著者はSBシステムのヘルプについてAAPCクローン＃4および博士ペリーハケット（ミネソタ大学）を生成し、提供する助け博士カール6月（ペンシルバニア大学）に感謝したいと思います。 助成金：がんセンターコアグラント（CA16672）; RO1（CA124782、CA120956、CA141303）、R33（CA116127）、P01（CA148600）; SPORE（CA136411）、アルバート·J·ウォード財団、バローズ·ウェルカム財団; Gillson Longenbaugh財団、がん予防とテキサスの研究所、CLLのグローバル·リサーチ財団国防総省; Noelan L. Biblerの不動産、ハリー·T Mangurian、ジュニア、白血病の免疫療法のための基金、個人化された癌治療の研究所、白血病とリンパ腫協会、リンパ腫研究財団; MDACCの姉妹機関ネットワーク基金、ミラー財団;氏ハーブシモンズ;夫妻ジョー·H·スケール;氏トーマス·スコット、がん研究のための国立財団、小児がん研究財団、生産Assistancウィリアム·ローレンスとブランシュヒューズ子供財団、セルラーセラピー（PACT）のためのe。

<html> 0日または前 1。 PBとUCBから単核細胞の単離（MNC） <ol><li> PBS-EDTAの4つのボリュームと等量のPBを希釈し、UCB。 </li><li> 40分（ブレーキなし） - 50 ml遠心チューブ（s）および30の場合は400×gで遠心分離でフィコール上にゆっくり層希釈血液（25ミリリットル）（12ミリリットル）。 </li><li>新鮮な50mlの遠心管にピペットを用いて単核細胞分画（インターフェイス）を収集し、転送します。 </li><li> PBS-EDTAで50ミリリットルのボリュームを上げ、10分間450×gで遠心分離します。 </li><li>完全培養メディア（CCM）と、10分間、400×gで遠心50mlの上澄み、そっと再懸濁細胞ペレット（s）を吸引除去する。 </li><li>穏やかに再懸濁させ、プールCCMで細胞ペレットを、トリパンブルー排除法（Cellometer、PBMCプログラム）を使用して細胞数を実行します。 </li><li> MNCは、今やエレクトロポレーション（クレオ）に使用するか、または将来の使用のために凍結保存することができます。 </li></ol>0日目エレクトロのためのT細胞のタイトル &quot;&gt; 2。準備<ol><li>凍結保存したMNCを使用している場合は、速やかに37℃の水浴でフルスケールのエレクトロポレーションのための十分な細胞（2×10 8は、遠心分離して2時間のインキュベーションの間にセル損失を考慮して約20％を加算）解凍します。新たに単離された使用している場合はMNCは2.3に進みます。 </li><li>穏やかに再懸濁すると予め温め完全フェノールを含まないRPMI培養培地（PF-RPMI）と10分（ブレーキなし）、吸引液上清を200×gで遠心分離を含んでいた適切なサイズの遠心管（S）にセルを転送します。 </li><li> PF-RPMI中MNCを再懸濁させ、細胞数（Cellometer）を実行し、10 6細胞/ mlの濃度で適切な大きさの細胞培養容器（S）にセルを転送します。 </li><li> 2時間加湿37℃/ 5％CO 2インキュベーター±30分でインキュベートする。 </li><li>滅菌遠心管（S）、5分（ノーブレーキ）の場合は200×gでスピンにMNCを移し、静かに上清およびrを吸引電子サスペンドおよびPF-RPMI中で細胞ペレット（s）を兼ね備えています。 </li><li>細胞数（Cellometer）を実行し、（2×10 8 MNC）は必須の細胞懸濁液の体積を計算する。 </li><li>滅菌した50ml遠心管と10分（ブレーキなし）の場合は200×gでスピンに計算されたボリュームを転送します。 </li><li>残存メディアが管の側面を軽くたたいて残っていないと穏やかに再懸濁するように上清を吸引します。 </li></ol> 3。 0日MNCのエレクトロポレーション（クレオ）（10キュベットを使用したフルスケールのプロセス） <ol><li>加湿37℃/ 5％CO 2インキュベーター中で暖かいPF-RPMI 4mlを含む10ウェルで無菌の12ウェルプレートを前置します。 </li><li>ヒトT細胞キット（、製造元の指示に従って再構成された準備とプレ暖かいロンザヌクレオソリューション<a href="http://www.lonza.com" target="_blank">www.lonza.com</a>バイオセーフティキャビネット（BSC）で周囲温度に）。 </li><li>アドインによるヌクレオソリューション/ DNAのマスターミックスを調製する補足したヌクレオ溶液1gを100μl、トランスポゾン15μgの（CD19RCD28/pSBSOとして指定されたプラスミド超らせんDNA）と反応/キュベット当たりトランスポザーゼの5μg（のpCMV-SB11として指定されたプラスミド超らせんDNA）。 </li><li>優しく遠心管の側面を軽くたたいて細胞ペレットを（ステップ2.8から）分散とヌクレオソリューション/ DNAマスターミックス（最終細胞濃度：2×10 7 cells/100μl）で再懸濁する。 </li><li>慎重に気泡がないように注意しながら、10（10）ロンザクレオキュベットのそれぞれに細胞懸濁液（ステップ3.4）100μlを移す。 </li><li>一度キュベットをタップし、プログラムのU-014（非刺激T細胞の場合）を使用して、エレクトロポ。 </li><li> BSCにキュベットと12ウェルプレート（ステップ3.1）を転送します。 </li><li>セントで準備対応するウェル（12ウェルプレートからあらかじめ温めておいた培地の〜500μlを添加して、Amaxa細かいチップホールピペットを用いて、各キュベットからエレクトロポレーションした細胞を収穫ウェブ3.1）と2時間加湿37℃/ 5％CO 2インキュベーター±30分に板を返す。 </li><li> 2時間インキュベートし、収穫の後、全てのウェルから無菌遠心チューブに細胞を移す。 </li><li> 8分、周囲温度、ブレーキなしで140​​×gで遠心分離により細胞を洗浄し、残存培地は、細胞ペレットをカバーしていないように上清を吸引して廃棄します。 </li><li>優しく遠心管の側面を軽くたたいて細胞ペレットを分散させ、穏やかに、単一細胞懸濁液を達成するために、CCMで再懸濁する。 </li><li>細胞計数を行い、CCMで10 6細胞/ mlになるように細胞濃度を調整します。 </li><li>一晩インキュベーター内で細胞培養フラスコ（s）と場所に細胞懸濁液を移す。 </li><li> EGFP-トランスフェクトされた細胞（5×10 6細胞/キュベット5μgのAmaxa制御EGFPプラスミドスーパーコイルと、pmaxGFP）：プロセスステップ2.1から3.8までは、制御のために繰り返された。 </li></ol>第1回とその後の1日目刺激サイクル 4。 1日目のフローサイトメトリーによるCARの発現解析<ol><li>エレクトロポレーションした細胞を回収し、トリパンブルー排除法（血球計数器）を使用して細胞数を実行します。 </li><li> CD3、CD4、CD8、およびヒトIgGFcγ受容（CAR発現の測定など）が特異的な抗体で染色した細胞（1〜2×10 6）。 </li><li> FACSソウルキャリバー上のセルを取得し、CARの発現を計算するために、FCS Expressソフトウェアを使用してデータを分析します。 <ol><li> CARを計算+計算式によって、培養細胞： （総生存細胞数）×（％カー+細胞）CARのナンバー= +細胞 </li></ol></li></ol> 5。 1日目AAPCの調製（クローン＃4）。 AAPCは、（クローン＃4）を共発現希望のT細胞共刺激分子にK562細胞（アメリカン·タイプ·カルチャー·コレクションより入手親のライン）から派生した<ol><li> 37で凍結100 Gyの照射AAPCのアリコートを解凍°、Cの水浴。 </li><li>細胞は、400×gで遠心分離することにより回洗浄CCMで10分とCellometer（トリパンブルー排除）を用いて計測されています。 </li><li>刺激のために必要な実行可能なAAPC数を計算します。 照射AAPCの（車のナンバー+細胞）×2 =いいえ必要 </li></ol> 6。 CARのAAPC媒介刺激+1 stと後続刺激サイクルの1日目から開始して、T細胞<ol><li> CCMで：エレクトロポレーションした細胞（CARを発現する）と1:2の比率（生AAPC CAR +細胞）で滅菌した容器内のγ線照射AAPC（クローン＃4）を混ぜます。 <ol><li> AAPC比は、フローサイトメトリーエレクトロポレーション後の日に基づいて、CARの発現のために調整されています 。 </li></ol></li><li>細胞懸濁液に、IL-21（30 ng / ml）を追加します。 </li><li> 10 6細胞/ mlの濃度でT-75cm 2フラスコ（s）及び/またはVueの生活文化の袋にアリコートとincubatに戻すまたは。 </li></ol> 3日、5 7。 CARの継続的な文化+ T細胞<ol><li>ハーフメディア変更を行うに、IL-21を補充し、10 6細胞/ mlの濃度でT細胞を維持している。 </li></ol> 7日目 8。まずAAPC媒介刺激サイクルの終わり<ol><li>収穫細胞は、カウントと染色CD3、CD4、CD8、とFcγ（CAR）のために、10.1に進みます。 </li></ol> 9。 CD56 +細胞 （エレクトロポレーション後通常7〜14日）の枯渇<ol><li>常磁性ビーズを用いたCD56枯渇を実行する場合は、CD56 +、CD3 NEGリンパ ≥10％。 </li></ol>刺激サイクル＃2、＃3、＆日数に対応4位→14日15→21＆22日→28 10。臨床的に十分な数値にT細胞を伝播するAAPCの再帰追加<ol><li> stimulatioを繰り返しn個のプロセス（4回）は4.3から8.1の手順で説明したように。 </li><li> ＆その後、各メディアの変更（週三回、月曜日〜水曜日·金曜日のスケジュールで）で7日、14および21日から文化へのIL-2（50U/ml）を追加します。 </li><li>凍結保存（アーカイブ）、必要に応じて過剰なT細胞。 <ol><li> T細胞は、制御された速度の冷凍庫を使用して凍結した。 </li></ol></li></ol> 28日目 11。ハーベストT細胞：最後AAPC媒介刺激サイクルの終わり<ol><li>リリーステストと点滴用のT細胞を凍結保存。 </li></ol>

