ショウジョウバエメラノガスターにおけるプログラム可能な自動ナノリットル注射器による腫瘍他家移植

要約

このプロトコルは、新生物形成の様々な側面を研究するための成体宿主の腹部への ショウジョウバエ 腫瘍の初期および継続的な世代間他家移植のための詳細なガイダンスを提供する。オートインジェクター装置を使用すると、研究者は従来の手動の方法によって達成されたものと比較して、効率と腫瘍収量を改善することができます。

要約

このプロトコルは、自動ナノリットル注射装置を用いたショウ ジョウバエメラノガスター における腫瘍の他家移植を記載している。 オートインジェクター装置を使用することにより、訓練を受けたオペレータは、手動インジェクターを使用して得られたものと比較して、より効率的で一貫した移植結果を達成することができる。ここでは、 ショウジョウバエ の系統の交差から、原発腫瘍の誘導と解剖、原発腫瘍の新しい成人宿主への移植、および拡張研究のための腫瘍の世代移植の継続まで、時系列的にトピックをカバーします。実証として、ここではNotch細胞内ドメイン(NICD)過剰発現誘導唾液腺虚環腫瘍を世代移植に用いた。これらの腫瘍は、まず幼虫唾液腺虚環内の遷移帯微小環境で確実に誘導され、次いでインビボで同種移植および培養され、継続的な腫瘍成長、進化、および転移を研究することができる。この他家移植法は、潜在的な薬物スクリーニングプログラム、ならびに腫瘍 - 宿主相互作用の研究に有用であり得る。

概要

このプロトコルは、自動ナノリットル注入装置(例えば、Nanoject)を用いて、 ショウジョウバエ 幼虫唾液腺(SG)想像上の環腫瘍を成体宿主の腹部に同種移植するための段階的なガイダンスを提供する。このプロトコルはまた、腫瘍を新世代の成体宿主に再同種移植するための指示も提供し、腫瘍の進化や腫瘍と宿主の相互作用などの腫瘍特性の継続的な縦断的研究の機会を提供する。このプロトコールは、薬物スクリーニング実験にも適用することができる。

この方法は、 ショウジョウバエ に腫瘍他家移植を行う有効性を改善するために開発されたもので、吸引力と注射力に一貫性がないことが多い手動注射器¹を使用して、腫瘍同種移植の最適でない結果をもたらす。オートインジェクター装置は、より良い制御を提供し、同種移植後のハエ死亡率の低下をもたらし得る。訓練を受けたオペレータは、手動注射器を使用した場合の約80%と比較して、オートインジェクターで90%以上の宿主生存率を達成することができた¹。全体的な腫瘍獲得率は、同種移植後8〜12日目に60%〜80%である。平均噴射時間も、手動インジェクタを使用した1フライあたり30〜40秒から、オートインジェクターを使用した1フライあたり20〜25秒に改善されました。

このプロトコルは、 ショウジョウバエ 腫瘍同種移植において自己注射器装置を使用する最初のいくつかのプロトコルの1つである。最近の研究では、腫瘍性神経幹細胞の他家移植にも自己注射器が使用^{されました2}。以前は、 ショウジョウバエ で自己注射器装置を使用して、細菌病原性³、寄生虫感染および宿主防御⁴を研究し、ならびに異なる化合物⁵の生理活性をスクリーニングした。当社のプロトコルは、腫瘍注射用に自己注射装置を適応させ、 ショウジョウバエ の研究者に、かなりの時間を節約しながら、より高品質でより一貫した結果を提供することを目指しています。このプロトコルは、腫瘍の他家移植に使用することができるだけでなく、同様の口径⁶の野生型および変異組織の同種移植にも合わせることができる。

