哺乳類 2 ハイブリッド法によるエストロゲン受容体 α リガンド結合ドメインの二量体化活性の検出

要約

4-ヒドロキシ タモキシフェン-依存性エストロゲン受容体 α リガンド結合ドメイン二量体化アクティビティ哺乳類の 2 つのハイブリッド試金を使用しての解析法を提案します。

要約

エストロゲンの受容器のアルファ (ERα) は、エストロゲンのリガンド依存性転写レギュレータです。ERα タンパク質のシーケンスは、種間保存性が高い。それは人間の機能およびマウス ERαs が同じであると考えられています。マウスと人間の ERα リガンド結合ドメイン (LBD) 二量体化活動哺乳類 2 ハイブリッド (M2H) アッセイを用いた差動 4-ヒドロキシ-タモキシフェン (4OHT) の効果を実証します。M2H アッセイは 2 つ蛋白質発現プラスミド (GAL4 DNA 結合ドメイン [DBD] 融合 LBD と VP16 転写活性化ドメイン [VP16AD] フュージョン LBD) のトランスフェクションを利用した哺乳類セルの LBD ダイマー化活動の効率性を示すことができるとGAL4 応答性エレメント (GAL4RE) は、ルシフェラーゼ レポーター プラスミドを融合しました。GAL4DBD 融合 LBD と LBD VP16AD 融合細胞の二量体を作る、この蛋白質の複合体は、GAL4RE に結合し、その後、VP16AD 依存性転写活動を通じてルシフェラーゼ遺伝子の発現を活性化します。4OHT を介したルシフェラーゼ活性は、マウス ERα LBD 融合タンパク質発現プラスミドよりひと ERα LBD 融合タンパク質発現 transfected プラスミッド細胞を導入させた HepG2 細胞で高い。4OHT 依存マウス ERα LBD ダイマー化活動の有効性は人間の ERα LBD よりも高いと考えられる。一般に、M2H アッセイの使用率は核内受容体 LBD 二量体化活動の評価にとって理想的 LBD 活動の基底のレベルを高め、LBD 二量体化活性の検出を妨げ敵対配位子。その 4OHT に ERα LBD 基底活性強化ないとわかりました。決定および M2H アッセイを正しく使用するための 4OHT 依存 LBD 二量体化活動を検出することの重要な要因であります。ERα LBD M2H アッセイは、様々 な哺乳類の細胞選択的エストロゲン受容体モジュレーター (例えば4OHT) の部分アゴニスト活性を研究する適用できます。

概要

エストロゲンの受容器のアルファ (ERα) は、エストロゲンのリガンド依存性転写レギュレータです。アミノ酸順序 ERα 種間保存性が高い。人間で高い相同性のため ERα をマウス、これらの受容体の機能は、同じものとして考えられてし、の種の違いによって引き起こされるそれらの種のエストロゲン様物質 (例えばタモキシフェン) 差分の活動化学代謝 ERα の構造的な違いではなく。ERα は高度 A を F ドメインに指定 (NR) 核内受容体スーパーファミリーの間で共通のドメイン構造に保存します。E ドメインまたはリガンド結合ドメイン (LBD) は、リガンド結合ポケットと転写活性化機能 2、AF 2 という名前です。F ドメインは、E ドメインに隣接はローカライズされ、NRs の間でほとんどの変数のドメインです。人間の間でもマウスの ERα、F ドメインの相同性は、他のドメイン¹のそれよりも有意に低かった。リガンド ERα LBD は、リガンド依存性遺伝子の転写 (ERα の古典的なアクション) を規制するために直接特定のエストロゲン応答性 DNA 要素をバインドする ERα 蛋白質のダイマー化を向上させます。結晶構造解析は、LBD ダイマー^2,3をバインド配置ヘリックス 12 (AF 2 コア ドメイン) または 4-ヒドロキシ-タモキシフェン (4OHT)、エストラジ オール (E2) との差異を明らかにしました。ERα F ドメイン (45 アミノ酸) ヘリックス 12 に直接接続します。ただし、ERα LBD ートコフェロール ヘリックス 12 から 45 アミノ酸 (F ドメイン) のこの拡張機能の影響に関する情報はありません。本研究では、哺乳類 2 ハイブリッド (M2H) アッセイを用いた特異的 4OHT 依存 ERα LBD ダイマー化を F ドメインの寄与を示しています。