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特別な利害関係は宣言されません。

そのようなpiggyBac 12,19とSBから18,20-22としてトランスポゾン及びトランスポザーゼシステムは、臨床グレードのCARのウイルス媒介形質+ T細胞に代わるものです遺伝子治療への非ウイルス性のアプローチである。 SBは、ヒトの遺伝子治療1,6,23のためにそのポテンシャルに基づいて遺伝子導入系として選ば ​​れた。我々はSBの転位（CARを導入する）とコンプライアンスにおけるTAA特異的T細胞の製造におけるプラットフォーム技術として機能するγ線照射AAPCの再帰的加算（安定CARを発現する遺伝子改変されたT細胞を取得する）の二重の技術を開発第I / II相試験のためのcGMP（ 図4）。 γ線照射AAPC上の共培養の28日間（4の7日間刺激サイクル）の後、我々は一般的に人間のアプリケーションに適した少なくとも10〜10遺伝的に改変されたT細胞を生成することができます。必要に応じて、追加の刺激サイクルはtを行うことができるO遺伝子改変されたT細胞の大きい番号を生成します。まして車+ T細胞が必要な場合さらに、エレクトロポレーションおよび伝播へのアプローチは、バック少ないキュベットを採用し、それぞれの先頭にフォワードAAPC上の増殖のその後のラウンドのために数値的に展開し、T細胞のちょうど部分集合を運ぶスケーリングすることができます刺激サイクル。の大半は、エレクトロポレーションおよび注入安定CARを表現するために採取したT細胞を伝播します。 CD4 +およびCD8の伸長は、当社の第2世代CARを発現している+ T細胞は、メモリ/ナイーブ表現型を有する細胞が含まれており、リダイレクトされた特異性の3の特徴を示す。まず、遺伝的に改変されたT細胞は、具体的に、第二に、CD19 +標的を溶解するCD19 +刺激細胞に反応してIFN-γを生産し、第三に、CD19に応答して増殖+フィーダー細胞、車に依存した方法13,18のすべてを。 integrのに我々のアプローチSBシステムから非ウイルス性DNAプラスミドの電気伝達によってCARの導入遺伝子を食べたはPBとUCB由来静止一次T細胞で行うことができる。私たちと他の人は遺伝的に効率的に注入24,25のためのT細胞の臨床的に十分な数を伝播するAAPCとして機能するようにK562細胞を変更しました。 AAPCおよび組織培養環境（ 例えば、IL-21の添加）を生成するように変更されましたされている患者及び造血幹細胞移植後の注入のためのCD19特異的T細胞（ 表1）13,18 をドナー由来。我々は、CARを生成することができます+コスト、不快感、およびアフェレーシスによってPBからMNCを取得する不便さを回避し、単に静脈穿刺によって得られたPBからT細胞。 MNCの小さな数字からCAR多数+ T細胞を誘導する能力は、特に同種UCB移植後のT細胞を注入するため魅力的です。新生児のドナーのサイズが小さいと匿名性を排除し、再·アクセス後の時点でこの個体を収穫したMNCの限られた数字は、造血との干渉を回避するために、T細胞の製造のための出発物質として使用可能です。製造工程へのさらなる進歩は現在取り扱いを最小限にするために完全に閉じたWAVEバイオリアクターと相まって、高スループットのエレクトロポレーション装置を含めるようにして進められている。集計では、SBとAAPCは、CD19特異的CAR +のcGMPに準拠した代替細胞表面TAAを認識することができる遺伝子改変されたT細胞の大規模な番号を生成するように適合させることができるT細胞を生成するためのプラットフォームをアピールしている。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬 </td><td> ベンダー </td><td> カタログ番号 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 試薬 </td></tr><tr><td> DNAプラスミドGFP発現（pmaxGFP） </td><td>ロンザ</td><td> VPA-1002（キット） </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td>シグマ</td><td> D8537 </td><td></td></tr><tr><td> CliniMACS PBS-EDTA </td><td>ミルテニーバイオテク</td><td> 70026 </td><td></td></tr><tr><td> HYQ、RPMI-1640 </td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> SH30096.01 </td><td></td></tr><tr><td>フェノールフリー、RPMI-1640 </td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> SH30605.01 </td><td></td></tr><tr><td>ハイクローンウシ胎児血清</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> SH3007003HI </td><td></td></tr><tr><td>グルタ（100倍） </td><td>ギブコ</td><td> 3505-061 </td><td></td></tr><tr><td>のFicoll-Paque </td><td> GEヘルスケアバイオサイエンス社</td><td> 17-1440-02 </td><td></td></tr><tr><td>組換えヒトIL-21 </td><td>ぺプロ</td><td> AF-200から21 </td><td></td></tr><tr><td>組換えヒトIL-2（Proleukin） </td><td>ノバルティス</td><td> NDC 65483-116-07 </td><td></td></tr><tr><td>ヒトT細胞キット（ヌクレオソリューション） </td><td>ロンザ</td><td> VPA-1002 </td><td></td></tr><tr><td> CliniMACS CD56試薬</td><td>ミルテニー</td><td> 70206 </td><td></td></tr><tr><td>ヒトCD3に対するマウスモノクローナル抗体の特定のFITC結合</td><td> BD Biosciences社</td><td> 349201 </td><td></td></tr><tr><td>ヒトCD4に対するマウスモノクローナル抗体の特定にAPC標識</td><td> BD Biosciences社</td><td> 340443 </td><td></td></tr><tr><td> PerCPCy5.5共役ヒトCD8に対するマウスモノクローナル抗体の特定に</td><td> BD Biosciences社</td><td> 341051 </td><td></td></tr><tr><td> PE結合のF（ab &#39;）人間のための具体的なヤギ抗体の2断片へのFcγ </td><td>インビトロジェン</td><td> H10104 </td><td></td></tr><tr><td>アジ化ナトリウム</td><td>シグマ</td><td> S2002 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 消耗品 </td></tr><tr><td> 12ウェルプレート</td><td>コー​​ニング</td><td> 3513 </td><td></td></tr><tr><td> T-75cm 2フラスコ</td><td>コー​​ニング</td><td> 430641 </td><td></td></tr><tr><td>培養バッグ</td><td> Vueの生活</td><td> 290C、750C </td><td></td></tr><tr><td> 50ml遠心チューブ</td><td> BD Biosciences社</td><td> 352098 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td><sチョン·&gt;設備</td></tr><tr><td> Amaxa Nuceleofector II </td><td>ロンザ</td><td> AAB-1001 </td><td></td></tr><tr><td> Cellometer </td><td>バイオサイエンスNexcelom </td><td> Cellometerビジョン</td><td></td></tr><tr><td>ソーバルレジェンドRTの遠心分離機</td><td>ソーバル</td><td> 75004377 </td><td></td></tr><tr><td> BD FACSソウルキャリバー</td><td> BD Biosciences社</td><td> 342975 </td><td></td></tr><tr><td>制御された速度の冷凍庫</td><td>プレーナー</td><td> Kryo 750 </td><td></td></tr><tr><td>照射器</td><td> CISバイオインターナショナル</td><td> IBL-437、C＃09433 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td><table border="1"><tbody><tr><td colspan="4"> 分子の発現（内因性と導入） </td></tr><tr><td> 細胞株 </td> &lt;TD&gt; 共通名 </td><td> 細胞型 </td><td> 分子が発現した </td></tr><tr><td> CJKT64.86.41BBL.GFP-IL15.CD19 </td><td>クローン4 </td><td> K562 </td><td> CD86、CD64、CD137L、CD19、GFP、IL-15に結合した膜との共発現</td></tr></tbody></table> 完全培養メディア（CCM）で （最大30日間まで4℃で保存） HYQ RPMI-1640/Phenol-free、RPMI-1640 10％のFBS 1パーセントグルタ フローサイトメトリーバッファ （最大30日間まで4℃で保存） PBS 2％のFBS 0.1％アジ化ナトリウム</td></tr></tbody></table>

clinical application of sleeping beauty and artificial antigen presenting cells to genetically modify t cells from peripheral and umbilical cord blood

