内皮細胞応答を研究するための基質の剛性と流れを統合するin vitroモデル

要約

私たちは、関連する血管流条件下で血管内皮細胞(EC)を培養するための調整可能なゼラチンベースの基質を合成し、特徴付けました。この生体模倣表面は、生理学的条件と病理学的条件の両方を再現し、ECの挙動に対する機械的な力の研究を可能にし、血管の健康と疾患のメカニズムの理解を深めます。

要約

私たちは、血管の健康やアテローム性動脈硬化症などの疾患の発症を理解するために重要な、組織の硬直性とせん断応力が内皮細胞(EC)機能に及ぼす複合的な影響を調査することを目的とした革新的な in vitro モデルを提示します。従来、研究では、せん断応力と基板剛性がECに与える影響を独立して調査してきました。しかし、この統合システムは、これらの要素を組み合わせて、血管系の機械的環境をより正確にシミュレーションすることができます。目的は、ヒトECを使用して、さまざまな組織剛性レベルと流動条件にわたるECメカノトランスダクションを調べることです。ゼラチンメタクリレート(GelMA)ハイドロゲルを調整可能な剛性で合成し、ECを播種してコンフルエンシーを達成するためのプロトコルについて詳しく説明します。さらに、層流と適切なせん断応力レベルによって特徴付けられる生理学的流れ条件を生成するために、計算流体力学シミュレーションによって補完された、費用対効果の高いフローチャンバーの設計と組み立てについて説明します。このプロトコールには、共焦点顕微鏡用の蛍光標識も組み込まれており、組織のコンプライアンスと流動条件の両方に対するECの反応の評価を可能にします。このモデルは、培養したECに複数の統合された機械的刺激を与えることにより、高血圧や老化などの要因がEC機能やEC介在性血管疾患にどのように影響するかを包括的に調べることができます。これらの研究から得られた知見は、血管疾患の根底にあるメカニズムの解明や効果的な治療戦略の開発に役立ちます。

概要

血管の内面を覆う内皮は、血管の健康を維持する上で極めて重要な役割を果たしています。内皮細胞(EC)は、血管の緊張制御、選択的透過性、止血、メカノトランス^{ダクションなど}、さまざまな心血管機能の調節の中心です^1,2。研究は、EC機能障害をアテローム性動脈硬化症の発症における主要な役割にしっかりと関連付けています。特に、ECは、血流およびその下にある血管組織と相互作用する界面で多様な機械的力に遭遇する^3,4。いくつかの研究は、ECの機能障害を血管環境内の機械的要因の異常な変化と関連付けています。たとえば、血流による流体せん断応力や組織の硬直^性5,6,7。

しかし、これまでの研究では、組織の剛性とせん断応力がEC機能に及ぼす複合的な影響を理解するために、あまり注目されていませんでした。研究成果をアテローム性動脈硬化症やその他の心血管疾患の効果的な治療法に変換する能力を高めるためには、この分野で使用される細胞モデルを改善することが不可欠です。ヒトECを使用し、それらをせん断応力またはさまざまな^{剛性レベルの基}質にさらすことにより、細胞モデルのヒト化において大きな進歩が見られました^8,9,10。しかし、動的な流動環境と調整可能な剛性特性を持つEC基板を統合したセルラーモデルの採用と改良は、徐々に進んでいます。課題は、流路内のフローパラメータの変化を防ぎながら、無傷で密着性のあるEC単分子膜の培養を容易にするために、膨潤しないEC基質を考案することにあります。これらの障害を克服できるin vitroモデルは、高血圧、老化、および血流状態がECメカノトランスダクション、血管の健康、そして最終的にはアテローム性動脈硬化症の発症にどのように共同で影響するかについてのより効果的な研究を促進する可能性があります。基板の剛性を制御しながら細胞にせん断応力を加えるために、回転プレートやマイクロ流体デバイスなど、さまざまな方法が開発されています。回転プレート法では、2枚のプレートの間にセルを配置し、プレートの回転運動によってせん断応力が加えられます。この方法はそれほど複雑ではなく、迅速なモデルを提供します。ただし、空間的なせん断応力の変動に悩まされ、中心でせん断応力がゼロ、周辺¹¹ で最大せん断応力が大きくなります。