M2H アッセイは哺乳類細胞の 3 つの異なるプラスミド Dna を導入することでタンパク質間相互作用を実証する方法: 2 つのタンパク質発現プラスミド、GAL4 DNA 結合ドメイン (DBD) 融合 ERα LBD と VP16AD の融合 ERα LBD を表現してGAL4RE 融合ルシフェラーゼ発現レポーター プラスミド。GAL4DBD 融合 ERα LBD と VP16AD 融合 ERα LBD が対話する (二量体を作る)、セルのこの蛋白質の複合体、GAL4RE にバインドし、その後、アクティブにルシフェラーゼ遺伝子発現 VP16AD 依存型転写活性化関数を。LBD ダイマー化のレベルは、ルシフェラーゼ活性によって評価できます。

酵母 2 ハイブリッド (Y2H) アッセイは、酵母を使用して、ホスト環境と同じ原理に基づく代替方法です。Y2H システムを使用して以前のレポートは、人間 ERα LBD の F ドメイン切り捨て増加 E2 依存コアクチベーター募集 F ドメインが E2 を介した転写⁴を防止することを締結することを示した。この結果、哺乳類細胞^5,6F ドメイン切り捨て人間 ERα の減衰転写活性を示している他のレポートと一致。最近、M2H システムを使用して、我々 の研究は、人間 ERα LBD の E2 依存コアクチベーター採用活動が哺乳動物細胞での F ドメイン切り捨てによる減少は、転写アクティビティ¹と一致を示した。タンパク質間相互作用の生理的役割細胞型固有の方法でコンテキストとは異なることが示唆されました。M2H アッセイは、転写活性を決定するために使用される同じ細胞コンテキストのタンパク質-タンパク質相互作用アクティビティをデモンストレーションできます。これは、Y2H や他の in vitroタンパク質-タンパク質相互作用解析に比べて M2H アッセイの利点を提供します。

選択的エストロゲン受容体モジュレーター (Serm) (例えば4OHT) ERα を介した転写を調節する部分アゴニスト活性の分子メカニズムに関する質問が残っています。ERα LBD M2H アッセイは、様々 な哺乳類の細胞タイプの Serm の部分アゴニスト活性のメカニズムを研究に適用あります。

