この作品は、アメリカ心臓協会と子供の心筋症財団（SDG2462390204001）、および国立衛生研究所（HL114669）によってサポートされていました。 CMは心筋炎財団、ニュージャージー州によって授与ポスドク研究フェローシップ助成金の受取人である。

倫理声明： 全ての動物手順は、実験動物の管理と使用に関するガイドラインに沿って行われ、ネブラスカ大学リンカーン、リンカーン、ネブラスカ大学によって承認された。 EAEの1。誘導<ol><li> 工程1.1：EAEを誘導するために、以下の改変を伴う11に記載のようにペプチド/完全フロイントアジュバント（CFA）エマルジ ​​ョンを調製する。1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）中1 mg / mlの濃度でPLP 139-151を調製するステップ1.4：動物1匹当たりのPLP 139-151100μgのを含むCFA乳化液200μlを使用する1.4.1ステップ ：10動物を免疫するために、PLP 139-151の1ミリリットル1Xにおける（1 mg / mlのを混合することにより、エマルジ ​​ョンの2ミリリットルを用意。PBS）とCFAを等量の1.5ステップ ：2鼠径領域（〜75μLずつ）と5対6週齢の胸骨領域（〜50μL）に皮下分割用量でエマルジ ​​ョン200μlのを注入FEMAルSJL / Jマウス。 1.7と1.8は、EAEの誘導には適用されません繰り返します。 </li></ol> EAEマウスと大脳の収穫の2。臨床スコアリング<ol><li>臨床徴候の出現のために動物を監視し、次のように9日目免疫後から毎日疾患の重症度をスコア：0 - 健康的な; 1 - 尾または後肢の脱力両方ではなくぐったり。 2 - 尾と後肢の脱力ぐったり。 3 - 後肢の部分的な麻痺; 4 - 後肢の完全な麻痺; 5 -瀕死または死んだ12。 </li><li>それらはCO 2を用いて、3又は4の神経学的スコアに達したときにマウスを安楽死させる。マウスを安楽死させるべきではない6 PSIを超えるCO 2タンクのレギュレーターを回すことで、CO 2を最初に安楽死室を事前に記入し、動物が完全に窒息を達成するために約5分間、チャンバ内に滞在することができます。 70％アルコールで安楽死させた動物を浸す。すぐに、吸収パッド上に動物を配置し、無菌のペアを使用してCEPSとハサミは胸腔を通して切断することによって心を公開します。右心耳を穿刺し、心の左心室に冷たい1×PBSを10ミリリットルを注入することにより灌流。 </li><li>湾曲したハサミを使用して循環的に頭蓋骨を切り取ることで頭蓋骨を掘削し、慎重に、鉗子で頭蓋骨を反転。鈍的切開によって脳を収穫し、小脳からのきれいなメスで、別々の大脳を使用。冷たい1X PBSを含む試験管に大脳を配置して処理するまで氷上にチューブを残す。 </li></ol> 3。MHCクラスII（IA S）/ PLP 139-151 Dextramersと脳切片のその場染色 <ol><li> 50°Cに加熱して溶融し、使用するまで40℃の水浴に入れたまま、4％PBS緩衝低融点アガロースを調製する。 </li><li>使い捨ての深いベースモールドの組織学カセットに大脳を置き氷の上に保たれ、溶融した（40℃）、アガロースを注ぐ。すぐに、優しく大脳を押してください鉗子は、組織を沈めるようにして。凝固が完了するまで15〜20分間、氷上でのカセットのままにしておきます。 </li><li>チルド1X PBSでビブラトーム槽を埋める。 0と2の間のPBSの温度を維持するために氷浴でビブラトームの周りの空間を充填 ℃、ビブラにきれいなカミソリの刃を固定し、15℃にブレード角度を設定。 </li><li>ビブラトーム内の組織の配置。包埋組織のすべての側面からの過剰なアガロースをトリミングして、わずかに大脳の腹側表面を露出。 <ol><li>スーパー接着剤でビブラ組織ブロックを塗抹し、横方向切片化のための接着剤を介して大脳の露出腹面を配置することにより、接着表面にアガロース包埋組織を移す。組織がブロックの上に設定されると、組織を移動しないでください。 </li><li>氷上アガロース包埋組織を含むビブラトームブロックを置き、接着剤が15分間乾燥させます。 </li></ol></li><li>一方、組織を配置チャム24ウェルプレートのウェルごとに1つのBER。冷たい1X 1mlのPBSで組織チャンバーを含むウェルを記入し、氷の上にプレートを残す。 <ol><li>薄いナイロンスーパー接着剤を用いて、25 mlのポリプロピレンピペットのカット最後にメッシュを取り付けることにより、組織の室を準備し;ピペットの周りに余分なメッシュをトリミングした後、メッシュから1cmの長さにピペットを切る。 </li></ol></li><li>組織の上面のレベルまでビブラトームブレードを低下; 0.22ミリメートル/秒にビブラトーム速度を設定し、200μmの厚さの切片を作るために前進して切片を開始。 24ウェルプレートのウェル内に配置された組織室内に水彩柔らかいブラシを使用してごとに1つの脳のセクションを転送します。切片は、組織の劣化を防止するために、完了するまで氷上にプレートを保管してください。注意：腹面に脳の背側の3種々の領域（ 図2）から、合計、3ペアのセクションで入手する手順は、次のとおりです。から1つのセクション3個々の組織チャンバー内に配置、各ペア（計3つのセクション）は、特定のdextramers（IA S / PLP 139-151）および抗CD4で染色するために指定されています。同様に、3つの個別の組織チャンバ内に配置された3つのセクションの別のセットは、制御dextramers（IA 秒 / TMEV 70-86）および抗CD4で染色するために指定されている。 </li><li> 、中のウェルあたり1室と24ウェルプレートの3ウェルに特定dextramersで染色するための指定区間を含む3組織チャンバーを転送コシアニンを含むカクテルを300μl（APC）結合PLP 139-151 dextramers（2.5 μg/ ml）を、および抗CD4-フィコエリトリン（PE、2％正常ヤギ血清、5μg/ ml）をブロッキング溶液中で（1×PBS）を予め加えた。