著者らは、開示することは何もない。

PaaSのためのガラスカバーガラスの作製<ol><li>低リントワイプで清掃12ミリメートルのカバースリップ。 </li><li>炎12ミリメートルのカバースリップとピンセットを使用してブンゼンバーナーの炎に通して各35ミリメートルのガラスボトムディッシュのマイクロウェルで14ミリメートルのカバースリップ。 </li><li>室温で5分間、0.1 N NaOHを200μlのマイクロウェルを扱う。 </li><li>吸引した空気は、30分間のマイクロウェルを乾燥させる。 </li><li>ヒュームフード中で室温で10分間、3-アミノプロピルトリメトキシシランの50μlのマイクロウェルを扱う。この化学物質は、プラスチックと反応する。皿のプラスチックとの接触を回避することが、ガラスピペットを使用して、完全にマイクロウェルに充填しない。 </li><li> 3-アミノプロピルトリメトキシが透明になるまで約10分間超純水でマイクロウェルを洗ってください。 </li><li>スクイーズボトルを使用して、二回、超純水でマイクロウェルをすすぐ。 </li><li>超純水aの2ミリリットルでマイクロウェルを洗ってください10分間、中速（〜1Hz）で設定ロッカー上のt、室温。 </li><li>吸引した空気は、30分間のマイクロウェルを乾燥させる。 </li><li> 30分間中速（〜1ヘルツ）に設定ロッカー上で室温で0.5％グルタルアルデヒド溶液2mlでマイクロウェルを扱う。 </li><li> 10分間程度の速度に設定したロッカー上で室温（〜1ヘルツ）での超純水2mlのマイクロウェルを洗ってください。 30分、合計2回以上繰り返します。 </li><li> 30分間急角度（60度以上）で乾燥マイクロウェル。 注：料理はデシケーター中で2ヶ月間保存することができます。 </li></ol>浸潤突起アッセイのためのPaaSの調製<ol><li>ソフトPAA（8％アクリルアミドおよび0.05％BIS）、1mlの溶液は、40％アクリルアミド200μlの2％BIS25μlを、超純水（ 表1）の574μLを組み合わせる。 </li><li>ハードPAA（8％アクリルアミドおよび0.35％BIS）、1mlの溶液は、40％アクリルアミド、175＆＃200μlを組み合わせる181;リットルの2％のBIS、および超純水409μlを（ 表1）。 </li><li>剛性PAA（12％アクリルアミドおよび0.60％BIS）を1mlの溶液は、40％アクリルアミド300μlの2％BIS300μlの超純水169μlを（ 表1）を結合する。 </li><li> 15分のためのソリューションを脱気。それぞれ、215、200を追加し、ソフト、ハード、そして剛性のPAA溶液への超純水で1 mg / mlのヒト血漿フィブロネクチンの230μL。全ての溶液は、10 mg / mlのアクリル酸N-ヒドロキシスクシンイミド（NHS）エステル1μlの、100 mg / mlの過硫酸アンモニウム5μlを、そしてN、N、N &#39;、N&#39;-テトラメチルエチレンジアミン（TEMEDの2μlを添加する; 表1）。穏やかにピペッティングして混合し、溶液中の泡を作成しない。 </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" fo:keep-together.within-page="always"><tbody><tr><td> PAA （1 ml）を</td><td> 40パーセント 単3 （μL） </td><td> 2％ （μL） </td><td>超高純度の 水 （μL） </td><td> 1 mg / mlの FN （μL） </td><td style="padding-left: 4px; padding-right: 4px;"> 10 mg / mlの NHSエステル （μL） </td><td style="padding-left: 4px; padding-right: 4px;"> 100 mg / mlの APS （μL） </td><td> TEMED （μL） </td><td>エラスティック 率 （Pa）と</td></tr><tr><td>ソフト</td><td> 200 </td><td> 25 </td><td> 574 </td><td> 200 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 1023 </td></tr><tr><td>ハード</td><td> 200 </td><td> 175 </td><td> 409 </td><td> 215 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 7307 </td></tr><tr><td>リジッド</td><td> 300 </td><td> 300 </td><td> 169 </td><td> 230 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 22692 </td></tr></tbody></table> 表1：成分volumesのおよび浸潤突起アッセイに使用、ソフト、ハード、硬質PaaSのための弾性率を生じた。AA =アクリルアミド、FNは、フィブロネクチン、APSは=過硫酸アンモニウムを=。 <ol start="5"><li>各マイクロウェルの中心上のPAA溶液のピペット8.48μL。 注：このボリュームは、理論的には厚さ75μmのPAAが得られます。 </li><li>静かにピンセットを使用してマイクロウェル内の液滴上に12ミリメートルのカバースリップのフレームド側を下げる。 </li><li>挟まれたPAA溶液は、15〜30分間重合することができるようにします。残りのソリューションをチェックすることによって重合を確認してください。 </li><li>各ディッシュに1×PBSの2ミリリットルを追加し、ピンセットで12ミリメートルカバースリップを削除します。 注：10×PBS、実験室で作られ、0.011 M KH 2 PO 4、1.54 M NaClおよび0.056 MのNa 2 HPO 4から構成されている。 </li><li> 5分間、室温で1×PBS 2mlのマイクロウェルを洗浄する。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li></ol> 3. Pトラクションフォースアッ​​セイのためのPaaSの賠償<ol><li>ソフトPAA（8％アクリルアミドおよび0.05％BIS）、1mlの溶液は、40％アクリルアミド200μlの2％BIS25μlを、超純水（ 表2）の566μLを組み合わせる。 </li><li>ハードPAA（8％アクリルアミドおよび0.35％BIS）、1mlの溶液は、40％アクリルアミド200μlの2％BIS175μlの超純水401μlの（ 表2）を組み合わせる。 </li><li>剛性PAA（12％アクリルアミドおよび0.60％BIS）を1mlの溶液は、40％アクリルアミド300μlの2％BIS300μlの超純水161μlの（ 表2）を組み合わせる。 </li><li> 15分のためのソリューションを脱気。それぞれ、ソフト、ハード、硬質PAA溶液に1mg / mlのヒト血漿フィブロネクチンの200、215、および230を添加する。超音波処理30秒間200nmの赤色蛍光マイクロスフェア（605分の580の励起/発光）8μlの。各ソリューションでは、200nmの赤色蛍光マイクロスフェアの8μlを添加、10 mg / mlのアクリル酸NHSエステル、100 mg / mlの過硫酸アンモニウムの5μL、およびTEMED2μlの（ 表2）の1μL。穏やかにピペッティングして混合し、溶液中の泡を作成しない。 </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" fo:keep-together.within-page="always"><tbody><tr><td style="width:40px"> PAA （1 ml）を</td><td> 40パーセント 単3 （μL） </td><td> 2％ BIS （μL） </td><td style="padding-left: 4px; padding-right: 4px;">超高純度の 水 （μL） </td><td> 1 mg / mlの FN （μL） </td><td> 微小球 （μL） </td><td style="padding-left: 4px; padding-right: 4px;"> 10 mg / mlの NHSエステル （μL） </td><td style="padding-left: 4px; padding-right: 4px;"> 100 mg / mlの APS （μL） </td><td> TEMED （μL） </td><td>エラスティック 率 （Pa）と</td></tr><tr><td>ソフト</td><td> 200 </td><td> 25 </td><td> 566 </td><td> 200 </td><td> 8 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 1023 </td></tr><tr><td>ハード</td><td> 200 </td><td> 175 </td><td> 401 </td><td> 215 </td><td> 8 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 7307 </td></tr><tr><td>リジッド</td><td> 300 </td><td> 300 </td><td> 161 </td><td> 230 </td><td> 8 </td><td> 1 </td><td> 5 </td><td> 2 </td><td> 22692 </td></tr></tbody></table> 表2：成分量と牽引力アッセイで使用、ソフト、ハード、硬質PaaSのための弾性率を生じる AA =アクリルアミド、FNは、フィブロネクチン、APSは=過硫酸アンモニウムを=。 <ol start="5"><li>各マイクロウェルの中心上のPAA溶液のピペット8.48μL。 注：このボリュームは、理論的には厚さ75μmのPAAが得られます。 </li><li>静かに目のフレームド側を下げるピンセットを用いてマイクロウェル内の液滴の上の電子12ミリメートルのカバースリップ。 </li><li>挟まれたPAA溶液は、15〜30分間重合することができるようにします。残りのソリューションをチェックすることによって重合を確認してください。 </li><li>各ディッシュに1×PBSの2ミリリットルを追加し、ピンセットで12ミリメートルカバースリップを削除します。 </li><li> 5分間、室温で1×PBS 2mlのマイクロウェルを洗浄する。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li></ol>浸潤突起アッセイのためのECMの4。準備<ol><li> 37℃にゼラチン溶液（1％ゼラチンおよび1％スクロース）を加熱する。 </li><li> 45°の角度でガラスボトムディッシュを保持している際にマイクロウェルの底から慎重に吸引した後、1分間のゼラチン溶液150μlとのPaaSを扱う。 </li><li> 60分間の乾燥を最適化するために急角度（60度以上）でマイクロウェル内のPaaS上のゼラチンの残りの薄い層を乾燥させます。 </li><li>私に冷やした0.5％グルタルアルデヒド溶液2mlでマイクロウェルトリート30分間室温で、続いて15分間のce。 </li><li> 5分間1×PBS 2mlでマイクロウェルを洗ってください。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li><li> 1分間の水素化ホウ素ナトリウム溶液2mlでマイクロウェルを扱う。ゆっくりとゼラチンの表面に形成する気泡を除去するためにベンチに料理をタップします。 </li><li>吸引物を5分間1×PBS 2mlのマイクロウェルを洗浄。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li><li> 15分間4℃で175000×gで1×PBSおよび遠心機を50μg/ mlでのFITC標識ヒト血漿フィブロネクチン溶液を希釈。市販のラベルフィブロネクチンを購入するか、次のようにラベルのいずれか： <ol><li>透析チューブ中のホウ酸緩衝液（170 mMのメタホウ酸ナトリウム四水和物および40mMのNaCl）に置き、10mlのフィブロネクチン5mgを溶解する。 </li><li>マグネチックスターラー上に室温で溶解したFITCの6 mg含有ホウ酸塩緩衝液200ml中にチューブを配置することによって、フィブロネクチンをラベル付け暗闇の中で1.5時間の最安設定のまま。 </li><li> 2つのボリュームで暗い低温室（4℃）で3日間最低の設定に設定された磁性攪拌器で1×PBS 500mlで透析すると、一日を変更します。 </li><li> 200回2 / 1.4倍に希釈係数（占める- [（0.36 xのOD 493）OD 280]として280 nmおよび493 nmで：希釈のアリコート（200 1）の光学密度に基づいて、FITC標識されたフィブロネクチンの濃度を計算するmg / mlの単位で生じる）、次のステップで、フィブロネクチンを濃縮グリセロール。 </li><li>一晩4℃で暗所低温室で最も低い設定に設定された磁性攪拌器上で50％グリセロール溶液中で一晩透析する。） </li></ol></li><li>暗闇の中で60分間室温でFITC標識フィブロネクチン溶液を150μlのマイクロウェルを扱う。 </li><li>でガラスボトムディッシュを保持している際に慎重にマイクロウェルの底部からのFITC標識フィブロネクチンソリューションを吸引45°の角度、次に、滅菌のために暗い細胞培養フード中で室温で10分間、70％エタノール溶液でガラスボトムディッシュを埋める。また、ガラスボトムディッシュの蓋を埋めるか、70％エタノールに浸し、低リントワイプできれいに拭いてください。 </li><li> 5分間1×PBSでそれらを充填することによりガラスボトム皿を洗う。 15分の合計1×2mlのPBSでさらに2回繰り返す。 </li></ol> 5.浸潤突起アッセイの作製とイメージング<ol><li> （1：DMEM、5％低タンパク質血清、10％ウシ胎児血清、及び新たに追加された上皮成長因子の20 ng / mlを含むRPMI 1640 1）ガラスボトムディッシュへと浸潤突起培地2mlで25000癌細胞を追加一晩インキュベートする。 </li><li>吸引し、細胞を固定するために20分間、暗所で室温で3.7％パラホルムアルデヒド溶液2mlのマイクロウェルを治療する。 </li><li> 1×PBS 2mlの二つ素早く洗浄した後、室温テン0.1％トリトンX-100溶液2mlをマイクロウェルを治療細胞を透過するために5分間暗闇でrature。 </li><li> 1×2mlのPBSで1迅速な洗浄後、細胞をブロックするための60分間、暗所で室温にてブロッキング溶液、3％ウシ血清アルブミンでマイクロウェルを扱う。 </li><li> 60分、暗所で室温でブロッキング溶液で：マウス抗コータクチン抗体（750 1）の150μlのマイクロウェルをインキュベートする。 </li><li> 5分間の1×PBS 2mlでマイクロウェルを洗ってください。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li><li> （1：500）と546ファロイジン（1：750）で60分間、暗所で室温でブロッキング溶液中でヤギの150μlの抗マウス633抗体とマイクロウェルをインキュベートします。 </li><li> 5分間の1×PBS 2mlでマイクロウェルを洗ってください。 15分、合計2回以上繰り返します。 </li><li>各マイクロウェルを記入し、22×22カバーガラスでカバーするためにメディアをマウントする6滴を追加します。 </li><li>画像コルタクチンとアクチン647分の632の励起および発光フィルターを使用して、浸潤突起を同定するため、および570分の556ナノメートル、それぞれ、広視野倒立顕微鏡上に高NA、40倍油浸レンズを使用。同様に、画像フィブロネクチン518分の492 nmでの励起および発光フィルターを使用して、ECM分解を識別する。 </li></ol> 6.トラクションフォースアッ​​セイの作製とイメージング<ol><li>ガラスボトムディッシュに浸潤突起培地2mlで15000癌細胞を追加し、一晩インキュベートする。 </li><li>ガラスボトムディッシュで培地を吸引し、事前に同じサプリメント（5％低タンパク質血清、10％ウシ胎児血清、及び新たに追加された上皮成長因子の20 ng / ml）を用いて、L-15培地2mlと交換37℃に-warmed。 </li><li> 1時間高湿度で37℃に予め平衡化倒立顕微鏡に環境室にガラスボトムディッシュをインキュベートする。 </li><li>細胞の位置をマークするために自動化された段階で、広視野倒立顕微鏡上に高NA、40倍レンズを使用して画像4セットを取る。 <ol><li>に上の画像セル位相コントラスト（「位相」の画像）を用いてのPaaSにおけるp。 </li><li>のPaaSの上部にある微小球の第一の層は（画像」を強調した」）焦点になるまで細胞の下でわずかに着目し、645分の560の励起および発光フィルターを用いた画像の蛍光マイクロスフェア。 </li><li>また、（マーカーとして微小球を使用して）のPaaSの底に焦点を当て、画像（「底部」の画像）を取る。注：このイメージの目的は、代表的な結果で説明したように牽引力の計算に各位置での実際のPAAの厚さを得るためにz位置を記録することである。 </li><li>これらの画像は、複数の位置で取得された後、穏やかに細胞を除去し、10％のTriton-X溶液を220μlのミックス。前述した（「ヌル」の画像）などの各位置でのPaaSの一番上にある画像のマイクロスフェア。 </li></ol></li></ol>