プロトコル

1 哺乳類の 2 つのハイブリッド試金のためのプラスミッドの準備

1. 次のプラスミドを使用: 協定 ERαEF へ ERαEF、pG5 リュック。
   注: プラスミッドはリクエストの作成者から利用でき、ろ紙上に送信されます。pG5 リュックは、ルシフェラーゼ発現ユニット (図 1A) と敏感な要素が融合した GAL4 の 5 つの繰り返しを含む記者プラスミドです。ERαEF は ERα LBD の GAL4DBD 融合タンパク質のタンパク質発現プラスミドです。ERαEF には、トランスフェクション効率 (図 1B) を正規化 Renilla ルシフェラーゼ発現ユニットが含まれています。協定 ERαEF です (図 1C) ERα LBD の VP16AD 融合タンパク質のタンパク質発現プラスミドです。プラスミッドから表現された蛋白質の構造の図を図 2に示します。
2. 保有するプラスミド Dna を準備します。
   1. きれいなはさみを使って紙からプラスミド ロード領域を切り取って、1.5 mL のチューブに入れてください。手袋を着用し、清潔なピンセットを使用してプラスミッド ロード紙を拾います。100 μ L のトリス EDTA (TE) バッファー (pH 8.0) と渦をも追加します。
   2. 1 μ L を追加プラスミド DNA の解決のステップからの有能なエシェリヒア属大腸菌の 1.2.1 (材料の表を参照) を細胞し、15 分間氷の上の管を保ちます。
   3. プラスミド追加熱衝撃を与える有能なセル;30 の 42 ° C の水浴で尿管を孵化させなさい s と、その後、2 分間氷の上にそれらを保ちます。
   4. 尿管と 37 ° c 30 分振とうしながら文化に超最適カタボライト抑制 (SOC) 媒体 (室温) スープの 250 μ L を追加します。
   5. 一晩 100 μ g/mL アンピシリン (10 cm 直径の皿) と 37 ° C で文化 prewarmed ルリヤ (LB) のスープ プレート培養大腸菌の 100 μ L をプレートします。
   6. プレートからコロニーをピックアップし、素晴らしいスープ (TB) 100 μ g/mL アンピシリン 2 mL を含む 14 mL チューブにそれを追加します。媒体はかすかに白濁するまで、37 ° C で揺れと文化。
   7. 1.2.6 のステップから 100 μ g/mL アンピシリンと TB の 50 mL を含むオートクレーブ 250 mL ガラス フラスコに培地 1 mL を追加します。20-24 h の 37 ° C で揺れと文化。
   8. 50 mL コニカル チューブとスイング バケツの回転子を使用して 30 分間室温で 3,450 × gで遠心分離培養大腸菌に転送します。媒体を破棄します。大腸菌ペレット-80 ° C で保存します。
   9. セル再懸濁溶液 3 mL を追加 (材料表参照)エシェリヒア属大腸菌ペレットし、完全にそれを中断します。セル換散溶液 3 mL を追加 (材料の表を参照)、ミックス静か逆さにすることでチューブ 10 x 5 分間氷の上保管して (時間どおり時間を保つ)。中和溶液 6 mL を追加 (材料の表を参照)、タップと着実にチューブをミックスし、その後、10 分間氷の上にそれを維持します。
   10. スイング バケツの回転子を使用して 30 分間、4 ° C で 3,450 × gでチューブを遠心します。新しい 50 mL の円錐管に DNA を含む溶液を移し、DNA 精製樹脂 10 mL を追加 (材料の表を参照してください)。優しく樹脂を中断します。
   11. 625 x gスイング バケツの回転子を使用して 1 分でチューブを遠心します。液を捨て、下部に樹脂を維持します。
   12. カラム洗浄溶液 15 mL を追加 (80 mM 酢酸カリウム、8.5 mM トリス-HCl [pH 7.5]、40 μ M EDTA と 55% エタノール) 50 mL コニカル チューブと樹脂を中断する軽く振る。1.2.11 のステップを繰り返します。
       注意: カラム洗浄液はピロ炭酸ジエチルエステル (DEPC) を使用してを準備する必要があります-水やヌクレアーゼ フリー水を扱われます。
   13. 50 mL の円錐管に列洗浄溶液 5 mL を追加し、5 mL ピペットを使い、樹脂を中断します。列に樹脂を適用真空マニホールドに設定されている (表の資料を参照してください)。樹脂乾燥するまで列を真空します。列と真空にカラム洗浄溶液 6 mL を追加します。
   14. 樹脂の乾燥は視覚的に、一度列から貯水池をデタッチします。(樹脂) の列の下のセクションを 1.5 mL チューブに転送します。最大速度遠心機を使用して、樹脂の乾燥は完全に 2 分で列を遠心します。
   15. (樹脂) の列の下のセクションを新しい 1.5 mL チューブに転送します。列にヌクレアーゼ フリー水の 300 μ L を追加し、全体の樹脂が浸漬するまで待ちます。
   16. プラスミド DNA 含有溶液 (200-250 μ L) を収集するために 1 分の最高の速度で列を遠心します。
   17. フェノール - クロロホルム (1:1)、クロロホルムとそれから DNA 含有溶液を次のとおり扱います。
       1. DNA 含有溶液 (200-250 μ L) にフェノール-クロロホルム (1:1) の同じボリュームを追加、よく、振るし、遠心機を使って 2 分の最大速度の遠心分離機します。上層 (DNA 含有溶液) を収集し、それを新しい 1.5 mL チューブに追加します。1 x この手順を繰り返します。
       2. よく、振ると最大速度で 1 分間遠心する上層 (DNA 含有溶液) を収集し、それを 1.5 mL チューブに追加、DNA 含有溶液 (200-250 μ L) にクロロホルムの同じボリュームを追加します。
          注: 内毒素 (リポ多糖) は、いくつかの細胞の細胞内シグナル伝達を誘導します。このような予期せぬ影響を避けるためには、エンドトキシン汚染を減らすことができる、ステップ 1.2.17 がお勧め。
   18. プラスミド DNA のエタノール沈殿法を次のように使用を沈殿させます。
       1. 3 M 酢酸ナトリウム (pH 5.5) の DNA の混合物の量の 1/9 を追加し、3 M ナトリウム酢酸量の DNA を含むソリューションに 100% エタノールの 20 倍。たとえば、(最終巻は 555.8 μ L) DNA の解決の 250 μ L に 27.8 μ L の 3 M 酢酸ナトリウムとエタノール 100% の 278 μ L を追加します。
       2. 少なくとも 20 分間-80 ° c のソリューションを保持します。4 ° C で 20 分の最大速度の遠心分離機します。液を捨て、ペレットを維持します。75% エタノール 200 μ L を追加し、チューブの内側を洗います。4 ° C で 20 分間遠心、液を捨て、ペレットを維持します。真空濃縮を使用して DNA の餌を乾燥させます。
       3. チューブに TE バッファー (pH 8.0) の 100-250 μ L を追加します。DNA の餌を溶解し、260 の波長分光光度計を用いた DNA 濃度をチェック nm。0.5 mg/mL 中の DNA 濃度に保ちます。

