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要約

現在のプロトコルはVeroのアフリカの緑の猿の腎臓の細胞のジカウイルス(ZIKV)の伝播および24-wellおよび96-well(ハイスループット)フォーマットのセルベースの比色immunodetection方法を使用してZIKVの量化を記述する。

要約

ジカウイルス(ZIKV)は、 フラビウイルス属に属する蚊媒介ウイルスです。ZIKV感染は、成人の先天性脳異常およびギラン・バレー症候群の可能性と関連している。病気のメカニズムを理解するためのZIKVの研究は、ワクチンや治療法の開発を促進するために重要です。ウイルスを定量する方法は、ウイルス学の分野で重要かつ基本的です。焦点形成アッセイ(FFA)は、ペルオキシダーゼ免疫染色法を用いてウイルス抗原を抗体で検出し、細胞の感染病巣を同定するウイルス定量アッセイです。今回の研究では、24ウェルと96ウェル(ハイスループット)の両方のフォーマットを用いたウイルスの増殖および定量プロトコルについて説明しています。他の同様の研究と比較して、このプロトコルは、他のウイルスに対するこのアッセイの使用を拡大するためのガイドとして役立つ可能性のある焦点サイズの最適化をさらに説明しています。まず、ZIKVの増殖をVero細胞で3日間行います。ZIKVを含む培養上清を回収し、FFAを用いて定量します。簡単に説明すると、ウイルス培養物をVero細胞に接種し、2〜3日間インキュベートします。その後、細胞固定、透過処理、ブロッキング、抗体結合、ペルオキシダーゼ基質とのインキュベーションなど、最適化された染色プロセスを経て、病巣形成が決定されます。染色されたウイルス病巣は、実体顕微鏡(24ウェルフォーマットでの手動カウント)またはソフトウェアアナライザー(96ウェルフォーマットでの自動カウント)を使用して視覚化されます。FFAは、再現性のある比較的速い結果(3〜4日)を提供し、プラークを形成しないウイルスを含むさまざまなウイルスに使用するのに適しています。その後、このプロトコルはZIKV感染の研究に有用であり、他の臨床的に重要なウイルスの検出に使用できます。

概要

ジカウイルス(ZIKV)感染症は、蚊が媒介する新しいウイルス性疾患です。ZIKVの最初の孤立は1947年にウガンダで行われた1,2;1947年から2007年までは、臨床症状は無症候性であり、自己制限的な熱性疾患を特徴とするため、無視されたままでした。2007年、ジカ熱の流行はヤップ諸島で始まり3,4、続いて2013年から2014年にかけて太平洋地域(フランス領ポリネシア、イースター島、クック諸島、ニューカレドニア)でより大きな流行が続き5,6,7,8、重度の神経学的合併症であるギランバレー症候群(GBS)が初めて成人で報告されました9.2015年から2016年にかけて、早くも2013年にブラジルでZIKVのアジア遺伝子型が出現した後、最初の広範囲にわたるZIKVの流行が南北アメリカ大陸を席巻しました10。このアウトブレイクでは、新生児で44万〜130万件の小頭症やその他の神経障害が報告されました11。現在、ZIKV感染症の特定の治療法はありません。したがって、特に妊娠中の感染を予防できるZIKVワクチンの緊急の医学的必要性があります。

