Hirschilトラスト、マイケル·セイパースタインメディカル学者研究費、およびニューヨーク大学ホワイトヘッドの交わりは、この作品を支持した。

1。マイクロプレートのウェルをコーティング注記：このステップの目標は、T細胞のLFA-1のリガンドとして機能するように、ICAM-1とのコートポリスチレン表面にある。 <ol><li>次の解決策を準備します。 <ol><li>再懸 ​​濁することによりコーティング溶液を調製した組換えICAM-1カルシウム（1mMの富化リン酸緩衝生理食塩水（PBS）溶液（137mMのNaCl、2.7mMのKCl、10mMのNa 2 HPO 4、2mMのKH 2 PO 4、pH7.4）で塩化カルシウム）とマグネシウム（2 nMのMgCl 2を ）。 ICAM-1の最終濃度が0.7 mg / mlの原液から作られ、-80℃の冷凍庫に保管10μg/ mlの、であることを確認してください。 </li><li> 0.5％のヒト（またはウシ）血清アルブミン（HSA / BSA）、2mMのMgCl 2、および1mM CaCl 2でPBSを濃縮することにより、接着溶液を調製する。 </li><li> PBSに2 MgCl 2および1mMのCaCl 2を追加することにより、洗浄溶液を調製する。 37へのすべてのソリューションを温める使用前にCと°。 </li></ol></li><li>洗浄溶液50μlで24個のウェルを洗浄します。これは洗っていない井戸、正（PMA処理した細胞）、および負（コーティングされていない井戸）のコントロールが含まれます。各条件は、少なくとも3つのウェル（三重）を設定するため。 </li><li>各ウェルにコーティング液50μlを追加します。コー​​ティングされていない対照ウェルに追加しないでください。 37℃のインキュベーター内部の1時間インキュベートする。 </li><li>先端がウェルの底に触れることなく、穏やかに塗布液を吸引する。洗浄溶液50μlで1回洗浄する。 </li><li>接着溶液50μlを加え、37℃のインキュベーターの内側1時間マイクロプレートをインキュベートする。 </li><li>吸引除去優しくおよび50μlの洗浄溶液で1回洗浄する。しかし、それは一晩4℃で保管し、そして次の日、それを使用することが可能で、同じ日にプレートを使用する。 </li></ol>血液からの2。のT細胞単離<ol><li> 50μL/ mlのOにおけるヒトT細胞濃縮カクテルを追加F全血（ 例えば抗凝固剤の3ミリリットル（ヘパリン、EDTA、またはクエン酸塩）、全血の場合、カクテル150μlのを追加します）。よく混ぜる。 </li><li>室温で20分間インキュベートする。 </li><li> 50ミリリットルの遠心管に処理された血液と室温で1％のD-グルコースで強化し（カルシウムとマグネシウムを含まない）等容量のPBSの3ミリリットルを追加。パスツールピペットを用いて穏やかに混合。 </li><li>遠心チューブに15ミリリットルフィコール·パックPLUSを追加します。 </li><li>慎重にリンパ球分離培地上で血液サンプルを希釈し、層を6ml。 </li><li>休憩をオフにして20℃で20分間400×gで遠心します。 </li><li>界面で乱されていないリンパ球層を残して、きれいなパスツールピペットを用いて上層を取り除く。 血漿の上層は後の使用のために保存することができる。清浄なパスツールピペットを使用して清浄な遠心分離管にリンパ球層を移す。 </li><li>リンパ球にPBSを3容量（9ミリリットル）を追加します。そっとして細胞を一時停止DRAウイングその中およびパスツールピペットから。 </li><li> 20℃で5分間、400×gで遠心分離する</li><li>上清を取り除きます。リンパ球はこれで、アプリケーションに適した媒体に懸濁されるべきである。 20ml中のT-75培養フラスコに細胞を移し、10％FBS、1％ペニシリン/ストレプトマイシンを含むRPMI 1640培地。 </li></ol>細胞の3。準備注意：細胞を蛍光試薬で標識するための前提条件である。このプロトコルでは発現細胞が許容される代替物であるカルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）であるが、緑色蛍光タンパク質（GFP）を使用する。 <ol><li>血球計数器を用いて2.4×10 6 T細胞（各ウェルのための1×10 5）を数える。 </li><li> （血清飢餓）は、血清を欠く培地中で細胞を再懸濁。 37℃のインキュベーター内で2時間細胞をインキュベートします。 </li><li> 5分（400×g）で細胞を遠心分離する。