一方、マイクロ流体デバイスは、基板の剛性と流動条件を制御する能力を備えた新世代のツールを表しています。これらのシステムは、層流条件下での微小血管系の模倣に適しています。しかし、このような装置を用いてアテローム性動脈硬化症を研究することは、アテローム性動脈硬化症が流れが乱れた大きな血管で起こるため、非現実的である¹¹。この論文は、さまざまな流動条件下でEC基板のさまざまな剛性レベルの影響を調べることができる費用対効果の高いシステムを提示することにより、EC研究の重要な研究領域に貢献することを目的としています。このシステムは、異なる剛性を持つ基質を統合して、病理学的および生理学的血管をエミュレートします。このプロトコルは、生理学的および病理学的剛性をそれぞれ表す、5kPaおよび10kPaの膨潤および剛性レベルがないゼラチンベースのヒドロゲルを作成する方法を概説しています。さらに、これらの基板を統合できるパラレルプレートフローチャンバーの構造も詳細に説明されています。数値流体力学(CFD)を使用して、せん断応力と流動条件を評価しました。EC培養用のハイドロゲルの調製と6時間フロー実験の実施について説明し、続いて実験後の免疫染色について説明します。

プロトコル

1. GelMAの合成

1. 無水炭酸ナトリウムの0.2M溶液と重炭酸ナトリウムの0.2M溶液を調製します。
2. 46 mLの重炭酸ナトリウム溶液を15 mLの炭酸ナトリウム溶液と混合し、139 mLの脱イオン(DI)水を加えます。.必要に応じて、0.1 M NaOHおよびHClを使用してpHを9.5に調整します。
3. ブタの皮から採取したA型300ブルームゼラチン10gを、100mLの炭酸塩-重炭酸緩衝液に10%w/vの濃度で加えます。
4. 55°Cのウォーターバスを使用してゼラチンを溶解し、マグネチックスターラーを使用して700rpmで溶液を攪拌します。完全に溶解したら、0.1 M NaOHを使用してゼラチン溶液のpHを9.5に調整します。
5. メタクリル化を開始するには、938 μLの無水メタクリル酸(MAH)を溶液に滴下します。ゼラチン溶液中のMAHの初期分布を改善するには、中心からの深さや半径方向の距離など、さまざまな場所にMAHを注入します。
6. 反応容器をアルミホイルで包み、光が当たらないようにします。温度を55°Cに維持し、溶液を500rpmで1時間攪拌して反応を完了させます(図1A)¹²。
   注:反応は7.4未満のpHで停止します。
7. 1.8 Lのアセトンを含む2 Lビーカー1つと、0.3 Lのアセトンを含む0.6 Lビーカー1つを準備します。
8. 得られたGelMA溶液を200RPMで攪拌しながら2Lビーカーに滴下して沈殿を誘発する¹³。沈殿物の収集を最大化するには、転写を容易にするために、核形成部位としてステンレス鋼のロッドまたはスパチュラを配置します。
9. 大きいビーカーから小さいビーカーに製品を移し、10分間放置してから乾燥ステップに進みます。沈殿したGelMAは白い繊維として現れるはずです。
10. 吸収紙に集め、室温(RT)の真空オーブンで乾燥させ、さらに使用するまで-20°Cで保管します。
    注:陽子核磁気共鳴(^1HNMR)による製品の化学的特性に関する詳細は、以前に発表された研究⁸に記載されています。

2.ガラスの塩類化

注:スライドガラスにハイドロゲルを付着させると、表面が平らで均一になり、取り扱いが容易になり、流れに起因するせん断応力下での安定性が確保されます。3-(トリメトキシシリル)プロピルメタクリレートでガラスを官能基化することは、表面特性を強化し、重合プロセス中にヒドロゲルの共有結合を可能にするために必要です。