ウイルス定量は、サンプル中に存在するウイルスの数を決定するプロセスです。研究において重要な役割を担っており、学術研究所には医学や生命科学など多くの分野が関わっています。このプロセスは、ウイルスワクチン、組換えタンパク質、ウイルス抗原、抗ウイルス剤の製造などの商業分野でも重要です。ウイルスの定量には、多くの方法やアッセイを用いることができる12。方法やアッセイの選択は、通常、ウイルスの特性、望ましい精度のレベル、および実験や研究の性質によって異なります。一般に、ウイルスを定量する方法は、ウイルス核酸(DNAまたはRNA)の存在を検出する分子アッセイと、in vitroでウイルス感染性を測定するアッセイの2つのカテゴリーに分けることができます12。定量的ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR、DNA用)または定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(qRT-PCR、RNA用)13およびデジタルドロップレットPCR14は、所与のサンプル中のウイルス核酸を定量するために使用される一般的な分子技術の例です15。しかし、これらの高感度の分子技術では、生存可能なウイルスと非生存可能なウイルスを区別することはできません15。そのため、細胞に対するウイルス感染力などの生物学的特徴に関する情報を必要とする研究は、上記の分子技術では完結できません。生存可能なウイルスの存在を測定および決定できるアッセイが必要です。ウイルスの感染性を測定するアッセイには、プラーク形成アッセイ(PFA)、50%組織培養感染線量(TCID50)、蛍光フォーカスアッセイ、透過型電子顕微鏡(TEM)などがあります12。

1952年にレナート・ダルベッコによって開発されたPFAは、ZIKV16を含むウイルス滴定に最も一般的に使用される方法の1つです。感染性溶解性ビリオンのウイルス濃度を直接測定するために使用されます。この方法は、溶解性ウイルスがウイルス感染後に接種された細胞単層に細胞変性効果(CPE、細胞死またはプラーク、感染していない細胞に囲まれた感染領域)を産生する能力に基づいています。しかし、このアッセイには、その有用性に影響を与えるいくつかの欠点があります。アッセイは時間がかかり(ウイルスにもよりますが、約7〜10日かかります)、CPEに依存し、エラーが発生しやすいです。本研究では、24ウェルプレートおよび96ウェルプレートフォーマットでZIKVを検出および定量するための免疫比色技術である焦点形成アッセイ(FFA)を報告します。

プロトコル

1. ウイルスの伝播

  1. 細胞調製
    1. 10%ウシ胎児血清(FBS)と2 mM L-グルタミンを添加した12 mLのダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)を含む75 cm2 細胞培養フラスコでVero細胞を増殖させます( 材料表を参照)。細胞培養インキュベーターで37°C、5%CO2で細胞をインキュベートします。