ウェルに蓋をして。 </li><li>同様に、我々ごとに1つのチャンバーを24ウェルプレート中の3つのウェルに制御dextramersでの染色のために指定されたセクションを含む3つの組織チャンバーを転送するLLここで、APC結合TMEV 70から86 dextramers（2.5μg/ ml）をし、ブロッキング溶液中の抗CD4-PE（5μg/ mlの）を含むカクテル300μlのは、以前に追加されました。ウェルに蓋をして。注：。、Massilamanyらを参照してくださいdextramersの製造のための8、およびdextramersを準備するデキストラン分子が親切にImmudex、コペンハーゲン、デンマークから提供された。 </li><li>井戸にラベルを付けて、アルミホイルでプレートをラップし、室温で暗所に1.5時間、穏やかな回転に設定ロッキングプラットフォーム上でプレートを置き。 </li><li>インキュベーション期間の後、ウェルの冷1×PBS 1 mlを含む新鮮な、組織チャンバを転送することによって、ロッキングプラットフォーム上で組織切片を洗浄し、そして他に一方の内容をドリブル避ける。洗浄あたり少なくとも10分を許可する、三度洗濯を繰り返してください。彼らは、チャンバの側面に固執することができますように組織切片を乾燥されないように確認してください。 </li><li>組織チャムを転送することにより、セクションを修正穏やかな回転に2時間ロッキングプラットフォーム上で濾過4％のPBS-緩衝パラホルムアルデヒド液（pH7.4）の1ミリリットルを含む24ウェルプレート内の新鮮なウェルにBERが。 </li><li>ステップ3.10で説明したように三度の洗浄を繰り返します。 </li><li>水彩柔らかいブラシを使用して清潔な顕微鏡スライドガラスに染色し、固定部を配置します。セクションに触れることなく余分な水分を拭いて、封入剤を使用してセクションをマウントします。微細なカバーガラスで覆い、スライドを暗い部屋でのRTのO / Nで乾燥させます。 </li><li> 4℃で、遮光性のスライド収納ボックス内のスライドを保存する</li></ol> EAMと心のコレクション4。誘導<ol><li>参照文献11に記載されるようにEAMを誘導する。 </li><li> CO 2ガスボンベを取り付けた清浄室を使用して、免疫後21日目にマウスを安楽死させると、70％アルコールで動物を浸す。すぐに、吸収パッド上で動物を配置し、鉗子やハサミを使用して心臓を露出胸腔を切断することによってS。右心耳を穿刺し、心の左心室に冷たい1×PBSを10ミリリットルを注入することにより灌流。冷たい1X PBSを含む試験管内の心と場所を収集します。 </li></ol> 5。MHCクラスII（IA K）/ MyHCの334から352 Dextramersと心臓切片のその場染色 <ol><li>準備4％低融点アガロース、50℃に加熱して溶融し、40でそれを残して、PBS緩衝化&#160;使用するまで、Cの水浴を°。 </li><li>使い捨ての深いベースモールドの組織学カセットに心を置き、氷上に維持し、ステップ3.2で説明したように、組織が完全に水没するまで溶融40℃でアガロースを注ぐ。 </li><li>ステップ3.3に従ってください。 </li><li>包埋組織のすべての側面からの過剰なアガロースをトリミングして、わずかに心の底を公開します。スーパー接着剤でビブラ組織ブロックを塗抹しの露出面を配置することにより、接着表面上アガロース包埋組織を転送のりの上の心。組織がブロックの上に設定されると、組織を移動しないでください。 <ol><li>氷上アガロース包埋組織を含むビブラトームブロックを置き、接着剤が15分間乾燥させます。 </li></ol></li><li>ステップ3.5および3.6に従ってください。 </li><li> 24ウェルプレートのウェル内に配置された組織チャンバー内に水彩柔らかいブラシを使用して、心臓切片を転送する。切片は、組織の劣化を防ぐために完了するまで氷上にプレートを保管してください。注：心の底（ 図2）に頂点から合計8ペアのセクションで入手する手順は、次のとおりです。室あたりの3の項までの割り当て、組織チャンバー内のすべてのセクションを配置します。 （合計8つのセクション内の）各ペアから1つのセクションは、特定のdextramers（I-A K / MyHCの334から352）および抗CD4で染色するために指定されている。同様に、8つのセクションの別のセットは、制御dextramers（IA k個 / RNアーゼ43-56）および抗CD4で染色するために指定される。 </li><li>転送中のウェルあたり1室で、24ウェルプレートの3ウェルに特定dextramersで染色するための指定区間を含む3組織チャンバー、APC結合MyHCの334から352 dextramers（2.5μg/ mlの）を含むカクテルを300μlとブロッキング溶液中の抗CD4-PE（5μg/ mlの）を予め加えた。ウェルに蓋をして。 <ol><li>同様に、1ウェルあたり1室、APC結合アーゼを43-56 dextramers（2.5μgのを含むカクテル300μlで24ウェルプレートの3ウェルに制御dextramersでの染色のために指定セクションを含む3組織チャンバーを転送/ ml）および抗CD4-PE（5μg/ ml）をブロッキング溶液中に予め添加した。ウェルに蓋をして。 </li></ol></li><li>井戸にラベルを付けて、アルミホイルでプレートをラップし、室温で暗所に1.5時間、穏やかな回転に設定ロッキングプラットフォーム上でプレートを置き。 </li><li> 3.10から3.11、手順に従ってください</li><li>繰り返し洗濯THRステップ3.10で説明したように氷。 </li><li>水彩柔らかいブラシを使用して清潔な顕微鏡スライドガラスに染色し、固定部（最大3つのセクション/スライド）を配置します。