腱由来幹細胞の発熱分化を誘導する三次元単軸機械刺激バイオリアクターシステムの適用

要約

三次元単軸的な機械的刺激バイオリアクターシステムは、腱由来幹細胞の形質特異的分化およびネオ腱形成のための理想的なバイオリアクターである。

要約

腱障害は、整形外科領域における炎症および変性に関連する一般的な慢性腱疾患である。高い罹患率、限られた自己修復能力、そして最も重要なことは、決定的な治療法がない、腱症は依然として患者の生活の質に悪影響を及ぼさない。腱由来幹細胞(TDSC)は、腱細胞の原発前細胞として、腱障害の発症と腱障害後の機能および構造的回復の両方において重要な役割を果たす。従って、インビトロでTDcSCの腱細胞への分化を模倣できる方法が有用であろう。ここで、本プロトコルは、TDSCを刺激して腱様組織に分化する三次元(3D)単軸ストレッチシステムに基づく方法を説明する。本プロトコルの7つの段階があります:マウスTDSCの単離、マウスTDSCの培養および拡大、細胞シート形成のための刺激培養培地の調製、刺激媒体中の培養による細胞シート形成、3D腱幹細胞構築物の調製、単軸伸張機械的刺激複合体の組立、および機械的刺激体型腱様組織の評価。有効性は、ヒストロジーによって実証された。全体の手順は3週間未満かかります。細胞外マトリックス沈着を促進するために、4.4mg/mLアスコルビン酸を刺激培養培地に使用した。線形モーターが付いている分離された部屋は正確な機械負荷を提供し、携帯用および容易に調節されるバイオリアクターのために適用される。本プロトコルにおける負荷レジームは、6%の株、0.25 Hz、8 h、続いて6日間16時間休息であった。このプロトコルは腱の細胞分化を模倣することができ、腱障害の病理学的プロセスの調査に有用である。さらに、腱様組織は、設計された自家移植片として腱損傷における腱治癒を促進するために使用される可能性がある。要約すると、現在のプロトコルはシンプルで経済的で、再現性があり、有効です。

概要

腱障害は、一般的なスポーツ傷害の一つです。それは主に痛みによって現れます, 局所腫れ, 患部の筋肉の緊張の低下, 機能不全.腱障害の発生率は高い。アキレス腱症の存在は、中長距離ランナー(最大29%)に最も一般的であり、膝蓋腱症の存在はバレーボール(45%)、バスケットボール(32%)、陸上競技(23%)、ハンドボール(15%)、サッカー(13%)1、2、3、4、5の選手でも高い。^1,2,3,4,5しかし、腱の自己治癒能力が限られているため、効果的な治療が不足しているため、腱症は依然として患者の生活に負の^66,77に影響を及ぼす。さらに、腱障害の病因は不明のままである。その病因について多くの調査が行われてきましたが、主に「炎症理論」、「変性理論」、「使い過ぎ理論」など^8.現在、多くの研究者は、腱障害は、腱の経験^99、1010の過度の機械的負荷によって引き起こされる微小傷害への自己修復の失敗によるものだと考えていた。

腱由来幹細胞(TDSC)は、腱細胞の原発前細胞として、腱障害^11、12、13後の腱障害および機能および構造的回復の両方の発達において重要な^11,役割^を13果たす。機械的ストレス刺激は、骨細胞、骨芽細胞、平滑筋細胞、線維芽細胞、間葉系幹細胞および他の力感受性細胞14、15、16、17、18^{14,15,16,17,18}の増殖および分化を引き起こす可能性があると報告された。従って、TDcSCは、メカノイ感受性および多能性細胞の一つとして、機械的負荷^19、20,20によって同様に分化するように刺激することができる。

しかし、異なる機械的負荷パラメータ(荷重強度、積載頻度、積載タイプおよびローディング期間)は、TDCが異なるセル²¹に分化するように誘導する可能性がある。したがって、効果的かつ有効な機械的負荷のレジームは、テノジェネシスにとって非常に重要です。さらに、TDCに機械的負荷を提供するために現在使用されている刺激システムとして、バイオリアクターの種類が異なります。バイオリアクターの各種類の原理は異なるので、異なるバイオリアクターに対応する機械的負荷パラメータも異なります。したがって、バイオリアクターの種類、対応する刺激媒体、および機械的負荷体制を含む、簡便で経済的で再現可能な刺激プロトコルが要求されている。

