Method Article
Отрицательный пятно EM – это мощный метод для визуализации макромолекулярной структуры, но различные методы окраски может производить различные результаты образца зависимым образом. Здесь несколько негативных подходов окрашивание подробно описаны в предоставить первоначальный рабочий процесс для решения визуализации сложных систем.
Отрицательный пятно электронной микроскопии (EM) позволяет относительно простой и быстрый наблюдения макромолекул и макромолекулярных комплексов с помощью контраста, повышение пятно реагента. Хотя в резолюции максимум ~ 18-20 Å, отрицательные пятно EM является полезным для целого ряда биологических проблем и также обеспечивает быстрое средством оценки образцов для крио электронной микроскопии (крио EM). Отрицательный пятно рабочий процесс является простым способом; Образец адсорбированные на подложке, а затем применяется, смыл и сушеные производить тонкий слой электронно плотной пятно, в котором частицы внедряются пятно. Отдельные образцы могут однако, ведут себя заметно различными способами в различных условиях окрашивание. Это привело к развитию большое разнообразие методов подготовки субстрата, отрицательные окрашивание реагентов и сетка стиральная и blotting методы. Определение наиболее подходящего метода для каждого индивидуального образца должно быть сделано на основе case-by-case и микроскописта должны иметь доступ к целому ряду различных методов для достижения высочайшего качества негативные пятно результатов. Предоставляются подробные протоколы для двух методов подготовки различных субстрата и три различных blotting методы, и приведен пример пример, который показывает заметно разные результаты в зависимости от используемого метода. Кроме того подготовка некоторых общих негативных окрашивание реагентов и два Роман на основе лантаноиды пятна, описан с обсуждения относительно использования каждого из них.
Несмотря на недавние внимание к резолюции революция, в результате значительных достижений в крио электронная микроскопия1 (крио ЭМ), отрицательные пятно EM остается мощной техникой и важнейшим компонентом электрон microscopists элементов. Отрицательный окрашивание по-прежнему лучший метод для быстрой оценки до оптимизации условий крио сетка2образца. Высокая контрастность и скорость подготовки сетки негативное витражные образцов делает его идеальным для оценки чистоты образца, концентрации, неоднородность и конформационные гибкость3. Многие биологически информационные структуры привели от негативных пятно реконструкций, несмотря на резолюции технику, ограничиваясь ~ 18 Е резолюции4,5,6, и некоторые образцы дают лучшие результаты в пятно чем крио EM для целого ряда причин7.
В отрицательных пятно EM частица интерес адсорбироваться на поверхности сетки EM и окутан аморфного матрицы электронно плотной пятно составные. Высокий относительный контраст производится между фоном и частица интерес, с частицы в меньше электрона плотной, чем окружающие пятно8. Частицы отображаются в виде светлых областях из-за их низкой электрона рассеяния мощности относительно плотной окружающие пятно, которое рассеивает больше электронов и появляется темнее. Substructural особенности частиц можно дедуцировать от подробного рассмотрения результирующего изображения, как пятно будет проникать в любую щель и производить нерегулярных контрастность деталей9.
Отрицательный окрашивание процесс начинается с подготовки поддержки субстрата, на котором образец частицы захватываются и слой сухих пятен поддерживается. Наиболее часто используемые поддержки субстрата представляет собой слой аморфного углерода, иногда поддерживается тонким слоем поливинилхлорида (например Formvar) или нитроцеллюлозы (например коллодий) полимер. Эти субстраты можно приобрести коммерчески или собственными силами с использованием протоколов, описанные ниже.
После подготовки субстрата поддержки, образец может быть применен, и избыток раствора смыты покинуть. Образцы должны быть приостановлены в подходит буфер для отрицательных окрашивание. Лучше всего избежать использования фосфатного буфера и высокая концентрация соли, что может породить кристаллического осадка, которые могут скрывать образца. Восстановителями, моющие средства, сахароза, глицерин и высокие концентрации нуклеотидов также следует избегать как они также влияют на качество пятно4. Когда нельзя изменять состав буфера, мытье поверхности ет сетки с водой или более подходящих буфера после адсорбции и до окрашивания может уменьшить образование буфера артефактов, связанных с и в целом улучшить пятен фоновый. Если буфер артефакты подозреваются, это может быть информативным, чтобы пятно буфера только сетки, чтобы определить если буфер компоненты являются источником наблюдаемого артефактов.