1. ガラスカッターを使用して、プレーンな顕微鏡スライド(厚さ1 mm)を最終的なヒドロゲル寸法に類似した断片に正確に切断します。カットスライドを石鹸で洗って、ガラス表面の処理を妨げる可能性のある表面の汚染物質や破片を取り除きます。
   注:必要に応じて、スライドガラスをエタノールで5分間超音波処理し、風乾します。
2. 無水エタノール中の3-(トリメトキシシリル)プロピルメタクリレートの0.5%溶液を調製します。脱イオン水に10%氷酢酸溶液を調製します。溶液を混合して、最終濃度の3%氷酢酸を達成します。
   注:氷酢酸溶液は大量に調製して保存することができます。
3. スライドガラスをガラス容器に整理して、ガラス表面が遮られないようにします。得られた溶液をスライドガラスに注ぎ、反応が完了するまで80rpmのロッカーで約5分間保持します。閉じ込められた気泡を取り除き、スライドガラスの両側が変更されていることを確認します。
4. 反応が完了したら、溶液を吸引し、スライドガラスをエタノール2xで洗浄します。スライドを風乾し、RTで暗闇に保管します。
   注:スライドガラスは、これらの条件下で1か月間変更を保持します。

3.ヒドロゲル製剤

1. 酸化還元誘起フリーラジカル重合法を用いてハイドロゲルを作製します。
   1. 2ピースのポリテトラフルオロエチレン(PTFE)金型を適切な深さで組み立て、開口部の窓を10 mm² にして、最終的な基板を成形します。これは、設計プロセス中の重合後のハイドロゲルの高さの25%の収縮を考慮します。漏れを防ぐために、金型が平らで、底板と天板にしっかりと固定されていることを確認してください。
      注:設計された金型寸法は、意図したヒドロゲルサイズよりも意図的に10%大きくなっています。この設計は、金型分離時の側面の損傷を防ぎ、不純物や気泡を側面に押し出すことでハイドロゲルの表面均一性を高め、高度に架橋されたハイドロゲルが平衡化後に水をはじき、収縮を引き起こす離水効果により、平衡化後に予想される25%の収縮を補償します。収縮量は、プロトコル⁸で指定されています。
   2. ハイドロゲルの表面が均一で高さが一定になるように、改質されたスライドガラスを金型のトッププレートから吊り下げ、ポリマー溶液を注入するための狭い開口部を確保します。カバーガラスを使用して、改造したスライドガラスを吊り下げます(図1B)。
   3. カバーガラスを作成するには、型より20%大きいプレーンな顕微鏡ガラスをカットします。短辺に2つのスペーサーを取り付けます。スペーサーの厚さを次のように計算します。
      スペーサーの厚さ = 1.33 x 最終ゲルの厚さ + 1 (改質ガラスの厚さ) - 金型の深さ
   4. セル適合シーリンググリースの薄層を、スペーサーが取り付けられているのと同じ面のカバーガラスの長辺に塗布します。
   5. 修正したスライドガラスを2つのスペーサーの間のカバーガラスに取り付けます。
   6. スペーサーが金型上に収まり、変更されたガラスが金型に伸びるように、カバーガラスを金型に置きます。このセットアップでは、改質ガラスと金型の底部との間に、最終的なハイドロゲルの高さの1.33のクリアランスが確保されます。
   7. 5 kPaおよび10 kPaのハイドロゲルについて、GelMAを脱イオン水にそれぞれ4%および10%w/vで溶解し、45°Cの水浴に入れます。
      注:GelMAは感熱性ポリマーであり、溶液の温度を45°Cに維持すると、重合前の固化を防ぎ、フラットなハイドロゲルの製造に不可欠な溶液の粘度が低下します。
   8. TEMED(5 kPAハイドロゲルの場合は24 mM、10 kPaハイドロゲルの場合は6.25 mM)をポリマー溶液に添加し、十分に混合します。
      注:TEMEDだけでは重合は開始されないため、先に進む前に型、ピペット、および溶液が準備されていることを確認してください。
   9. APS(5 kPAハイドロゲルの場合は24 mM、10 kPaハイドロゲルの場合は24.5 mM)をGelMA溶液に加え、十分に混合します。
      注:APSを添加すると重合が開始され、ハイドロゲルが迅速に形成される可能性があるため、ハイドロゲルの欠陥を防ぐための迅速な処置が必要です。剛性測定の詳細については、以前に公開された作品⁸を参照してください。
   10. 得られた溶液を懸濁したスライドガラスとRTの金型との間の開口部に慎重にピペットで固定し、架橋させます。毛細管現象は、ポリマー溶液を金型内に駆動します。ゲルに気泡を加えないようにし、ピペットチップに少量の溶液が残っている場合はピペッティングを停止してください。
       注:重合中、GelMAのメタクリレート基は、改質されたスライドガラス上のメタクリレート残基と反応し、ガラスへのヒドロゲルの化学的付着をもたらします。
   11. 15分後、反応が完了します。針などの鋭利なものを使用して基板を金型から取り外し、基板をカバーガラスからスライドさせて分離します。
   12. プラスチックフィルムで密封した100 mmのシャーレで、ヒドロゲルを1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に移し、37°Cで平衡化して、残りの反応物と副生成物を除去します。
   13. ハイドロゲルは最終寸法よりわずかに大きいため、フローチャンバーウィンドウに必要な寸法に一致するように、側面の余分なゲルをトリミングします。
   14. フローチャンバーを使用して、ハイドロゲルの寸法を確認します。ハイドロゲルがフローチャンバーに適切に収まり、ハイドロゲルと金型の間に隙間やフローパターンに影響を与える可能性のある欠陥がないことを確認します。フローチャンバー内のフローパターンに影響を与える可能性のある形状の凹凸があり、細胞の挙動が悪くなる場合は、ハイドロゲルを静的な状態用に保存してください。
   15. 4つのヒドロゲルを1x PBSを含むシャーレに移して滅菌します。
2. 以下に説明するように、70%エタノールを使用してヒドロゲルを滅菌します。
   1. 25%、50%、70%のアルコール溶液を調製して、徐々にハイドロゲルを脱水します。
      注:段階的な脱水が行われない場合、硬いハイドロゲルは収縮して破損する可能性がありますが、柔らかいハイドロゲルの表面にしわが形成される可能性があります。
   2. ヒドロゲルを含むペトリ皿から1x PBS溶液を吸引します。各シャーレに25%エタノール溶液を加えて、5 kPaおよび10 kPaのハイドロゲルを15分間浸します。
   3. 25%アルコール溶液を吸引します。各シャーレに50%アルコール溶液を加えて、5 kPaおよび10 kPaのハイドロゲルを15分間浸します。
   4. 50%アルコール溶液を吸引します。各シャーレに70%アルコール溶液を加え、5 kPaおよび10 kPaのハイドロゲルを5分間沈めます。ペトリ皿を100rpmのシェーカーに置きます。
   5. 5 kPa のハイドロゲルを 40 分間、10 kPa のハイドロゲルを 20 分間沈めたままにします。
      注:5 kPaハイドロゲルは、10 kPaハイドロゲルと比較して汚染されやすいことが観察されました。
   6. サンプルをバイオセーフティキャビネット内の6ウェルプレートに移し、滅菌PBSを使用してハイドロゲルを2x-3x洗浄します。