のセクションに触れることなく余分な水分を拭いて、封入剤を使用してセクションをマウントします。微細なカバーガラスで覆い、スライドを暗い部屋でのRTのO / Nで乾燥させます。 </li><li> 4で光防スライド収納ボックスでスライドを保存する ℃、 </li></ol> 6。Dextramer +の解析（脳と心臓切片の両方に共通）レーザー走査型共焦点顕微鏡（LSCM）によって（DEXT +）CD4 + T細胞<ol><li>ルーチンスキャンおよび画像の取得のためのニコンA1〜エクリプス90I共焦点顕微鏡システムを使用してください。開始するには、オープン、NISの要素ARソフトウェア（バージョン4.13）をクリックします。 <ol><li> 「TRITC」パネルから「Cy5の「チャンネルを選択してください。 TRITCおよびCy5のチャネルのそれぞれの励起/発光波長、561.5ナノメートル/ 553から618 nmおよび640.7 nmの/ 663から738 nmのデフォルトで表示されます。 </li><li>それぞれ、TRITC（CD4-PE）のための「緑」と「赤」擬似カラーおよびCy5（dextramer-APC）チャネルを割り当てる。 </li><li>微視的ステージに検査されるスライドを置き、100倍の倍率で、手動で焦点を当てています。 110に「HV」に設定し、「0」へのオフセット。 「フォーカス」をクリックして、レーザーを最適化するために、「電圧」を調整してください。 </li><li> 「フォーカス」をクリックします。上から下にセクションをスキャンし、画像取得のための &#39;Z&#39;レベルを設定します。 「CHシリーズ」をクリックし、画像を順次取得する。 DEXTを識別+ CD4 + T細胞は、赤色（dextramers）および緑色（CD4）チャネルの両方から発生するシグナルの共局在化に基づいて、黄色斑点状細胞に現れる。 </li></ol></li><li> DEXT + CD4 + T細胞の容易な定量的な計数のためにオリンパスFV500-BX60共焦点顕微鏡を使用してください。開始するにはオープンをクリックし、FLUOVIEWソフトウェア（バージョン4.3）。 <ol><li>ドロップダウンメニューから染料」のCy3」と「Cy5の」を選択し、各レーザをロードするために、「適用」をクリックします。 （543ナノメートル/疑似カラー「グリーン」、CD4-PE）のCy3の励起/発光波長およびCy5（633 NM /疑似カラー &quot;赤&quot;; dextramer-APC）チャンネル：注意してください。 </li><li>顕微鏡スライドガラス上で検査されるスライドを置き、低倍率（4倍または10倍）の下で、手動で焦点を当てています。 Cy3のレーザーがオンになっている間は「フォーカス」をクリックして、炎症フォーカスを当てる。 </li><li> 100X倍率に目標を変更します。ドロップダウンメニューから「512分の512」に、ファイルサイズを設定します。 「フォーカス」をクリックして、「PMT」、「ゲイン」の値を調整し、Cy3およびCy5で別々にレーザーを最適化するためのパラメータを「オフセット」。 </li><li> 「Zステージ」をクリックして、レーザーの両方がオンになっている間「フォーカス」をクリックしてください。セット「アップ」および「ダウン」矢印をクリックして、「Zステージ」の厚さ。 2μmの「Z」の間隔を設定します。 </li><li> 「停止」をクリックし、「Seq123 &quot;を選択します。その後、「XYZ」をクリックして、炎症焦点内の選択されたエリアに対して「Z」シリーズの画像の取得を開始。 AVIファイルなどの「Z連続画像」を保存します。画像ファイルを保存する「Zシリアル画像」から画像を選択して、「TIFF」形式として保存します。 </li></ol></li><li>三つのセクションの1セットが実行するために、IA S / PLP 139-151 dextramers/anti-CD4およびIA S / TMEV 70から86 dextramers/anti-CD4と3節で、他の組で染色した大脳から3ペアのセクションを調べて、定量分析。 <ol><li>同様に、ここで、8つのセクションの1セットは、IA K / MyHCの334から352 dextramers/anti-CD4し、別のSEで染色し、心臓に8ペアのセクションを分析アーゼ43-56 dextramers/anti-CD4と8つのセクションのトン。 </li></ol></li><li>大脳内のセクションごとに10から15の炎症性病巣を調べ、それぞれの焦点で、15から25連続画像を順次セットを取得する。 <ol><li>心のすべての8つのセクションから、各焦点から20の炎症性病巣の合計を調べるには、順次10から15連続画像を取得する。同じ焦点内「Z」シリーズの繰り返しが回避されるように、「水平 - 垂直アップ水平 - 垂直ダウン」の動きでスライドをスキャンすることによって、「Z」のシリアル画像を撮影する。 </li><li> 「Z」のシリアル画像が取り込まれると、スライド番号、セクション名、および撮影「Z」のシリアル画像の数を特定することにより、ファイルに名前を付けます。 <ol><li> CD4 + T細胞の総数に対するDEXT + CD4 + T細胞を計数する「ImageJの「ソフトウェアを使用。 ImageJの「中」のカウンタの種類」を選択し、確認してください＆＃8216;すべてを表示」し、各セルの中心をクリックして、カウントを開始し、別の中で数え続ける &#39;側の矢印を使用して、Z&#39;連続画像。すべてのCD4 T細胞をカウントした後、カウンターの別のタイプを選択し、+ T細胞、CD4 + DEXTを数える。 2異なるカウンタで計数した細胞の総数を取得するには、[結果]タブをクリックします。 </li><li>合計数を取得するには、3つすべての脳のセクション、またはすべての8心臓切片を表すすべての「Z」のシリアル画像内のセルの数を追加します。 </li></ol></li></ol></li></ol>