2 哺乳類 2 ハイブリッド試金

1. セルを維持します。
   1. 750 mL, 10% 牛胎児血清を添加したフェノールレッド フリー最低限不可欠なメディア (MEM) 175 cm²培養フラスコでひと肝細胞癌 HepG2 細胞の培養 (FBS; 熱不活化)、2 ミリメートル L-グルタミン, 1%ペニシリン ・ ストレプトマイシン液 (抗生物質) のセルを維持するため。
   2. 5% CO₂の細胞の培養-補われた、37 ° C インキュベーター細胞が約 90% 合流まで。
      注: エストロゲンのバック グラウンド アクティビティを減らすためには、すべて M2H 実験にフェノールレッド フリー メディアを使用する必要があります。クリーン ベンチ/生物学的安全キャビネットの中は、この手順を実行する必要があります。セルは、次の一般的な哺乳類の細胞培養プロトコル⁷維持しなければなりません。
2. Transfection のためにセルを準備します。
   注: 次の手順は、クリーン ベンチ/生物学的安全キャビネット内実行必要があります。細胞が 5% CO₂の培養/ふ化-毎回この手順で補われた、37 ° C インキュベーター。
   1. 24 ウェル プレートに; 90% コンフルエント細胞を replate します。リンスの細胞 1 リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で x。
   2. 培養用フラスコに 0.05% トリプシン-EDTA 溶液 7 mL を追加し、室温で、クリーン ベンチで培養用フラスコを維持しながら 1-2 分の細胞を浸します。トリプシン EDTA 溶液の一部を削除し、培養用フラスコに 1-2 mL のソリューションを残します。1-2 分のためのインキュベーターで培養用フラスコを孵化させなさい。
   3. セルをデタッチして、顕微鏡下で細胞に、フラスコの底に舌鼓します。
      注: 場合、セルはまだフラスコに接続されて、別の 1-2 分間インキュベートし、手順 2.2.3。
   4. 10% を添加したフェノールレッド無料の MEM のセルを中断 (熱不活化) 炭剥奪 FBS、2 ミリメートル L-グルタミンと 1% ペニシリン ストレプトマイシン溶液。
      注: 炭剥奪 FBS は血清由来の内因性エストロゲンの影響を軽減する使用する必要があります。
   5. セル数をカウントで 1.2 10⁵細胞/ウェル倍の密度で 24 ウェル プレートでセルをシードします。各データ ポイント (帳票) の 3 つの井戸を割り当てます。
   6. 一晩培養します。2.4.1 手順に進みます。
3. トランスフェクションの DNA の混合物を準備します。
   注: 次のプラスミド Dna は 1 つの井戸のトランスフェクション: 100 pG5 リュック記者プラスミド 50 ng GAL4DBD 融合蛋白質 (へ) の発現プラスミドの ng と 50 VP16AD 融合蛋白質 (協定) の発現プラスミドの ng。
   1. リガンド依存性 ERα LBD 二量体化活性を分析するには、(図 3) の次の組み合わせを準備します。(I) の組み合わせ: pG5 リュック + へ hERαEF + 協定と pG5 リュック + へ mERαEF 協定。組み合わせ (ii): pG5 リュック + へ hERαEF + 協定-hERαEF と pG5 リュック + へ mERαEF 協定 mERαEF。組み合わせ (iii): pG5 リュック + へ + 協定-hERαEF と pG5 リュック + へ協定 mERαEF。
      注: 組み合わせ (i) 基底実験のレベルを表す人間の ERα LBD とマウス ERα LBD それぞれ。結果は、単独で配位子と非常に高レベルを示している場合、このメソッドはそのリガンド (例えば、ジエチルスチルベス トロール [DES]) で使用可能。(Ii) の組み合わせは、それぞれ二量化した人間 ERα LBD とパイエルス マウス ERα LBD のレベルを表します。(Iii) の組み合わせを表しますマイナス コントロールです。初めてシステムのバック グラウンド レベルを評価するための実験を行う場合にのみこの設定を使用します。