このプロトコールで使用された ショウジョウバエ NICD腫瘍は、Yang^ら7 によってSG虚環移行帯、すなわち高レベルの内因性ヤヌスキナーゼ/シグナルトランスデューサーおよび転写活性化因子(JAK-STAT)、およびc-Jun N末端キナーゼ(JNK)活性を示す「腫瘍ホットスポット」に最初に導入された。さらに、遷移帯は高レベルのマトリックスメタロプロテイナーゼ-1(MMP1)⁷を有し、この領域を特に腫瘍形成に資する。NICD過剰発現のみによるノッチ経路活性化は、腫瘍形成を一貫して開始するのに十分である。これらの腫瘍は、その後、腫瘍細胞分裂、浸潤、および腫瘍-宿主相互作用を含む幅広いトピックの調査を可能にするために、同種移植することができる。

プロトコル

1. SG虚環腫瘍の作製

1. 成虫のハエを UAS-NICD (オス:10-15匹のハエ)と Act-Gal4、UAS-GFP/CyO;tub-Gal80^ts (処女メス:10-15匹のハエ)の遺伝子型と交配し、18°Cで1日間繁殖させる。 選択された成虫のハエは、高い繁殖力を確保するために5〜9日齢でなければなりません。
2. 成虫のハエがバイアルに含まれるハエの餌に18°Cで24時間卵を産むのを許し、成虫のハエを取り除きます。
   注:フライフードは、 ショウジョウバエ ストック^{センター8}の標準的なコーンミールフードレシピを使用して調製されます。各バイアルには約10mLのフライフードが含まれている必要があります。
3. 卵を18°Cで6日間孵化させます。 この期間中、幼虫は孵化します。
4. 幼虫を含むバイアルを29°Cのインキュベーターに移し、さらに7日間インキュベートする。
   注:このインキュベーションステップは、特定の実験計画に応じてオプションです。

2. 他家移植のための成体野生型 ショウジョウバエ の調製

1. 野生型または適切な変異成虫のハエを100%_CO2で麻酔し、性別に基づいてハエを分類する。オスとメスの両方のハエを腫瘍宿主として使用することができます。
2. 長さ5cmのフライテープを顕微鏡スライドに固定し、粘着性のある面を上にして、両端に1本ずつ、2つの小さなテープで固定します。
3. 翼をテープに接着してハエを固定する。ハエを操縦しながら鉗子を使用してください。
   1. 同種移植片アクセプターとして使用される60〜80匹の成体ハエについて、上記のステップを繰り返す。
      注:後でより時間効率の良い注入プロセスのために、体軸を互いに平行に揃えて、ハエをきちんとした列に整理するのが最善です。 図 1 は、この方法でテーピングされた宿主ハエの列を示しています。

3. オートインジェクター装置の組み立て

1. オートインジェクタ装置と電源コードの両方をコントローラボックスに接続します。
   1. 注入量を 59.8 nL に設定します。これは、他家移植中に適切な量の吸引力および注射力を維持するのに役立つ。
2. コントローラーボックスとオートインジェクターを光学顕微鏡の反対側に置きます。
   注:右利きのオペレータの場合、コントロールボックスは顕微鏡の左側に置き、インジェクタは右側に配置する必要があります。左利きのオペレータの場合は逆も同様です。
3. 3.5インチのガラスキャピラリーを、閉じた端を鉗子で切り取って準備します。
   1. ガラスキャピラリーの一端を4段階のマイクロピペットプーラーを使用して処理し、機器の次の仕様を使用して狭い閉じた端に加熱します:熱= 650、力= 200、および距離= 8。毛細血管をプーラー装置にきれいに置き、上記の設定を入力した後にプログラムを実行します。
   2. 鉗子を使用して毛細血管を約60°の角度でクリップし、大人のフライ腹部に簡単に入ることができるようにより鋭い端を作ります¹。よく切り取られたキャピラリーの例については、 図2 を参照してください。
4. インジェクタのキャップを軽く緩めます。 Empty ボタンを押したままにして、全長の70%〜80%が表示されるまでインジェクタニードルを進めます。毛細血管の進行を加速するには、[ 塗りつぶし ] ボタンを 1 回押しながら 、[空] ボタンを同時に押し続けます。
5. シリンジを使用して、ガラスキャピラリーを鉱物油で満たします。次に、ガラスキャピラリーをインジェクタの針に慎重に挿入し、前者がインジェクタのゴム栓にしっかりと取り付けられるまでします。次に、インジェクタキャップをしっかりとねじ込みます。
   1. ガラスキャピラリーカバーの外面にある鉱物油の残留物を拭き取り、他家移植中に培地を汚染しないようにします。

