体外における感覚神経と運動神経からの線維芽細胞およびシュワン細胞の精製

要約

ここでは、インビトロで感覚神経および運動神経から線維芽細胞およびシュワン細胞を精製する方法を提示する。

要約

末梢神経系の主な細胞は、シュワン細胞(SC)および線維芽細胞である。これらの細胞は、神経栄養因子遺伝子発現および他の生物学的プロセスの異なるパターンに関与する感覚および運動表現型を明確に発現し、神経再生に影響を与える。本研究は、高度に精製されたラット感覚および運動SCおよび線維芽細胞をより迅速に得るためのプロトコルを確立した。新生児ラットの腹根(運動神経)と後根(感覚神経)を解離し、細胞を4〜5日間培養し、続いて分化消化と微分付着法を組み合わせて感覚と運動線維芽細胞とSCを分離した。免疫細胞化学とフローサイトメトリー分析の結果、感覚および運動SCおよび線維芽細胞の純度は90%であった。このプロトコルは、多数の感覚および運動線維芽細胞/SCをより迅速に得るために使用することができ、感覚神経および運動神経再生の探索に寄与する。

概要

末梢神経系において、神経線維は主に軸索、シュワン細胞(SC)、および線維芽細胞から成り、また、少数のマクロファージ、微小血管内皮細胞、および免疫細胞¹を含む。SCは軸索を1:1の比率で包み、エンドニウリウムと呼ばれる結合組織層で囲まれている。その後、軸索を束ねて、ファシクルと呼ばれるグループを形成し、各魅惑は、ペリネリウムとして知られている結合組織層に包まれます。最後に、神経線維全体が、上気圧と呼ばれる結合組織の層に包まれる。このエンドヌリウムでは、全細胞集団は48%のSCで構成され、残りの細胞の大部分は線維芽細胞²を含む。さらに、線維芽細胞は、上聴神経、会陰、および末端3を含むすべての神経区画の重要な構成要素^である。多くの研究は、SCおよび線維芽細胞が末梢神経損傷^44、5、65後の再生プロセスにおいて重要な役割を果たすこと^を6示している。末梢神経の切除後、胸部線維芽細胞は、SCと線維芽細胞との間のシグナル伝達経路を介して細胞の並べ替えを調節し、さらに創傷⁵を通して軸索再成長を導く。末梢神経線維芽細胞は、テナシン-Cタンパク質を分泌し、β1-インテグリンシグナル伝達経路⁷を介して神経再生中のSCの移動を増強する。しかし、上記の研究で使用されたSCおよび線維芽細胞は、感覚神経と運動神経の両方を含む坐骨神経に由来した。

末梢神経系では、感覚神経(知覚神経)は受容体から中枢神経系(CNS)への感覚シグナル伝達を行い、運動神経(神経)はCNSから筋肉への信号を行う。これまでの研究では、SCは、末梢^{神経再生,8,9}を支持する明確な運動および感覚表現型および分泌神経栄養因子を発現することが示されている。最近の研究によると、線維芽細胞はまた、異なる運動および感覚表現型を発現し、SCs¹⁰の移動に影響を与える。このように、運動神経線維芽細胞と感覚神経線維芽細胞/SCの違いを探ると、末梢神経特異的再生の複雑な分子機構を研究することができます。

現在のところ、SCおよび線維芽細胞を精製する方法は多数あり、抗ミトキ薬の適用、抗体媒介性細胞分解^{11、12、,12}シーケンシャルイムノパンニング13およびラミニン皮層¹⁴を含む¹⁴。しかし、上記の方法はすべて線維芽細胞を除去し、SCのみを保存する。高度に精製されたSCおよび線維芽細胞は、フローサイトメトリー選別技術¹⁵によって得ることができるが、それは時間とコストのかかる技術である。そこで本研究では、多数の線維芽細胞やSCをより迅速に得るために、感覚および運動神経線維芽細胞およびSCを精製・単離するための単純な微分消化および微分付着法が開発された。