    2. 顕微鏡で細胞を監視します。細胞のコンフルエント度が70%〜90%に達すると、使用準備が整います(図1A)。
      注:Veroセルは、約24時間17ごとに2倍になります。1:10の希釈は、75 cm2 フラスコで3%〜90%の濃度に達するのに90〜2日かかります。セルを毎日または一日おきに監視します。
  2. 細胞単層の感染
    1. 10 mLの血清ピペットを使用して、細胞培養フラスコから増殖培地を取り出します。5 mLの血清ピペットを使用して、3 mLのダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(dPBS)でフラスコを2回すすぎます。
      注意: フラスコ/プレートから廃棄された感染性液体廃棄物を消毒するために、10%次亜塩素酸ナトリウムを含むビーカーを準備する必要があります。
    2. 2 mLの無血清DMEM(FBSを含まない2 mM L-グルタミンを添加したDMEM)と20 μLのZIKV接種体を細胞培養フラスコに加えます。フラスコを室温で1時間穏やかに揺らしながらインキュベートし、ウイルスを吸着させます。
      注:最初のZIKVストックの滴定は、ZIKV接種物添加量を決定するのに役立ちます(ステップ2)。
      注意:ZIKVはバイオセーフティレベル2(BSL-2)の病原体に分類されています。ZIKVを含む材料を使用するすべての手順は、認定されたバイオセーフティキャビネットで実施し、適切な個人用保護具を使用してすべての実験室標準操作手順(SOP)に従う必要があります。
  3. オーバーレイメディアの追加
    1. 1時間のインキュベーション後、5 mLの血清ピペットを使用して希釈したウイルス接種物を取り出し、廃棄します。細胞培養フラスコを3 mLのdPBS 2xですすぎます。
    2. 12 mLの維持培地(2% FBS、2 mM L-グルタミン、および100 U/mLペニシリン-ストレプトマイシンを添加したDMEM)を細胞培養フラスコに添加し、感染細胞を維持します。
    3. 感染したVero細胞を37°Cの細胞培養インキュベーターで5%CO2で3日間インキュベートします。
      注:顕微鏡下で感染したVero細胞のCPEを毎日監視します。
  4. ZIKVを含む細胞培養上清の回収
    1. 感染後3日目には、細胞の丸めと剥離(CPE)が観察されます(図1B-D)。10 mLの血清ピペットを使用して、ZIKVを含む細胞培養上清を50 mLの遠心チューブに回収します。
    2. 0.22 μmのポリエーテルスルホンシリンジフィルター( 材料表参照)を使用して、細胞培養上清をろ過します。ろ過した細胞培養上清500 μLを2.0 mLスクリューキャップチューブに分注し、さらに使用するまで-80°Cで保存します。
      注:収穫されたZIKVは、長期保存のために-80°Cで保存できます。
      注意: 注射針を使用する場合は、針が皮膚に穴を開ける可能性があるため、特別な注意を払う必要があります。実験室のSOPを確立する必要があります。