4. SG虚環腫瘍の解剖

1. 幼虫の1つを選択し、100μLのシュナイダー培地で満たされた解剖プレートに移して、SG想像環腫瘍解剖の準備をする。
   注:腫瘍を保有する標本のみが幼虫として残る。これは、腫瘍の成長が幼虫の発生と進行を遅らせるため^である9。標本の3分の2は腫瘍を抱かず、したがって蛹/成虫に進行するであろう。
   1. 解剖および他家移植の目的で、倍率10倍~20倍の実体顕微鏡を使用してください。
2. 1対の鉗子を使用して幼虫体の中央部を保持し、別の一対の鉗子を使用して幼虫の頭をつまみ、縦方向に伸張力を加える。
3. 幼虫のY字型SGを見つけ、それを幼虫組織の残りの部分から単離する¹⁰。
4. 隣接する組織を除去することによってSG想像上の環腫瘍を解剖し、単離する。この解剖プロセスの描写については、 図 3 を参照してください。
5. 研究ニーズに基づいて、追加の10〜20 SGの想像上の環腫瘍について、ステップ4.1〜4.4を繰り返します。

原発性SG虚環腫瘍の同種移植片

1. 毛細血管を原発性SG想像上の環腫瘍を含むシュナイダー培地に沈める。 塗りつぶし ボタンを押したままにすると、ガラスキャピラリーをシュナイダーのミディアムで上部の0.5 cmセグメントまで満たします。このトップセグメントは、鉱物油で満たされたままにする必要があります。
   メモ: [ 空] ボタンを 1 回押しながら [ 塗りつぶし] ボタンを同時に押して、このプロセスを高速化します。
2. 原発腫瘍を見つけ、腫瘍が毛細血管に吸引されるまで フィル ボタンを押します。
   1. 腫瘍が毛細血管の先端または毛細血管の先端から数ミリメートル離れていることを確認してください。これは、腫瘍が漂流し、毛細血管内に含まれる溶液中で失われるのを防ぐのに役立ちます。毛細血管内に座っている腫瘍の適切な位置のデモンストレーションについては、 図4A を参照してください。
3. 顕微鏡スライド上のテープに固定された成虫のハエを見つけます。鉗子を使用して、下腹部を静かに押さえます。次に、毛細血管で腹部の下側キューティクルを突き刺す。腫瘍が新しい宿主の腹部に入るまで Empty ボタンを押します。この手法のデモンストレーションについては、 図 4B を参照してください。
4. 鉗子を使用して、ホストの翼をそっとつまんでテープから取り外します。新鮮な食べ物を入れた新しいバイアルに宿主を置きます。注射後最初の24時間、バイアルを横向きに置くのが最善です。各バイアルには最大20匹のハエしか含まれていなければなりません。
   注:一部の宿主ハエは、注射後に体に翼やその他の傷が欠けており、バイアルを直立させるとフライフードに固執することがあります。
5. 手順5.2~5.4を繰り返して、残りの原発腫瘍を新しい成人宿主に移植します。
6. 毛細血管をシャープの容器に処分し、オートインジェクターの外側から鉱物油の残留物を清掃してから、装置を箱に戻します。
7. 宿主のバイアルを室温で1日間保存し、次いでバイアルを29°Cのインキュベーションチャンバーに移す。フライホストを2〜3日ごとに新しいバイアルに移動します。
8. フライホストを毎日監視し、生存率を計算します。1週間後、腫瘍は蛍光アダプターを備えた実体顕微鏡下で見えるようにし、そのサイズと進行を継続的に監視することができます。