培地を吸引除去し、1ミリリットルのPBSに懸濁します。 </li><li> 1:1000希釈（5 mMまで行わストック）でCFSEを追加します。光からカバーし、室温で8分間インキュベートする。 </li><li> 37°CのPBS 10mlに添加することにより反応を停止し、5分間400×gでスピン。 </li><li>再懸 ​​濁予め温めた接着溶液（501μl当たり1×10 5細胞）を1.2 mlの細胞ペレットを再。 </li></ol> 4。細胞の刺激を注：接着を開始するために、細胞が刺激されなければならない。以下の実験では、細胞を抗CD3抗体を用いて架橋するTCRを介して刺激されるが、可溶性SDF-1は、代替として役立ち得る。実験の目的に応じて、様々な薬理学的試薬は、細胞接着への影響を研究するために、刺激の前又は間に添加することができる。ホルボールミリステートアセテート（PMA）は、二次メッセンジャーのジアシルグリセロール（DAG）と構造的に類似であり、したがって、複数のキナーゼを活性化ホルボールエステルであるTCRの下流側（主にプロテインキナーゼC）だ;ここでは陽性対照として使用する。 <ol><li> 37℃にマイクロプレートを温める</li><li> 8空の1.5mlチューブ（各チューブに150μl）、各条件1のチューブに細胞を分割します。 </li><li>それに応じて細胞を処理： <ol><li>ポジティブコントロールとして、10 ng / mlのでPMAで1チューブを刺激する。刺激のためのコントロール（「刺激なし」）、未洗浄ローディングコントロール（「NOウォッシュ」）、およびICAM-1コーティングのための制御（「コーティングされていない」）として機能するように、未処理の3つの管を保管してください。 </li><li>抗CD3抗体の異なる濃度（0.1、1、5、および10μg/ ml）を用いて4つのチューブを刺激する。遅延することなく、次のステップに進みます。 </li></ol></li><li>各ウェルの空に刺激された細胞の混合物のアリコート50μlを。ウェルあたりの細胞の最終的な数は、1×10 5である。 </li><li> 15分間37℃のインキュベーター内でマイクロプレートを置きます。 注：一部のT細胞株は、短い刺激に対するが必要です<html>のTiON時間。この時間の間に、細胞がウェルの底に落ち着くし、標的リガンドに準拠しています。 </li></ol> 5。洗い流す非接着細胞注記：このステップの目標は、リガンドでコーティングされた表面との緊密な接触を形成することができませんでした細胞を除去することです。同一の物理的な力を全てのウェルに適用されることを確実にするために、このステップのマルチチャンネルピペットを使用する。これは、接着細胞のパーセンテージの計算を補助するために示された未洗浄の対照ウェルに保つことが重要である。 <ol><li>各ウェルに温かい接着溶液150μlを加える。ウエルから培地を除去する前に数秒間静かにプレートを振る。ヒントウェルの底に触れないでください。 </li><li>この手順を3回繰り返します。内と外のバッファをピペットときピペットの方向を変える。 </li></ol> 6。接着細胞の割合の判定_content &quot;&gt;注意：このステップでは、蛍光プレートリーダーは、各ウェル内の蛍光強度を測定するために使用される強度は接着細胞の数と直接相関する。 <ol><li>プレートリーダーをオンにします。デスクトップ上のショートカットアイコンをクリックして、プレートリーダー·ソフトウェアを開きます。 <ol><li> 「タスク」メニューの新しいプロトコルを設定するには「新規」をクリックします。 </li><li> 「アクション」メニューから「読み込み」オプションを選択します。 「蛍光強度」をクリックして、「OK」のタブを押してください。 </li><li>ドロップダウンメニューから「励起波長485」と「発光波長528」を選択します。 「OK」のタブを押してください。 </li><li> 「光」オプションメニューで「ボトム」を選択し、「OK」のタブを押してください。バック「アクション」メニューに移動し、37℃に温度を設定し、「OK」をクリックしてください。 </li><li>プレートリーダーにマイクロプレートを挿入し、「ファイル名を指定して実行」をクリックしてください。結果はExcelスプレッドシートにエクスポートされます。 </li></ol></li><li>以下の式を用いて接着細胞のパーセンテージを計算する： 接着細胞のパーセンテージ=（洗浄後のウェルで読み取る平均蛍光強度）/（未洗浄細胞において読み出さ平均蛍光強度）×100％。 </li></ol>

<ol>
	<li>Dustin, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membranes+as+messengers+in+T+cell+adhesion+signaling.">Membranes as messengers in T cell adhesion signaling.</a> Nat Immunol. 5 (4), 363-372 (2004).</li><li>Mor, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=GTPases+and+LFA-1+reciprocally+modulate+adhesion+and+signaling.">GTPases and LFA-1 reciprocally modulate adhesion and signaling.</a> Immunol Rev. 218, 114-125 (2007).</li><li>Rose, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrin+modulation+and+signaling+in+leukocyte+adhesion+and+migration.">Integrin modulation and signaling in leukocyte adhesion and migration.</a> Immunol Rev. 218, 126-134 (2007).</li><li>Alon, R., Feigelson, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemokine-triggered+leukocyte+arrest:+force-regulated+bi-directional+integrin+activation+in+quantal+adhesive+contacts.">Chemokine-triggered leukocyte arrest: force-regulated bi-directional integrin activation in quantal adhesive contacts.</a> Curr Opin Cell Biol. 24 (5), 670-676 (2012).</li><li>Griffith, J. W., Luster, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+cells+in+motion:+migrating+toward+improved+therapies.">Targeting cells in motion: migrating toward improved therapies.</a> Eur J Immunol. 43 (6), 1430-1435 (2013).</li><li>Dustin, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+adhesion+molecules+and+actin+cytoskeleton+at+immune+synapses+and+kinapses.">Cell adhesion molecules and actin cytoskeleton at immune synapses and kinapses.</a> Curr Opin Cell Biol. 19 (5), 529-533 (2007).</li><li>Springer, T. A., Dustin, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrin+inside-out+signaling+and+the+immunological+synapse.">Integrin inside-out signaling and the immunological synapse.</a> Curr Opin Cell Biol. 24 (1), 107-115 (2012).</li><li>Mor, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=D1+regulates+lymphocyte+adhesion+via+upregulation+of+Rap1+at+the+plasma+membrane.">D1 regulates lymphocyte adhesion via upregulation of Rap1 at the plasma membrane.</a> Mol Cell Biol. 29 (12), 3297-3306 (2009).</li><li>Bivona, T. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rap1+up-regulation+and+activation+on+plasma+membrane+regulates+T+cell+adhesion.">Rap1 up-regulation and activation on plasma membrane regulates T cell adhesion.</a> J Cell Biol. 164 (3), 461-470 (2004).</li><li>Zeltzer, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diminished+adhesion+of+CD4++T+cells+from+dialysis+patients+to+extracellular+matrix+and+its+components+fibronectin+and+laminin.">Diminished adhesion of CD4+ T cells from dialysis patients to extracellular matrix and its components fibronectin and laminin.</a> Nephrol Dial Transplant. 12 (12), 2618-2622 (1997).</li><li>Bhattacharyya, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Both+adhesion+to+immobilized+vitronectin+and+Fc+epsilon+RI+cross-linking+cause+enhanced+focal+adhesion+kinase+phosphorylation+in+murine+mast+cells.">Both adhesion to immobilized vitronectin and Fc epsilon RI cross-linking cause enhanced focal adhesion kinase phosphorylation in murine mast cells.</a> Immunology. 98 (3), 357-362 (1999).</li><li>Dustin, M. L., Groves, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Receptor+signaling+clusters+in+the+immune+synapse.">Receptor signaling clusters in the immune synapse.</a> Annu Rev Biophys. 41, 543-556 (2012).</li></ol>

著者らは、開示することは何もありません。

LFA-1活性化およびT細胞の接着12に信号を研究するためのいくつかのアッセイがある。フローサイトメトリーは、屈曲またはLFA-1の拡張のいずれかに選択的に結合するモノクローナル抗体を用いて生細胞におけるLFA-1の親和性の状態を測定するために使用される。この方法の制限の1つは、それが考慮インテグリン &#39;結合活性をとらないことである。遊走アッセイは、便利なツールです...

Tリンパ球の接着は、免疫応答1と基本的な処理である。これは、標的細胞に2リンパ節内の細胞（APC）に抗原提示を走査するため、および免疫学的シナプスの形成のために、内皮細胞が毛細血管壁を装飾するとT細胞の相互作用のために（IS）が必要である。これらの要件は、機能的にも速度論的に区別される。リンパ球の血管外漏出のプロセスは、化学誘引、ローリング、強固な接着、移住から構成されています。接着を会社にローリングからの移行が急速にGタンパク質共役受容体シグナルに応答するT細胞を必要とします。この応答は、細胞ローリング3を遅くし、逮捕インテグリンリガンド相互作用が得られます。インテグリン結合活性の即時の変化は、このプロセスを仲介する。移行は「フロントエンド」と「後端」の癒着の破損で癒着の形成と動的な相互作用のbetweenTcellsおよび内皮細胞を必要とする形成し、4を壊す約分間隔で。 ISはinminutesを形成するが、時間6用にそのまま残る必要があります。 興味深いことに、ある接着分子、インテグリンファミリーメンバーリンパ球機能関連抗原（LFA） -図1は、これら全ての方法5に必須である。 LFA-1は、免疫グロブリンスーパ​​ーファミリーのいくつかのメンバーとの相互作用を介して接着を媒介する。 LFA-1の最も高い親和性を有する最も広く研究リガンドは、細胞間接着分子（ICAM）-1である。非活性循環リンパ球は、細胞表面上に低親和性LFA-1を発現し、従って、ICAM-1でコーティングされた表面に付着することができない。 LFA-1の親和性は、可変ならびにT細胞受容体（TCR）によって媒介されるGタンパク質共役受容体の活性化、サイトカイン刺激、および信号などのいくつかのシグナル伝達事象によって調節される。LFA-1が得られた高親和性形態は、細胞外空間への細胞内活性化を搬送するTICAM-1との相互作用hrough。この経路は、7シグナリングインサイドアウトと呼ばれている。同様に、細胞外の空間から、LFA-1を介したシグナル伝達は、アウトサイド·インのシグナリングと呼ばれています。 インサイドアウトやアウトサイドインシグナル伝達に関与カスケードの細胞内シグナル伝達は、現在の研究の主要な焦点である。低分子量GTPase Rap1のは、最近、それは、TCRライゲーションおよび8サイトカインシグナルの両方に共通しているシグナルインサイドアウトの重要な要素として浮上している。インテグリン活性化のRap1の重要な役割は、T細胞の接着が、ドミナントネガティブ型Rap1 9の発現によって遮断される一方のRap1の過剰発現は、T細胞のインテグリン依存性接着を刺激するという発見により強調される。 Rap1のによるインテグリン規制の我々の理解におけるこれらの進歩は、in vitroのツールで使用して達成されてきた。これらの中でも、ここで説明した静的接着アッセイである。 この方法の全体的な目標は、Tを研究することであるICAM-1をコーティングした表面への細胞接着。具体的には、客観的に測定し、異なる条件下で、リアルタイムで生細胞におけるそのカウンターリガンドに向かってLFA-1の親和性を定量するために使用される。この技術は、T細胞と相互作用する細胞の表面を模倣するようにICAM-1でコーティングしたポリスチレンウェルを使用する。多くの前述の静的T細胞接着アッセイは、実験的に複雑であった。これらのアッセイは、しばしば、培養されたウシ角膜細胞は、T細胞の接着のための基質として細胞外マトリックスを作成するために利用される放射性標識するT細胞に必要な、またはT細胞の接着10を促進するために拡張された期間にわたって非生理学的T細胞刺激を求めた。多くの他のアッセイシステム11で利用されるように、フローサイトメトリーおよび顕微鏡流れと比較して、接着インキュベーション後のT細胞を定量するための蛍光測定の使用は、定量化のより高感度かつ正確な方法である。さらに、単一細胞microscopインテグリン局在のIC分析では、蛍光の測定と同様に広範な、人口ベースの分析のために許可していません。活性化状態特異LFA-1抗体が市販されているが、これらの抗体は、ここで説明する方法に比べて低い感度を提供します。代替技術上の主な利点は、その単純さと、同時に複数の実験条件を確認できることが挙げられます。特定のアプリケーションのためにこの方法を検討する場合、一方はT細胞が負に、選択された新たに単離され、蛍光マーカーで標識されるべきであることを考慮すべきである。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="828">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Plate reader</td>
			<td style="width:160px;">BioTek&#160;</td>
			<td style="width:136px;">Synergy H1 Hybrid</td>
			<td style="width:88px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Multichannel pipette</td>
			<td style="width:160px;">Fisher</td>
			<td style="width:136px;">21-377-829</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">96-well microplate with optical bottom</td>
			<td style="width:160px;">Corning Costar</td>
			<td style="width:136px;">3603</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Recombinant ICAM-1</td>
			<td style="width:160px;">R&#38;D Systems</td>
			<td style="width:136px;">ADP4-050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Anti-CD3 antibodies</td>
			<td style="width:160px;">Ancell</td>
			<td style="width:136px;">144-020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">PMA</td>
			<td style="width:160px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:136px;">79346</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">BSA</td>
			<td style="width:160px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:136px;">A2058</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">CFSE</td>
			<td style="width:160px;">Molecular Probes</td>
			<td style="width:136px;">C1157</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">RPMI</td>
			<td style="width:160px;">Gibco</td>
			<td style="width:136px;">11875-093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">DPBS containing calcium and magnesium</td>
			<td style="width:160px;">Gibco</td>
			<td style="width:136px;">14190250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Peripheral lymphocytes</td>
			<td style="width:160px;">e.g. mouse or human</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Magnesium chloride</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M8266</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:444px;">Calcium chloride</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>499609</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Open Gen 5 software</td>
			<td>BioTek</td>
			<td>Version 2.01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ficoll-Paque PLUS</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>71-7167-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">15 and 50 mL centrifuge tubes</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>352099, 352070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Disposable plastic Pasteur pipettes</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>13-711-7M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">T-75 culture flasks</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>50-754-1366</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RosetteSep T cell enricment kit</td>
			<td>StemCell Technologies</td>
			<td>15061</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

static adhesion assay for the study of integrin activation in t lymphocytes

Tリンパ球の接着は、炎症および抗原提示細胞との免疫学的シナプスの形成部位への遊走を含む複数のT細胞機能に必要とされる。 T細胞は、インテグリン、パートナー細胞または細胞外マトリックス上の標的分子と相互作用する膜貫通タンパク質のヘテロ二量体対からなる細胞接着分子のクラスの接着特性を制御することにより調整された接着性を達成する。最も顕著なT細胞は、インテグリンリンパ球機能関連抗原（LFA）-1サブユニットが標的細胞内接着分子（ICAM）-1αLおよびβ2から構成である。接着を制御するためのT細胞の能力は、個々のインテグリンの親和性の状態を調節する能力に由来する。インサイドアウトシグナル伝達は、細胞内のシグナルがインテグリンの外部ドメインが活性化された状態を想定する原因となるプロセスについて説明します。これらの複雑な現象の私たちの知識の多く​​は、機械論に基づいていますin vitroモデル系で単純化された中で行われた研究。ここで説明するTリンパ球接着アッセイは、T細胞は、静的な条件下で、標的分子に付着させることができ、その後、接着性を定量化するために、蛍光プレートリーダーを利用する優れたツールである。このアッセイは、リンパ球に作用する接着刺激または阻害する物質を定義するだけでなく、関係するシグナル伝達事象を特徴づけるに有用であった。 LFA-1のためにここで説明したが - ICAM-1仲介接着;このアッセイは、容易に他の接着相互作用（ -フィブロネクチン例えば、VLA-4）の研究を可能にするように適合させることができる。

以下の抗CD3抗体の種々の濃度で刺激した一次T細胞を用いて接着アッセイの一例である。これは、未洗浄細胞（ すなわち合計ローディング）の蛍光を知っておくと便利です。非刺激細胞は、陰性対照としての役割を果たし、PMA処理細胞は、抗CD3抗体の陽性対照である。コー​​ティングされていないウェルで播種した細胞は、ICAM-1のコントロールとして機能します。非刺激細胞の割合?...

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Static Adhesion Assay for the Study of Integrin Activation in T Lymphocytes

静的接着アッセイは、Tリンパ球および他の細胞型間の相互作用をモデル化するために使用することができる強力なツールである。プレートリーダーは、シリアル回洗浄し、以下の接着細胞の数を定量するために使用される相互作用は、接着分子でコーティングされたウェルに標識されたT細胞を注入することによって生成される。

Tリンパ球におけるインテグリン活性化の研究のための静的な接着アッセイ

T lymphocyte adhesion is required for multiple T cell functions, including migration to sites of inflammation and formation of immunological synapses with ...

static-adhesion-assay-for-study-integrin-activation-t

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15.9K ビュー.  New York University School of Medicine. 静的接着アッセイは、Tリンパ球および他の細胞型間の相互作用をモデル化するために使用することができる強力なツールである。プレートリーダーは、シリアル回洗浄し、以下の接着細胞の数を定量するために使用される相互作用は、接着分子でコーティングされたウェルに標識されたT細胞を注入することによって生成される。 

ビデオ: Static Adhesion Assay for the Study of Integrin Activation in T Lymphocytes

In Vitro Assay of Bacterial Adhesion onto Mammalian Epithelial Cells

To cause infections, bacteria must colonize their host. Bacterial pathogens express various molecules or structures able to promote attachment to host cells1. These adhesins rely on interactions with host cell surface receptors or soluble proteins acting as a bridge between bacteria and host. Adhesion is a critical first step prior to invasion and/or secretion of toxins, thus it is a key event to be studied in bacterial pathogenesis. Furthermore, adhered bacteria often induce exquisitely fine-tuned cellular responses, the studies of which have given birth to the field of 'cellular microbiology'2. Robust assays for bacterial adhesion on host cells and their invasion therefore play key roles in bacterial pathogenesis studies and have long been used in many pioneer laboratories3,4. These assays are now practiced by most laboratories working on bacterial pathogenesis.
Here, we describe a standard adherence assay illustrating the contribution of a specific adhesin. We use the Escherichia coli strain 27875, a human pathogenic strain expressing the autotransporter Adhesin Involved in Diffuse Adherence (AIDA). As a control, we use a mutant strain lacking the aidA gene, 2787&Delta;aidA (F. Berthiaume and M. Mourez, unpublished), and a commercial laboratory strain of E. coli, C600 (New England Biolabs). The bacteria are left to adhere to the cells from the commonly used HEp-2 human epithelial cell line. This assay has been less extensively described before6.

In Vitro Assay of Bacterial Adhesion onto Mammalian Epithelial Cells

This protocol is a simple bacterial adhesion assay consisting in counting the numbers of bacterial colony forming units that are adhered onto cultured cells. The assay is robust, independent of the adhesin studied, and numerous variations are used in most laboratories working on bacterial pathogenesis.

哺乳類上皮細胞上に細菌付着のインビトロアッセイ

To cause infections, bacteria must colonize their host. Bacterial pathogens express various molecules or structures able to promote attachment to host ...

免疫・感染学

Introducing Shear Stress in the Study of Bacterial Adhesion

During bacterial infections a sequence of interactions occur between the pathogen and its host. Bacterial adhesion to the host cell surface is often the initial and determining step of the pathogenesis. Although experimentally adhesion is mostly studied in static conditions adhesion actually takes place in the presence of flowing liquid. First encounters between bacteria and their host often occur at the mucosal level, mouth, lung, gut, eye, etc. where mucus flows along the surface of epithelial cells. Later in infection, pathogens occasionally access the blood circulation causing life-threatening illnesses such as septicemia, sepsis and meningitis. A defining feature of these infections is the ability of these pathogens to interact with endothelial cells in presence of circulating blood. The presence of flowing liquid, mucus or blood for instance, determines adhesion because it generates a mechanical force on the pathogen. To characterize the effect of flowing liquid one usually refers to the notion of shear stress, which is the tangential force exerted per unit area by a fluid moving near a stationary wall, expressed in dynes/cm2. Intensities of shear stress vary widely according to the different vessels type, size, organ, location etc. (0-100 dynes/cm2). Circulation in capillaries can reach very low shear stress values and even temporarily stop during periods ranging between a few seconds to several minutes 1. On the other end of the spectrum shear stress in arterioles can reach 100 dynes/cm2 2. The impact of shear stress on different biological processes has been clearly demonstrated as for instance during the interaction of leukocytes with the endothelium 3. To take into account this mechanical parameter in the process of bacterial adhesion we took advantage of an experimental procedure based on the use of a disposable flow chamber 4. Host cells are grown in the flow chamber and fluorescent bacteria are introduced in the flow controlled by a syringe pump. We initially focused our investigations on the bacterial pathogen Neisseria meningitidis, a Gram-negative bacterium responsible for septicemia and meningitis. The procedure described here allowed us to study the impact of shear stress on the ability of the bacteria to: adhere to cells 1, to proliferate on the cell surface 5and to detach to colonize new sites 6 (Figure 1). Complementary technical information can be found in reference 7. Shear stress values presented here were chosen based on our previous experience1 and to represent values found in the literature. The protocol should be applicable to a wide range of pathogens with specific adjustments depending on the objectives of the study.

During the infection process, a key step is the adhesion of pathogens with host cells. In most instances this adhesion step occurs in the presence of mechanical stress generated by flowing liquid. We describe a technique that introduces shear stress as an important parameter in the study of bacterial adhesion.

細菌付着の研究ではせん断応力を導入する

During bacterial infections a sequence of interactions occur between the pathogen and its host. Bacterial adhesion to the host cell surface is often the ...

Directed Differentiation of Induced Pluripotent Stem Cells towards T Lymphocytes

Adoptive cell transfer (ACT) of antigen-specific CD8+ cytotoxic T lymphocytes (CTLs) is a promising treatment for a variety of malignancies 1. CTLs can recognize malignant cells by interacting tumor antigens with the T cell receptors (TCR), and release cytotoxins as well as cytokines to kill malignant cells. It is known that less-differentiated and central-memory-like (termed highly reactive) CTLs are the optimal population for ACT-based immunotherapy, because these CTLs have a high proliferative potential, are less prone to apoptosis than more differentiated cells and have a higher ability to respond to homeostatic cytokines 2-7. However, due to difficulties in obtaining a high number of such CTLs from patients, there is an urgent need to find a new approach to generate highly reactive Ag-specific CTLs for successful ACT-based therapies.
TCR transduction of the self-renewable stem cells for immune reconstitution has a therapeutic potential for the treatment of diseases 8-10. However, the approach to obtain embryonic stem cells (ESCs) from patients is not feasible. Although the use of hematopoietic stem cells (HSCs) for therapeutic purposes has been widely applied in clinic 11-13, HSCs have reduced differentiation and proliferative capacities, and HSCs are difficult to expand in in vitro cell culture 14-16. Recent iPS cell technology and the development of an in vitro system for gene delivery are capable of generating iPS cells from patients without any surgical approach. In addition, like ESCs, iPS cells possess indefinite proliferative capacity in vitro, and have been shown to differentiate into hematopoietic cells. Thus, iPS cells have greater potential to be used in ACT-based immunotherapy compared to ESCs or HSCs.
Here, we present methods for the generation of T lymphocytes from iPS cells in vitro, and in vivo programming of antigen-specific CTLs from iPS cells for promoting cancer immune surveillance. Stimulation in vitro with a Notch ligand drives T cell differentiation from iPS cells, and TCR gene transduction results in iPS cells differentiating into antigen-specific T cells in vivo, which prevents tumor growth. Thus, we demonstrate antigen-specific T cell differentiation from iPS cells. Our studies provide a potentially more efficient approach for generating antigen-specific CTLs for ACT-based therapies and facilitate the development of therapeutic strategies for diseases.

Generation of T lymphocytes from induced pluripotent stem (iPS) cells gives an alternative approach of using embryonic stem cells for T cell-based immunotherapy. The method shows that by utilizing either in vitro or in vivo induction system, iPS cells are able to differentiate into both conventional and antigen-specific T lymphocytes.

Tリンパ球に向かって誘導多能性幹細胞の分化の指示

Adoptive cell transfer (ACT) of antigen-specific CD8+  cytotoxic T lymphocytes (CTLs) is a promising treatment for a variety of  malignancies 1. CTLs can  ...

Quantitative In vitro Assay to Measure Neutrophil Adhesion to Activated Primary Human Microvascular Endothelial Cells under Static Conditions

The vascular endothelium plays an integral part in the inflammatory response. During the acute phase of inflammation, endothelial cells (ECs) are activated by host mediators or directly by conserved microbial components or host-derived danger molecules. Activated ECs express cytokines, chemokines and adhesion molecules that mobilize, activate and retain leukocytes at the site of infection or injury. Neutrophils are the first leukocytes to arrive, and adhere to the endothelium through a variety of adhesion molecules present on the surfaces of both cells. The main functions of neutrophils are to directly eliminate microbial threats, promote the recruitment of other leukocytes through the release of additional factors, and initiate wound repair. Therefore, their recruitment and attachment to the endothelium is a critical step in the initiation of the inflammatory response. In this report, we describe an in vitro neutrophil adhesion assay using calcein AM-labeled primary human neutrophils to quantitate the extent of microvascular endothelial cell activation under static conditions. This method has the additional advantage that the same samples quantitated by fluorescence spectrophotometry can also be visualized directly using fluorescence microscopy for a more qualitative assessment of neutrophil binding.

Quantitative In vitro Assay to Measure Neutrophil Adhesion to Activated Primary Human Microvascular Endothelial Cells under Static Conditions

Neutrophil adherence to the activated endothelium at sites of infection is an integral component of the host's inflammatory response. Described in this report is a neutrophil binding assay that allows for the in vitro quantitation of primary human neutrophil binding to endothelial cells activated by inflammatory mediators under static conditions.

定量的な<em&gt;インビトロ</em静的な条件の下で活性化された初代ヒト微小血管内皮細胞への好中球の接着を測定するために&gt;アッセイ

The vascular  endothelium plays an integral part in the inflammatory response. During the  acute phase of inflammation, endothelial cells (ECs) are ...

Isolation and Th17 Differentiation of Na&iuml;ve CD4 T Lymphocytes

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets including Th1, Th2, and regulatory T cells. Th17 cells have emerged as a central culprit in overzealous inflammatory immune responses associated with many autoimmune disorders. In this method we purify T lymphocytes from the spleen and lymph nodes of C57BL/6 mice, and stimulate purified CD4+ T cells under control and Th17-inducing environments. The Th17-inducing environment includes stimulation in the presence of anti-CD3 and anti-CD28 antibodies, IL-6, and TGF-&#946;. After incubation for at least 72 hours and for up to five days at 37 &#176;C, cells are subsequently analyzed for the capability to produce IL-17 through flow cytometry, qPCR, and ELISAs. Th17 differentiated CD4+CD25- T cells can be utilized to further elucidate the role that Th17 cells play in the onset and progression of autoimmunity and host defense. Moreover, Th17 differentiation of CD4+CD25- lymphocytes from distinct murine knockout/disease models can contribute to our understanding of cell fate plasticity.

Isolation and Th17 Differentiation of Na&#239;ve CD4 T Lymphocytes

With effector functions distinct from other T cell subsets, Th17 cells have been centrally implicated in inflammatory autoimmunity. This in vitro Th17 differentiation protocol provides a means to determine whether na&#239;ve CD4+ T lymphocytes can differentiate into Th17 cells, and to further examine their role in autoimmunity and host response.

離とナイーブCD4 Tリンパ球のTh17分化

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets ...

A Flow Adhesion Assay to Study Leucocyte Recruitment to Human Hepatic Sinusoidal Endothelium Under Conditions of Shear Stress

Leucocyte infiltration into human liver tissue is a common process in all adult inflammatory liver diseases. Chronic infiltration can drive the development of fibrosis and progression to cirrhosis. Understanding the molecular mechanisms that mediate leucocyte recruitment to the liver could identify important therapeutic targets for liver disease. The key interaction during leucocyte recruitment is that of inflammatory cells with endothelium under conditions of shear stress. Recruitment to the liver occurs within the low shear channels of the hepatic sinusoids which are lined by hepatic sinusoidal endothelial cells (HSEC). The conditions within the hepatic sinusoids can be recapitulated by perfusing leucocytes through channels lined by human HSEC monolayers at specific flow rates. In these conditions leucocytes undergo a brief tethering step followed by activation and firm adhesion, followed by a crawling step and subsequent transmigration across the endothelial layer. Using phase contrast microscopy, each step of this &#39;adhesion cascade&#39; can be visualized and recorded followed by offline analysis. Endothelial cells or leucocytes can be pretreated with inhibitors to determine the role of specific molecules during this process.

Leucocyte recruitment to the liver occurs within the specialized channels of the hepatic sinusoids which are lined by unique hepatic sinusoidal endothelial cells. Phase contrast microscopy of leucocyte recruitment across human hepatic sinusoidal endothelium under conditions of physiological shear stress can facilitate the elucidation of the molecular mechanisms which underlie this process.

せん断応力のヒト肝類洞内皮条件のことを白血球の募集を研究するフロー接着アッセイ

Leucocyte infiltration into human liver tissue is a common process in all adult inflammatory liver diseases. Chronic infiltration can drive the ...

Human Neutrophil Flow Chamber Adhesion Assay

Neutrophil firm adhesion to endothelial cells plays a critical role in inflammation in both health and disease. The process of neutrophil firm adhesion involves many different adhesion molecules including members of the &beta;2 integrin family and their counter-receptors of the ICAM family. Recently, naturally occurring genetic variants in both &beta;2 integrins and ICAMs are reported to be associated with autoimmune disease. Thus, the quantitative adhesive capacity of neutrophils from individuals with varying allelic forms of these adhesion molecules is important to study in relation to mechanisms underlying development of autoimmunity. Adhesion studies in flow chamber systems can create an environment with fluid shear stress similar to that observed in the blood vessel environment in vivo. Here, we present a method using a flow chamber assay system to study the quantitative adhesive properties of human peripheral blood neutrophils to human umbilical vein endothelial cell (HUVEC) and to purified ligand substrates. With this method, the neutrophil adhesive capacities from donors with different allelic variants in adhesion receptors can be assessed and compared. This method can also be modified to assess adhesion of other primary cell types or cell lines.

A method of quantitating neutrophil adhesion is reported. This method creates a dynamic flow environment similar to that encountered in a blood vessel. It allows the investigation of neutrophil adhesion to either purified adhesion molecules (ligand) or endothelial cell substrate (HUVEC) in a context similar to the in vivo environment with sheer stress.

ヒト好フローチャンバー接着アッセイ

Neutrophil firm adhesion to endothelial cells plays a critical role in inflammation in both health and disease. The process of neutrophil firm adhesion ...

In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions

In order to cause endovascular infections and infective endocarditis, bacteria need to be able to adhere to the vessel wall while being exposed to the shear stress of flowing blood.
To identify the bacterial and host factors that contribute to vascular adhesion of microorganisms, appropriate models that study these interactions under physiological shear conditions are needed. Here, we describe an in vitro flow chamber model that allows to investigate bacterial adhesion to different components of the extracellular matrix or to endothelial cells, and an intravital microscopy model that was developed to directly visualize the initial adhesion of bacteria to the splanchnic circulation in vivo. These methods can be used to identify the bacterial and host factors required for the adhesion of bacteria under flow. We illustrate the relevance of shear stress and the role of von Willebrand factor for the adhesion of Staphylococcus aureus using both the in vitro and in vivo model.

In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions

To study the interaction of bacteria with the blood vessels under shear stress, a flow chamber and an in vivo mesenteric intravital microscopy model are described that allow to dissect the bacterial and host factors contributing to vascular adhesion.

in vitroおよびin vivoモデルでは血管壁の下でフローの状況に細菌付着を研究するために、

In order to cause endovascular infections and infective endocarditis, bacteria need to be able to adhere to the vessel wall while being exposed to the ...

Efficient Isolation Protocol for B and T Lymphocytes from Human Palatine Tonsils

Tonsils form a part of the immune system providing the first line of defense against inhaled pathogens. Usually the term &#8220;tonsils&#8221; refers to the palatine tonsils situated at the lateral walls of the oral part of the pharynx. Surgically removed palatine tonsils provide a convenient accessible source of B and T lymphocytes to study the interplay between foreign pathogens and the host immune system. This video protocol describes the dissection and processing of surgically removed human palatine tonsils, followed by the isolation of the individual B and T cell populations from the same tissue sample. We present a method, which efficiently separates tonsillar B and T lymphocytes using an antibody-dependent affinity protocol. Further, we use the method to demonstrate that human adenovirus infects specifically the tonsillar T cell fraction. The established protocol is generally applicable to efficiently and rapidly isolate tonsillar B and T cell populations to study the role of different types of pathogens in tonsillar immune responses.

Palatine tonsils are a rich source of B and T lymphocytes. Here we provide an easy, efficient and rapid protocol to isolate B and T lymphocytes from human palatine tonsils. The method described has been specifically adapted for studies of the viral etiology of tonsil inflammation known as tonsillitis.

ヒトパラティーノ扁桃腺からBおよびTリンパ球の効率的な単離プロトコール

Tonsils form a part of the immune system providing the first line of defense against inhaled pathogens. Usually the term &#8220;tonsils&#8221; refers to ...

Assay of Adhesion Under Shear Stress for the Study of T Lymphocyte-Adhesion Molecule Interactions

Overall, T cell adhesion is a critical component of function, contributing to the distinct processes of cellular recruitment to sites of inflammation and interaction with antigen presenting cells (APC) in the formation of immunological synapses. These two contexts of T cell adhesion differ in that T cell-APC interactions can be considered static, while T cell-blood vessel interactions are challenged by the shear stress generated by circulation itself. T cell-APC interactions are classified as static in that the two cellular partners are static relative to each other. Usually, this interaction occurs within the lymph nodes. As a T cell interacts with the blood vessel wall, the cells arrest and must resist the generated shear stress.1,2 These differences highlight the need to better understand static adhesion and adhesion under flow conditions as two distinct regulatory processes. The regulation of T cell adhesion can be most succinctly described as controlling the affinity state of integrin molecules expressed on the cell surface, and thereby regulating the interaction of integrins with the adhesion molecule ligands expressed on the surface of the interacting cell. Our current understanding of the regulation of integrin affinity states comes from often simplistic in vitro model systems. The assay of adhesion using flow conditions described here allows for the visualization and accurate quantification of T cell-epithelial cell interactions in real time following a stimulus. An adhesion under flow assay can be applied to studies of adhesion signaling within T cells following treatment with inhibitory or stimulatory substances. Additionally, this assay can be expanded beyond T cell signaling to any adhesive leukocyte population and any integrin-adhesion molecule pair.

This flow adhesion assay provides a simple, high impact model of T cell-epithelial cell interactions. A syringe pump is used to generate shear stress, and confocal microscopy captures images for quantification. The goal of these studies is to effectively quantify T cell adhesion using flow conditions.

Tリンパ球接着分子の相互作用の研究のための接着性の下でせん断応力の測定

Overall, T cell adhesion is a critical component of function, contributing to the distinct processes of cellular recruitment to sites of inflammation and ...