臨床グレードのT細胞の効力は、腫瘍関連抗原の上司は、（i）認識（のTAA）、（ii）の注入後、永続性、（ⅲ）の可能性と生物学的製品を設計するために免疫療法と遺伝子治療を組み合わせることによって改善することができます腫瘍微小環境内のエフェクター機能をリサイクルする腫瘍部位への移行の可能性、及び（iv）能力。人間のアプリケーションのために設計さT細胞の遺伝子操作のほとんどのアプローチは、CAR 1-3の安定発現用レトロウイルスやレンチウイルスを用いてきた。それは、生産設備の限られた数から臨床グレードの組換えウイルスの製造とリリースに依存しているので、このアプローチは、現在の適正製造基準（GMP）に準拠していますが、高価になることができます。 DNA種がrecombinの約1/10のコストで臨床グレードに製造することができるので、非ウイルスプラスミドの電気伝達は伝達に魅力代替手段です蟻GMPグレードのウイルス。統合の効率を改善するために、我々は人間のアプリケーション4-8 ビューティー （SB）トランスポゾン及びトランスポザーゼスリーピング適応した。私たちのSBシステムは、目的の遺伝子をコードするトランスポゾン（ 例えば第2世代CD19固有のCAR導入遺伝子、CD19RCD28と命名）とTAジヌクレオチドリピートに挿入トランスジーンをトランスポザーゼ（ 例えば SB11）9-11から成る2 DNAプラスミドを使用する。遺伝的に改変されたT細胞の臨床的に十分な数を生成するために、我々は、TAA（ 例えば CD19）ならびにT細胞の共刺激分子CD86、CD137Lを発現するように改変されたK562由来人工抗原提示細胞（AAPC）（クローン＃4）、使用膜結合型インターロイキン（IL）-15（ペプチドが修飾されたIgG4のFc領域に融合）とCD64モノクローナル抗体のロード用（FC-γ受容体1）（mAb）は12のバージョン。本稿では、compliaで行うことができる手順を示しCD19-CAR +ヒト固有のアプリケーションに適したT細胞を生成するためのcGMPとNCE。これは、γ線照射AAPCのあらゆる-7日間の追加（刺激周期）により、安定した組込みの取得後に2つのDNAプラスミド、SBトランスポゾン（CD19RCD28）とSBトランスポザーゼ（SB11）の電気転送同期することによって達成された可溶性組換えヒトIL-2とIL-21の13の存在下で（クローン＃4）。典型的には4サイクル（連続培養の28日間）が安定的にCARを発現するT細胞の臨床的に魅力的な番号を生成するために実施されている。製造臨床グレードのCD19特異的T細胞にこの方法論は、末梢血（PB）や臍帯血（UCB）由来のT細胞に適用することができます。さらに、このアプローチはAAPCのCARによって認識のTAA、、の発現と導入CARの特異性を組み合わせることで多様な種類の腫瘍に対するT細胞を生成するために利用することができます。

我々は、DNAプラスミドおよびγ線照射AAPC上でのT細胞の増殖の電気転送が人間のアプリケーションのためにPBとUCB由来のT細胞の臨床的に魅力的な番号を生成するために使用することができることを報告する。これらの遺伝的に改変されたT細胞は、主要組織適合遺伝子複合体の独立したTAA CD19を認識導入CARを発現している。 SB由来のDNAプラスミドは、CD28およびCD3-εを介して信号14、および（ii）トランスポゼース、SB11 15は 、以前に13を説明してきたが、16,17、（ⅰ）トランスポゾン、第2世代CARを（CD19RCD28）表現する。現在の研究で使用されるプラスミドはWaisman臨床バイオ製造施設（Madison、WI）を​​することによって商業的に生産された。 K562細胞（アメリカン·タイプ·カルチャー·コレクションから得た親株）由来AAPC（クローン＃4）、共発現するT細胞の共刺激分子（AAPCの細胞表面上の3 90％でそれぞれ導入された分子）を必要に応じて、前述の12を説明した 。ここでは、 図1（数値、CARに依存した方法でT細胞を拡大するAAPCを加えて、CARを紹介してSBの転位を用いたPBまたはUCB由来のCD19特異的T細胞は単核細胞（MNC）から生成できることを示す、4）13,18。十キュベット（2×10 7 MNC /キュベット）はトランスポゾン（CAR）をコードするプラスミドDNA15μgの（CD19RCD28/pSBSO）及びトランスポザーゼ（SB11）をコードするプラスミドDNA5μgを（のpCMV-SB11）を使用して、受信者ごとにエレクトロポレートされています。 MNCが制限または研究室での作業のために縮小されている場合キュベットの数を減らすことができる。エレクトロポレーションの日は刺激サイクル＃1の &quot;0日&quot;と定義されます。フローサイトメトリーおよび培養条件の対照として、自己のT細胞はモックエレクトロポレーション（DNAなしプラスミド）と数値的にT細胞を維持するために、クロスリンクにOKT3 CD3で事前にロードされていたγ線照射AAPC（クローン＃4）上で展開される増殖。 WE Routinelyエレクトロポレーション（ 図2B）の翌日T細胞のエレクトロと生存能力の効率を評価する。この初期の時点でコントロールDNAプラスミド（pmaxGFPと称する）と、CARからEGFPの発現は、統合およびエピソームプラスミドからのタンパク質発現を反映している。典型的には、エレクトロポレーション後の日、私たちは40から50パーセントの間でのT細胞の生存と約40％（ 図2A）で約60％と、CARの発現にEGFP発現を測定します。可溶性組換えヒトIL-2とIL-21の存在下でγ線照射AAPCの再帰的な追加が安定し、CAR（CD19RCD28）を発現するT細胞を取り出す。これらのNK細胞の割合が≥10％であり、T細胞上に発現CARの割合が低い場合は特に場合はCD3 NEG CD56 + NK細胞は、CD56特異常磁性ビーズを用いて培養液から枯渇している。この枯渇はproliferatioを維持するためにAAPCの能力を妨害するNK細胞の急速な増殖を防ぎますCARのn + T細胞。機会に、CARからNK細胞の枯渇+ T細胞は、最後の2つの刺激のサイクル中に行われますが、これはいくつかの車の上にCD56の共発現+ T細胞に起因する所望の細胞の損失を導入しています。 T細胞は、14日目を過ぎてVueの生命培養バッグを使用して、機能的に閉鎖系で増殖させた。