   2. 合計を計算、混合する前にトランスフェクション用井戸の数に基づいて、必要な DNA 量。トリプリケート、5 つのデータ点の実験、ミックスの組み合わせ (i) と (ii) の 2 つの 1.5 μ 管次プラスミド Dna: pG5 リュック、3 (ウェルズ) x 100 ng × 5 (データ ポイント) = 1,500 ng (15 μ L);mERαEF、3 (ウェルズ) x 50 ng × 5 (データ ポイント) = 750 ng (7.5 μ L);協定 (i) または協定-mERαEF (組み合わせ ii) の組み合わせの 3 (ウェルズ) x 50 ng × 5 (データ ポイント) = 750 ng (7.5 μ L)。
      注: 各プラスミド DNA 溶液の濃度は、0.1 μ g/μ L です。
   3. エタノール沈殿法を用いた DNA の混合物を沈殿させます。3 M 酢酸ナトリウム (pH 5.5) の DNA の混合物の量の 1/9 を追加し、3 M ナトリウム酢酸量の DNA の混合物に 100% エタノールの 20 倍。その後、渦管。
      注: たとえば、2.3.2 の手順で代表されるプラスミッド DNA の混合物の 30 μ L に 3.4 μ L の 3 M 酢酸ナトリウム、および 100% のエタノールの 34 μ L を追加します。この手順は不変のトランスフェクション条件を維持するのに役立ちます、それは生物学的安全キャビネットでこの手順を実行する必要はありません。
   4. -20 ° C で混合物を一晩保持します。4 ° C で 20 分最大速度で遠心します。(ペレットが見える) ソリューションを破棄します。管; 75% のエタノールの 120 μ L を追加します。その後、チューブの中をすすいでください。4 ° C で 20 分間遠心液を捨て、30 分間真空濃縮を使用して DNA の混合物を乾燥します。
4. 遺伝子導入を行います。
   注: 次の手順は、生物学的安全キャビネットやクリーン ベンチで実行する必要があります。
   1. 次の朝、リンス (からステップ 2.2.6) 24 ウェル プレートに播種された細胞 0.5 mL の PBS (室温) で 2 倍。
   2. FBS (熱不活化)、2 ミリメートル L グルタミンも (0.5 mL 中/ウェル) 抗生物質なしに、暖かい (37 ° C) 10% を添加した新鮮なフェノールレッド フリー MEM 炭除去を追加します。5% CO₂の細胞を維持-補われたの 37 ° C の定温器。
   3. ダルベッコ変法イーグル培地 (フェノールレッド フリー、グルタミンなしないの血清; 13 μ L/ウェル) (DMEM) で (手順 2.3.4) から乾燥プラスミド DNA の混合物を中断します。トランスフェクション用井戸の数から DMEM の量を計算します。
      注: 15 井戸 (i) x 13 μ L の組み合わせ = 195 μ L、および (ii) x 13 μ L の組み合わせに対して 15 井戸 = 195 μ L。
   4. トランスフェクション試薬を中断 (材料の表を参照してください 1.5 μ L/ウェル) DMEM で (12.5 μ L/ウェル) 別 1.5 mL チューブに。トランスフェクション試薬とトランスフェクション用井戸の数から DMEM の量を計算します。
      注: 30 [組み合わせの 15 井戸] (i) ・ 15 井戸の組み合わせ (ii) x トランスフェクション試薬の 1.5 μ L + DMEM の 30 × 12.5 μ L = 420 μ L。
   5. トランスフェクション試薬の媒体を (ステップ 2.4.4) から (ステップ 2.4.3) から各管の等しい量を追加します。室温で 5-10 分間チューブを孵化させなさい。
      注: トランスフェクション試薬中 + 195 μ L 混合物 (i) DNA の組み合わせの 200 μ L = 395 μ L、200 μ L トランスフェクション試薬中の + 195 μ L の DNA (ii) 混合物の組み合わせ = 395 μ L。組み合わせ (i) と (ii) の管にトランスフェクション試薬中の等しい量を追加することが重要です。この手順では媒体を使用する必要はありません。
