を維持する染色とその傾向に生理的 pH で沈殿するの pH が低い可能性がありますいくつかのサンプル14 にとって有害であるが、定着剤として酢酸ウランとギ酸も行為します。.そのユーティリティにもかかわらずウラニル塩も課題が物流として彼らは有毒と軽度放射性必要になる特別な取扱い、保管、および処分の要件は、非放射性の選択肢を求めるいくつかのユーザーをリードします。
多種多様な基板作製、サンプル アプリケーションの説明し、EM グリッドの染色方法があります。使用する最も適切な方法は、サンプル依存で新しいシステムに取り組む場合に確認することは困難。この原稿は、基板の準備の 2 つの方法と 3 つのしみが付く方法について説明します。側にしみが付くこと、打つ5、および急速な15のフラッシュします。側しみが付くことは、説明する方法の最も簡単です。打つ方法と急速なフラッシュ メソッドは実装しますが、固定する前にフィルムをサンプルの接触時間を制限し、いくつかのサンプル5の染色アイテムの形成を改善するために示されているより難しい。本稿の目的は、否定的な汚れの EM による挑戦的なシステムの可視化に取り組むため初期ワークフローを提供します。
1. EM グリッドの準備
2. 否定的な汚損試薬の調製
3. 吸着炭素サンプル基板と染色
最大コントラストとシャープな最も詳細な粒子でサンプルを産するフロリダ大学をある程度否定的な汚損はすべてテスト染色試薬の製造。深く埋め込まれたサンプル (図 1) によるランタノイド汚れは選句と TmAc 生産 UA 知覚対比とステンド グラスの粒子の鋭さによって判断されるように同等の品質の否定的な汚損、TmAc 生産明確より鮮明な画像選句よりします。17はまだの子午面層ラインと目がはっきりと見える TmAc の大きな粒が高倍率で明らかになるタバコ モザイク ウイルス (TMV) 粒子は、TmAc 〜 23 Å 繰り返す TMV 粒子の 1% で染色したときが、Raw 画像のフーリエ変換。他ランタノイドの汚れのテスト、選句、SmAc、または GdAc、どれもはこの機能を解決することができた。クラス平均は、ヘリカルの繰り返しが見えて TMV 粒子から重複する線分を抽出して生成しました。抽出されたセグメントは、一直線に並んだし、カラードプラ18を使用して定期的な機能 (図 2) を見やすく分類します。
いくつかのサンプルは、筋肉派生 C 蛋白など染色法に特に敏感です。Ig と Fn のようなドメインのある柔軟な文字列で構成され、C-蛋白質は負染色 EM 染色に使用される (図 3) のメソッドに依存して大幅に異なる画像を生成します。崩壊側しみが付くメソッドを使用して文字列にビーズのようなドメインのシリーズとして C 蛋白を認めに急速なフラッシュまたはメソッドにフリックによって汚されたとき、リングのような構造が観察されます。
試薬 | 濃度 | pH | タイプ |
モリブデン酸アンモニウム | 1-2% | 5-7 | アニオン性 |
エルビウム酢酸 (ErAc) | 1-2% | 6 | カチオン性 |
酢酸ガドリニウム (GdAc) | 1-2% | 6 | カチオン性 |
メチルアミン タングステン酸 | 2% | 6-7 | アニオン性 |
酢酸サマリウム (農水省) | 1% | 6 | カチオン性 |
ナトリウム silicotungstate | 1-5% | 5-8 | アニオン性 |
りんタングステン酸ナトリウム | 1-3% | 5-8 | アニオン性 |
ツリウム酢酸 (TmAc) | 1-2% | 6 | カチオン性 |
酢酸ウラニル (UA) | 1-3% | 3-4 | カチオン性 |
ギ酸ウラニル (UF) | 0.75-1% | 3-4 | カチオン性 |
表 1: 一般的な負染色試薬です。
図 1: タバコ モザイク ウイルスの例顕微鏡様々 なネガティブ染色試薬で染色(A) 1 %uf (B) 2.5 %tmac (C) 2.5% 選句。(D) 1 %ua (E) 2.5% (F)と GdAc 2.5 %smac。スケール バーは、100 nm。あたりをイメージの複数の領域と複数の複製から代表的なイメージ。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 2: ツリウム アセテート染色タバコ モザイク ウイルス(A) TMV の顕微鏡写真からの高倍率に染まった 1 %tmac。スケール バーは 20 nm。(B)は、抽出された TMV セグメントの平均をクラスします。(C) 〜 23 でパネルを示す層線反射で画像のフーリエ Åこの図の拡大版を表示するにはここをクリックしてください。 。
図 3: C 蛋白質のコンフォメーションにメソッドにしみが付く効果。(A) C 蛋白染色 UA 側のしみ方法と(B)打つ法を用いたします。上側のパネルをスケール バーは 50 nm、下部パネル スケール バーは 20 nm。あたりをイメージの複数の領域と複数の複製から代表的なイメージ。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