遺伝的に改変されたと伝播T細胞のサブセットは、通常、将来の分析のためにアーカイブされた物質の供給源として機能することとなるようにAAPC上の共培養の14日目または21日目（刺激サイクルの終わり＃2または＃3）で凍結保存さ予期せぬ問題が続いて、製造工程中に発生した場合は解凍した。 T細胞は、典型的には、（ 図3）や文化の日の約28収穫され、その日常急行&gt; 90％のCARとアール&gt; 80％生存（ 図2C、D）。我々は以前AAPC上の共培養の4週間後のCD3平均倍膨張+ T細胞が19800であることが示されている±CAと11313を<html> R +は発現が90％で±7.5 13。これらのT細胞は、凍結保存とし、製造された製品の安全性と治療の可能性に知らせるリリーステストプロセス内で受ける。リリーステストの前臨床試験レシピエントへの注入に分析証明書を生成するための臨床検査改善修正（CLIA）に準拠して行われる。 <img alt="図1" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50070/50070fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50070/50070fig1.jpg" /> 図1は。CAR + PBとUCBからT細胞をエレクトロポと伝播するプロセスを概説する手順。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50070/50070fig1large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するにはここをクリック</a> 。 upload/50070/50070fig2highres.jpgは &quot;src =&quot; / files/ftp_upload/50070/50070fig2.jpg &quot;/&gt; 図2。 PBから遺伝的に改変されたT細胞のキャラクタリゼーション。（）遺伝子導入の効率を評価するための第1の刺激周期の0日目にEGFPの発現。 CD19固有CD3にフローサイトメトリーによって評価として、CAR（CD19RCD28）+、CD8 +およびCD4 +エレクトロポレーション後（B）は約24時間でT細胞の発現と、（C）28日間共培養後AAPCに。 CARの類似の表現はUCB由来T細胞で観察された。 （D）は、CARの発現の速度論。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50070/50070fig2large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。 <img alt="図3" fo:content-width="4.5in" fo:src="/files/ftp_upload/50070/50070fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50070/50070fig3.jpg" /> 図3。 PB由来CARの伝播CD3 +およびCAR +組換えヒトIL-2可溶性およびIL-21の存在下でγ線照射AAPCで繰り返さ共培養することにより、PB由来T細胞の数値拡大+ T細胞。レート。上向きの矢印は、各刺激サイクルの始まりをマークすることをγ線照射AAPCの追加を示しています。 UCB由来のCAR + T細胞は、数値の拡張と同様の速度を示す。 <img alt="図4" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50070/50070fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50070/50070fig4.jpg" /> 図4。遺伝的にCARを変更して、伝播する+ PBとUCB由来のT細胞をSBとAAPCシステムを用いた製造プロセスの概略。CD19特異CAR + T細胞は、SB由来の超らせんDNAプラスミドの電気伝達と共培養後続によって生成されたプレゼンスoのK562由来AAPC（クローン＃4）上のF組換えヒト可溶性IL-2とIL-21 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50070/50070fig4large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するにはここをクリック</a> 。 <table border="1"><tbody><tr><td width="5"> T細胞ソース </td><td width="9"> トランスポゾン* </td><td width="9"> トランスポザーゼ </td><td width="26"> T細胞注入 </td><td width="1"> IRB＃ </td><td width="1"> NIH-OBA＃ </td><td width="1"> IND＃ </td></tr><tr><td>自家（患者由来）** </td><td> CD19RCD28 </td><td> SB11 </td><td>自家造血幹細胞移植後の</td><td> 2007-0635 </td><td> 0804-922 </td><td> 14193 </td></tr><tr><td>同種（ドナー由来） </td><td> CD19RCD28 </td><td> SB11 </td><td>同種造血幹細胞移植後の</td><td> 2009-0525 </td><td> 0910-1003 </td><tD&gt; 14577 </td></tr><tr><td>同種（ドナー由来） </td><td> CD19RCD28 </td><td> SB11 </td><td>同種臍帯血移植後の</td><td> 2010-0835 </td><td> 1001-1022 </td><td> 14739 </td></tr></tbody></table> *表1。 CD19特異CAR + T細胞を注入するMDACCにおけるFDAの後援の下に臨床試験がAAPCに伝播されます 。 T細胞は、そのCD28およびCD3-εを介して信号指定CD19RCD28、第2世代のCARをコードSBトランスポゾンの強制発現により、CD19に特異的にレンダリングされます。 **トライアルは参考文献5に記載されて。