2. ウイルスの定量化

  1. 細胞調製
    1. 指定されたプレート(24ウェルプレート:0.5 mL/ウェル、7.5 x 104 細胞/ウェル、96ウェルプレート:0.1 mL/ウェル、1.5 x 104 細胞/ウェル)にVero細胞を播種し、プレートを37°Cの細胞培養インキュベーターで5%CO2で一晩インキュベートします。
      注:検査する時点は5種類あります(24ウェルプレート:感染後48時間、60時間、72時間、84時間、96時間、96ウェルプレート:感染後24時間、36時間、48時間、60時間、72時間)。そのため、各時点につき1枚ずつプレートを用意します。
    2. 24時間のインキュベーション後、細胞が70%〜90%のコンフルエント度に達すると(図1E)、プレートは感染の準備が整います。希釈したウイルスストックの調製(ステップ2.2)は、細胞単層の感染前に行います。
  2. ウイルス希釈
    1. 24ウェルプレートおよび96ウェルプレートの場合、各プレートに6本の滅菌済み1.5 mL微量遠心チューブを調製し、ネガティブコントロールを含む10倍希釈(10-1 から10-5まで)を実施します。24ウェルプレートの実験セットアップでは、6本の微量遠心チューブすべてに450 μLの無血清DMEMを添加します。96ウェルプレートの実験セットアップでは、135 μLの無血清DMEMを6本のチューブに添加します。
      注意: 10倍の段階希釈を行う前に、内容物の希釈を示すために、各チューブに明確にラベルを付けてください。
    2. 段階希釈を行うには、24 ウェルプレート実験セットアップで、ステップ 1 で回収した ZIKV ストック 50 μL を、450 μL の無血清 DMEM が入った 10-1 チューブに加えます。96ウェルプレート実験のセットアップでは、135 μLの無血清DMEMを含む10-1 チューブに15 μLのZIKVストックを加えます。
    3. 各チューブをボルテックスして、ウイルスと培地を混合します。これが最初の10倍希釈です。
      注:正確な段階希釈を確実に行うには、各希釈チューブ内でウイルスと培地を適切に混合する必要があります。
    4. 24ウェルプレート実験のセットアップでは、新しいピペットチップを使用して10-1 チューブを再懸濁し、希釈したZIKV50 μLを2回目の10倍希釈液として10-2 チューブに移します。96ウェルプレート実験のセットアップでは、新しいピペットチップを使用して10-1 チューブを再懸濁し、希釈したZIKV15 μLを2回目の10倍希釈液として10-2 チューブに移します。
    5. 手順2.2.4を5本目のチューブまで4回繰り返します(ネガティブコントロールを除く)。
      注:クロスコンタミネーションを避けるために、各ピペッティングステップの後に新しいピペットチップを使用してください。
  3. 細胞単層の感染
    1. 各ウェル(24ウェルプレート:0.5 mL/ウェル、96ウェルプレート:0.1 mL/ウェル)から馴化培地を取り出し、廃棄します。
    2. 各ウェルをdPBS 2x(24ウェルプレート:300 μL/ウェル、96ウェルプレート:60 μL/ウェル)で洗浄します。
    3. 希釈率が最も高いものから低いものへと、段階希釈した各ウイルス接種物をウェルに加えます(24ウェルプレート:200 μL/ウェル、96ウェルプレート:40 μL/ウェル)。
      注:各希釈液の感染は、重複したウェルで行われます。ネガティブコントロールとして2つの未感染ウェルを維持します。混乱を避けるために、プレートとウェルに明確にラベルを付けます。クロスコンタミネーションを防ぐために、各ピペッティングステップの後にピペットチップを交換してください。
    4. プレートを室温で1時間穏やかに揺らしながらインキュベートし、ウイルスの吸着を促します。
  4. オーバーレイ細胞培養培地の添加
    1. 1時間のインキュベーション後、ウイルス懸濁液を最低濃度から最高濃度まで除去して廃棄します。
    2. 感染した細胞をdPBS 2x(24ウェルプレート:300 μL/ウェル、96ウェルプレート:60 μL/ウェル)で洗浄します。
    3. DMEM(2% FBS、2 mM L-グルタミン、100 U/mL ペニシリン-ストレプトマイシンを添加)と 1.5% 低粘度カルボキシメチルセルロース(CMC、 材料表を参照)(24 ウェルプレート:1 mL/ウェル、96 ウェルプレート:0.2 mL/ウェル)をウェルに重ね合わせます。
    4. プレートを細胞培養インキュベーターで37°C、5%CO2でインキュベートします。
      注意: このインキュベーション期間中は、プレートを乱さないでください。
    5. 細胞培養インキュベーターからプレートを取り出し、さまざまな時点で染色します(24ウェルプレート:感染後48時間、60時間、72時間、84時間、96時間、96ウェルプレート:感染後24時間、36時間、48時間、60時間、72時間)。