本稿では、TDSCを刺激して腱様組織に分化する三次元(3D)単軸ストレッチシステムに基づく方法について説明する。プロトコルには、マウスTDSCの単離、マウスTDSCの培養および拡大、細胞シート形成のための刺激培養培地の調製、刺激媒体中の培養による細胞シート形成、3D腱幹細胞構築物の調製、単軸伸張機械的刺激複合体の組立、および機械的刺激体型腱様組織の評価の7段階がある。全体の手順は、いくつかの既存の方法^22、23,23よりもはるかに少ない3D細胞構造を得るために3週間未満かかります。本プロトコルは、TDSCを腱組織に分化するように誘導できることが証明されており、現在一般的に使用されている2次元(2D)延伸システム²¹よりも信頼性が高い。有効性は、ヒストロジーによって実証された。要するに、本プロトコルは、シンプルで経済的で、再現性があり、有効である。

プロトコル

記載された方法は、西オーストラリア大学動物倫理委員会のガイドラインと規制に従って承認され、実施されました。

1. マウスTDSCの分離

1. 6-8週齢のC57BL/6マウスを子宮頸部脱臼で安楽死させる。
2. 収穫膝蓋腱²⁴とアキレス腱^25.
3. I型コラゲザーゼ(3mg/mL)の6mLを持つ腱を3時間消化します。
   注:マウスの腱のサイズが小さいので、1つのマウスから収穫されたすべての腱はこのステップで使用する必要があります。
4. 胎児ウシ血清(FBS)の10%とストレプトマイシンとペニシリン混合物の1%を含む完全な最小必須培地(Α-MEM)で細胞と培養を7日間収集します。
5. フローサイトメトリーによる蛍光活性化細胞選別(CD44、CD90、Sca-1を含む細胞表面マーカーの発現、CD34およびCD45の発現の欠如)を用いてTDSCを同定する。
6. 通過および凍結細胞(通路4細胞は、さらなるステップのために使用されます)。

2. マウスTDcの培養と拡大

注:無菌バイオセーフティフードですべてのステップを実行してください。

1. 温めた細胞(マウスTDC、100万個の細胞、通過4、37°C)を取る。
2. 完全な最小必須培地(アルファ-MEM)の余分な4-5 mLをゆっくりと追加します。
3. ピペットで15 mL遠心管に混合物を移します。
4. ピペットで合計8 mLまでの培地で上に上げます。
   1. 37°Cのオーブンインキュベーター中のプリウォーム培地。
5. チューブを遠心分離機とバランスに入れ。
6. 遠心分離機およびペレット細胞を347 x gで5分間用くる。
7. 遠心分離機の後に取り出し、下部のペレットを確認してください。
8. 凍結培地をデカントし、完全な培地の1〜2mLで細胞を穏やかに再懸濁する(泡が多すぎるのは避ける)。
9. 再懸濁した細胞をピペットでT-75フラスコに移す。
10. ピペットを使用してフラスコに完全なアルファ-MEM培地を追加し、最終的な濃度が13,000セル/cm²の総体積10 mLに達します。
11. フラスコをインキュベーターに入れ、培養物を_5%CO2で37°Cに入れる。
12. 3日ごとにメディアを変更します。
13. 培地を100%合流まで培養するまで、顕微鏡下で細胞を観察し、監視する(約40,000細胞^/cm2)。

細胞シート形成のための刺激培養培地の調製

注:無菌バイオセーフティフードですべてのステップを実行してください。

1. 完全なアルファ-MEM培地の15 mLを15 mLの無菌チューブに注ぎます。
2. 6 μL のアスコルビン酸 (11 mg/mL) を培地 15 mL に加え、最終濃度は 4.4 μg/mL となります。
   注:さらに、刺激培養培地に25ng/mL結合組織成長因子を加えることは、全体の成長および分化プロセスを加速することができる。
3. 上下に反転してやさしく混ぜます。

4. 刺激媒体で培養した細胞シート形成

注:無菌バイオセーフティフードですべてのステップを実行してください。

1. 正常な完全なα-MEM培地を慎重に捨て、フラスコの底部に取り付けられた細胞に触れないようにしてください。
2. 刺激媒体の10 mLをゆっくりと加え、完全にコンフルなコンフルエント細胞に任意の妨害を引き起こさないようにします。
3. 細胞を刺激培地で9日間培養し(3日毎に培地を変える)、5%CO2で37°Cで細胞シートを₂十分に生成する。
   注:細胞外マトリックスは、アスコルビン酸によって刺激された後、フラスコの底部から観察すると厚く、存在し、細胞シートが十分に生成されることを意味します。