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Clinical Application of Sleeping Beauty and Artificial Antigen Presenting Cells to Genetically Modify T Cells from Peripheral and Umbilical Cord Blood

CD19特異的キメラ抗原受容体（CAR）を発現するT細胞は、私たちのファースト·イン·ヒトの遺伝子治療の臨床試験におけるB細胞悪性腫瘍の治験治療として注入される。我々は、使用して、T細胞の遺伝子改変を記述<em&gt;眠れる森の美女</em&gt;（SB）のデザイナー、CD19 +人工抗原提示細胞上のCD19特異的CARと選択的伝播を紹介するシステム。

の臨床応用<em&gt;眠れる森の美女</em遺伝的に末梢及び臍帯血由来のT細胞を変更する&gt;と人工抗原提示細胞

The potency of clinical-grade T cells can be improved by combining gene therapy with immunotherapy to engineer  a biologic product with the potential for ...

clinical-application-sleeping-beauty-artificial-antigen-presenting

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Clinical Application of Sleeping Beauty and Artificial Antigen Presenting Cells to Genetically Modify T Cells from Peripheral and Umbilical Cord Blood

18.2K ビュー.  U.T. MD Anderson Cancer Center. CD19特異的キメラ抗原受容体（CAR）を発現するT細胞は、私たちのファースト·イン·ヒトの遺伝子治療の臨床試験におけるB細胞悪性腫瘍の治験治療として注入される。我々は、使用して、T細胞の遺伝子改変を記述眠れる森の美女（SB）のデザイナー、CD19 +人工抗原提示細胞上のCD19特異的CARと選択的伝播を紹介するシステム。

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HLA-Ig Based Artificial Antigen Presenting Cells for Efficient ex vivo Expansion of Human CTL

CTL with optimal effector function play critical roles in mediating protection against various intracellular infections and cancer. However, individuals may exhibit suppressive immune microenvironment and, in contrast to activating CTL, their autologous antigen presenting cells may tend to tolerize or anergize antigen specific CTL. As a result, although still in the experimental phase, CTL-based adoptive immunotherapy has evolved to become a promising treatment for various diseases such as cancer and virus infections. In initial experiments ex vivo expanded CMV (cytomegalovirus) specific CTL have been used for treatment of CMV infection in immunocompromised allogeneic bone marrow transplant patients. While it is common to have life-threatening CMV viremia in these patients, none of the patients receiving expanded CTL develop CMV related illness, implying the anti-CMV immunity is established by the adoptively transferred CTL1. Promising results have also been observed for melanoma and may be extended to other types of cancer2. 
While there are many ways to ex vivo stimulate and expand human CTL, current approaches are restricted by the cost and technical limitations. For example, the current gold standard is based on the use of autologous DC. This requires each patient to donate a significant number of leukocytes and is also very expensive and laborious. Moreover, detailed in vitro characterization of DC expanded CTL has revealed that these have only suboptimal effector function 3. 
Here we present a highly efficient aAPC based system for ex vivo expansion of human CMV specific CTL for adoptive immunotherapy (Figure 1). The aAPC were made by coupling cell sized magnetic beads with human HLA-A2-Ig dimer and anti-CD28mAb4. Once aAPC are made, they can be loaded with various peptides of interest, and remain functional for months. In this report, aAPC were loaded with a dominant peptide from CMV, pp65 (NLVPMVATV). After culturing purified human CD8+ CTL from a healthy donor with aAPC for one week, CMV specific CTL can be increased dramatically in specificity up to 98% (Figure 2) and amplified more than 10,000 fold. If more CMV-specific CTL are required, further expansion can be easily achieved by repetitive stimulation with aAPC. Phenotypic and functional characterization shows these expanded cells have an effector-memory phenotype and make significant amounts of both TNF&alpha; and IFN&gamma; (Figure 3).