После того, как образец адсорбированные и смыл и промыть в случае необходимости, применяется окрашивание реактива. Различные реагенты были найдены быть эффективной негативные пятна (Таблица 1), но пятно должно выбираться с учетом образца. «Halo» пятно форм вокруг частицы из-за перемещение молекул пятно гидрофобные регионов белка и отталкивания, взимается групп. Таким образом пятно должно выбираться таким образом, что протонирование состояние любых потенциальных заряженных групп на белок является таким же, как пятно на рабочей рН. Напротив обвинения на поверхности белка может способствовать положительный пятнать эффект, который, хотя полезной техникой в свой правый10 находится не в рамках настоящего документа. Наиболее часто используемые негативные окрашивание реагенты являются уранила ацетат и уранила формате. Эти пятна имеют размер относительно мелкое зерно (4-5 Å)9 и обеспечивают изображения более высокого разрешения через другие пятна фосфо вольфрамат (8-9 Å размер зерна)9,11, аммония молибдата11и некоторые на основе лантаноиды пятна12. Уранила ацетат и формате также выступать в качестве фиксатором, сохраняя много белок белковых взаимодействий на миллисекунду времени шкала13, хотя низкий рН пятно и ее склонность к осадок при физиологическом рН может быть пагубным для некоторых образцов14 . Несмотря на их полезность уранила соли также представляют материально-технические проблемы, поскольку они являются токсичными и мягко радиоактивный, которые могут потребовать специальной обработки, хранения, и распоряжении требования, которые приводит некоторые пользователи искать нерадиоактивные альтернатив.
Существует большое разнообразие методов описано для подготовки субстрата, образец приложения и окрашивание ет сетки. Наиболее подходящий метод, чтобы использовать пример зависимых и может быть трудно определить при решении новой системы. Эта рукопись описываются два метода подготовки субстрата и три blotting методы; стороне промокательной, flicking5и быстрой промывки15. Сторона промокательной является самым простым из описанных методов. Более сложным для реализации, но ограничить время контакта образца с фильма поддержки до фиксации и было показано, улучшить образование пятен артефактов для некоторых образцов5flicking метод и метод быстрого списания. Цель этой рукописи состоит таким образом обеспечить первоначальный рабочий процесс для решения визуализации сложных систем, отрицательные пятно EM.
1. Подготовка EM сетки
2. Подготовка негативных пятнать реагентов
3. поглощения образцов углеродных субстрата и окрашивания
Все окрашивание реагентов испытания производится негативные пятнать в некоторой степени, с оф, уступая образцов с наибольшей контрастностью и острым, самые подробные частиц. Для глубоко укоренились образцы (рис. 1) лантаноиды основе пятна ErAc и TmAc произведены отрицательные пятнать эквивалентного качества UA как судить по очевидным контраст и резкость окрашенных частиц с TmAc производит более четкие, более четкие изображения чем консоли ERA. Хотя размер зерна TmAc становится очевидным при большом увеличении, когда вирус мозаики табака (ПДЦ) частицы были окрашенных с 1% TmAc ~ 23 Å повторить частиц ВТМ17 по-прежнему ясно видимы глазом и как линия меридиональных слоя в Фурье преобразование raw изображений. Ни один из других лантаноиды пятна испытания, ErAc, SmAc или ГДАК, смогли решить эту функцию. Класс средние показатели были получены путем извлечения перекрывающихся сегментов от частиц ВТМ, где винтовой повторить было видно. Извлечения сегментов затем были согласованы и классифицированы с использованием RELION18 лучше визуализировать периодических функций (рис. 2).
Некоторые образцы особенно чувствительны к метод окрашивания, такие как мышцы производные C-белок. C-белка, который состоит из гибкого строки Ig и Fn как домены, производит значительно различные изображения, отрицательные пятно EM зависит от метода используется окрашивание (рис. 3). Когда с помощью метода промокательной сторона рухнула наблюдаются кольцо как структуры, тогда как когда запятнана быстрой промывки или стряхивая методы, C-белок наблюдается как набор доменов, которые напоминают бусы на строку.
Реагент | Концентрация | pH | Тип |
Аммоний молибденовокислый | 1 - 2% | 5 – 7 | Анионные |
Эрбий ацетат (ErAc) | 1 – 2% | 6 | Катионные |
Гадолиний ацетат (ГДАК) | 1 – 2% | 6 | Катионные |
Вольфрамат метиламин | 2% | 6 – 7 | Анионные |
Самарий ацетат (SmAC) | 1% | 6 | Катионные |
Натрия silicotungstate | 1 – 5% | 5 – 8 | Анионные |
Натрия phosphotungstate | 1 -3% | 5 – 8 | Анионные |
Тулия ацетат (ТЦПМД) | 1 – 2% | 6 | Катионные |
Уранила ацетат (UA) | 1 – 3% | 3 – 4 | Катионные |
Уранила формате (UF) | 0,75-1% | 3 – 4 | Катионные |
Таблица 1: Некоторые общие негативные окрашивание реагентов.