4.コーティングハイドロゲル

1. 3 mgのゼラチンを50 mLの滅菌PBS(マグネシウムおよびカルシウム塩を含む1倍)に溶解して、60 μg/mLのゼラチン溶液を調製します。溶液を37°Cのウォーターバスで30分間、またはすべてのゼラチンが完全に溶解するまで加熱します。
2. 0.2μmシリンジフィルターを使用してコーティング溶液を滅菌ろ過します。各ウェルプレートから1x PBS溶液を吸引し、各ウェルにゼラチン溶液を添加して、各ヒドロゲルが完全にカバーされるようにします。汚染のリスクを最小限に抑えるために、コーティング溶液に40ユニット/ mLのペニシリンと10μg/ mLのストレプトマイシンを追加します。.
3. 各ウェルプレートを37°C、5%_CO2 インキュベーターで45分間インキュベートします。ハイドロゲルを1x PBS溶液で洗浄します。
4. PBSを吸引し、細胞培養培地を添加します。
5. 2日以内に、ヒドロゲルを細胞培養培地に保持し、細胞播種まで37°C、5%_CO2 インキュベーターでインキュベートします。
   注:フィブロネクチンの優れた細胞接着特性にもかかわらず、ECがアテローム性動脈硬化症で内因性フィブロネクチンを沈着させ、炎症誘発性反応を引き起こす可能性があるため、その使用について懸念があります。化学的に刺激された細胞応答を避けるため、フィブロネクチンの使用は控えています。さらに、Orrらは、フィブロネクチンコーティングがコラーゲンIコーティングと比較して、アテローム発生遺伝子をアップレギュレーションすることを示しました。具体的には、細胞間接着分子1(ICAM-1)、血管細胞接着分子1(VCAM-1)、および核因子-κB(NF-κB)¹⁴の発現レベルの増加が観察されました。