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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stresses+at+the+cell-to-substrate+interface+during+locomotion+of+fibroblasts.">Stresses at the cell-to-substrate interface during locomotion of fibroblasts.</a> Biophysical journal. 76, 2307-2316 (1999).</li><li>Engler, A. J., Rehfeldt, F., Sen, S., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microtissue+elasticity:+measurements+by+atomic+force+microscopy+and+its+influence+on+cell+differentiation.">Microtissue elasticity: measurements by atomic force microscopy and its influence on cell differentiation.</a> Methods Cell Biol. 83, 521-545 (2007).</li><li>Kandow, C. E., Georges, P. C., Janmey, P. A., Beningo, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Polyacrylamide+hydrogels+for+cell+mechanics:+steps+toward+optimization+and+alternative+uses.">Polyacrylamide hydrogels for cell mechanics: steps toward optimization and alternative uses.</a> Methods in cell biology. 83, 29-46 (2007).</li><li>Leach, J. B., Brown, X. Q., Jacot, J. G., Dimilla, P. A., Wong, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurite+outgrowth+and+branching+of+PC12+cells+on+very+soft+substrates+sharply+decreases+below+a+threshold+of+substrate+rigidity.">Neurite outgrowth and branching of PC12 cells on very soft substrates sharply decreases below a threshold of substrate rigidity.</a> J Neural Eng. 4, 26-34 (2007).</li><li>Zhou, J., Kim, H. Y., Wang, J. H., Davidson, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macroscopic+stiffening+of+embryonic+tissues+via+microtubules,+RhoGEF+and+the+assembly+of+contractile+bundles+of+actomyosin.">Macroscopic stiffening of embryonic tissues via microtubules, RhoGEF and the assembly of contractile bundles of actomyosin.</a> Development. 137, 2785-2794 (2010).</li><li>Buxboim, A., Rajagopal, K., Brown, A. E., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+deeply+cells+feel:+methods+for+thin+gels.">How deeply cells feel: methods for thin gels.</a> J Phys Condens Matter. 22, 194116 (2010).</li></ol>

この作品は賞数K25CA143412（Parekhの）の下で国立衛生研究所の国立癌研究所によってサポートされていました。私たちは、追加のサポートが耳鼻咽喉科の部門によって提供されたことを感謝したい。内容はもっぱら著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を示すものではありません。

我々は、浸潤性および収縮性細胞の挙動を相関浸潤突起と牽引力アッセイのための基礎として使用することができるPaaSの製造方法を提供する。 PaaSは、長い細胞に対する剛性の影響を見て、牽引力18,24,27を計算するために使用されてきたが、このプロトコルは、マトリックスに応じて、侵襲および収縮細胞の挙動を相関させるために同じ剛性を有するのPaaSに基づく並列アッセイを開?...

腫瘍関連ECMの剛性がアクトミオシン収縮1-3を増加させることによって、悪性の挙動を駆動する重要な因子として同定されている。この効果は、主に乳癌細胞を用いて実証されているが、マトリックスの剛性は、腫瘍の剛性が癌の他のタイプにおいて役割を果たし得ることを示唆している癌4-8種々の由来する細胞の浸潤特性を変化させることが見出されている。侵襲的な移行時に架橋された組織に浸透するには、癌細胞が限局的にECM 9を分解するためにプロテイナーゼをローカライズ浸潤突起として知られているアクチンが豊富な接着剤の突起を利用する。浸潤突起は、侵襲性細胞の特徴であると考えられ、腫瘍細胞の浸潤および転移10,11に関与している。以前の研究は、マトリックスの剛性がミオシンIIの活性および機械受容タンパク質12を通って浸潤突起数を調節し、関連したECM分解4,12ができることを示している。与えられた腫瘍の密度と癌の悪性13,14の間の相関は、これらの結果は、癌細胞がアクトミオシン収縮を通じて浸潤及び転移を駆動するために硬質の腫瘍組織に応答することができるメカニズムを示唆している。 インビトロ ECMの剛性及びインビボ組織密度で癌細胞1,15-17の侵襲的挙動を調節することが示されている。アクトミオシン収縮性は、このプロセスにおいて重要であると思われるが、転移能力を増加するために相関または収縮力6,18-20を減少させるかどうかの現在の研究の競合。さらに、これらの力が直接浸潤突起の活動21を仲介するかどうかは不明のまま。我々は最近、癌細胞の収縮力は、マトリックスの剛性に依存していたと浸潤突起5によるECM分解を予測することを見出した。これらの結果は、細胞の力が浸潤突起交流を媒介することによって癌の進行に重要な役割を果たし得ることを示唆している腫瘍微小環境の機械的特性に応じて、電率。 癌細胞5の侵襲及び収縮特性を相関するために、我々は以前に剛性に依存浸潤突起活性4,12,22を調査するために使用された異なる剛性とのPaaSを作成するためのプロトコルを変更した。化学PAASを通してヒト血漿フィブロネクチンを架橋することにより、これらの修飾されたヒドロゲルは、細胞が両方の実験5と同じ剛性を経験したことを確認するために浸潤突起と牽引力アッセイの両方のための基礎として使用することができる。浸潤突起アッセイでは、フィブロネクチンは、マトリックス分解を検出するためのPaaSにオーバーレイされたECMをリンクするゼラチンのための天然の結合ドメインを提供しています。牽引力アッセイにおいて、フィブロネクチンは、細胞の牽引力を計算するために使用される微小球の変位を検出するための直接的な細胞接着のためのリガンドを提供する。我々はハード、ソフトと呼ばれるているもので、このメソッドの結果、ガラスボトムディッシュに結合し、正常および癌組織23について報告された機械的性質の範囲に及ぶ1023、7307、および22692 Paの5の弾性率、Eは、持っているし、剛性のPaaS。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-Aminopropyltrimethoxysilane</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>281778</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylamide (40%)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>161-0140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylic acid NHS ester</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A8060</td>
			<td>prepare fresh in fume hood 10 mg/ml in DMSO</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 546 phalloidin</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A22283</td>
			<td>can also use rhodamine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium persulfate</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>161-0700</td>
			<td>prepare fresh 10% solution in 1X PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aqua Poly/Mount</td>
			<td>Polysciences</td>
			<td>18606</td>
			<td>use six drops to fill microwells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BIS (2%)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>161-0142</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine serum albumin</td>
			<td>RPI</td>
			<td>A30075</td>
			<td>make 3% for blocking solution in 1X PBS and store in 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips (12 mm)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-545-80</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dialysis tubing</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D9777</td>
			<td>pre-equilibrate in borate buffer for 15-30 min</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td>Cellgro</td>
			<td>10-013-CV</td>
			<td>use to make invadopodia medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMSO</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D8418</td>
			<td>use to make acrylic acid NHS ester solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epidermal growth factor</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>PHG0311</td>
			<td>use to make invadopodia medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>PHARMCO-AAPER</td>
			<td>E200</td>
			<td>dilute with ultrapure water to 70%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>SH30070.03</td>
			<td>use to make invadopodia medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F7250</td>
			<td>protect from light</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelatin</td>
			<td>Polysciences</td>
			<td>00639</td>
			<td>typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 &#176;C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottom dishes (35 mm coverslips)</td>
			<td>MatTek</td>
			<td>P35G-0-14-C</td>
			<td>coverslips are uncoated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde (25%)</td>
			<td>Polysciences</td>
			<td>01909</td>
			<td>dilute with 1X PBS to 0.5%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>goat anti-mouse Alexa Fluor 633 antibody&#160;</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A21050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human plasma fibronectin</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>33016-015</td>
			<td>add 5 ml of ultrapure water to make 1 mg/ml; aliquot in volumes based on use to avoid excessive freezing and thawing cycles</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KH2PO4</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>PX-1565-1</td>
			<td>use to make 10X PBS stock</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mouse anti-cortactin 4F11 antibody&#160;</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>05-180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2HPO4</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>SX-0720-1</td>
			<td>use to make 10X PBS stock</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>RPI</td>
			<td>S23020</td>
			<td>use to make 10X PBS stock and borate buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH (1 N)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S2770</td>
			<td>dilute with ultrapure water to 0.1 N</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nu-Serum (low-protein serum)</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>355500</td>
			<td>use to make invadopodia medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Acros</td>
			<td>416785000</td>
			<td>typically make 10% stock in 1X PBS, prepare in fume hood, and add a few ml of strong NaOH to dissolve paraformaldehyde easily then bring back to pH 7.4 with strong HCl)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS (sterile)</td>
			<td>Cellgro</td>
			<td>21-040-CV</td>
			<td>use for cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640</td>
			<td>Cellgro</td>
			<td>10-040-CV</td>
			<td>use to make invadopodia medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium borohydride</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>452882</td>
			<td>prepare fresh in fume hood 1 mg/ml in 1X PBS&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium metaborate tetrahydrate&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S0251</td>
			<td>use to make borate buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>RPI</td>
			<td>S24060</td>
			<td>typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 &#176;C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TEMED</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>161-0800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A16046</td>
			<td>make 10% stock in 1X PBS and use as is for cell removal in traction force assay or dilute with 1X PBS for staining</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