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	<li>Cecconi, V., Moro, M., Del Mare, ., Dellabona, S., P, G., Casorati, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+MHC+class+II+tetramers+to+investigate+CD4++T+cell+responses:+problems+and+solutions.">Use of MHC class II tetramers to investigate CD4+ T cell responses: problems and solutions.</a> Cytometry A. 73 (11), 1010-1018 (2008).</li><li>Ferlin, W., Glaichenhaus, N., Mougneau, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Present+difficulties+and+future+promise+of+MHC+multimers+in+autoimmune+exploration.">Present difficulties and future promise of MHC multimers in autoimmune exploration.</a> Curr Opin Immunol. 12, 670-675 (2000).</li><li>Kwok, W. W., Ptacek, N. A., Liu, A. W., Buckner, J. 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利害の競合が宣言されなかった。

MHCクラスIテトラマーとは違って、日常的なアプリケーションのためのMHCクラスII四量体の使用は、特にそれらの活性化の依存関係6,15-17に一部起因低親和性自己反応性CD4 T細胞の前駆体頻度を列挙するために、挑戦的であり続けている。最近では、この問題は、PLP 139-151、MOG 35〜55およびMyHCの334などの自己抗原の数の抗原特異的CD4 T細胞を検出するために、私達を許可する」、dextramers?...

抗原特異的CD4 T細胞の検出のための主要組織適合性複合体（MHC）クラスII四量体を使用することは挑戦であった1-7。 MHCクラスII四量体の検出感度を高めるために、研究チームは、次世代のテトラマー、指定された「dextramers「8を作成した。 Dextramersは、複数のストレプトアビジン-フルオロフォア部分は、いくつかのペプチドテザー、ビオチン化MHCモノマー一つデキストラン分子9に取り付けることができるようにコンジュゲートしたデキストラン骨格を含有する。このように、いくつかのMHC-ペプチド複合体が含まれているのMHC dextramersの大きな集合体は、複数のT細胞受容体（TCR）と対話することができます。 このグループは、最近、様々な自己抗原に対するdextramersを生成し、dextramersの検出感度は、約8四量よりも5倍であることを示した。実験システムは、実験的自己免疫性脳脊髄炎（EAを含むE）、プロテオリピドタンパク質（PLP）SJLマウスにおける139-151で誘導し; C57BL / 6マウスにおいて、ミエリンオリゴデンドロサイト糖タンパク質（MOG）35-55を用いて誘導EAE;心臓ミオシン重鎖α（MyHCの）A / Jマウスにおける334から352で誘導し、実験的自己免疫性心筋炎（EAM）。この研究は、PLP 139-151の使用を示す- 、それによってフルオロフォア抗体を用いからの信号を増幅する必要がなくなり、直接染色プロトコルを開発することにより、特異性を有するその場で抗原特異的CD4 T細胞を検出するためのMyHCの334から352 dextramers、アプローチは、一般的に四量体の使用に採用。また、組織を包括的に評価する方法はまた、確実にその場 10 における抗原特異的CD4 T細胞の頻度を列挙するために考案されている。 その場での抗原特異的T細胞の検出は、バイスタンダー活性化によって引き起こされるものから、特定の抗原刺激によって引き起こされる事象の描写を可能にする。同様に、 その場での技術ではまた、提供します：標的器官における抗原特異的T細胞の浸潤の動態を追跡する機会エス。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:619px;">CFA</td>
			<td style="width:364px;">Sigma Aldrich, St Louis, MO</td>
			<td style="width:219px;">5881</td>
			<td style="width:167px;">Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">MTB&#160; H37Rv extract&#160;</td>
			<td>Difco Laboratories, Detroit, MI</td>
			<td>231141</td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">PT</td>
			<td>List Biologicals Laboratories, Campbell, CA</td>
			<td>181</td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">1x PBS&#160;</td>
			<td>Corning, Manassas, VA</td>
			<td>21-040-CV</td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Female A/J mice&#160;</td>
			<td>Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME</td>
			<td>646</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Female SJL/J mice</td>
			<td>Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME</td>
			<td>686</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Leur-lok sterile 1 ml syrringe</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>309628</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Leur-lok sterile 3 ml syrringe</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>309657</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile needle, 18 G</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>305195</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile needle, 27 1/2 G</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>305109</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3-way stopcock&#160;</td>
			<td>Smiths Medical ASD, Inc. Dublin, OH</td>
			<td>MX5311L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Kerlix gauze bandage rolls&#160;</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA</td>
			<td>6720</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Kimwipes</td>
			<td>Kimberly-Clark Professional, Roswell, GA</td>
			<td>34155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Agarose, Low Melting Point, Analytical Grade</td>
			<td>Promega corporation, Madison, WI</td>
			<td style="width:219px;">V2111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Immunopure normal goat serum</td>
			<td>Thermo Scientific, Waltham, MA</td>
			<td style="width:219px;">31873</td>
			<td>Store at -20 &#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Anti-mouse CD4 conjugated with PE dye</td>
			<td style="width:364px;">eBioscience, San Diego, CA&#160;</td>
			<td style="width:219px;">12004185</td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Paraformaldehyde</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences, Hatfield, PA</td>
			<td style="width:219px;">19202</td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Faramount Aqueous Mounting Medium</td>
			<td>Dako, Carpinteria, CA</td>
			<td style="width:219px;">10073021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Conical tube (15ml)</td>
			<td>BD Biosciences, San Jose, CA</td>
			<td style="width:219px;">352099</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Conical tube (50 ml)</td>
			<td>BD Biosciences, San Jose, CA</td>
			<td style="width:219px;">352070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">24-well flat bottomed tissue culture plates</td>
			<td>BD Biosciences, San Jose, CA</td>
			<td>356775</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Water color #2 brushes</td>
			<td>Charles Leonard, Inc. Hauppauge, NY</td>
			<td style="width:219px;">73502</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Plain Microscope slides, size: 3&#34; x 1&#34; x 1.2 mm</td>
			<td>Fisher Scientific, Pittsburgh, PA</td>
			<td style="width:219px;">1255010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Premium Cover glass, 22 x 22-1</td>
			<td>Fisher Scientific, Pittsburgh, PA</td>
			<td style="width:219px;">12548B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Disposable deep base mold histology cassettes</td>
			<td>Laboratory prodcust, Rochester, NY</td>
			<td style="width:219px;">M-475-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Loctite Super glue</td>
			<td>Henkel Corporation, Westlake, OH</td>
			<td style="width:219px;">1471879</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Razor blades</td>
			<td>Gillette SuperSilver</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Myhc-a 334-352 (DSAFDVLSFTAEEKAGVYK)</td>
			<td style="width:364px;">Neopeptide, Cambridge, MA</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">PLP 139-151 (HSLGKWLGHPDKF)</td>
			<td style="width:364px;">Neopeptide, Cambridge, MA</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">MHC class II/IAs PLP 139-151 or TMEV 70-86 dextramers conjugated with APC dye</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;">MHC class II/IAk Myhc 334-352 or&#160; or RNase 40-56 dextramers conjugated with APC dye</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Dextran conjugated SA-APC</td>
			<td>&#160;Immundex, Copenhagen, Demark</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td>Store at 4&#959;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile surgical scissors and forceps</td>
			<td style="width:364px;">INOX tool Corporation</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Micro oven</td>
			<td style="width:364px;">GE Healthcare, Pittsuburgh, PA</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Leica VT 1200 Vibratome</td>
			<td>Leica Microsystems, Inc. Buffalo Grove, IL</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Olympus BX 60&#160; Laser scanning confocal microscope</td>
			<td>Olympus America, Inc. Center Valley, PA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Nikon A1-Eclipse 90i confocal microscope</td>
			<td>Nikon Inc. Melville, NY</td>
			<td style="width:219px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in situ detection of autoreactive cd4 t cells in brain and heart using major histocompatibility complex class ii dextramers

This report demonstrates the use of major histocompatibility complex (MHC) class II dextramers for detection of autoreactive CD4 T cells in situ in myelin proteolipid protein (PLP) 139-151-induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in SJL mice and cardiac myosin heavy chain-&#945; (Myhc) 334-352-induced experimental autoimmune myocarditis (EAM) in A/J mice. Two sets of cocktails of dextramer reagents were used, where dextramers+ cells were analyzed by laser scanning confocal microscope (LSCM): EAE, IAs/PLP 139-151 dextramers (specific)/anti-CD4 and IAs/Theiler&#8217;s murine encephalomyelitis virus (TMEV) 70-86 dextramers (control)/anti-CD4; and EAM, IAk/Myhc 334-352 dextramers/anti-CD4 and IAk/bovine ribonuclease (RNase) 43-56 dextramers (control)/anti-CD4. LSCM analysis of brain sections obtained from EAE mice showed the presence of cells positive for CD4 and PLP 139-151 dextramers, but not TMEV 70-86 dextramers suggesting that the staining obtained with PLP 139-151 dextramers was specific. Likewise, heart sections prepared from EAM mice also revealed the presence of Myhc 334-352, but not RNase 43-56-dextramer+ cells as expected. Further, a comprehensive method has also been devised to quantitatively analyze the frequencies of antigen-specific CD4 T cells in the &#8216;Z&#8217; serial images.

本報告書では、MHCクラスII dextramersとの直接染色による抗原特異的、自己反応性CD4 T細胞のin situ検出に記述されている。新たに切断した脳のセクションでは、EAEマウス由来し、PLP 139-151（特定）またはTMEV 70から86（コントロール）dextramersおよび抗CD4を含むカクテルで染色した。 図1のトップパネルは、二重陽性細胞が出現し、黄色のPLP 139-151 dextramers（赤）とCD4抗体（緑）で?...

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In Situ Detection of Autoreactive CD4 T Cells in Brain and Heart Using Major Histocompatibility Complex Class II Dextramers

主要組織適合性複合体クラスII dextramersとの直接染色により脳及び心臓における自己反応性CD4 T細胞を検出するためのプロトコルは、このレポートに記載されている。総合的な分析のために、 その場での抗原特異的CD4 + T細胞の頻度を列挙するための信頼できる方法も考案されている。

主要組織適合遺伝子複合体クラスII Dextramersを用いて脳および心臓において自己反応性CD4 T細胞のその場検出に

This report demonstrates the use of major histocompatibility complex (MHC) class II dextramers for detection of autoreactive CD4 T cells in situ in myelin ...

in-situ-detection-autoreactive-cd4-t-cells-brain-heart-using-major

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

In Situ Detection of Autoreactive CD4 T Cells in Brain and Heart Using Major Histocompatibility Complex Class II Dextramers

11.6K ビュー.  University of Nebraska, Lincoln. 主要組織適合性複合体クラスII dextramersとの直接染色により脳及び心臓における自己反応性CD4 T細胞を検出するためのプロトコルは、このレポートに記載されている。総合的な分析のために、 その場での抗原特異的CD4 + T細胞の頻度を列挙するための信頼できる方法も考案されている。 

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Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen presenting cells (APCs)1. This recognition leads to the activation of T-cells and a series of functional outcomes (e.g. cytokine production, killing of the target cells). Understanding the functional role of TCRs is critical to harness the power of the immune system to treat a variety of immunology related diseases (e.g. cancer or autoimmunity).
It is convenient to study TCRs in mouse models, which can be accomplished in several ways. Making TCR transgenic mouse models is costly and time-consuming and currently there are only a limited number of them available2-4. Alternatively, mice with antigen-specific T-cells can be generated by bone marrow chimera. This method also takes several weeks and requires expertise5. Retroviral transduction of TCRs into in vitro activated mouse T-cells is a quick and relatively easy method to obtain T-cells of desired peptide-MHC specificity. Antigen-specific T-cells can be generated in one week and used in any downstream applications. Studying transduced T-cells also has direct application to human immunotherapy, as adoptive transfer of human T-cells transduced with antigen-specific TCRs is an emerging strategy for cancer treatment6.
Here we present a protocol to retrovirally transduce TCRs into in vitro activated mouse T-cells. Both human and mouse TCR genes can be used. Retroviruses carrying specific TCR genes are generated and used to infect mouse T-cells activated with anti-CD3 and anti-CD28 antibodies. After in vitro expansion, transduced T-cells are analyzed by flow cytometry.

We present a protocol to produce antigen-specific mouse T-cells using retroviral transduction

マウスT細胞におけるT細胞受容体のレトロウイルス導入

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

免疫・感染学

Accelerated Type 1 Diabetes Induction in Mice by Adoptive Transfer of Diabetogenic CD4+ T Cells

The nonobese diabetic (NOD) mouse spontaneously develops autoimmune diabetes after 12 weeks of age and is the most extensively studied animal model of human Type 1 diabetes (T1D). Cell transfer studies in irradiated recipient mice have established that T cells are pivotal in T1D pathogenesis in this model. We describe herein a simple method to rapidly induce T1D by adoptive transfer of purified, primary CD4+ T cells from pre-diabetic NOD mice transgenic for the islet-specific T cell receptor (TCR) BDC2.5 into NOD.SCID recipient mice. The major advantages of this technique are that isolation and adoptive transfer of diabetogenic T cells can be completed within the same day, irradiation of the recipients is not required, and a high incidence of T1D is elicited within 2 weeks after T cell transfer. Thus, studies of pathogenesis and therapeutic interventions in T1D can proceed at a faster rate than with methods that rely on heterogenous T cell populations or clones derived from diabetic NOD mice.

We provide a reproducible method to induce type 1 diabetes (T1D) in mice within two weeks by the adoptive transfer of islet antigen-specific, primary CD4+ T cells.

糖尿病CD4の養子移入+ T細胞によるマウスの加速された1型糖尿病の誘導

The nonobese diabetic (NOD) mouse spontaneously develops autoimmune diabetes after 12 weeks of age and is the most extensively studied animal model of ...

Induction of Murine Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of Effector CD4+CD45RBhigh T Cells into Immunodeficient Mice

There are many different animal models available for studying the pathogenesis of human inflammatory bowel diseases (IBD), each with its own advantages and disadvantages. We describe here an experimental colitis model that is initiated by adoptive transfer of syngeneic splenic CD4+CD45RBhigh T cells into T and B cell deficient recipient mice. The CD4+CD45RBhigh T cell population that largely consists of na&#239;ve effector cells is capable of inducing chronic intestinal inflammation, closely resembling key aspects of human IBD. This method can be manipulated to study aspects of disease onset and progression. Additionally it can be used to study the function of innate, adaptive, and regulatory immune cell populations, and the role of environmental exposures, i.e., the microbiota, in intestinal inflammation. In this article we illustrate the methodology for inducing colitis with a step-by-step protocol. This includes a video demonstration of key technical aspects required to successfully develop this murine model of experimental colitis for research purposes.

Induction of Murine Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of Effector CD4+CD45RBhigh T Cells into Immunodeficient Mice

Here, we present a protocol to induce colonic inflammation in mice by adoptive transfer of syngeneic CD4+CD45RBhigh T cells into T and B cell deficient recipients. Clinical and histopathological features mimic human inflammatory bowel diseases. This method allows the study of the initiation of colonic inflammation and progression of disease.

エフェクターCD4の養子移入によるマウス腸の炎症の誘導<sup&gt; +</sup&gt; CD45RB<sup&gt;高い</sup&gt;免疫不全マウスへのT細胞

There are many different animal models available for studying the pathogenesis of human inflammatory bowel diseases (IBD), each with its own advantages ...

Mouse Na&#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a na&#239;ve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during na&#239;ve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of na&#239;ve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing na&#239;ve cells to various T helper effector lineages in vitro.

Mouse Na&amp;#239;ve CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets

Na&#239;ve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of na&#239;ve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.

マウスナイーブCD4<sup&gt; +</sup&gt; T細胞の単離と<em&gt;インビトロ</em&gt; T細胞サブセットへの分化

Antigen inexperienced (na&#239;ve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition ...

In Vitro Differentiation of Human CD4+FOXP3+ Induced Regulatory T Cells (iTregs) from Na&#239;ve CD4+ T Cells Using a TGF-&#946;-containing Protocol

Regulatory T cells (Tregs) are an integral part of peripheral tolerance, suppressing immune reactions against self-structures and thus preventing autoimmune diseases. Clinical approaches to adoptively transfer Tregs, or to deplete Tregs in cancer, are underway with promising first outcomes. 
Because the number of naturally occurring Tregs (nTregs) is very limited, studying certain Treg features using in vitro induced Tregs (iTregs) can be advantageous. To date, the best although not absolutely specific protein marker to delineate Tregs is the transcription factor FOXP3. Despite the importance of Tregs including non-redundant roles of peripherally induced Tregs, the protocols to generate iTregs are currently controversial, particularly for human cells. This protocol therefore describes the in vitro differentiation of human CD4+FOXP3+ iTregs from human na&#239;ve T cells using a range of Treg-inducing factors (TGF-&#946; plus IL-2 only, or their combination with retinoic acid, rapamycin or butyrate) in parallel. It also describes the phenotyping of these cells by flow cytometry and qRT-PCR. 
These protocols result in reproducible expression of FOXP3 and other Treg signature genes and enable the study of general FOXP3-regulatory mechanisms as well as protocol-specific effects to delineate the impact of certain factors. iTregs can be utilized to study various phenotypic aspects as well as molecular mechanisms of Treg induction. Detailed molecular studies are facilitated by relatively large cell numbers that can be obtained. 
A limitation for the application of iTregs is the relative instability of FOXP3 expression in these cells compared to nTregs. iTregs generated by these protocols can also be used for functional assays such as studying their suppressive function, in which iTregs induced by TGF-&#946; plus retinoic acid and rapamycin display superior suppressive activity. However, the suppressive capacity of iTregs can differ from nTregs and the use of appropriate controls is crucial.

&lt;em&gt;In Vitro&lt;/em&gt; Differentiation of Human CD4&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt;FOXP3&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt; Induced Regulatory T Cells (iTregs) from Na&amp;#239;ve CD4&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt; T Cells Using a TGF-&amp;#946;-containing Protocol

This protocol describes the reproducible generation and phenotyping of human induced regulatory T cells (iTregs) from na&#239;ve CD4+ T cells in vitro. Different protocols for FOXP3 induction allow for the study of specific iTreg phenotypes obtained with respective protocols.

TGF-βを含むプロトコルを使用したナイーブCD4 + T細胞からのヒトCD4 + FOXP3 +誘導された調節性T細胞（iTregs）のインビトロ分化における

Regulatory T cells (Tregs) are an integral part of peripheral tolerance, suppressing immune reactions against self-structures and thus preventing ...

Quantification of Proliferating Human Antigen-specific CD4+ T Cells using Carboxyfluorescein Succinimidyl Ester

Described is a simple, in vitro, dye dilution-based method for measuring antigen-specific CD4+ T cell proliferation in human peripheral blood mononuclear cells (PBMCs). The development of stable, non-toxic, fluorescent dyes such as carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE) allows for rare, antigen-specific T cells to be distinguished from bystanders by diminution in fluorescent staining, as detected by flow cytometry. This method has the following advantages over alternative approaches: (i) it is very sensitive to low-frequency T cells, (ii) no knowledge of the antigen or epitope is required, (iii) the phenotype of the responding cells can be analyzed, and (iv) viable, responding cells can be sorted and used for further analysis, such as T cell cloning.

Quantification of Proliferating Human Antigen-specific CD4+ T Cells using Carboxyfluorescein Succinimidyl Ester

Presented here is a protocol for measuring proliferating CD4+ T cells in response to antigenic proteins or peptides using dye dilution. This assay is particularly sensitive to rare antigen-specific T cells and can be modified to facilitate cloning of antigen-specific cells.

カルボキシフルオレスチンスクシニミジルエステルを用いたヒト抗原特異的CD4+T細胞の増殖の定量化

Described is a simple, in vitro, dye dilution-based method for measuring antigen-specific CD4+ T cell proliferation in human peripheral blood mononuclear ...

Assessing the Expression of Major Histocompatibility Complex Class I on Primary Murine Hippocampal Neurons by Flow Cytometry

Increasing evidence supports the hypothesis that neuro-immune interactions impact nervous system function in both homeostatic and pathologic conditions. A well-studied function of major histocompatibility complex class I (MHCI) is the presentation of cell-derived peptides to the adaptive immune system, particularly in response to infection. More recently it has been shown that the expression of MHCI molecules on neurons can modulate activity-dependent changes in the synaptic connectivity during normal development and neurologic disorders. The importance of these functions to the brain health supports the need for a sensitive assay that readily detects MHCI expression on neurons. Here we describe a method for primary culture of murine hippocampal neurons and then assessment of MHCI expression by flow cytometric analysis. Murine hippocampus is microdissected from prenatal mouse pups at the embryonic day 18. Tissue is dissociated into a single cell suspension using enzymatic and mechanical techniques, then cultured in a serum-free media that limits growth of non-neuronal cells. After 7 days in vitro, MHCI expression is stimulated by treating cultured cells pharmacologically with beta interferon. MHCI molecules are labeled in situ with a fluorescently tagged antibody, then cells are non-enzymatically dissociated into a single cell suspension. To confirm the neuronal identity, cells are fixed with paraformaldehyde, permeabilized, and labeled with a fluorescently tagged antibody that recognizes neuronal nuclear antigen NeuN. MHCI expression is then quantified on neurons by flow cytometric analysis. Neuronal cultures can easily be manipulated by either genetic modifications or pharmacologic interventions to test specific hypotheses. With slight modifications, these methods can be used to culture other neuronal populations or to assess expression of other proteins of interest.