5. 基板上に細胞を播種する

1. 利用可能な剥離プロトコルに従って細胞懸濁液を調製し、血球計算盤⁸を使用して細胞をカウントします。
2. ハイドロゲルから培地を完全に吸引します。各サンプルに50,000細胞/cm2を添加します。細胞のオーバーフローを防ぐために、各サンプルに適切な量の細胞懸濁液を添加します。
   注:硬い基材は疎水性が高くなります。したがって、ステップ間の時間を最小限に抑えて、濡れ性と基板表面への細胞懸濁液の分散を改善します。
3. 細胞播種したハイドロゲルを37°C、5%_CO2 インキュベーターで2時間インキュベートします。細胞がゲルに付着したら、細胞培養培地をサンプルに加えます。

6. フローチャンバーの製作

注:フローチャンバーを設計するためのアプローチは費用対効果が高く、製造と利用に必要な専門知識は最小限です。

1. チャンバー製造にポリ(メタクリル酸メチル)を使用して、流動品質、せん断応力下でのヒドロゲルの完全性、および流動実験中の潜在的なリアルタイムバイオマーカー研究を視覚的に評価します。チャンバーの設計は、コンピューター支援設計(CAD)ソフトウェアを使用して作成されました。フローチャンバーは特許を申請されており、このデバイスに関する詳細は現在のプロトコルでは開示できません。
2. フローチャンバー内の流動条件の計算評価
   1. 設計されたフローチャンバー(.SLDPRT ファイル) を使用して、最終的なチャンバー設定を作成します。
   2. ヒドロゲル表面に接する流れの中心線に沿って線を引き、せん断応力を解析します。入口と出口の開口部を閉じて、閉じた制御ボリュームを定義します。
   3. CAD ソフトウェアの[アドイン]タブから Flow Simulation を開きます。[Flow Simulation] タブで、ウィザード機能を開いてプロパティを入力します。単位系を指定し、圧力と応力の単位をdyne/cm²に調整します。
   4. 物理的特徴の 流体の流れ と 重力 を確認します。Z成分の重力を-9.8に設定します。X コンポーネントと Y コンポーネントは 0 である必要があります。
   5. [ジオメトリ処理]の解析タイプとして[ 内部 ]を選択します。既定の流体として [水 ]を選択します。
      注意: 媒体が水のように振る舞うと仮定します。
   6. 流れのタイプとして [層流]と[乱流] を選択します。壁を断熱壁として定義し、壁の条件でサーフェスの粗さを入力します。
   7. 初期条件で温度を37.5°C(310.65K)に設定します。Flow Simulation プロジェクトで計算領域を定義し、制御ボリューム全体をカバーするようにします。
   8. 流体とインターフェースするすべての壁を選択して、流体サブドメインを定義します。[境界条件]で、入口リッドの内側サーフェスを[入口体積流量]として指定し、流量(Q)と一様流量を指定します。次に、出口蓋シールの内面を静圧として割り当てます。
   9. 使用可能な計算リソースに基づいてグローバル メッシュ サイズを決定します。 [実行 ]をクリックしてシミュレーションを開始します。
   10. 完了したら、せん断応力プロットや流れシミュレーションなど、目的の結果を確認します。
   11. さまざまな流量で手順 6.2.8 から 6.2.10 を繰り返して、さまざまな速度で適用されるせん断応力を計算します。回帰分析を使用して、流量とせん断応力の関係を確立します。
   12. ハイドロゲルの寸法変動に対するシステムの許容範囲を評価して、シミュレーションのリアリズムを高めます。