Рисунок 1: пример микроскопии вирус табачной мозаики витражи с различных негативных пятно реагентов (A) 1% UF (B) 2,5% TmAc (C) 2,5% консоли ERA. (D) 1% UA (E) 2,5% ГДАК и (F) 2,5% Смак. Масштаб гистограммы являются 100 Нм. Представитель изображения из нескольких реплицирует с несколькими областями, отображаемого на репликацию. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: пятнать вирус табачной мозаики с тулия ацетат (A) высокое увеличение площади от Микрофотография TMV витражи с 1% TmAc. Линейки-20 Нм. (B) класса среднем извлеченные TMV сегментов. (C) Фурье преобразование изображения в панели A показаны слой линия размышления ~ 23 Å. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: последствия blotting метод на конформацию C-белка. (A) C-белка витражи с UA, с помощью метода помаркой на стороне и (B) flicking метод. Верхней панели шкалы составляет 50 Нм, нижней шкалы панели составляет 20 Нм. Представитель изображения из нескольких реплицирует с несколькими областями, отображаемого на репликацию. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Эта рукопись описывает несколько методов для отрицательных окрашивания образцов для электронной микроскопии с помощью различных пятнать реагентов, включая два романа лантаноиды реагентов (ТЦПМД и консоли ERA). Многие из шагов, негативные окрашивание процесса должны быть оптимизированы для отдельных образцов, включая выбор пятно, мытье требуется, если таковые имеются, и blotting метод. Эта рукопись, таким образом, обеспечивает основу для microscopists развивать свои собственные рабочие процессы для решения отрицательной окрашивание сложных систем.
Выбор пятно является весьма образец зависимых. Образцы, которые особенно чувствительны к низким рН может снизиться UA и/или UF, несмотря на фиксирующие свойства этих пятен19. В этих случаях лантаноиды основана пятен, таких как TmAc или ErAc может быть более подходящим, хотя общая pH подготовки должны храниться ниже изоэлектрической точки образца белка, чтобы помочь предотвратить положительный пятнать. Для этого подкисляющих пятно с уксусной кислоты при необходимости. Особенно низкий рН чувствительных образцы анионные вольфрамат или Молибдат пятна может быть более эффективным. Хотя эти пятна были найдены для стимулирования формирования артефактов в некоторых случаях, таких как формирование стружки в липопротеинов образцов20. Опять же pH пятно может потребоваться скорректировать этот раз выше изоэлектрической точки образца, чтобы предотвратить положительный пятнать.
Стиральная образца до окраски может быть необходимо, если буфер, в котором поддерживается образца имеет высокий компонент соли или фосфата. Во многих случаях Стиральная может быть выполнена с ультрачистая вода, но для более чувствительных проб, которые могут ухудшить или претерпевают структурные изменения при контакте с водой в одиночку, Стиральная может потребоваться выполнить с буфером летучих низкой ионной силы8. Даже в тщательно контролируемых условиях Стиральная может привести некоторые структурной перестройки на поверхности углеродных21.
Метод, по которому сетка готовится с точки зрения образца адсорбции, blotting и пятнать может также существенно повлиять на то, что наблюдается. Наиболее подходящим методом является таким образом, опять же, весьма образец зависимых. C-белка, например, наблюдается как шаровидных кольцо как структура после окрашивания стороне блот, но это, кажется, быть артефактом процесса окрашивания, как показали, когда сетки готовятся методом flicking (или метод быстрого списания) (рис. 3 ). Flicking и быстрых методов списания время образца должна взаимодействовать с углеродом опорной поверхности до фиксации в свернутом15. Образец также испытывает меньше сил с отступающей мениска на промокательной до фиксации. Это означает, что структурные изменения в образец, которые могут произойти после продолжительной абсорбции время на углеродной пленки или через капиллярность минимизированы. Метод быстрого списания может также использоваться для раз решить анализа образцов. Образец можно смешивать с лигандом или добавка в наконечник пипетки для набора период времени перед применением к сетке или только однократно на поверхности сетки до фиксации в течение миллисекунд.