3. 染色

  1. 細胞固定
    1. 特定のインキュベーション時間(24ウェルプレート:感染後48時間、60時間、72時間、84時間、96時間、96ウェルプレート:感染後24時間、36時間、48時間、60時間、72時間)後、オーバーレイ培地を除去して廃棄し、細胞を1x PBSで3回洗浄します。96ウェルプレートの場合は、オーバーレイ培地を取り外して廃棄し、マルチチャンネルピペットで60 μL/ウェルの1x PBSで細胞を3回洗浄します。
    2. 4%パラホルムアルデヒドを添加して細胞を固定します(24ウェルプレート:300 μL/ウェル、96ウェルプレート:60 μL/ウェル)。プレートを室温で20分間インキュベートします。
      注意:パラホルムアルデヒドは固体重合ホルムアルデヒドです。可燃性の固体白色結晶性粉末で、水と混合したり加熱したりするとホルムアルデヒドガスを放出します。パラホルムアルデヒドの使用を含むすべての手順は、ホルムアルデヒド含有化学物質に固有の実験室SOPに従って、認定された化学ヒュームフードまたは承認された排気されたエンクロージャーで実施する必要があります。
    3. 20分後、パラホルムアルデヒドを廃棄し、細胞を1x PBSで3回洗浄します。透過処理、ブロッキング、および抗体インキュベーションは、ステップ3.2-3.5に従って行います。
      注意: 4%パラホルムアルデヒドを廃棄する場合は、大学または研究所の廃棄物処理手順に従ってください。
  2. 細胞透過処理
    1. 1%オクチルフェノキシポリ(エチレンオキシ)エタノール( 材料表を参照)を添加して細胞を透過処理します(24ウェルプレート:200 μL/ウェル、96ウェルプレート:40 μL/ウェル)。プレートを室温で15分間インキュベートします。
    2. 15分後、オクチルフェノキシポリ(エチレンオキシ)エタノールを廃棄し、細胞を1x PBSで3回洗浄します。
  3. ブロッキング
    1. 3%スキムミルクを添加して、サンプル中の非特異的結合を減らします(24ウェルプレート:500 μL/ウェル、96ウェルプレート:100 μL/ウェル)。プレートを室温で2時間インキュベートします。
    2. 2時間後、3%スキムミルクを捨て、1x PBSで細胞を3回洗浄します。
      注: これは停止ポイントです。3%スキムミルクを添加した後、プレートは一次抗体挿入の2日前まで4°Cで保存できます。
  4. 一次抗体のインキュベーション
    1. 抗フラビウイルスモノクローナル抗体4G2(クローンD1-4G2-4-15;一次抗体、 材料表参照)を1%スキムミルク(1:1,000比)で希釈して添加します(24ウェルプレート:200 μL/ウェル、96ウェルプレート:40 μL/ウェル)。プレートを37°Cで1時間インキュベートします。
    2. 1時間後、モノクローナル抗体を含む溶液を除去し、細胞を1x PBSで3回洗浄します。
  5. 二次抗体インキュベーション
    1. 西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)と結合したヤギ抗マウスIgG二次抗体( 材料表を参照)を1%スキムミルク(1:1,000の比率)で希釈して添加します(24ウェルプレート:200 μL/ウェル、96ウェルプレート:40 μL/ウェル)。プレートを37°Cで1時間インキュベートします。
    2. 1時間後、二次抗体を含む溶液を除去し、細胞を1x PBSで3回洗浄します。
  6. 基質インキュベーション
    1. 3,3'ジアミノベンジジン(DAB)ペルオキシダーゼ基質( 材料表を参照)を添加し、プレートを暗所で30分間インキュベートします(24ウェルプレート:200 μL/ウェル、96ウェルプレート:40 μL/ウェル)。30分後、ウェルを水で洗浄して反応を停止します。
    2. プレートを一晩風乾し、プレートが完全に乾いたら病巣計数に進みます。