本稿では、染色試薬、2 つの新規ランタニド試薬 (TmAc と ErAc) を含むさまざまな電子顕微鏡観察用試料の否定的な汚損のための複数の方法について説明します。否定的な汚損プロセスの手順の多くは、汚れ、量の場合は、必要な洗浄としみが付く技術の選択を含む個々 のサンプルの最適化されなければなりません。この原稿は、したがってと挑戦的なシステムの否定的な汚損に対処するため、独自のワークフローを開発するための基礎を提供します。
染色の選択は、高い依存のサンプルです。特に低 pH に敏感なサンプルは、これらの汚れ19の定着性の性質にもかかわらず UA および/または UF、低下可能性があります。これらのケースでは、ランタノイドは、TmAc や選句をより適切かもしれないが、準備の全体の pH は肯定的な染色を防ぐためにサンプルの蛋白質の等電点以下にしなければなりませんように汚れをベースしました。これは、必要に応じて酢酸で汚れを酸性化によって実現できます。特に低 pH 敏感なサンプル、アニオン性のタングステンやモリブデン酸の汚れがより効果的な場合があります。ただし、これらの汚れは、いくつかのケースで成果物の形成を誘導するために発見されている、ようリポタンパク質の連銭形成は20をサンプリングします。もう一度、汚れの pH は、肯定的な汚損を防ぐために、サンプルの等電ポイントの上にこの時間を調整する必要があります。
汚れる前にサンプルの洗浄に高い塩やリン酸部分がバッファーが標本は維持される場合は必要があります。多くの場合、超純水で洗浄を実行できるが低下または単独で水に露出されたとき、構造変化より敏感なサンプル洗浄低イオン強度8の揮発性バッファーを使用して実行する必要があります。慎重に制御条件下でも洗濯は炭素表面21のいくつかの構造の転位で起因できます。
グリッドはしみが付くことおよび染色サンプル吸着面で準備する方法にも大きく影響が観察されるものです。最も適切な方法は、したがって、再度、高いサンプル依存。C-蛋白質などが次側しみ染色、球状リングのような構造として観察されるが、明らかに打つメソッド (または急速なフラッシュ メソッドによって)、グリッドが準備されるとき、これは染色プロセスの成果物に表示されます (図 3).素早く動かすと急速なフラッシュ メソッドで、サンプルが、炭素との対話時間固定の前に、の支持面は、最小15です。サンプルはまた固定前にしみが付くことによって後退メニスカスからより少ない力を経験します。これは長時間吸収時にカーボン フィルムまたは毛管作用によって発生する供試体の構造変化が最小化されたことを意味します。急速なフラッシュ法は試料の時間分解解析の使用もできます。サンプルはリガンドまたは一連のピペット チップ内の添加剤と混合することができます固定のミリ秒以内前に、グリッド表面にアプリケーションをグリッドまたは一瞬前に、の時間の期間。
特定の試験片の最適な画像は再度サンプル依存2を提供するために必要な染色の深さ。電子ビームによる汚れがあまりにも浅い場合、分子を損なうことができるが、汚れがあまりにも厚い構造の機能が失われる場合します。汚れの深さは ta グリッド、汚れはしみ、しみが付くことの程度と時間前にグリッドとの接触時間の長さに適用される汚れの量、カーボン層の均一性グリッドの表面の親水性など複数の要因によって影響を受けるkes グリッドを完全に乾燥。グリッドは、その全体にわたって染色の均一な配分を必要がない、したがってイメージングに適したグリッドの領域を慎重に選択する必要があります。確かに、グリッドは、しばしば同じ条件下で同じ日に準備も品質が異なります。バージェスによるイメージングを提供するために染色の深さの変化が分子と適切な染色深さの外観に影響の良い例ら5 。
にもかかわらず否定的な汚損されて非常に汎用性の高い、迅速、かつ簡単な方法、すべての生物学的標本はこのメソッドの可視化に適しています。壊れやすいアセンブリは崩壊したり、汚れるか、または EM グリッド22乾燥を吸着、分解します。否定的な汚損を行うと、分子の平坦化につながる、そのカーボン サポート フィルム7分子の配向を誘発することができますも。
否定的な汚れは低温電子顕微鏡解析の前にも独自の権利で標本の評価のための貴重なツールが、サンプルは、プロセス中に発生した物理的な力の多くは不完全に理解されます。したがって、使用する最善の方法高依存のサンプルは、固定のプロトコルに従って教えではなく、試行錯誤で決定する必要があります。
著者は競合する金銭的な利益を宣言しません。