Глубина пятно, необходимых для обеспечения оптимального изображения определенного образца снова образца зависит от2. Если пятно слишком мелкой, молекулы могут быть повреждены электронного луча, но если слишком густой пятно структурные особенности могут быть потеряны. Пятно глубина зависит от нескольких факторов, таких как гидрофильность поверхности сетки, равномерность слоя углерода, количество пятен, применяется к сетке, продолжительность времени, что пятно находится в контакте с сетки до промокательной, степень промокательной и время это та KES на сетку, чтобы полностью сухой. Сетка будет никогда не имеют равномерное распределение пятна во всей его полноте и поэтому области сетки для изображений должны быть выбраны тщательно. Действительно сетки часто различаются по качеству даже когда подготовлен в тот же день в тех же условиях. Хороший пример того, как изменения в глубине пятно влияет на внешний вид молекул и глубина соответствующие пятно для изображений обеспечивается Берджесс et al5.
Несмотря на негативные окрашивание очень разносторонний, быстрый и простой метод, не все биологические образцы поддаются визуализации этим методом. Хрупкие сборки можно свернуть или разбирать при адсорбции, пятнать или сушки на ет сетки22. Отрицательный окрашивания также может привести к сплющивать молекул и побудить предпочтительным ориентаций молекул углерода поддержки фильм7.
Отрицательный пятно является ценным инструментом для оценки образцов в своем собственном праве, а также перед крио EM анализ, но многие из физических сил, которыми образца сталкивается в процессе плохо понимают. Таким образом наилучший подход является весьма образец зависимых и должен быть определен путем проб и ошибок, а не учил после фиксированного протокол.
Авторы заявляют не конкурирующих финансовых интересов.
Мы чрезвычайно признательны рыцаря Петра за полезные обсуждения и критический обзор рукописи. Мы хотели бы поблагодарить всех членов Нил Ranson и Стивен Мюнх labs и сотрудники Astbury Biostructure лаборатории для полезной дискуссии. Эта работа финансировалась Европейским Советом исследований (FP7/2007-2013) / ERC грантовое соглашение 322408. C-белка был подготовлен с использованием ресурсов, предоставляемых на Британский фонд сердца Грант (BHF PG/13/83/30485). Мы также благодарим Уэллком траст для оборудования, финансирование для поддержки электронной микроскопии в Лидсе (090932/Z/09/Z и 094232/Z/10/Z). CS финансируется Уэллком доверять ИССФ Грант.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
200 mesh copper EM grids | Sigma-Aldrich | G4776-1VL | Other materials and/or mesh sizes can also be used |
Ammonium Molybdate | Sigma-Aldrich | 277908 | |
Carbon evaporator | Ted Pella Inc. | 9620 | Cressington 208 or equivalent |
Collodion solution 2% in amyl acetate | Sigma-Aldrich | 9817 | |
Dumont #5 negative pressure tweezers | World Precision Instruments | 501202 | Or other tweezers as preferred |
Erbium Acetate | Sigma-Aldrich | 325570 | |
Gadolinium Acetate | Sigma-Aldrich | 325678 | |
Mica Sheets. 75x25x0.15mm. | AGAR Scientific | AGG250-1 | |
Microscope slides, white frosted | Fisher Scientific | 12607976 | Or equivalent |
Parafilm | Fisher Scientific | 10018130 | Or equivalent |
Pasteur pipette (glass) | Fisher Scientific | 10343663 | Or equivalent |
Razor blade | Fisher Scientific | 11904325 | Or equivalent |
Sandpaper | Hardware store | Wet and dry sandpaper with grit finer that 200 (600 suggested) | |
Samarium Acetate | Sigma-Aldrich | 325872 | |
Sodium Hydroxide | Sigma-Aldrich | 1.06462 | |
Sodium Phosphotungstate | Sigma-Aldrich | P6395 | |
Stainless Steel Mesh, 150x150 mm (cut to size). | AGAR Scientific | AGG252 | |
Thulium Acetate | Sigma-Aldrich | 367702 | |
Two Step Carbon Rod Sharper, for 1/4" rods | Ted Pella Inc. | 57-10 | Or equivalent for carbon evaporator used |
Ultra pure water | |||
Uranyl Acetate | Electron Microscopy Sciences | 22400 | |
Uranyl Formate | Electron Microscopy Sciences | 22450 | |
Vacuum grease | Fisher Scientific | 12719406 | Or equivalent |
Whatman #1 Filter paper. | Fisher Scientific | 1001 090 | Or equivalent |
Whatman #40 filter paper | Fisher Scientific | 10674122 | Or equivalent |
An erratum was issued for: Variations on Negative Stain Electron Microscopy Methods: Tools for Tackling Challenging Systems. An author name was updated.
One of the authors' names was corrected from:
Matthew G. Iadaza
to:
Matthew G. Iadanza
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены