我々は、これらのプロトコルの開発に貢献したゲルファントラボのメンバーに感謝。この刊行物で報告された研究は賞の数BFI-2011から295 UDCの下にVIGへの賞の数R01GM052111下の国立衛生研究所の総合医科学研究所がバスク政府教育省、大学や研究によってサポートされていました。

1。 ショウジョウバエ S2細胞<ol><li> ConAをコートしたカバーガラスの作製<ol><li>セラミックラックにカバースリップを置き、1時間クロム酸浸漬することによって、それらを洗ってください。 [注意：クロム酸は腐食性があり、目の刺激、鼻、喉、皮膚を引き起こす可能性があります]。 </li><li>酸が完全に洗い流されるまで、常に30分間のdH 2 Oを実行して徹底的にカバーグラスを洗浄します。 </li><li> 30分間（DH 2 O中0.5 mg / mlの溶液）カバーガラスを空気乾燥したConAでコーティングしてみましょう。 </li><li> 15分間のdH 2 Oでカバーグラスをすすぎ、それらを空気乾燥してみましょう。 ConAをコートしたカバーガラスは、1ヶ月まで保存することができます。 </li></ol></li><li>細胞をプレーティング<ol><li> S2細胞が指数関数的に実験に必要な細胞の数に応じて、T25やT75のCM 2フラスコで増殖させる。 </li><li>血球計数器を用いて細胞密度を計数する。追加の1ml増殖mをConAを被覆カバーガラスで35mmの組織培養皿にedium（例えば昆虫·エクスプレス）、ゆっくり皿に〜1×10 5個の細胞を移す。異なるセルからの処理が重ならないため、この細胞密度は、イメージングのために最適である。 </li><li>すぐに（2.5μMCytoDの最終濃度まで）皿に5μMCytoDと1ミリリットルの媒体を追加めっき後、プロセスの形成を誘導するために。イメージングの前に25℃で少なくとも2時間、細胞をインキュベートすることによって、プロセスの完全な開発を可能にする。 </li></ol></li></ol> 2。 ショウジョウバエ初代ニューロン培養<ol><li>神経細胞培養のための準備<ol><li> ショウジョウバエ神経細胞増殖培地（：; 5μg/ mlのインスリン; 100μg/ mlのペニシリン、100μg/ mlのストレプトマイシン、10μg/ mlのテトラサイクリン30分55ºCで不活性化し20％ウシ胎児血清、熱を補足したシュナイダー培地）を準備。このSUPplementedシュナイダーの培地は、6ヶ月間4℃で保存することができる。 </li><li> ショウジョウバエの胚（22.5グラム寒天、2リットルのフラスコ中の12.0グラムのスクロースと750ミリリットルのH 2 Oを収集するためのバイアル寒天リンゴジュースを準備し、20〜25分間のオートクレーブ、250ミリリットルのリンゴジュースを追加し、各ショウジョウバエに〜10ミリリットルを注ぐバイアル;）凝固後、コットンボールとのバイアルを接続し、食品の乾燥をオーバーを避けるためにプラスチック製の食品ラップでバイアルを包む。寒天バイアル中のりんごジ​​ュースは、4週間のためによく密封されたビニール袋に4℃で保存することができます。 </li><li> ConAを持つコート酸洗浄25ミリメートルの円形カバースリップ（ ショウジョウバエ S2細胞のプロトコルで詳細を参照）、10〜15分間、UV光の下でそれらを殺菌する。これらのカバーガラスをヶ月間保存することができる。 </li></ol></li><li> ショウジョウバエの胚性ニューロンの文化<ol><li>キープヤングアダルト胚Fを収集する前に1〜2日間乾燥酵母を補足したリンゴジュース寒天バイアルに飛ぶ又はニューロン製剤。 </li><li>収集日に、収集された胚を同期させるために、転送大人光の中で1時間のprecollection新鮮なリンゴジュース寒天バイアルへ飛行し、これらの胚を破棄。 </li><li>転送は、1時間の胚を収集し、胚の収率を高めるために暗闇の中で両方、さらに1時間、別のバイアルにハエを転送し、新しいリンゴジュース寒天バイアルに飛ぶ。 </li><li>リンゴジュース寒天バイアルから大人のハエを削除し、胚は、室温（4-6 HR-齢の胚がステージ9月11日の間にある）で段階的に別の4時間9月11日を開発してみましょう。 </li><li>バイアルに水を噴出し、小さな絵筆（少なくとも10胚が一つの良いニューロン準備のために必要とされる）とリンゴジュース寒天から胚を緩めて胚を削除します。 </li><li>水を排水するための移送ピペットを用いて100μmのナイロンメッシュセルストレーナーに胚を移し（ ショウジョウバエ胚洗浄緩衝液、0.4％のNaCl、0.03％トリトンにおけるトランスファーピペットを前すすぎX-100）。 </li><li>小さ ​​な絵筆を使ってストレーナから胚を収集し、1ミリリットルショウジョウバエ胚ウォッシュ（注：ペイントブラシまたはピペットチップを使用して、任意の寒天又は綿繊維をきれい）で満たされた1.5ミリリットルマイクロチューブにそれらを転送します。このプロトコルでは、1.5ミリリットルマイクロチューブは、一致使い捨てペレット乳棒が付属しています。 </li><li> ショウジョウバエ胚ウォッシュ3Xで胚を洗浄します。 </li><li> 10分間、新鮮な1時01市販の漂白剤の溶液および95％エタノールで胚をDechorionate [注意：漂白剤は刺激、目、鼻、喉、皮膚を引き起こす可能性があります]。 </li><li>組織培養フードに移動し、2X補足シュナイダーの培地中で胚を洗浄します。 </li><li>胚をチューブ内に200〜300μlの培地のままにして、ゆっくりと機械的に（10-15Xを挽く）、70％エタノールで滅菌されたキンブルチェース使い捨てペレット乳棒を使用して絨毛膜を除去した胚を解離する。 </li><li> 2分、TRAのために20×gで均質化された混合物を遠心分離新しいチューブに上清をnsfer。 [この手順は省略可能であり、それは胚の破片を除去するのに役立ちます] </li><li>細胞をペレットに2分間550×gで上清を遠心分離する。 </li><li> 2分間550×gで再びシュナイ​​ダー培地とスピンダウン細胞補足500μlにペレットを再懸濁し、一回の再懸濁紡糸サイクルを繰り返す。 </li><li>最終的に約100μlにペレットを再懸濁シュナイダー培地を補充し、滅菌した35ミリメートルペトリ皿中の25ミリメートルのConA-コーティングされたカバーガラス上に細胞をプレート。細胞接着を可能にするために10分間インキュベートします。 </li><li>付着した細胞をカバーガラスを水没から5μmCytoD補充したシュナイダー培地の2ミリリットルを追加します。 </li><li>一晩イメージング前に加湿した25℃のインキュベーター内の皿をインキュベートする。 </li></ol></li></ol>

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	<li>Schneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+lines+derived+from+late+embryonic+stages+of+Drosophila+melanogaster.">Cell lines derived from late embryonic stages of Drosophila melanogaster.</a> J. Embryol. Exp. Morphol. 27, 353-365 (1972).</li><li>Rogers, S. L., Rogers, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+of+Drosophila+S2+cells+and+their+use+for+RNAi-mediated+loss-of-function+studies+and+immunofluorescence.">Culture of Drosophila S2 cells and their use for RNAi-mediated loss-of-function studies and immunofluorescence.</a> 3, 606-611 (2008).</li><li>Buster, D. W., Nye, J., Klebba, J. E., Rogers, G. 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H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Precursor+of+amyloid+protein+in+Alzheimer+disease+undergoes+fast+anterograde+axonal+transport.">Precursor of amyloid protein in Alzheimer disease undergoes fast anterograde axonal transport.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 87, 1561-1565 (1990).</li><li>Stokin, G. B., Goldstein, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axonal+transport+and+Alzheimer's+disease.">Axonal transport and Alzheimer's disease.</a> Annu. Rev. Biochem. 75, 607-627 (2006).</li><li>Bilsland, L. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deficits+in+axonal+transport+precede+ALS+symptoms+in+vivo.">Deficits in axonal transport precede ALS symptoms in vivo.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 20523-20528 (2010).</li><li>Lloyd, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+p150(Glued)+CAP-Gly+domain+regulates+initiation+of+retrograde+transport+at+synaptic+termini.">The p150(Glued) CAP-Gly domain regulates initiation of retrograde transport at synaptic termini.</a> Neuron. 74, 344-360 (2012).</li><li>Moughamian, A. J., Holzbaur, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynactin+is+required+for+transport+initiation+from+the+distal+axon.">Dynactin is required for transport initiation from the distal axon.</a> Neuron. 74, 331-343 (2012).</li><li>Lorenzo, D. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrin+mutations+that+cause+spinocerebellar+ataxia+type+5+impair+axonal+transport+and+induce+neurodegeneration+in+Drosophila.">Spectrin mutations that cause spinocerebellar ataxia type 5 impair axonal transport and induce neurodegeneration in Drosophila.</a> J. Cell. Biol. 189, 143-158 (2010).</li><li>Robinow, S., White, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+locus+elav+of+Drosophila+melanogaster+is+expressed+in+neurons+at+all+developmental+stages.">The locus elav of Drosophila melanogaster is expressed in neurons at all developmental stages.</a> Dev. Biol. 126, 294-303 (1988).</li><li>Pilling, A. D., Horiuchi, D., Lively, C. M., Saxton, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kinesin-1+and+Dynein+are+the+primary+motors+for+fast+transport+of+mitochondria+in+Drosophila+motor+axons.">Kinesin-1 and Dynein are the primary motors for fast transport of mitochondria in Drosophila motor axons.</a> Mol. Biol. Cell. 17, 2057-2068 (2006).</li><li>Furst, A., Mahowald, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+of+primary+embryonic+neuroblasts+in+purified+neural+cell+cultures+from+Drosophila.">Differentiation of primary embryonic neuroblasts in purified neural cell cultures from Drosophila.</a> Dev. Biol. 109, 184-192 (1985).</li><li>Salvaterra, P. M., Bournias-Vardiabasis, N., Nair, T., Hou, G., Lieu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+neuronal+differentiation+of+Drosophila+embryo+cells.">In vitro neuronal differentiation of Drosophila embryo cells.</a> J. Neurosci. 7, 10-22 (1987).</li><li>Wiemer, E. A., Wenzel, T., Deerinck, T. J., Ellisman, M. H., Subramani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+of+the+peroxisomal+compartment+in+living+mammalian+cells:+dynamic+behavior+and+association+with+microtubules.">Visualization of the peroxisomal compartment in living mammalian cells: dynamic behavior and association with microtubules.</a> J. Cell. Biol. 136, 71-80 (1997).</li><li>Rizzuto, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+gene+specifying+subunit+VIII+of+human+cytochrome+c+oxidase+is+localized+to+chromosome+11+and+is+expressed+in+both+muscle+and+non-muscle+tissues.">A gene specifying subunit VIII of human cytochrome c oxidase is localized to chromosome 11 and is expressed in both muscle and non-muscle tissues.</a> J. Biol. Chem. 264, 10595-10600 (1989).</li><li>Poot, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+mitochondrial+morphology+and+function+with+novel+fixable+fluorescent+stains.">Analysis of mitochondrial morphology and function with novel fixable fluorescent stains.</a> J. Histochem. Cytochem. 44, 1363-1372 (1996).</li><li>Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+lysosomal+compartment+as+intracellular+calcium+store+in+MDCK+cells:+a+possible+involvement+in+InsP3-mediated+Ca2++release.">The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release.</a> Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).</li></ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

ここでは、 ショウジョウバエ S2細胞および一次神経細胞培養で微小管依存貨物輸送を研究するための詳細なプロトコルを提示する。両方S2プロセスや神経突起は、細胞小器官の輸送のためのトラックとして機能バンドルされた微小管アレイで満たされた構造である。 2つの戦略は、一般的に細胞小器官を標識するために使用される：ベクターのトランスフェクショ...

ショウジョウバエ S2細胞は多くの細胞プロセスを研究するための人気の高まりを得ています。これらの細胞は、もともとOregonR キイロショウジョウバエのトリプシン処理し、後期胚から得られ、1。 ショウジョウバエ S2細胞は他の細胞株に比べて多くの利点を提供するマクロファージ様な機能を維持した。それらは、CO 2なしで25℃で培養し、加熱またはガス交換を必要とせず、室温で長時間撮像することができる。より重要なことには、 ショウジョウバエ S2細胞は、目的のタンパク質の高効率ノックダウンを可能にするRNAi処理に非常に敏感である。 S2細胞は、高度にトランスフェクトされ、安定な細胞株は、目的のタンパク質の安定な異所性発現を可能にするために4週間未満に選択することができる。 S2細胞は、通常はどちらかに成長緩く付着したが、フラスコにまたは懸濁液中に広がっていない。それらは、植物レクチンコンカでプレコートしたカバースリップ上に広げるように誘導することができるnavalin A（ConAを）。スプレッド細胞の周囲は特に薄く、したがって、生細胞顕微鏡検査に最適です。 S2細胞培養のための詳細なプロトコルは、RNAi処理、生光イメージングおよび免疫染色は文献2,3に記載されています。私たちの研究室では、微小管ベースの貨物輸送を研究するためのモデル系としてS2細胞を採用しています。このようなサイトカラシンD（CytoD）として、F-アクチンの脱重合または切断する任意の薬物で処理されたショウジョウバエ S2細胞は、一様に分極微小管4で満たされた長い突起を成長さその微小管の配列に沿って貨物の動きを研究する理想的なシステムにする-10、。これらのプロセスにおける輸送の異なるパラメータ（。 すなわち軌道の長さ、速度、方向など ） を容易に自動化された粒子追跡ソフトウェアを、DiaTrack（Semasopht用いて測定することができます。http://www.microscopy.info/Organization/Details/4423;博士。パスカルロットン：http://www.csiro.au/en/Organisation-Structure/Divisions/Mathematics-Informatics-and-Statistics/PascalVallotton.aspx＃A4）。これらのプロパティは、S2細胞を組織培養細胞内の微小管に沿って貨物輸送を研究するための魅力的なシステムを作る。 S2細胞におけるパイロット実験は、 ショウジョウバエ一次ニューロンにおける貨物輸送研究の生理学的に重要なモデルに拡張することができる。 S2細胞と同様に、解離した胚から培養されたニューロンは、染料及び阻害剤のような小分子に対して透過性であり、細胞小器官輸送の高解像度のライブイメージングは​​、室温でのニューロンで行うことができる。異なる遺伝的背景を持つショウジョウバエを使って、我々はノックアウト（遺伝子の機能喪失変異が）によって一次ニューロンにおける遺伝子機能を調べることができ、ノックダウン（dsRNAを注入または式）または異所性発現（トランスジェニックハエ）。代わりに、彼らはより速く成長し、したがって、私たちは、微小管dependeを学ぶことができ、具体的には、CytoD処理を用いてアクチンフィラメントの断片化は、神経突起伸長を防ぐことはできませんアクチンフィラメント11の影響を受けずにCytoD処理したニューロンでの輸送をオルガネラNT。そのため、一次ニューロン培養は、生理学的に関連するシステム10,12に貨物輸送を研究するのに最適なシステムになり、これを組織培養細胞の利点を組み合わせると遺伝学を飛ぶ。いくつかの家族性の神経変性疾患は、に起因する、または貨物輸送の欠陥（ 例えば 、パーキンソン病13と関連付けることができたので、ハンチントン病14、アルツハイマー病15,16、筋萎縮性側索硬化症/ ALS 17、HMN7Bとペリー症候群18,19、および脊髄小脳失調タイプ5/SCA5 20）、初代神経培養は、微小管依存性輸送にこれらの疾患の原因となる特定の変異の効果の分析に役立ちます。 最後に、微小管依存性輸送の重要な特性はよく、哺乳類やハエの間で保存されているが、 <em&gt;ショウジョウバエ遺伝的および細胞培養物は、正常および病的状態におけるオルガネラ輸送の重要な側面を研究するための培養されたショウジョウバエ細胞の使用を正当化する、より安価であり、時間がかかる。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="435">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:124px;">Powder Insect cell medium (Schneider&#8217;s)</td>
			<td style="width:133px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:179px;">S9895</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">Insect &#8211;Xpress medium</td>
			<td style="width:133px;">Fisher</td>
			<td style="width:179px;">BW12730Q</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:124px;">Insulin</td>
			<td style="width:133px;">Sigma</td>
			<td style="width:179px;">I6634</td>
		</tr>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:124px;">Penicillin</td>
			<td style="width:133px;">Research Products International</td>
			<td style="width:179px;">P93000</td>
		</tr>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:61px;width:124px;">Streptomycin</td>
			<td style="width:133px;">Research Products International</td>
			<td style="width:179px;">S62000</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">Tetracycline hydrochloride</td>
			<td style="width:133px;">Sigma</td>
			<td style="width:179px;">T7660-5G</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">Fetal bovine serum</td>
			<td style="width:133px;">Atlanta Biologicals</td>
			<td style="width:179px;">S11150</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:124px;">Concanavalin A</td>
			<td style="width:133px;">Sigma</td>
			<td style="width:179px;">C2010</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:124px;">Cytochalasin D</td>
			<td style="width:133px;">VWR</td>
			<td style="width:179px;">IC15077105</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">LysoTracker Red DND-99</td>
			<td style="width:133px;">Molecular Probes</td>
			<td style="width:179px;">L7528</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">100 &#181;m Cell strainer</td>
			<td style="width:133px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:179px;">22363549</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">25 mm Circle cover glass</td>
			<td style="width:133px;">VWR</td>
			<td style="width:179px;">48380 080</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:124px;">Drosophila Vials</td>
			<td style="width:133px;">VWR</td>
			<td style="width:179px;">89092-730</td>
		</tr>
		<tr height="81">
			<td height="81" style="height:81px;width:124px;">Disposable pellet pestles with matching microtubes</td>
			<td style="width:133px;">Kimble Chase</td>
			<td style="width:179px;">749520-0000</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

organelle transport in cultured drosophila cells: s2 cell line and primary neurons.

ショウジョウバエ S2細胞は一様に分極微小管で満たされた任意のアクチン脱重合薬物形の長い分岐していないプロセスの存在下でカバーガラス上にプレー。細胞小器官は、微小管モーターによって、これらのプロセスに沿って移動する。メンテナンスが容易、安定な細胞株を作成するためのRNAiを介したタンパク質ノックダウンと効率的な手順に対する高い感受性は、ショウジョウバエ S2細胞のライブイメージングによる貨物輸送を研究するための理想的なモデルシステムを作る。解離したショウジョウバエ胚由来の初代培養ニューロンにおける軸索輸送：S2細胞で得られた結果は、さらにより生理学的に関連するシステムに適用することができる。培養されたニューロンは、S2のプロセスに非常によく似てバンドルされた微小管を充填し、長い神経突起を成長させる。 S2細胞中と同様に、培養神経細胞における細胞小器官は、初期胚に注入またはトランスジーンのいずれかで発現オルガネラ特異的蛍光色素によって、またはDNAによってコードされる細胞小器官の蛍光マーカーを用いて可視化することができるICハエ。従って、細胞小器官輸送が容易に生体イメージングを用いてガラスカバースリップ上で培養ニューロンにおいて記録することができる。ここでは、 ショウジョウバエ S2細胞および一次ニューロンで貨物輸送を培養し、可視化するための手順について説明します。私たちは、これらのプロトコルは、貨物輸送を研究するラボ用両方のシステムにアクセスできるようにと考えています。

ショウジョウバエ S2細胞は、平らな丸い「パンケーキ」形状（ 図1Aおよび1C）へのConAでコーティングされたカバースリップの広がりに取り付けられている。 S2細胞はCytoDの存在下でカバースリップ上にプレーティングし、2〜3時間拡散させしかし、それらは平行微小管（ 図1Bおよび1D）によって充填細長いプロセスを形成する。これら?...

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Organelle Transport in Cultured Drosophila Cells: S2 Cell Line and Primary Neurons.

ショウジョウバエ S2細胞および培養されたニューロンは、インビボでの電動オルガネラ輸送のイメージングのための優れたシステムである。ここでは、両方の細胞型、それらの画像化および輸送の分析を培養するための詳細なプロトコルを記載している。

培養中の細胞小器官輸送<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;細胞：S2細胞ラインと一次ニューロン。

Drosophila S2 cells plated on a coverslip in the presence of any actin-depolymerizing drug form long unbranched processes filled with uniformly polarized ...

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Biology

Organelle Transport in Cultured Drosophila Cells: S2 Cell Line and Primary Neurons.

13.6K ビュー.  Feinberg School of Medicine, Northwestern University.  ショウジョウバエ S2細胞および培養されたニューロンは、インビボでの電動オルガネラ輸送のイメージングのための優れたシステムである。ここでは、両方の細胞型、それらの画像化および輸送の分析を培養するための詳細なプロトコルを記載している。 