4. ウイルス力価の決定

  1. 手動焦点計数プロセス(24ウェルフォーマット)
    1. 病巣は実体顕微鏡で可視化できます。50〜200焦点を生成する希釈液を選択します。
    2. 選択した希釈液の繰り返しごとに焦点をカウントします。選択した希釈液ごとに平均焦点数を計算します。
    3. 以下の式を使用して、各サンプルの mL あたりの病巣形成単位 (FFU/mL) を計算します: FFU/mL = 平均病巣数/(希釈 x 添加した希釈ウイルスの量)。
  2. 自動焦点計数プロセス(96ウェルフォーマット)
    1. 市販のソフトウェア分析装置で96ウェルプレートをスキャンします。
      1. ソフトウェア( 材料表を参照)をダブルクリックして開きます。
      2. [ Switch Suites ] をクリックし、スイートが該当するスイートに切り替わっていることを確認します(補足図 1A)。[ OK] をクリックします。
      3. [ スキャン]>[フルプレートスキャン ]をクリックしてスキャンを開始します(補足図1B)。
      4. [Dashboard]をクリックして、キャプチャーフォーマットが96ウェルフォーマットであることを確認します(補足図2A)。
      5. センタリングモードを「自動プリアライメントユーザー検証済み」として選択します(補足図2B)。
      6. Eject(イジェクト)をクリックしてプレートをロードします。
        注意: プレートの蓋を開け、列Aを上にして上に置きます(補足図3A)。
      7. プレート名を入力し、[ OK]をクリックします。 Load をクリックしてプレートをロードします。
      8. [ 開始 ]をクリックしてスキャンを開始します。その後、「上、下、左、右」ボタンを使用してA1、A12、およびH1の位置を調整し、[ 確認 ]をクリックします(補足図3B)。
        注意: ソフトウェアは各ウェルのスキャンを開始します。
      9. スキャンが完了すると、概要画像がポップアップ表示されます。[ 閉じる]をクリックします。
      10. [ スイッチボードに戻る]をクリックしてスキャンを終了します。
    2. ソフトウェアを使用して 96 ウェルプレートをカウントします。
      1. 「 カウント」>「スマートカウント」をクリックします。
      2. ソフトウェアには、「ステップ1/5:カウントするプレートを選択」と表示されます。 Load plate(s)をクリックします。フォルダ全体にチェックマークを付け、[ 選択 ]をクリックしてスキャンしたプレートをインポートします(補足図4A)。
      3. ソフトウェアでは、「ステップ2/5:カウントパラメータの定義」と表示されます。 パラメータの調整をクリックすると、パラメータが表示されます(拡散プロセス、小/通常/大/最大/最大+1、スポット分離、カウント領域、バックグラウンドバランス、繊維除去、ゲーティング)。
        注意: 1つのウェルから始めて、すべてのウェルに最適な設定を見つけるために何度もチェックしてください。
      4. 完了したら、[ 次へ ]をクリックします(補足図4B)。
      5. ソフトウェアには、「ステップ3/5:ウェルの選択/選択解除」と表示されます。カウントする井戸の選択が完了したら、[ 次へ ]をクリックして次に進みます。
        注:カウント対象として選択されたウェルは、各ウェルの右上隅に「C」で表示されます(補足図5A)。
      6. ソフトウェアでは、「ステップ4/5:出力設定」と表示されます。[ 出力設定の表示/変更 ]をクリックして、設定(画像形式など)が適切かどうかを確認します。[ Save and Exit > Next ]をクリックします(補足図5B)。
      7. ソフトウェアでは、「ステップ5/5:自動カウントの開始」と表示されます。[ Start AutoCount ] をクリックします (補足図 6A)。
      8. 完了したら、[ オートカウントの終了]をクリックします。
  3. 商用ソフトウェアアナライザーで品質管理(QC)を実行します。
    1. 交換盤ページで、[品質管理]>[ プレートの追加]をクリックします。フォルダ全体にチェックマークを付けてカウントプレートをインポートし、選択をクリックして QCを開始> (補足図6B)。
    2. 各ウェルをダブルクリックして、スポットを監査します。[ カウント ]をクリックして、スポットを削除します。ソフトウェアがカウントを開始します。
      注意: 「Spots: Remove(斑点:削除)」にチェックが入っていることを確認します。計数の完了は、例えば「30」という計数された病巣の数によって示すことができる(補足図7A)。
    3. カウントが終了したら(カウントされた病巣の数、たとえば「30」で示されます)、「はい」をクリックしてスポットを削除します(補足図7B)。削除する場所を左にトリプルクリックします。右クリックして終了し、[ はい]をクリックします。
    4. QCが完了したら、 Finish Plateをクリックし、Project Overviewに移動します 。
  4. ソフトウェアアナライザを使用してイメージングを実行します。
    1. スキャン、カウント、QCプレートの画像を確認します(図2)。

結果

ZIKVは、図3に概略図で示したように、FFAを使用して定量化できます。24ウェルプレートの場合、感染したVero細胞は、感染後48時間、60時間、72時間、84時間、および96時間で固定されました。その結果、感染後96時間(4日)後も細胞は無傷のままであった(細胞剥離は認められなかった)ことが示された(図4および補足図8A-E)。ウイルス病巣の出...