HLA-Ig Based Artificial Antigen Presenting Cells for Efficient ex vivo Expansion of Human CTL

A new DC independent method for induction and expansion of antigen-specific T cells is described. HLA A2-Ig based artificial Antigen Presenting Cells (aAPC) are loaded with HLA-A2 restricted peptides to efficiently expand CTL of diverse antigen specificity. This technology holds great potential for CTL-based adoptive immunotherapy.

HLA - Igは効率のためのベースの人工抗原提示細胞生体外で</emヒトCTLの>拡大

CTL with optimal effector function play critical roles in mediating protection against various intracellular infections and cancer. However, individuals ...

免疫・感染学

Expansion of Human Peripheral Blood  &gamma;&delta; T Cells using Zoledronate

Human &gamma;&delta; T cells can recognize and respond to a wide variety of stress-induced antigens, thereby developing innate broad anti-tumor and anti-infective activity.1 The majority of &gamma;&delta; T cells in peripheral blood have the V&gamma;9V&delta;2 T cell receptor. These cells recognize antigen in a major histocompatibility complex-independent manner and develop strong cytolytic and Th1-like effector functions.1Therefore, &gamma;&delta; T cells are attractive candidate effector cells for cancer immunotherapy. V&gamma;9V&#x03B4;2 T cells respond to phosphoantigens such as (E)-4-hydroxy-3-methyl-but-2-enyl pyrophosphate (HMBPP), which is synthesized in bacteria via isoprenoid biosynthesis;2 and isopentenyl pyrophosphate (IPP), which is produced in eukaryotic cells through the mevalonate pathway.3 In physiological condition, the generation of IPP in nontransformed cell is not sufficient for the activation of &gamma;&delta; T cells. Dysregulation of mevalonate pathway in tumor cells leads to accumulation of IPP and &gamma;&delta; T cells activation.3 Because aminobisphosphonates (such as pamidronate or zoledronate) inhibit farnesyl pyrophosphate synthase (FPPS), the enzyme acting downstream of IPP in the mevalonate pathway, intracellular levels of IPP and sensitibity to &gamma;&delta; T cells recognition can be therapeutically increased by aminobisphosphonates. IPP accumulation is less efficient in nontransfomred cells than tumor cells with a pharmacologically relevant concentration of aminobisphosphonates, that allow us immunotherapy for cancer by activating &gamma;&delta; T cells with aminobisphosphonates. 4 Interestingly, IPP accumulates in monocytes when PBMC are treated with aminobisphosphonates, because of efficient drug uptake by these cells. 5 Monocytes that accumulate IPP become antigen-presenting cells and stimulate V&gamma;9V&delta;2 T cells in the peripheral blood.6 Based on these mechanisms, we developed a technique for large-scale expansion of &gamma;&delta; T cell cultures using zoledronate and interleukin-2 (IL-2).7 Other methods for expansion of &gamma;&delta; T cells utilize the synthetic phosphoantigens bromohydrin pyrophosphate (BrHPP)8 or 2-methyl-3-butenyl-1-pyrophosphate (2M3B1PP).9 All of these methods allow ex vivo expansion, resulting in large numbers of &gamma;&delta; T cells for use in adoptive immunotherapy. However, only zoledronate is an FDA-approved commercially available reagent. Zoledronate-expanded &gamma;&delta; T cells display CD27-CD45RA- effector memory phenotype and thier function can be evaluated by IFN-&gamma; production assay. 7

Expansion of Human Peripheral Blood  &amp;#947;&amp;#948; T Cells using Zoledronate

A method to expand &gamma;&delta; T cells from peripheral blood mononuclear cells (PBMC) is described. PBMC-derived &gamma;&delta; T cells are stimulated and expanded using zoledronate and interleukin-2 (IL-2). Large scale expansion of &gamma;&delta; T cells can be applied to autologous cellular immunotherapy of cancer.

ゾレドロネートを使用してヒト末梢血γδT細胞の拡大

Human &gamma;&delta; T cells can recognize and respond to a wide variety of stress-induced antigens, thereby developing innate broad anti-tumor and ...

Expanding Cytotoxic T Lymphocytes from Umbilical Cord Blood that Target Cytomegalovirus, Epstein-Barr Virus, and Adenovirus

Virus infections after stem cell transplantation are among the most common causes of death, especially after cord blood (CB) transplantation (CBT) where the CB does not contain appreciable numbers of virus-experienced T cells which can protect the recipient from infection.1-4 We and others have shown that virus-specific CTL generated from seropositive donors and infused to the recipient are safe and protective.5-8 However, until recently, virus-specific T cells could not be generated from cord blood, likely due to the absence of virus-specific memory T cells. 
In an effort to better mimic the in vivo priming conditions of na&iuml;ve T cells, we established a method that used CB-derived dendritic cells (DC) transduced with an adenoviral vector (Ad5f35pp65) containing the immunodominant CMV antigen pp65, hence driving T cell specificity towards CMV and adenovirus.9 At initiation, we use these matured DCs as well as CB-derived T cells in the presence of the cytokines IL-7, IL-12, and IL-15.10 At the second stimulation we used EBV-transformed B cells, or EBV-LCL, which express both latent and lytic EBV antigens. Ad5f35pp65-transduced EBV-LCL are used to stimulate the T cells in the presence of IL-15 at the second stimulation. Subsequent stimulations use Ad5f35pp65-transduced EBV-LCL and IL-2. 
From 50x106 CB mononuclear cells we are able to generate upwards of 150 x 106 virus-specific T cells that lyse antigen-pulsed targets and release cytokines in response to antigenic stimulation.11 These cells were manufactured in a GMP-compliant manner using only the 20% fraction of a fractionated cord blood unit and have been translated for clinical use.