polyacrylamide gels for invadopodia and traction force assays on cancer cells

剛性の腫瘍組織が強く癌細胞の遊走および浸潤の調節に関与している。架橋された組織を通って浸潤性移行がタンパク質分解的に細胞外マトリックス（ECM）を分解する浸潤突起と呼ばれるアクチンリッチ突起によって促進される。浸潤突起活性剛性信号がアクトミオシン収縮性を介してこれらの細胞内構造を調節することができることを示唆しているECMの剛性および癌細胞の収縮力に依存することが示されている。癌細胞の浸潤性および収縮特性が異なる剛性のポリアクリルアミドゲル（PAAS）に基づいて、浸潤突起と牽引力アッセイを用いてインビトロで相関させることができる。癌細胞の浸潤性および収縮特性が異なる剛性のポリアクリルアミドゲル（PAAS）に基づいて、浸潤突起と牽引力アッセイを用いてインビトロで相関させることができる。つのアッセイ間のいくつかのバリエーションが存在するが、ここで提示プロトコルは、PaaSの目を作成するための方法を提供では、両方のアッセイで使用され、ユーザの特定の生物学的および技術的なニーズに容易に適応可能であることができる。

浸潤突起アッセイにおいて、浸潤突起は、典型的には、セル本体内の点状構造におけるアクチンおよびコルタクチン（ 図1）のようなマーカーの共局在化によって同定される。両方積極的に低下させると、非分解性浸潤突起をカウントすることができ、これらの構造は、FITC標識フィブロネクチン（ 図1）における蛍光シグナルを欠く黒い領域と共局在しているかどう?...

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Polyacrylamide Gels for Invadopodia and Traction Force Assays on Cancer Cells

腫瘍微小環境中の機械的剛性が浸潤突起の活性を増加し、収縮性アクトミオシンによって悪性の挙動を駆動する重要な役割を果たしている。アクリルアミドゲル（PAAS）を使用して、浸潤突起と牽引力アッセイは、マトリックスの剛性に応じて、癌細胞の浸潤性および収縮特性を研究するために利用することができる。

癌細胞に対する浸潤突起と牽引力のアッセイのために、ポリアクリルアミドゲル

Rigid tumor tissues have been strongly implicated in regulating cancer cell migration and invasion. Invasive migration through cross-linked tissues is ...

polyacrylamide-gels-for-invadopodia-traction-force-assays-on-cancer

Research

JoVE Journal

Medicine

12.0K ビュー.  Vanderbilt University Medical Center. 腫瘍微小環境中の機械的剛性が浸潤突起の活性を増加し、収縮性アクトミオシンによって悪性の挙動を駆動する重要な役割を果たしている。アクリルアミドゲル（PAAS）を使用して、浸潤突起と牽引力アッセイは、マトリックスの剛性に応じて、癌細胞の浸潤性および収縮特性を研究するために利用することができる。 

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Processing of Primary Brain Tumor Tissue for Stem Cell Assays and Flow Sorting

Brain tumors are typically comprised of morphologically diverse cells that express a variety of neural lineage markers. Only a relatively small fraction of cells in the tumor with stem cell properties, termed brain tumor initiating cells (BTICs), possess an ability to differentiate along multiple lineages, self-renew, and initiate tumors in vivo. We applied culture conditions originally used for normal neural stem cells (NSCs) to a variety of human brain tumors and found that this culture method specifically selects for stem-like populations. Serum-free medium (NSC) allows for the maintenance of an undifferentiated stem cell state, and the addition of bFGF and EGF allows for the proliferation of multi-potent, self-renewing, and expandable tumorspheres.
To further characterize each tumor's BTIC population, we evaluate cell surface markers by flow cytometry. We may also sort populations of interest for more specific characterization. Self-renewal assays are performed on single BTICs sorted into 96 well plates; the formation of tumorspheres following incubation at 37 &deg;C indicates the presence of a stem or progenitor cell. Multiple cell numbers of a particular population can also be sorted in different wells for limiting dilution analysis, to analyze self-renewal capacity. We can also study differential gene expression within a particular cell population by using single cell RT-PCR.
The following protocols describe our procedures for the dissociation and culturing of primary human samples to enrich for BTIC populations, as well as the dissociation of tumorspheres. Also included are protocols for staining for flow cytometry analysis or sorting, self-renewal assays, and single cell RT-PCR.

The identification of brain tumor initiating cells (BTICs), the rare cells within a heterogeneous tumor possessing stem cell properties, provides new insights into human brain tumor pathogenesis. We have refined specific culture conditions to enrich for BTICs, and we routinely use flow cytometry to further enrich these populations. Self-renewal assays and transcript analysis by single cell RT-PCR can subsequently be performed on these isolated cells.

ソート幹細胞アッセイおよびフローの原発性脳腫瘍組織の処理

Brain tumors are typically comprised of morphologically diverse cells that express a variety of neural lineage markers. Only a relatively small fraction ...

医学

Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human pulp-derived stem cells (hDPSCs) possess high proliferation potential with multi-lineage differentiation capacity compare to the ordinary source of adult stem cells1-8; therefore, hDPSCs could be the good candidates for autologous transplantation in tissue engineering and regenerative medicine. Along with these benefits, possessing the mesenchymal stem cells (MSC) features, such as immunolodulatory effect, make hDPSCs more valuable, even in the case of allograft transplantation6,9,10. Therefore, the primary step for using this source of stem cells is to select the best protocol for isolating hDPSCs from pulp tissue. In order to achieve this goal, it is crucial to investigate the effect of various isolation conditions on different cellular behaviors, such as their common surface markers &amp; also their differentiation capacity.
Thus, here we separate human pulp tissue from impacted third molar teeth, and then used both existing protocols based on literature, for isolating hDPSCs,11-13 i.e. enzymatic dissociation of pulp tissue (DPSC-ED) or outgrowth from tissue explants (DPSC-OG). In this regards, we tried to facilitate the isolation methods by using dental diamond disk. Then, these cells characterized in terms of stromal-associated Markers (CD73, CD90, CD105 &amp; CD44), hematopoietic/endothelial Markers (CD34, CD45 &amp; CD11b), perivascular marker, like CD146 and also STRO-1. Afterwards, these two protocols were compared based on the differentiation potency into odontoblasts by both quantitative polymerase chain reaction (QPCR) &amp; Alizarin Red Staining. QPCR were used for the assessment of the expression of the mineralization-related genes (alkaline phosphatase; ALP, matrix extracellular phosphoglycoprotein; MEPE &amp; dentin sialophosphoprotein; DSPP).14

The method described isolation and characterization of human Dental Pulp Stem Cells (hDPSCs) by using either enzymatic dissociation of pulp (DPSC-ED) or direct outgrowth of stem cells from pulp tissue explants (DPSC-OG). Then followed by in vitro comparative differentiation of both types of hDPSCs into odontoblasts.

単離、特徴付けと二つの異なる方法を使用して永久歯に由来するヒト歯髄幹細胞の分化の比較

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human ...

Patient Derived Cell Culture and Isolation of CD133+ Putative Cancer Stem Cells from Melanoma

Despite improved treatments options for melanoma available today, patients with advanced malignant melanoma still have a poor prognosis for progression-free and overall survival. Therefore, translational research needs to provide further molecular evidence to improve targeted therapies for malignant melanomas. In the past, oncogenic mechanisms related to melanoma were extensively studied in established cell lines. On the way to more personalized treatment regimens based on individual genetic profiles, we propose to use patient-derived cell lines instead of generic cell lines. Together with high quality clinical data, especially on patient follow-up, these cells will be instrumental to better understand the molecular mechanisms behind melanoma progression.
Here, we report the establishment of primary melanoma cultures from dissected fresh tumor tissue. This procedure includes mincing and dissociation of the tissue into single cells, removal of contaminations with erythrocytes and fibroblasts as well as primary culture and reliable verification of the cells' melanoma origin.
Recent reports revealed that melanomas, like the majority of tumors, harbor a small subpopulation of cancer stem cells (CSCs), which seem to exclusively fuel tumor initiation and progression towards the metastatic state. One of the key markers for CSC identification and isolation in melanoma is CD133. To isolate CD133+ CSCs from primary melanoma cultures, we have modified and optimized the Magnetic-Activated Cell Sorting (MACS) procedure from Miltenyi resulting in high sorting purity and viability of CD133+ CSCs and CD133- bulk, which can be cultivated and functionally analyzed thereafter.

Patient Derived Cell Culture and Isolation of CD133+ Putative Cancer Stem Cells from Melanoma

This article describes the preparation of freshly obtained melanoma tissue into primary cell cultures, and how to remove contaminations of erythrocytes and fibroblasts from the tumor cells. Finally, we describe how CD133+ putative melanoma stem cells are sorted from the CD133- bulk using Magnetic Activated Cell Sorting (MACS).

CD133の患者由来の細胞培養および分離<sup&gt; +</supメラノーマから&gt;推定されるがん幹細胞

Despite improved treatments options for melanoma available today, patients with advanced malignant melanoma still have a poor prognosis for ...

Formation of Human Prostate Epithelium Using Tissue Recombination of Rodent Urogenital Sinus Mesenchyme and Human Stem Cells

Progress in prostate cancer research is severely limited by the availability of human-derived and hormone-na&iuml;ve model systems, which limit our ability to understand genetic and molecular events underlying prostate disease initiation. Toward developing better model systems for studying human prostate carcinogenesis, we and others have taken advantage of the unique pro-prostatic inductive potential of embryonic rodent prostate stroma, termed urogenital sinus mesenchyme (UGSM). When recombined with certain pluripotent cell populations such as embryonic stem cells, UGSM induces the formation of normal human prostate epithelia in a testosterone-dependent manner. Such a human model system can be used to investigate and experimentally test the ability of candidate prostate cancer susceptibility genes at an accelerated pace compared to typical rodent transgenic studies. Since Human embryonic stem cells (hESCs) can be genetically modified in culture using inducible gene expression or siRNA knock-down vectors prior to tissue recombination, such a model facilitates testing the functional consequences of genes, or combinations of genes, which are thought to promote or prevent carcinogenesis.
The technique of isolating pure populations of UGSM cells, however, is challenging and learning often requires someone with previous expertise to personally teach. Moreover, inoculation of cell mixtures under the renal capsule of an immunocompromised host can be technically challenging. Here we outline and illustrate proper isolation of UGSM from rodent embryos and renal capsule implantation of tissue mixtures to form human prostate epithelium. Such an approach, at its current stage, requires in vivo xenografting of embryonic stem cells; future applications could potentially include in vitro gland formation or the use of induced pluripotent stem cell populations (iPSCs).

To unravel the earliest molecular mechanisms underlying prostate cancer initiation, novel and innovative human model systems and approaches are desperately needed. The potential of pre-prostatic urogenital sinus mesenchyme (UGSM) to induce pluripotent stem cell populations to form human prostate epithelium is a powerful experimental tool in prostate research.

齧歯尿生殖洞間充織とヒト幹細胞の組織の組換えを用いたヒト前立腺上皮の形成

Progress in prostate cancer research is severely  limited by the availability of human-derived and hormone-na&iuml;ve model systems,  which limit our ...

Adaptation of Semiautomated Circulating Tumor Cell (CTC) Assays for Clinical and Preclinical Research Applications

The majority of cancer-related deaths occur subsequent to the development of metastatic disease. This highly lethal disease stage is associated with the presence of circulating tumor cells (CTCs). These rare cells have been demonstrated to be of clinical significance in metastatic breast, prostate, and colorectal cancers. The current gold standard in clinical CTC detection and enumeration is the FDA-cleared CellSearch system (CSS). This manuscript outlines the standard protocol utilized by this platform as well as two&#160;additional adapted protocols that describe the detailed process of user-defined marker optimization for protein characterization of patient CTCs and a comparable protocol for CTC capture in very low volumes of blood, using standard CSS reagents, for studying in vivo preclinical mouse models of metastasis. In addition, differences in CTC quality between healthy donor blood spiked with cells from tissue culture versus patient blood samples are highlighted. Finally, several commonly discrepant items that can lead to CTC misclassification errors are outlined. Taken together, these protocols will provide a useful resource for users of this platform interested in preclinical and clinical research pertaining to metastasis and CTCs.

Adaptation of Semiautomated Circulating Tumor Cell CTC Assays for Clinical and Preclinical Research Applications

Circulating tumor cells (CTCs) are prognostic in several metastatic cancers. This manuscript describes the gold standard CellSearch system (CSS) CTC enumeration platform and highlights common misclassification errors. In addition, two&#160;adapted protocols are described for user-defined marker characterization of CTCs and CTC enumeration in preclinical mouse models of metastasis using this technology.

臨床および前臨床研究用途のための半自動循環腫瘍細胞（CTC）アッセイの適応

The majority of cancer-related deaths occur subsequent to the development of metastatic disease. This highly lethal disease stage is associated with the ...

Profiling of Estrogen-regulated MicroRNAs in Breast Cancer Cells

Estrogen plays vital roles in mammary gland development and breast cancer progression. It mediates its function by binding to and activating the estrogen receptors (ERs), ER&#945;, and ER&#946;. ER&#945; is frequently upregulated in breast cancer and drives the proliferation of breast cancer cells. The ERs function as transcription factors and regulate gene expression. Whereas ER&#945;&#39;s regulation of protein-coding genes is well established, its regulation of noncoding microRNA (miRNA) is less explored. miRNAs play a major role in the post-transcriptional regulation of genes, inhibiting their translation or degrading their mRNA. miRNAs can function as oncogenes or tumor suppressors&#160;and are also promising biomarkers. Among the miRNA assays available, microarray and quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) have been extensively used to detect and quantify miRNA levels. To identify miRNAs regulated by estrogen signaling in breast cancer, their expression in ER&#945;-positive breast cancer cell lines were compared before and after estrogen-activation using both the &#181;Paraflo-microfluidic microarrays and Dual Labeled Probes-low density arrays. Results were validated using specific qPCR assays, applying both Cyanine dye-based and Dual Labeled Probes-based chemistry. Furthermore, a time-point assay was used to identify regulations over time. Advantages of the miRNA assay approach used in this study is that it enables a fast screening of mature miRNA regulations in numerous samples, even with limited sample amounts. The layout, including the specific conditions for cell culture and estrogen treatment, biological and technical replicates, and large-scale screening followed by in-depth confirmations using separate techniques, ensures a robust detection of miRNA regulations,&#160;and eliminates false positives and other artifacts. However, mutated or unknown miRNAs, or regulations at the primary and precursor transcript level, will not be detected. The method presented here represents a thorough investigation of estrogen-mediated miRNA regulation.

Molecular signaling through both estrogen and microRNAs are critical in breast cancer development and growth. Estrogen activates the estrogen receptors, which are transcription factors. Many transcription factors can regulate the expression of microRNAs, and estrogen-regulated microRNAs can be profiled using different large-scale techniques.

乳癌細胞におけるエストロゲン調節マイクロRNAのプロファイリング

Estrogen plays vital roles in mammary gland development and breast cancer progression. It mediates its function by binding to and activating the estrogen ...

Method for Obtaining Primary Ovarian Cancer Cells From Solid Specimens

Reliable tools for investigating ovarian cancer initiation and progression are urgently needed. While the use of ovarian cancer cell lines remains a valuable tool for understanding ovarian cancer, their use has many limitations. These include the lack of heterogeneity and the plethora of genetic alterations associated with extended in vitro passaging.&#160;Here we describe a method that allows for rapid establishment of primary ovarian cancer cells form solid clinical specimens collected at the time of surgery. The method consists of subjecting clinical specimens to enzymatic digestion for 30 min. The isolated cell suspension is allowed to grow and can be used for downstream application including drug screening. The advantage of primary ovarian cancer cell lines over established ovarian cancer cell lines is that they are representative of the original specific clinical specimens they are derived from and can be derived from different sites whether primary or metastatic ovarian cancer.

This study describes a detailed method for isolation and characterization of primary ovarian cancer cells from solid clinical specimens. Ovarian cancer clinical specimens are subjected to enzymatic digestion to obtain viable, fibroblast-free epithelial ovarian cancer (EOC) cells highly suitable for downstream applications.

ソリッド検体からの原発性卵巣癌細胞を得る方法

Reliable tools for investigating ovarian cancer initiation and progression are urgently needed. While the use of ovarian cancer cell lines remains a ...

Enrichment for Chemoresistant Ovarian Cancer Stem Cells from Human Cell Lines

Cancer stem cells (CSCs) are defined as a subset of slow cycling and undifferentiated cells that divide asymmetrically to generate highly proliferative, invasive, and chemoresistant tumor cells. Therefore, CSCs are an attractive population of cells to target therapeutically. CSCs are predicted to contribute to a number of types of malignancies including those in the blood, brain, lung, gastrointestinal tract, prostate, and ovary. Isolating and enriching a tumor cell population for CSCs will enable researchers to study the properties, genetics, and therapeutic response of CSCs. We generated a protocol that reproducibly enriches for ovarian cancer CSCs from ovarian cancer cell lines (SKOV3 and OVCA429). Cell lines are treated with 20 &#181;M cisplatin for 3 days. Surviving cells are isolated and cultured in a serum-free stem cell media containing cytokines and growth factors. We demonstrate an enrichment of these purified CSCs by analyzing the isolated cells for known stem cell markers Oct4, Nanog, and Prom1 (CD133) and cell surface expression of CD177 and CD133. The CSCs exhibit increased chemoresistance. This method for isolation of CSCs is a useful tool for studying the role of CSCs in chemoresistance and tumor relapse.

Cancer stem cells (CSCs) are&#160;implicated in tumor relapse due to chemoresistance. We have optimized a protocol for selection and expansion of CSCs from ovarian cancer cell lines. By treating cells with the chemotherapeutic cisplatin and culturing&#160;in a stem cell promoting media we enrich for non-adherent CSC cultures.

ヒト細胞株から化学療法抵抗性の卵巣がん幹細胞の濃縮

Cancer stem cells (CSCs) are defined as a subset of slow cycling and undifferentiated cells that divide asymmetrically to generate highly proliferative, ...

Studying Pancreatic Cancer Stem Cell Characteristics for Developing New Treatment Strategies

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor initiation, metastasis and resistance to radio- and chemotherapy. Here we describe a specific methodology for culturing primary human pancreatic CSCs as tumor spheres in anchorage-independent conditions. Cells are grown in serum-free, non-adherent conditions in order to enrich for CSCs while their more differentiated progenies do not survive and proliferate during the initial phase following seeding of single cells. This assay can be used to estimate the percentage of CSCs present in a population of tumor cells. Both size (which can range from 35 to 250 micrometers) and number of tumor spheres formed represents CSC activity harbored in either bulk populations of cultured cancer cells or freshly harvested and digested tumors 1,2. Using this assay, we recently found that metformin selectively ablates pancreatic CSCs; a finding that was subsequently further corroborated by demonstrating diminished expression of pluripotency-associated genes/surface markers and reduced in vivo tumorigenicity of metformin-treated cells. As the final step for preclinical development we treated mice bearing established tumors with metformin and found significantly prolonged survival. Clinical studies testing the use of metformin in patients with PDAC are currently underway (e.g., NCT01210911, NCT01167738, and NCT01488552). Mechanistically, we found that metformin induces a fatal energy crisis in CSCs by enhancing reactive oxygen species (ROS) production and reducing mitochondrial transmembrane potential. In contrast, non-CSCs were not eliminated by metformin treatment, but rather underwent reversible cell cycle arrest. Therefore, our study serves as a successful example for the potential of in vitro sphere formation as a screening tool to identify compounds that potentially target CSCs, but this technique will require further in vitro and in vivo validation to eliminate false discoveries.

Pancreatic cancer stem cells (CSCs) can be expanded in vitro using the anchorage-independent sphere culture technique, which represents a powerful tool to study CSC biology and can serve as the first step to develop novel CSC-targeting therapies. Here the methodology for expanding, analyzing and targeting of pancreatic CSCs is provided.

新しい治療戦略を開発するための膵臓癌幹細胞特性を研究

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor ...

An Organotypic High Throughput System for Characterization of Drug Sensitivity of Primary Multiple Myeloma Cells

In this work we describe a novel approach that combines ex vivo drug sensitivity assays and digital image analysis to estimate chemosensitivity and heterogeneity of patient-derived multiple myeloma (MM) cells. This approach consists in seeding primary MM cells freshly extracted from bone marrow aspirates into microfluidic chambers implemented in multi-well plates, each consisting of a reconstruction of the bone marrow microenvironment, including extracellular matrix (collagen or basement membrane matrix) and stroma (patient-derived mesenchymal stem cells) or human-derived endothelial cells (HUVECs). The chambers are drugged with different agents and concentrations, and are imaged sequentially for 96 hr through bright field microscopy, in a motorized microscope equipped with a digital camera. Digital image analysis software detects live and dead cells from presence or absence of membrane motion, and generates curves of change in viability as a function of drug concentration and exposure time. We use a computational model to determine the parameters of chemosensitivity of the tumor population to each drug, as well as the number of sub-populations present as a measure of tumor heterogeneity. These patient-tailored models can then be used to simulate therapeutic regimens and estimate clinical response.

We describe a high-throughput drug sensitivity assay for primary multiple myeloma cells. It consists of a reconstruction of the bone marrow microenvironment (including extracellular matrix and stroma) in multi-well plates, and a non-invasive method for longitudinal quantification of cell viability.

一次多発性骨髄腫細胞の薬剤感受性の特徴付けのための器官のハイスループットシステム

In this work we describe a novel approach that combines ex vivo drug sensitivity assays and digital image analysis to estimate chemosensitivity and ...