This protocol describes a method for culturing primary hippocampal neurons from embryonic mouse brain. The expression of major histocompatibility complex class I on the extracellular surface of cultured neurons is then assessed by flow cytometric analysis.

フローサイトメトリーによる主要なマウス海馬ニューロンの主要組織適合性複合体クラスIの発現の評価

Increasing evidence supports the hypothesis that neuro-immune interactions impact nervous system function in both homeostatic and pathologic conditions. A ...

Stability and Structure of Bat Major Histocompatibility Complex Class I with Heterologous &beta;2-Microglobulin

The major histocompatibility complex (MHC) plays a pivotal role in antigen peptide presentation and T cell immune responses against infectious disease and tumor development. The hybrid MHC I complexed with heterologous &#946;2-microglobulin (&#946;2m) substitution from different species can be stabilized in vitro. This is a feasible means to study MHC I of mammals, when the homologous &#946;2m is not available. Meanwhile, it is indicated that mammalian &#946;2m substitution does not significantly affect peptide presentation. However, there is limited summarization regarding the methodology and the technology for the hybrid MHC I complexed with heterologous &#946;2-microglobulin (&#946;2m). Herein, methods to evaluate the feasibility of heterologous &#946;2m substitution in MHC I study are presented. These methods include preparation of expression constructs; purification of inclusion bodies and refolding of the MHC complex; determination of protein thermostability; crystal screening and structure determination. This study provides a recommendation for understanding function and structure of MHC I, and is also significant for T cell response evaluation during infectious disease and tumor immunotherapy.

Stability and Structure of Bat Major Histocompatibility Complex Class I with Heterologous &amp;#946;2-Microglobulin

The protocol describes experimental methods to obtain stable major histocompatibility complex (MHC) class I through potential &#946;2-microglobulin (&#946;2m) substitutions from different species. The structural comparison of MHC I stabilized by homologous and heterologous &#946;2m were investigated.

異種β 2-ミクログロブリンを有するコウモリ主要組織適合性複合体クラスIの安定性と構造

The major histocompatibility complex (MHC) plays a pivotal role in antigen peptide presentation and T cell immune responses against infectious disease and ...

Visualization of SARS-CoV-2 using Immuno RNA-Fluorescence In Situ Hybridization

This manuscript provides a protocol for in situ hybridization chain reaction (HCR) coupled with immunofluorescence to visualize severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) RNA in cell line&#160;and three-dimensional (3D) cultures of human airway epithelium. The method allows highly specific and sensitive visualization of viral RNA by relying on HCR initiated by probe localization. Split-initiator probes help amplify the signal by fluorescently labeled amplifiers, resulting in negligible background fluorescence in confocal microscopy. Labeling amplifiers with different fluorescent dyes facilitates the simultaneous recognition of various targets. This, in turn, allows the mapping of the infection in tissues to better understand viral pathogenesis and replication at the single-cell level. Coupling this method with immunofluorescence may facilitate better understanding of host-virus interactions, including alternation of the host epigenome and immune response pathways. Owing to sensitive and specific HCR technology, this protocol can also be used as a diagnostic tool. It is also important to remember that the technique may be modified easily to enable detection of any RNA, including non-coding RNAs and RNA viruses that may emerge in the future.

Here, we describe a simple method that combines RNA fluorescence in situ&#160;hybridization (RNA-FISH) with immunofluorescence to visualize severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) RNA. This protocol may increase understanding of the molecular characteristics of SARS-CoV-2 RNA-host interactions at a single-cell level.

SITUハイブリダイゼーションにおける免疫RNA-蛍光を用いたSARS-CoV-2の可視化

This manuscript provides a protocol for in situ hybridization chain reaction (HCR) coupled with immunofluorescence to visualize severe acute respiratory ...

Detection of Polyfunctional T Cells in Children Vaccinated with Japanese Encephalitis Vaccine via the Flow Cytometry Technique

T cell-mediated immunity plays an important role in controlling flavivirus infection, either after vaccination or after natural infection. The "quality" of a T cell needs to be assessed by function, and higher function is associated with more powerful immune protection. T cells that can simultaneously produce two or more cytokines or chemokines at the single-cell level are called polyfunctional T cells (TPFs), which mediate immune responses through a variety of molecular mechanisms to express degranulation markers (CD107a) and secrete interferon (IFN)-&#947;, tumor necrosis factor (TNF)-&#945;, interleukin (IL)-2, or macrophage inflammatory protein (MIP)-1&#945;. There is increasing evidence that TPFs are closely related to the maintenance of long-term immune memory and protection and that their increased proportion is an important marker of protective immunity and is important in the effective control of viral infection and reactivation. This evaluation applies not only to specific immune responses but also to the assessment of cross-reactive immune responses. Here, taking the Japanese encephalitis virus (JEV) as an example, the detection method and flow cytometry color scheme of JEV-specific TPFs produced by peripheral blood mononuclear cells of children vaccinated against Japanese encephalitis were tested to provide a reference for similar studies.

Detection of Polyfunctional T Cells in Children Vaccinated with Japanese Encephalitis Vaccine via the Flow Cytometry Technique

The present protocol combines ex vivo stimulation and flow cytometry to analyze polyfunctional T cell (TPF)&#160;profiles in peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) within Japanese encephalitis virus (JEV)-vaccinated children. The detection method and flow cytometry color scheme of JEV-specific TPFs were tested to provide a reference for similar studies.

フローサイトメトリー法 による 日本脳炎ワクチン接種小児における多機能性T細胞の検出

T cell-mediated immunity plays an important role in controlling flavivirus infection, either after vaccination or after natural infection. The "quality" ...