6. 移植腫瘍の再同種移植

1. 同種移植後10〜14日後に、蛍光顕微鏡を用いて宿主腹部で増殖した腫瘍をスクリーニングする。
2. 宿主を_CO2 で麻酔し、100μLのシュナイダー培地で満たされた解剖プレートに入れます。増殖した同種移植腫瘍を2対の鉗子を用いて宿主から解剖する。
   1. 1対の鉗子を使用して腹部を押さえ、もう1対を使用して腹部キューティクルを切開し、同種移植腫瘍¹を露出させる。
   2. 蛍光マーカーをガイダンスとして使用して、付着した宿主組織から腫瘍をできるだけ慎重に単離する。
3. ステップ6.2を繰り返して、2〜3個の追加の同種移植腫瘍を準備する。
4. 採取した腫瘍を含む解剖プレートを光学顕微鏡のステージに移す。
5. 滅菌針を使用し、腫瘍を毛細血管のサイズに適した小さな断片に解剖します。
6. ステップ4.1~4.5を繰り返して新世代の成体宿主を調製し、ステップ5.1~5.7を繰り返して腫瘍の他家移植を完了します。
   注:成功率は、原発性腫瘍のものと比較して、非原発性腫瘍の方が一般的に高い。
7. 研究で使用されたハエの後続の世代ごとにステップ6.1-6.6を繰り返します。
   注:実験のニーズに適した ショウジョウバエ の宿主系統を選択してください。

結果

ここでは、ナノリットル注射オートインジェクター装置を用いてSG想像環腫瘍の世代的他家移植を行い、その後、共焦点レーザー走査顕微鏡による腫瘍ライブイメージングを実施し、腫瘍増殖、腫瘍細胞移動、腫瘍-宿主相互作用のトピックをより深く掘り下げることができました。ハエを装着するときは、顕微鏡スライドに接着し、ポリジメチルシロキサン(PDMS)ブロック¹¹?...

ディスカッション

腫瘍他家移植は、ショウジョウバエの腫瘍の成長と進行の間に生じる特定の問題に研究者が対処するのに役立ちます。そのような課題の1つは、原発性腫瘍培養中の担癌幼虫または成虫の早期死亡の回避^である12。この文脈において、腫瘍同種移植を継続することは、腫瘍が無期限に成長することを可能にし、腫瘍の成長、転移、および進化の縦断的研究を容易にする?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Confocal Laser Scanning Microscope	Zeiss	LSM 980	Also known as "Zeiss LSM 980"
Cornmeal Fly Food	Bloomington Drosophila Stock Center	N/A	Also known as "BDSC Standard Cornmeal Food"
Dissection Needle (30Gx1/2)	BD PrecisionGlide	305106
Dissection Plate	Fisher Scientific	12-565B
Fly Tape	Fisherbrand	159015A
Fluoresence Adapter for Stero Microscope	Electron Microscopy Sciences	SFA-UV	Also known as "NightSea Fluorescence Adapter"
Fluoresence Microscope	Zeiss	495015-0001-000	Also known as "Zeiss Stereo Discovery.V8"
Forceps	Fine Science Tools	11251-10	Also known as "Dumont #5 Forceps"
Glass Capillary (3.5'')	Drummond	3-000-203-G/X
Glue	Elmer	E305	Also known as "Elmer Washabale Clear Glue"
Light Microscope	Zeiss	435063-9010-100	Also known as "Zeiss Stemi 305"
Micropipette Puller	World Precision Instruments	PUL-1000	Also known as "Four Step Micropipette Puller"
Nanoject Apparatus	Drummond	3-000-204	Also known as "Nanoject II Auto-Nanoliter Injector"
Schneider's Medium	ThermoFisher	21720001
Syringe (27G x1/2)	BD PrecisionGlide	305109
Vial	Fisherbrand	AS507