プロトコル

本研究は南通大学の施設動物ケアガイドラインに従って実施された。動物の被験者を含むすべての手順は、中国江蘇省実験動物管理委員会によって倫理的に承認されました。

1. 運動・感覚神経線維芽細胞とSCの分離と培養

1. 中国南通大学実験動物センターが提供する7日前のスプレイグ・ドーリー(SD)ラット(n=4)を使用してください。ラットを5%のイオブルランを含むタンクに2〜3分間入れ、動物がゆっくりと呼吸し、独立した活性を持たなかった後、切断する前に75%エタノールを使用して消毒する。
2. はさみを使って背中の皮膚を約3cm切り、脊柱を取り除きます。脊髄を露出させるために、椎管を慎重に開きます。
3. 2~3 mLの氷冷D-ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)を使用して、60mmペトリ皿に脊髄を維持します。
4. 解剖学的構造に基づいて、弁当根(運動神経)を切除し、次に、解剖顕微鏡下で側側根(感覚神経)を切除する。次に、氷冷D-ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)に入れます。
5. HBSSを取り外した後、はさみで神経を3〜5mmにスライスし、18〜20分間37°Cで0.25%(w/v)トリプシンの1mLで消化します。次に、10%のウシ胎児血清(FBS)を含むDMEMの3〜4 mLを補って消化を止める。
6. 混合物を約10回上下にピペットし、遠心分離機を800xggで5分間ピペットします。その後、上清を捨て、10%FBSを添加したDMEMの2〜3mLで沈殿を中断します。
7. 400メッシュフィルターを用いて細胞懸濁液を濾過し、5%CO2の存在下で37°Cで60mmペトリ皿および培養中の細胞₂を接種する。培養4~5日後、90%合流に達した後に、0(p0)線維芽細胞およびSCの通路を分離する。
8. SCの分離と文化 (図 1)
   1. 1x PBSを使用して細胞を1回洗います。0.25%(w/v)トリプシン(37°C)の1 mLを60mmペトリ皿あたり1 mL加え、室温で8〜10秒の細胞を消化します。その後、消化を止めるために10%FBSを添加したDMEMの3mLを加えます。
   2. 混合物を軽く吹き飛ばして、ピペットでSCを取り外します。その後、SCを800 x gで5分間遠心します。
   3. 上澄みを捨て、10%FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、2 μMフォルスコリン、10 ng/mL HRGでDMEMの3mLで沈殿物を中断し、コーティングされていない60mmペトリ皿で細胞を接種します。30〜45分間37°Cで培養した後、線維芽細胞(数個の線維芽細胞はSCで消化される)が皿の底に付着する。
   4. 上清(SCを含む)を別のポリL-リジン(PLL)コーティングされた培地皿に移し、37°Cで2日間培養します。
9. 線維芽細胞の分離と培養(図1)
   1. SCを取り除いた後(ステップ1.8に示すように)、残りの線維芽細胞を1x PBSで皿に洗い、0.25%(w/v)のトリプシンの1 mLを加えて37°Cで2分間線維芽細胞を消化します。
   2. DMEMを10%FBSで補って消化を終わらせます。ピペットを使用して繊維芽細胞を吹き、800 x gで5分間遠心分離します。
   3. 上清を捨て、10%FBSを含むDMEMの2mLで沈殿を懸濁し、次いでコーティングされていない60mmペトリ皿に細胞を接種する。培養後の繊維芽細胞を30〜45分間、37°Cで培養し、皿の底部に付着する。上清を捨てます(数個のSCを含む)。その後、37°Cで37°Cで10%FBSを添加したDMEMの3mLを2日間加え、培養します。
10. p1細胞を90%合流に達するまで通過する。その後、セクション1.8と1.9に記載されているように、差動消化と差付着によって再びそれらを浄化します。
11. 2日間培養した後にp2線維芽細胞とSCを消化し、免疫細胞化学(ICC)用PLLコーティングスライド上の1 x 10⁵個の数/ウェルで細胞を数え、接種します。

2. 細胞純度の同定のためのICC

1. 細胞を37°Cで24時間培養し、運動と感覚線維芽細胞およびSCの差動消化および差動付着後にICC染色を行う。
2. 1x PBSでモーターと感覚線維芽細胞とSCを洗浄し、4%パラホルムアルデヒド(pH 7.4)の200 μL/ウェルで室温で18分間固定します。
3. ブロッキングバッファー(5%ヤギ血清を含む0.01 M PBSで0.1%トリトンX-100)でサンプルSCをブロックし、PBS 3thで洗浄した後、37°Cで45分間ブロッキングバッファー(0.01 M PBS)でサンプル線維芽細胞をブロックします。
4. ブロッキングバッファーを除去し、次の一次抗体でインキュベートする:マウスモノクローナル抗CD90抗体(線維芽細胞の特定マーカー)(1:1000)線維芽細胞およびマウス抗S100抗体(SC用の特定マーカー)(1:400)のSCの夜間の一晩。
5. 一次抗体を捨て、PBS 3thriceで洗浄し、次の二次抗体でインキュベートする:アレクサFluor 594ヤギ抗マウスIgG(1:400)線維芽細胞用、488結合ヤギ抗マウスIgG(1:400)を室温でSC用に1.5時間。
6. サンプルをPBSで3回洗浄し、5 μg/mL Hoechst 33342 色素で核を室温で10分間染色します。サンプルを1x PBSで洗い、ガラススライドの取り付け媒体(20 μL/スライド)を使用して取り付けます。
7. 各ウェルの3つのランダムなフィールドで共焦点レーザー走査顕微鏡によって細胞写真を撮ります。核細胞とCD90陽性細胞の総数を評価し、S100陽性細胞をそれぞれ算出し、それぞれCD90陽性細胞とS100陽性細胞の割合を計算します。三重で染色を行います。