Here we describe the first good manufacturing practice (GMP)-compliant method of producing virus-specific cytotoxic T lymphocytes (CTL) from umbilical cord blood, a source of predominantly na&#238;ve T cells.

臍帯血から細胞傷害性Tリンパ球の拡大をそのターゲットサイトメガロウイルス、エプスタイン - バーウイルス、およびアデノウイルス

Virus infections after stem cell transplantation are among the most common causes of death, especially after cord blood (CB) transplantation (CBT) where ...

Artificial Antigen Presenting Cell (aAPC) Mediated Activation and Expansion of Natural Killer T Cells

Natural killer T (NKT) cells are a unique subset of T cells that display markers characteristic of both natural killer (NK) cells and T cells1. Unlike classical T cells, NKT cells recognize lipid antigen in the context of CD1 molecules2. NKT cells express an invariant TCR&alpha; chain rearrangement: V&alpha;14J&alpha;18 in mice and V&alpha;24J&alpha;18 in humans, which is associated with V&beta; chains of limited diversity3-6, and are referred to as canonical or invariant NKT (iNKT) cells. Similar to conventional T cells, NKT cells develop from CD4-CD8- thymic precursor T cells following the appropriate signaling by CD1d 7. The potential to utilize NKT cells for therapeutic purposes has significantly increased with the ability to stimulate and expand human NKT cells with &alpha;-Galactosylceramide (&alpha;-GalCer) and a variety of cytokines8. Importantly, these cells retained their original phenotype, secreted cytokines, and displayed cytotoxic function against tumor cell lines. Thus, ex vivo expanded NKT cells remain functional and can be used for adoptive immunotherapy. However, NKT cell based-immunotherapy has been limited by the use of autologous antigen presenting cells and the quantity and quality of these stimulator cells can vary substantially. Monocyte-derived DC from cancer patients have been reported to express reduced levels of costimulatory molecules and produce less inflammatory cytokines9,10. In fact, murine DC rather than autologous APC have been used to test the function of NKT cells from CML patients11. However, this system can only be used for in vitro testing since NKT cells cannot be expanded by murine DC and then used for adoptive immunotherapy. Thus, a standardized system that relies on artificial Antigen Presenting Cells (aAPC) could produce the stimulating effects of DC without the pitfalls of allo- or xenogeneic cells12, 13. Herein, we describe a method for generating CD1d-based aAPC. Since the engagement of the T cell receptor (TCR) by CD1d-antigen complexes is a fundamental requirement of NKT cell activation, antigen: CD1d-Ig complexes provide a reliable method to isolate, activate, and expand effector NKT cell populations.

Artificial Antigen Presenting Cell aAPC Mediated Activation and Expansion of Natural Killer T Cells

Here we describe a method for activating and expanding human NKT cells from bulk T cell populations using artificial antigen presenting cells (aAPC). The use of CD1d-based aAPC provides a standardized method for generating high numbers of functional NKT cells.

ナチュラルキラーT細胞の細胞（AAPC）媒介活性化と増殖を提示する人工抗原

Natural killer T (NKT) cells are a unique subset of T cells that display markers characteristic of both natural killer (NK) cells and T cells1. Unlike ...

Isolation of Precursor B-cell Subsets from Umbilical Cord Blood

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for isolating precursor B-cells at four different stages of differentiation. Because genes are expressed and epigenetic modifications occur in a tissue specific manner, it is vital to discriminate between tissues and cell types in order to be able to identify alterations in the genome and the epigenome that may lead to the development of disease. This method can be adapted to any type of cell present in umbilical cord blood at any stage of differentiation.	
This method comprises 4 main steps. First, mononuclear cells are separated by density centrifugation. Second, B-cells are enriched using biotin conjugated antibodies that recognize and remove non B-cells from the mononuclear cells. Third the B-cells are fluorescently labeled with cell surface protein antibodies specific to individual stages of B-cell development. Finally, the fluorescently labeled cells are sorted and individual populations are recovered. The recovered cells are of sufficient quantity and quality to be utilized in downstream nucleic acid assays.

Here we describe a protocol for isolating subsets of precursor B-cells from umbilical cord blood. A sufficient quantity and quality of nucleic acids may be extracted from the cells and used in subsequent assays utilizing DNA or RNA.

臍帯血から前駆B細胞サブセットの分離

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for ...

Killer Artificial Antigen Presenting Cells (KaAPC) for Efficient In Vitro Depletion of Human Antigen-specific T Cells

Current treatment of T cell mediated autoimmune diseases relies mostly on strategies of global immunosuppression, which, in the long term, is accompanied by adverse side effects such as a reduced ability to control infections or malignancies. Therefore, new approaches need to be developed that target only the disease mediating cells and leave the remaining immune system intact. Over the past decade a variety of cell based immunotherapy strategies to modulate T cell mediated immune responses have been developed. Most of these approaches rely on tolerance-inducing antigen presenting cells (APC). However, in addition to being technically difficult and cumbersome, such cell-based approaches are highly sensitive to cytotoxic T cell responses, which limits their therapeutic capacity. Here we present a protocol for the generation of non-cellular killer artificial antigen presenting cells (KaAPC), which allows for the depletion of pathologic T cells while leaving the remaining immune system untouched and functional. KaAPC is an alternative solution to cellular immunotherapy which has potential for treating autoimmune diseases and allograft rejections by regulating undesirable T cell responses in an antigen specific fashion.

Killer Artificial Antigen Presenting Cells KaAPC for Efficient In Vitro Depletion of Human Antigen-specific T Cells

Guidelines are presented for the generation of killer artificial antigen presenting cells, KaAPC, an efficient tool for in vitro depletion of human antigen-specific T cells and an alternative solution to cellular immunotherapy for the treatment of T cell-mediated autoimmune diseases in an antigen-specific fashion without compromising the remaining immune system.

効率的なためキラー人工抗原提示細胞（KaAPC）<em&gt;体外</em&gt;ヒト抗原特異的T細胞の枯渇

Current treatment of T cell mediated autoimmune diseases relies mostly on strategies of global immunosuppression, which, in the long term, is accompanied ...