7. 均一な層流を実行する

1. 5 kPaおよび10 kPaのハイドロゲルで細胞を培養した後、37 °C、5% CO₂ インキュベーターで細胞単層が合流することを確認します。各ハイドロゲル上に細胞の単層を達成する必要があります。
2. パラレルプレートフローチャンバーシステムのオートクレーブ可能なコンポーネント(ステンレス製ネジ、スパチュラ、鉗子、ガスケット、メディアリザーバー)を30分間の重力オートクレーブサイクルで滅菌します。他の部品(アクリル部品とリザーバーシーラー/ダンパー)をUV光で滅菌します。
3. フローチャンバー装置をバイオセーフティキャビネットに組み立てます。ハイドロゲルサンプルをデバイス内に固定し、均一性を確保します。フローに使用できるサンプルの数が不十分な場合は、ハイドロゲルと同じサイズのフィラーを使用してください。
4. チャンバーの内面とハイドロゲル表面を事前に濡らして、気泡の形成を最小限に抑え、組み立て中の細胞の乾燥を防ぎます。
5. インレットリザーバーに十分なメディアを追加し、組み立て時にメディアの20%〜30%がアウトレットリザーバーに流れるようにします。インレットリザーバーをダンパー/シーラーを使用して気密にシールします。
   注:入口リザーバーに圧力が蓄積すると流れが駆動され、空気漏れがあると流量が変化します。外側のチューブに気泡が発生する場合は、シーラーの欠陥がないか確認してください。
6. 出口ダンパーを大気圧に設定して、圧力差を確立します。デバイスとリザーバーを37°C、5%_CO2 インキュベーターに入れます。デバイスのチューブをインキュベーターの外側に配置された蠕動ポンプに接続します(図1C)。
7. ポンプの電源を入れて、3.6ダイン/^cm2の塗布を開始します。流速を2 mL/min刻みで徐々に増やし(例:10分後に65 mL/minから85 mL/minに到達)、約8 dyne/cm²を適用するまで。
8. 流速をさらに 2.5 mL/分ずつ増やし、せん断応力が 12 dyne/cm² に達します。
   注:急激な流量の増加により細胞が剥離し、単分子膜が損傷する可能性があるため、細胞が動的条件に適応するまで時間をかけてください。
9. 6時間後、流れを止め、インキュベーターからデバイスを取り外し、フローチャンバーを分解します。その後、ハイドロゲルサンプルを6ウェルプレートに移します。
10. 氷冷したPBSでサンプルを洗浄し、免疫染色のために細胞を固定するか、タンパク質を分離するために細胞を溶解します。

8. 高倍率共焦点顕微鏡法のための免疫染色セットアップ

注:研究効率を高めるために、少量のハイドロゲルを免疫染色する方法が開発され、1つのサンプルで複数の生物学的ターゲットを検査できるようになりました。

1. 生検パンチまたは直径3mmまたは4mmの好ましい切削工具を準備します。
2. ピペットチップボックスを染色チャンバーとして使用します。チャンバーを加湿して、ピペットチップボックスの底に濡れたペーパータオルを置き、長時間のインキュベーション中に染色液の蒸発を制御します。
3. 個々のサンプルに対して小さな溶液プールを作成することにより、抗体の消費量を削減します。チップボックスラックを透明フィルムで覆い、指先でラックの穴にフィルムをそっと押し付けてくぼみを作ります。ディンプルに70μLのPBSを充填します。
4. 個々のヒドロゲルを空のペトリ皿に移し、生検パンチまたはお好みの切断ツールを使用して切断します。顕微鏡を使用して、代表的なサンプル領域をカットします。共焦点顕微鏡の問題を避けるために、フルゲルシリンダーをカットします。
5. カットしたヒドロゲルサンプルを、ステップ8.3で作成したディンプルに入れます。標準プロトコール¹⁵に従って染色を行います。最終染色洗浄後、ハイドロゲルの厚さに一致するシリコンゴムシートを入手してください。
   注意: できれば、シールを改善するために、片面が粘着性のあるシートを使用してください。この研究では、アクチンファイバーをファロイジンに結合した蛍光二次抗体を1:20の希釈率で染色しました。
6. ゴムシートを15mm×15mmの角にカットします。生検パンチまたはお好みの切削工具を使用して6mmの穴を開けます。
7. ゴムを顕微鏡カバースリップ(No.1.5)に取り付けてサンプル容器を作成します。サンプルがまだ存在する間に、10 μLの湿った封入剤をディンプルに加え、暗所で10〜15分間インキュベートします。
   注:この研究では、封入剤に0.9 μg/mLの4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI)が含まれ、染色プロトコルを短縮しました。
8. サンプルを染色チャンバーから取り出し、ステップ8.7で作成した容器に入れます。サンプルの上に1〜2μLの封入剤を塗布します。
   注意:封入剤の量は、高倍率での画質に影響します。マウントメディアが過剰または不足していると、画像の鮮明さが損なわれる可能性があります。
9. 別のカバースリップを上に置き、サンプルがガラスに接触するように静かに押します。顕微鏡イメージングまで、サンプルを暗所で4°Cで保存します。