3. 細胞純度の同定のためのフローサイトメトリー分析(FCA)

1. FCA¹⁶で前述したように、モータおよび感覚線維芽細胞およびSCの純度を評価する。簡単に言えば、0.25%(w/v)トリプシンでp2モーターと感覚線維芽細胞とSCを消化し、細胞ペレットを再懸濁し、室温で固定媒体に15分間インキュベートします。
2. 線維芽細胞およびマウス抗S100抗体(1:400、200μL)のマウスモノクローナル抗CD90抗体(0.1μg/10⁶細胞、200μL)を用いて、透過性培地とプローブを用いて細胞をインキュベートし、それぞれ30分間室温でSCに用いる。
3. 488結合ヤギ抗マウスIgGを30分間インキュベートし、FACSキャリバーを使用してフローサイトメトリーを実行し、Cell Questソフトウェアを使用してデータを分析します。
4. 488結合ヤギ抗マウスIgG(線維芽細胞群)およびマウスIgG1カッパ[MOPC-21](FITC)-アイソタイプコントロール(SCs群)のみで細胞をインキュベートし、負の対照として機能します。

4. 統計分析

1. すべてのデータを手段として提示する±SEM.GraphPad Prism 6.0を使用して非対t-testによってデータの統計的差を評価する。p<0.05 で統計的有意性を設定します。三重ですべてのアッセイを実行します。

結果

光顕微鏡観察
SCおよび線維芽細胞は、神経組織から一次細胞培養で得られた2つの主要な細胞集団である。1時間の接種後、ほとんどの細胞は皿の底に付着し、細胞形態は円形から楕円形に変化した。24時間培養後、SCは双極形態または三極形態を呈し、その長さは100~200μmの範囲となった。48時間後、細胞の凝集と増殖が起こり、多くの細胞がエンドツー?...

ディスカッション

末梢神経の2つの主要な細胞集団には、SCおよび線維芽細胞が含まれていた。主に培養された線維芽細胞およびSCは、末梢神経の発達および再生の間に線維芽細胞およびSCの生理学を正確にモデル化するのを助けることができる。この研究は、P7ラット坐骨神経細胞がS100陽性SCの約85%、OX7陽性線維芽細胞の13%、OX42陽性マクロファージ¹³の1.5%しか含まれていないことを示した。線...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Alexa Fluor 594 Goat Anti-Mouse IgG(H+L)	Life Technologies	A11005	Dilution: 1:400
CoraLite488-conjugated Affinipure Goat Anti-Mouse IgG(H+L)	Proteintech	SA00013-1	Dilution: 1:400
Confocal laser scanning microscope	Leica Microsystems	TCS SP5
Cell Quest software	Becton Dickinson Biosciences
D-Hank's balanced salt solution	Gibco	14170112
DMEM	Corning	10-013-CV
Dissecting microscope	Olympus	SZ2-ILST
Fetal bovine serum (FBS)	Gibco	10099-141C
Forskolin	Sigma	F6886-10MG
Fluoroshield Mounting Medium	Abcam	ab104135
Fixation medium/Permeabilization medium	Multi Sciences (LIANKE) Biotech, Co., LTD	GAS005
Flow cytometry	Becton Dickinson Biosciences	FACS Calibur
Mouse IgG1 kappa [MOPC-21] (FITC) - Isotype Control	Abcam	ab106163	Dilution: 1:400
Mouse monoclonal anti-CD90 antibody	Abcam	ab225	Dilution: 1:1000 for ICC, 0.1 µg for 106 cells for Flow Cyt
Mouse anti-S100 antibody	Abcam	ab212816	Dilution: 1:400
Polylysine (PLL)	Sigma	P4832
Recombinant Human NRG1-beta 1/HRG1-beta 1 EGF Domain Protein	R&D Systems	396-HB-050
0.25% (w/v) trypsin	Gibco	25200-072