ディスカッション

ウイルス力価を決定するためのいくつかのアッセイがあります。PFAにはFFAと同様のウイルス定量プロトコルがあり、ウイルス接種物を希釈して個々のプラークまたは病巣を区別できるようにします。染色後、各プラークまたは病巣は、接種体19内の単一の感染性粒子を示す。PFAはクリスタルバイオレットで染色され、細胞溶解または細胞死によって引き起こされるプラーク?...

開示事項

著者らは、競合する利害関係はないと宣言しています。

謝辞

本研究は、マレーシア高等教育省の長期研究助成制度(LRGS MRUN Phase 1: LRGS MRUN/F1/01/2018)および高等教育機関センターオブエクセレンス(HICoE)プログラム(MO002-2019)の資金提供を受けました。本研究の図3は、BioRender.com(2022)の「DAB Immunohistochemistry」から引用した、病巣形成アッセイのための染色のワークフローを示しています。https://app.biorender.com/biorender-templates/t-5f3edb2eb20ace00af8faed9-dab-immunohistochemistry から取得。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.22 µm Polyethersulfone syringe filterSartoriusS6534-FMOSK
1.5 mL microcentrifuge tubeNest615601
10 mL sterile serological pipetteLabserv14955156
1x Dulbecco’s phosphate-buffered saline (dPBS)Gibco14190-136
2.0 mL Screw cap tube AxygenSCT-200-SS-C-S
24-well plateCorning3526
25 mL Sterile serological pipettesLabserv14955157
3,3'Diaminobenzidine (DAB) peroxidase substrateThermo Scientific34065
37 °C incubator with 5% CO2SanyoMCO-18AIC
5 mL sterile serological pipetteLabserv14955155
50 mL centrifuge tubeFalconLAB352070
75 cm2 tissue culture flask Corning430725U
96-well plateFalcon353072
Anti-flavivirus monoclonal antibody, 4G2 (clone D1-4G2-4-15)MilliporeSigmaMAB10216
Autoclaved 20x Phosphate buffered saline (PBS)N/AN/A22.8 g of 8 mM Na2HPO4, 4.0 g of 1.5 mM KH2PO4, 160 g of 0.14 M NaCl, 4.0 g of 2.7 mM KCl, 1 L of MilliQ H2O
Biological safety cabinet, Class IIHoltenHB2448
CTL S6 Universal ELISpot/FluoroSpot AnalyzerImmunoSpot, Cellular Technology Limited (CTL)CTL-S6UNV12Commercial software analyzer
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)Gibco12800-017
Fetal bovine serum (FBS)BovogenSFBS
Goat anti-mouse IgG secondary antibody conjugated with horseradish peroxidase (HRP)MilliporeSigma12-349
HemacytometerLaboroptik LTDNeubauer improved
IGEPAL CA-630 detergentSigma-AldrichI8896Octylphenoxy poly(ethyleneoxy)ethanolIGEPAL 
Inverted microscopeZEISSTELAVAL 31
Laboratory rockerFINEPCRCR300
L-GlutamineGibco25030-081
Low viscosity carboxymethyl cellulose (CMC)Sigma-AldrichC5678
Multichannel micropipette (10 - 100 µL)Eppendorf3125000036
Multichannel micropipette (30 - 300 µL)Eppendorf3125000052
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Penicillin-streptomycinGibco15140-122
Single channel pipettes (10 - 100 µL)Eppendorf3123000047
Single channel pipettes (100 - 1000 µL)Eppendorf3123000063
Single channel pipettes (20 - 200 µL)Eppendorf3123000055
Skim milkSunlac Low FatN/APrepare 3% Skim milk in 1x PBS for blocking stage in staining
Sodium HypochloriteCloroxN/ATo disinfect any discarded infectious liquid waste from flasks/plates
StereomicroscopeNikonSMZ1000
Syringe disposable, Luer Lock, 10 mL with 21 G NeedleTerumoSS10L21G
Vero African green monkey kidney cells -ECACC 88020401Received from collaborator. However, Vero cells obtained from other suppliers should be able to be used with some optimization.

参考文献

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