有用な議論と原稿の批判的検討のためのピーターの騎士に非常に感謝しております。ニール ・ ランソン、スティーブン Muench のラボと役に立つ議論のためアストベリー Biostructure 研究室のスタッフのメンバーのすべてに感謝したいと思います。この仕事欧州研究評議会 (FP7/2007-2013) によって資金が供給された ERC 許諾契約 322408/。C 蛋白は、英国心臓財団助成 (BHF PG/13/83/30485) によって提供されるリソースを使用して製作されました。また、リーズ (090932/Z/09/Z と 094232/Z/10/Z) の電子顕微鏡観察をサポートするための資金調達用 Wellcome の信頼を感謝いたします。CS は Wellcome の信頼 ISSF 助成金によって資金を供給します。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
200 mesh copper EM grids | Sigma-Aldrich | G4776-1VL | Other materials and/or mesh sizes can also be used |
Ammonium Molybdate | Sigma-Aldrich | 277908 | |
Carbon evaporator | Ted Pella Inc. | 9620 | Cressington 208 or equivalent |
Collodion solution 2% in amyl acetate | Sigma-Aldrich | 9817 | |
Dumont #5 negative pressure tweezers | World Precision Instruments | 501202 | Or other tweezers as preferred |
Erbium Acetate | Sigma-Aldrich | 325570 | |
Gadolinium Acetate | Sigma-Aldrich | 325678 | |
Mica Sheets. 75x25x0.15mm. | AGAR Scientific | AGG250-1 | |
Microscope slides, white frosted | Fisher Scientific | 12607976 | Or equivalent |
Parafilm | Fisher Scientific | 10018130 | Or equivalent |
Pasteur pipette (glass) | Fisher Scientific | 10343663 | Or equivalent |
Razor blade | Fisher Scientific | 11904325 | Or equivalent |
Sandpaper | Hardware store | Wet and dry sandpaper with grit finer that 200 (600 suggested) | |
Samarium Acetate | Sigma-Aldrich | 325872 | |
Sodium Hydroxide | Sigma-Aldrich | 1.06462 | |
Sodium Phosphotungstate | Sigma-Aldrich | P6395 | |
Stainless Steel Mesh, 150x150 mm (cut to size). | AGAR Scientific | AGG252 | |
Thulium Acetate | Sigma-Aldrich | 367702 | |
Two Step Carbon Rod Sharper, for 1/4" rods | Ted Pella Inc. | 57-10 | Or equivalent for carbon evaporator used |
Ultra pure water | |||
Uranyl Acetate | Electron Microscopy Sciences | 22400 | |
Uranyl Formate | Electron Microscopy Sciences | 22450 | |
Vacuum grease | Fisher Scientific | 12719406 | Or equivalent |
Whatman #1 Filter paper. | Fisher Scientific | 1001 090 | Or equivalent |
Whatman #40 filter paper | Fisher Scientific | 10674122 | Or equivalent |
An erratum was issued for: Variations on Negative Stain Electron Microscopy Methods: Tools for Tackling Challenging Systems. An author name was updated.
One of the authors' names was corrected from:
Matthew G. Iadaza
to:
Matthew G. Iadanza
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