Generation of Human Alloantigen-specific T Cells from Peripheral Blood

The study of human T lymphocyte biology often involves examination of responses to activating ligands. T cells recognize and respond to processed peptide antigens presented by MHC (human ortholog HLA) molecules through the T cell receptor (TCR) in a highly sensitive and specific manner. While the primary function of T cells is to mediate protective immune responses to foreign antigens presented by self-MHC, T cells respond robustly to antigenic differences in allogeneic tissues. T cell responses to alloantigens can be described as either direct or indirect alloreactivity. In alloreactivity, the T cell responds through highly specific recognition of both the presented peptide and the MHC molecule. The robust oligoclonal response of T cells to allogeneic stimulation reflects the large number of potentially stimulatory alloantigens present in allogeneic tissues. While the breadth of alloreactive T cell responses is an important factor in initiating and mediating the pathology associated with biologically-relevant alloreactive responses such as graft versus host disease and allograft rejection, it can preclude analysis of T cell responses to allogeneic ligands. To this end, this protocol describes a method for generating alloreactive T cells from naive human peripheral blood leukocytes (PBL) that respond to known peptide-MHC (pMHC) alloantigens. The protocol applies pMHC multimer labeling, magnetic bead enrichment and flow cytometry to single cell in vitro culture methods for the generation of alloantigen-specific T cell clones. This enables studies of the biochemistry and function of T cells responding to allogeneic stimulation.

This article describes a method for the generation and propagation of human T cell clones that specifically respond to a defined alloantigen. This protocol can be adapted for cloning human T cells specific for a variety of peptide-MHC ligands.

末梢血からのヒトアロ抗原特異的T細胞の生成

The study of human T lymphocyte biology often involves examination of responses to activating ligands. T cells recognize and respond to processed peptide ...

Development of an Antigen-driven Colitis Model to Study Presentation of Antigens by Antigen Presenting Cells to T Cells

Inflammatory bowel disease (IBD) is a chronic inflammation which affects the gastrointestinal tract (GIT). One of the best ways to study the immunological mechanisms involved during the disease is the T cell transfer model of colitis. In this model, immunodeficient mice (RAG-/- recipients) are reconstituted with naive CD4+ T cells from healthy wild type hosts.
This model allows examination of the earliest immunological events leading to disease and chronic inflammation, when the gut inflammation perpetuates but does not depend on a defined antigen. To study the potential role of antigen presenting cells (APCs) in the disease process, it is helpful to have an antigen-driven disease model, in which a defined commensal-derived antigen leads to colitis. An antigen driven-colitis model has hence been developed. In this model OT-II CD4+ T cells, that can recognize only specific epitopes in the OVA protein, are transferred into RAG-/- hosts challenged with CFP-OVA-expressing E. coli. This model allows the examination of interactions between APCs and T cells in the lamina propria.

In this antigen-driven colitis model, OT-II CD4+ T cells expressing a red fluorescent protein were adoptively transferred into RAG-/- mice that express a green fluorescent protein in mononuclear phagocytes (MPs). The hosts were challenged with Escherichia coli (E.coli) expressing the ovalbumin protein (OVA) fused to a cyan fluorescent protein (CFP).

T細胞への抗原提示細胞による抗原の提示を研究するための抗原駆動性大腸炎モデルの開発

Inflammatory bowel disease (IBD) is a chronic inflammation which affects the gastrointestinal tract (GIT). One of the best ways to study the immunological ...

Megakaryocyte Differentiation and Platelet Formation from Human Cord Blood-derived CD34+ Cells

Platelet production occurs principally in the bone marrow in a process known as thrombopoiesis. During thrombopoiesis, hematopoietic progenitor cells differentiate to form platelet precursors called megakaryocytes, which terminally differentiate to release platelets from long cytoplasmic processes termed proplatelets. Megakaryocytes are rare cells confined to the bone marrow and are therefore difficult to harvest in sufficient numbers for laboratory use. Efficient production of human megakaryocytes can be achieved in vitro by culturing CD34+ cells under suitable conditions. The protocol detailed here describes isolation of CD34+ cells by magnetic cell sorting from umbilical cord blood samples. The necessary steps to produce highly pure, mature megakaryocytes under serum-free conditions are described. Details of phenotypic analysis of megakaryocyte differentiation and determination of proplatelet formation and platelet production are also provided. Effectors that influence megakaryocyte differentiation and/or proplatelet formation, such as anti-platelet antibodies or thrombopoietin mimetics, can be added to cultured cells to examine biological function.

Megakaryocyte Differentiation and Platelet Formation from Human Cord Blood-derived CD34+ Cells

A highly pure population of megakaryocytes can be obtained from cord blood-derived CD34+ cells. A method for CD34+ cell isolation and megakaryocyte differentiation is described here.

巨核球分化および人間の血小板形成臍帯血由来 cd34 陽性細胞の+

Platelet production occurs principally in the bone marrow in a process known as thrombopoiesis. During thrombopoiesis, hematopoietic progenitor cells ...

Generation of Discriminative Human Monoclonal Antibodies from Rare Antigen-specific B Cells Circulating in Blood

Monoclonal antibodies (mAbs) are powerful tools useful for both fundamental research and in biomedicine. Their high specificity is indispensable when the antibody needs to distinguish between highly related structures (e.g., a normal protein and a mutated version thereof). The current way of generating such discriminative mAbs involves extensive screening of multiple Ab-producing B cells, which is both costly and time consuming. We propose here a rapid and cost-effective method for the generation of discriminative, fully human mAbs starting from human blood circulating B lymphocytes. The originality of this strategy is due to the selection of specific antigen binding B cells combined with the counter-selection of all other cells, using readily available Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMC). Once specific B cells are isolated, cDNA (complementary deoxyribonucleic acid) sequences coding for the corresponding mAb are obtained using single cell Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction (RT-PCR) technology and subsequently expressed in human cells. Within as little as 1 month, it is possible to produce milligrams of highly discriminative human mAbs directed against virtually any desired antigen naturally detected by the B cell repertoire.

We describe a method for the production of human antibodies specific for an antigen of interest, starting from rare B cells circulating in human blood. Generation of these natural antibodies is efficient and rapid, and the antibodies obtained can discriminate between highly related antigens.

まれな抗原特異的 B 細胞血液の循環から弁別に対するモノクローナル抗体の生成

Monoclonal antibodies (mAbs) are powerful tools useful for both fundamental research and in biomedicine. Their high specificity is indispensable when the ...