   6. (ステップ 2.4.2) から 24 ウェル プレートのも (25 μ L/ウェル) (ステップ 2.4.5) から結合された混合物を追加し、5% CO₂で 6 h 細胞をインキュベート-補われたの 37 ° C の定温器。
   7. 24 ウェル プレートからトランスフェクション メディアを削除します。配位子 (エタノールで中断) 1% ペニシリン-ストレプトマイシン液、2 mM L グルタミン FBS (熱不活化) に、暖かい (37 ° C) 10% を添加した新鮮なフェノールレッド フリー MEM 炭除去を追加 (0.5 mL 中/よく)。5% CO₂で 16-18 時間培養-補われたの 37 ° C の定温器。
5. サンプルを収穫します。
   1. 1 ml の PBS のセルを洗浄し、次に、受動的な換散バッファー x 1 の 100 μ L を追加 (材料の表を参照してください)。
   2. 積極的にセルをデタッチする渦のミキサーで 24 ウェル プレートを振る。
   3. 凍結板 (セル lysates) 解析の前に-80 ° C で 1 x 液体窒素またはそれらを保存します。すぐに前に試金、精力的に振ってプレート シェーカーで常温になるまで。
      メモ: このプロセスは、不規則なルシフェラーゼ活性の異常値を表示できなくなります。
6. デュアル-ルシフェラーゼ アッセイを実行します。
   1. デュアル-ルシフェラーゼ アッセイ用試薬 (材料の表を参照してください)。
      1. ルシフェラーゼ アッセイ基板 (LAS) バッファーを作るために茶色のガラス瓶にはルシフェラーゼ アッセイ基板ルシフェラーゼ アッセイ バッファーのすべてを追加します。-20 ° C でラス バッファーを保存します。
         注: ラス バッファーは、使用する前に室温に暖められる必要があります。
      2. Renilla ルシフェラーゼ基板 (RLS) バッファーを作るため Renilla ルシフェラーゼ基板と 1:50 の比率で Renilla ルシフェラーゼ バッファーをミックスします。新鮮な RLS すべてのアッセイのためのバッファーおよび黒いチューブやアルミホイルの木陰のある管を使用を確認します。新鮮なバッファーを作る RLS バッファーの量を計算します。
         注: RLS バッファーは、使用する前に室温に暖められる必要があります。
   2. マイクロ プレート リーダーで、試薬を設定します。
      1. 洗浄注入ラインの 2 倍の 70% エタノールでライン 2 を洗い流し水で x。
         注: これは、アッセイの結果を不安を防ぐために重要です。
      2. P インジェクターに、ラスベガスのバッファー (最初の注射) を行し、M インジェクター ラインに RLS バッファーを設定 (注入は 2 番目)。これらのバッファーを混在させないでください。RLS のバッファーは、ルシフェラーゼ活性を阻害します。
   3. 96 ウェル白いプラスチック プレートを (ステップ 2.5.3) から収穫されたサンプルの 10 μ L を適用します。
   4. マイクロ プレート リーダーに次の設定を適用します。P-インジェクターの使用量 50 μ L、2 の遅延 s、および 50 μ L/s の速度。M-インジェクターの使用量 50 μ L、2 の遅延 s、15 s. セットの統合時間温度を 25 ° C に設定 50 μ L/s の速度
   5. マイクロ プレート リーダーを実行します。
   6. ルシフェラーゼ活性 (IPValue) の値とデータ収集プログラムを使用して Renilla ルシフェラーゼ活性 (IMValue) の値を記録 (材料の表を参照してください)。
   7. データ収集後注入ラインを洗う (2.6.2.1 の手順を参照してください)。
7. データ解析を実行します。
   1. 正規化された値 (IPValue/IMValue) を使用して、データ分析のため。
   2. レベル homodimerized ERα LBD と基底レベルの計算のための 1 として車両 (0 nM ligand) と組み合わせて (i) [pG5 リュック + へ ERαEF 協定] の正規化された値を設定します。レベルは、「相対的な活動」として表されます。

結果

図 3では、組み合わせ (i) と (ii) プラスミド トランスフェクト細胞の組み合わせで可能な応答のスキームが表示されます。実験の結果は図 4のとおりです。(I) (pG5 リュック + へ mERαEF 協定) の組み合わせの活動刺激を示しています 10 nM E2 (図 4A) ERα LBD に AF 2 リガンド依存性転写機能ドメイ?...

ディスカッション

ここで、我々 は例として ERα LBD のダイマー化アクティビティを検出するアッセイ条件に焦点を当て M2H 試金のためのプロトコルを説明します。一般に、M2H アッセイは、リガンド依存性 ERα LBD 二量体化活動の評価のため人気がないです。これは転写活性化機能を有する ERα LBD 原因です。活動はいくつかのケースで、M2H アッセイの結果を妨げます。しかし、我々 がここに示すよう M2H アッセ?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
pG5-Luc	Promega	E249A	Component of CheckMate Mammalian Two-Hybrid System
pBIND	Promega	E245A	Component of CheckMate Mammalian Two-Hybrid System
pACT	Promega	E246A	Component of CheckMate Mammalian Two-Hybrid System
One Shot TOP10 Chemically Competent E. coli	Invitrogen	C404010
Centrifuge Rotor	SORVALL	75006445
Swing Buckets	SORVALL	75006441
Cell Resuspension Solution (CRA)	Promega	A7112
Cell Lysis Solution (CLA)	Promega	A7122
Neutralization Solution (NSA)	Promega	A7131
Column Wash Solution (CWB)	Promega	A8102
Wizard Midipreps DNA Purification Resin	Promega	A7701
Wizard Midicolumns	Promega	A7651
MEM, no glutamine, no phenol red	Gibco	51200038
L-glutamine (200 mM)	Gibco	A2916801
0.5% Trypsin-EDTA (10x)	Gibco	15400054
Penicillin-Streptomycin (100x)	Sigma-Aldrich	P0781
BenchMark fetal bovine serum (FBS)	Gemini-Bio	100-106	Heat inactivated
Charcoal:dextran stripping fetal bovine serum	Gemini-Bio	100-119	Heat inactivated
DMEM, high glucose, no glutamine, no phenol red	Gibco	31053028	for transfection
Lipofectamine 2000	Invitrogen	11668027
Passive Lysis 5X Buffer	Promega	E1941
Dual-Luciferase Reporter Assay System	Promega	E1980
SpectraMax L microplate reader	Molecular Devices
SoftMax Pro Software	Molecular Devices