結果

図1 は、メタクリル化反応によるGelMA合成のプロセスの概要を示す実験セットアップを示しています。次に、得られた生成物を使用してヒドロゲル基質を作製し、その上にECを播種しました。続いて、細胞をフローチャンバーに導入し、12 dyne/cm² で 6 時間のフロー実験を行いました。

¹H NMR分光法を使用して、メタクリル化反応の成功?...

ディスカッション

血管系は、さまざまな力が細胞の挙動に大きな影響を与えるダイナミックな環境です。これらの力を考慮せずに心血管疾患の生物学的事象を研究することは不正確です。したがって、血管の機械的環境をエミュレートできる細胞モデルが重要です。研究者たちは、これらの力が細胞の行動に及ぼす影響を強調することで、すでに大きな進歩を遂げています¹¹。しかし、人体?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
(trimethoxysilyl)propyl methacrylate, tetramethylethylenediamine (TEMED)	Invitrogen	15524-010	Hydrogel Fabrication
3-(Trimethoxysilyl)Propyl Methacrylate	Sigma-Aldrich	440159	Glass Salinization
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)-containing mounting media	Vector Laboratories	H-1200	Immunostaining
Acetone	Thermo Fisher Scientifics	A18-4	GelMA Synthesis
Alexa Fluor 555 Phalloidin	Cell Signaling Technology	8953S	Immunostaining
Ammonium Persulfate (APS)	Bio-Rad	1610700	Hydrogel Fabrication
Clear Scratch- and UV-Resistant Cast Acrylic Sheet (45/64'')	McMaster-CARR	8560K165	Flow Chamber Fabrication
Confocal Microscope	Carl Zeiss Meditex AG	Zeiss LSM 800	Immunostaining
Covidien Monoject Rigid Pack 60 mL Syringes without Needles	Fisher	22-031-375	Flow Experiment
EC growth kit	American Type Culture Collection (ATCC)	PCS-100-041	Cell Culture
Ethanol 200 Proof	Decon Labs	2701	Glass Salinization
Gelatin Type A (300 bloom) from porcine skin	Sigma-Aldrich	G1890	GelMA Synthesis
Glacial Acetic Acid	Thermo Fisher Scientifics	9526-33	Glass Salinization
High-Purity High-Temperature Silicone Rubber Sheet	McMaster-Carr	87315K74	Flow Chamber Fabrication
Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC)	American Type Culture Collection (ATCC)	PSC-100-010	Cell Culture
M3x30mm Machine Screws Hex Socket Round Head Screw 304 Stainless Steel Fasteners Bolts 20pcs	Uxcell	B07Q5RM2TP	Flow Chamber Fabrication
Masterflex L/S Digital Drive with Easy-Load® 3 Pump Head for Precision Tubing; 115/230 VAC	VWR	#MFLX77921-65	Flow Experiment
Masterflex L/S Precision Pump Tubing, Puri-Flex, L/S 25; 25 ft	VWR	#MFLX96419-25	Flow Experiment
Methacrylic Anhydride (MAH)	Sigma-Aldrich	276685	GelMA Synthesis
Paraformaldehyde	Thermo Fisher Scientifics	043368.9M	Cell Culture
Phosphate-Buffered Saline (PBS)	Gibco	14080-055	General
Sodium Bicarbonate	Fisher Chemical	S233-3	GelMA Synthesis
Sodium Carbonate	Fisher Chemical	S263-500	GelMA Synthesis
SOLIDWORKS educational version
SOLIDWORKS Student Edition Desktop, 2023	SolidWorks	N/A	Flow Chamber Design
Vascular Basal Medium	American Type Culture Collection (ATCC)	PCS-100-030	Cell Culture