5. 3次元腱幹細胞構築物の調製

注:無菌バイオセーフティフードですべてのステップを実行してください。

1. インキュベーターからフラスコを取り出します。
2. 刺激媒体を完全に捨てます。
3. フラスコを旋回してリン酸緩衝塩(PBS)で単層細胞シートを洗浄する。
4. PBS を完全に破棄します。
5. ピペットを使用して、フラスコの隅に0.25%トリプシンの1 mLを加えます。
6. フラスコの角をタップして、単層セルシートの角がフラスコの底部から外れるまで、単層セルシートを取り付け解除します。
7. すぐに完全なアルファ-MEM培地の9 mLを加えて、トリプシンを止めます。
8. フラスコを旋回し、単層細胞シートを完全に剥がします。
9. 取り付け解除されたセルシートの合計をペトリ皿に媒体で注ぎます。
10. 滅菌用のツイーザーを使用してセルシートの片隅を拾い上げ、時計回りに15回回転させます。
11. 細胞シートの別の端をピックアップし、抗時計回りの方向に10回回転させて腱様インビトロコンストラクトをしっかりと生成します(図1A)。

6. ユニークな設計されたバイオリアクターにおける単軸伸縮機械刺激複合体の組み立て

注:無菌バイオセーフティフードですべてのステップを実行してください。

1. 接続器でフックを接続し、2つのフック間の所望の距離(2cm)に調整します。
2. 組み立てられたフックの3D TDSCコンストラクトを各フックに3回軽く巻きます(図1B)。
3. 両端のネジを締めて、細胞コンストラクトをバイオリアクターのチャンバーに固定します。
   注:ねじやフックを含むチャンバー全体は無菌(134°Cで1.5時間オートクレーブ、紫外線(UV)は使用前に24時間露出します)。チャンバの金属ホルダーの場合、UVライトは使用前に48時間露出します。
4. チャンバーを完全なアルファ-MEM培地で満たします。
5. アクチュエータをケーブルで培養チャンバーに接続します。
6. 無菌はさみでフックコネクターをカットします。
7. 電源と対応するチャネルコントローラの電源を入れ、機械的刺激を開始します。
8. 蓋をチャンバーに置きます。
9. インジケータライトを確認し、バイオリアクターが正常に機能できることを確認してください。
10. インキュベーターにバイオリアクターを入れ、3D細胞構築物を機械的ストレッチに6日間(6%延伸、0.25Hz、8時間、続いて16時間休む)を施します。

7. 機械的刺激体のインビトロ腱様組織の評価

1. ドライバーでねじを緩め、慎重にアセンブリを取り外します。
2. 腱状組織を4%パラホルムアルデヒドに入れて15分間固定します。
3. 固定腱様組織を生検フォームパッド付きの生検カセットに入れる。
4. 試料を脱水し、最終的にH&E組織染色によって評価するプロセス。
5. 定量PCR(qPCR)によるテノジェニックマーカーの発現を評価するために、プロトコル全体を繰り返し、腱様組織からRNAを抽出します。選択した遺伝子のプライマーを表1に示します。
   注: ヒストロジープロトコルと qPCR プロトコルは標準であり、前の研究²¹に従います。

結果

機械的刺激の前に、TDSCは完全な媒体で100%合流まで成長し、組織化されていない超構造形態を示した(図2A)。機械的ローディングの6日間の単軸ストレッチの後、細胞外マトリックス(ECM)および細胞の配向が良好に配向された(図2B)。細胞は、機械的な負荷の後にECMによく入り込み、よく包まれました。細胞形態は伸長するように提示され、伸張しないものに比べて通常?...

ディスカッション

腱は、メカノイ感受性線維性結合組織である。以前の研究によると、過剰な機械的負荷は腱幹細胞の骨形成分化につながる可能性があり、一方、不十分な負荷は腱分化^中にコラーゲン線維構造の乱れにつながる。

一般的な見解は、理想的なバイオリアクターの鍵は、生体内の細胞が受けるインビトロ細胞微小環境をシミュレートする能力であるという?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Ascorbic acid	Sigma-aldrich	PHR1008-2G
Fetal bovine serum (FBS)	Gibcoä by Life Technologies	1908361
Histology processor	Leica	TP 1020
Minimal Essential Medium (Alpha-MEM)	Gibcoä by Life Technologies	2003802
Mouse Tendon Derived Stem Cell			Isolated from Achilles tendons of 6- to 8-wk-old C57BL/6 mice. Then digested with type I collagenase (3 mg/ml; MilliporeSigma, Burlington, MA, USA) for 3 h and passed through a 70 mmcell strainer to yield single-cell suspensions.
Paraformaldehyde	Sigma-aldrich	441244
Streptomycin and penicillin mixture	Gibcoä by Life Technologies	15140122
Three-dimensional Uniaxial Mechanical Stimulation Bioreactor System	Centre of Orthopaedic Translational Research, Medical School, University of Western Australia		Available from the corresponding author upon request. Or make it according to our design* *Wang T, Lin Z, Day RE, et al. Programmable mechanical stimulation influences tendon homeostasis in a bioreactor system. Biotechnol Bioeng. 2013;110(5):1495–1507. doi:10.1002/bit.24809
Trypsin	Gibcoä by Life Technologies	1858331