We are grateful to the technical support from Ms. Hong Xian Hsing, Mr. Min Jeng Li, and Mr. Eric C. P. Wu. We express our appreciation to Miranda Loney for English editing.

1.固定と埋め込み<ol><li>試薬調製<ol><li> 10×リン酸緩衝生理食塩水（PBS） <ol><li>二重蒸留水（のddH 2 O）800ミリリットルに80グラムのNaCl、2グラムのKCl、14.4グラムのNa 2 HPO 4、および2.4グラムのKH 2 PO 4を添加し、塩酸でpHを7.4に調整します。その後、千μlのジエチルピロカーボネート（DEPC）を追加し、激しく振る、1 Lの総容量にのddH 2 Oを追加します。ストアPBSで一晩20分次の日のために121℃の室温とオートクレーブで。 </li></ol></li><li> 1×PBS <ol><li> 0.01 MのNa 2 HPO 4、0.002 M KH 2 PO 4、0.003 MのKCl、および0.13 MのNaClの最終濃度を得るためのddH 2 Oで1:10の割合で株式10×PBSを希釈します。 </li></ol></li><li>パラホルムアルデヒド（PFA）固定液 注意：パラホルムアルデヒドは有毒です。ヒュームフードの下準備をします。手袋を着用してください。 <ol><li> 250ミリリットルのPFA固定液を調製するには、100を加熱mlの1×PBS 70 - 80°C及びNaOHの1750μlを添加します。その後、パラホルムアルデヒドの10グラムを追加し、溶解するまで十分に混合します。氷の上でソリューションを配置した後、H 2 SO 4でpHを7.2に調整-冷却した後（260 100ミリリットルのために270μl）を。 </li><li> 1×PBSで250ミリリットルにボリュームを調整し、0.25％の最終濃度になるように625μlのグルタルアルデヒドを追加します。固定液の浸透を容易にするために、250μlのトリトンX-100および250μlのトゥイーン20を追加します。 注：PFA固定液は、固定性を失うことなく、1ヶ月間、4℃で保存することができます。 </li></ol></li><li> DEPC処理水とエタノールの異なる濃度（30％、50％、70％、85％、95％）を調製。 </li></ol></li><li>植物サンプル収集<ol><li>腋芽<ol><li>四つ葉の段階で成熟した胡蝶蘭の植物を使用してください。慎重に手を使用して、中肋次の葉を引き裂くことによって葉を取り除きます。 </li><li> carefする鋭いメスを使用しますully単軸性の茎上の第3または第4葉の基部から腋芽を削除します。 </li></ol></li><li>種子サンプル<ol><li>受粉後4ヶ月で成熟した蘭の種子のさやを収穫。メスで縦方向にシードポッドをカットします。優しくオープニングシードポッドを振ると、濾紙上で乾燥種子をリリース。 </li></ol></li><li>プロトコーム<ol><li> 1/2×ムラシゲ・スクーグ寒天プレート上に成熟した蘭の種をまくと、12時間の明期と25℃の一定温度で組織培養室で育ちます。播種後7週目に緑のプロトコームサンプル。 </li></ol></li><li>プロトコーム様体（のPLB） <ol><li>ステップ1.2.3.1と同様の成長条件の下で、以前10と場所説明したようにT2は寒天プレートを再生するには蘭のPLBを成長させます。 8ミリメートル - 5の高さで10のPLBを収集します。 </li></ol></li><li>葉のサンプル<ol><li>ステップで説明したように成熟した胡蝶蘭の植物から葉組織を収集1.2.1.1。 </li><li>二新たに開発された葉から葉組織（7ミリメートルの長さのx 5ミリメートル幅）の小片をカットする鋭いメスを使用してください。 </li></ol></li><li>ルートサンプル<ol><li>ステップ1.2.1.1で説明したのと同じ植物を使用して、鋭いメスを用いて根端組織の1cmの長さを分析。 </li></ol></li><li>ヤングスパイク<ol><li>花茎の先端部長さ10cmの若いスパイク組織を切断するために鋭いメスを使用してください。 </li></ol></li><li>花芽<ol><li>蘭の花の茎から直径5mmの小さな花のつぼみを切り出します。花芽組織縦方向（厚さ3mm）の一部をカット。 </li></ol></li><li>葉組織と穀物の小穂組織<ol><li>米、小麦、トウモロコシ植物から最初に新たに開発された葉から1センチメートル長葉身組織をカット。 </li><li> 1日の開花前の植物（米、小麦、トウモロコシ）から10小穂を収集します。 </li></ol></li></ol></li><li>固定<ol><li> 15ミリリットルの氷冷PFA固定液を含むガラスシンチレーションバイアルにそれらを転送することにより、すぐに植物試料を修正しました。 </li><li> 4°C涼しい室内で植物試料を真空（〜720ミリメートルHgの）を適用します。 （小さな気泡がサンプルから放出されるべきである）20分 - 15のための真空を保持します。組織のほとんどが真空のリリース後に沈むまで、この手順を繰り返します。一晩真空を保持し、次の日にゆっくり真空を解放します。 </li></ol></li><li>脱水 注：固定から浸透工程を経て、同じバイアルを使用します。前のステップで解決策を切ると、バイアルに新しいソリューション15mlで置き換えるために、ピペットを注ぐか、使用しています。組織の質感に応じて、より長い時間のために、このような蘭の腋芽、種子、プロトコーム、およびPLB、および米、小麦、トウモロコシの小穂のような硬い組織を扱います。このような蘭の花のつぼみ、若いスパイク、葉や根、短い時間のために米、小麦、トウモロコシの葉のようなより軟らかい組織を扱います。 <oL&gt; <li>固定後、氷上で10分間、PBS 1×15ミリリットルのサンプルを浸します。 <ol><li>次のように室温で15 mlのエタノールシリーズのサンプルを脱水：30分間、30％エタノール、30分間、50％エタノール、1時間70％エタノール、硬い組織のための54分および軟らかい組織30分間85％のエタノール、硬い組織について54分および軟らかい組織30分間2回硬い組織についての54分と柔らかい組織について30分間、95％エタノール、100％エタノール。 注：植物サンプルは数ヶ月間、4℃で70％エタノール中で保存することができます。 </li></ol></li></ol></li><li>パラフィン浸透<ol><li>次のように室温で、硬い組織および軟らかい組織30分54分15 mlのエタノールおよびキシレン代替混合物のサンプルをそれぞれ浸透エタノール/キシレン代替物（2：1、v / v）のエタノール/キシレン代替物（1 ：1、v / v）のエタノール/キシレン代替物（1：2、v / v）で、純粋なキシレン代替倍。注意：キシレンは有毒です。ドラフト内でこのステップを実行してください。 </李&gt; <li>一晩硬い組織のために、60℃のオーブン中で15 mLのキシレン代替とパラフィンの混合物を有するバイアルに試料を浸潤し、軟らかい組織60分間以下のようにキシレン代替物/パラフィン（2：1、v / v）で、キシレン代替物/パラフィン（1：1、V / V）、およびキシレン代替物/パラフィン（1：2、v / v）でした。 </li><li>一日二回15ミリリットルの純粋なパラフィンでサンプルを潜入し、オーブンで60℃でインキュベートします。 </li><li>繰り返しステップは、次の日1.5.3。 </li></ol></li><li>組織の埋め込み<ol><li>パラフィンブロックに組織を埋め込む前に、パラフィンタンク内のワックスを溶融するために、事前に組織包埋センター1時間の電源をONにしてください。 </li><li> 62℃での加温トレイの金型（ベース3.3センチメートル長×2センチ幅のサイズを）ウォームアップ、および金型ベースに溶融ワックスの約13ミリリットルを注ぎます。 </li><li>暖められた鉗子で金型内にセクション1.5.4から1つの組織サンプルを転送し、それを所望の位置に向けます。 </li><li>金型を移動ワックスが固化するまで慎重にクールプレート上に、そして去ります。 </li></ol></li></ol> 2.組織セクショニング<ol><li>パラフィン切片法<ol><li>モールド（セクション1.6.2で同じサイズ）の上に埋め込みカセットを配置することにより、ワックスベースを作成し、溶融ワックスを充填し、ワックスが固化した後、金型を削除します。 注：包埋カセットは、サンプルのパラフィンブロックを固定するために、ワックスベースを形成します。 </li><li>適切な形状と大きさにパラフィンブロックをトリム、および平らなへらにいくつかのワックス片を配置します。ワックスが溶融するまでアルコールバーナーを使用して、ワックス片を加熱し、そのブロックを接着するためにセクション2.1.1中のワックスベースに溶融ワックスを配置します。ミクロトームでそれを固定します。 </li><li>ミクロトーム上に新しいブレードを配置し、ミクロトームで切片を容易にするために、5度の角度を調整します。 </li><li>以前に11説明したように、薄いスライス（10ミクロン）への試料のパラフィンブロックをカット。 </li> &lt;/ OL&gt; </li><li>ハイブリッドカット切片法<ol><li>カミソリの刃を使用して、適切なサイズに上部の台形面でカラムにステップ1.6.4からのサンプルパラフィンブロックをトリム。 </li><li>クライオスタットステージの中央にいくつかの最適切削温度化合物（OCT）を追加します。クライオスタットステージにパラフィンブロックを取り付け、その後すぐに目的の位置に組織ブロックを向けます。 </li><li>クライオスタット室にパラフィンブロック/ステージを転送します。 10月は10分間-42℃で急速凍結バーに固化することができます。 10月（ 図2C）の凝固時にブロックを移動しないでください。 </li><li>クライオスタットアダプタと室内の温度はクライオスタットアダプタにパラフィンブロック/ステージを取り付ける前に、-20℃〜-16℃のそれぞれに冷却できるようにします。厚さ10μmの節組織。 </li><li>鉗子で組織切片を選択してください。ポリで800μlのDEPC処理水のセクションをフロート- L -リジンCOAテッドのスライドと42℃のホットプレート上にスライドを転送します。 </li><li>セクションでは、42℃でのDEPC処理水に平坦化することができるようにします。エッジから水を切るためにろ紙を使用してください。 </li><li>一晩42℃のホットプレート上にスライドを配置することによって、スライド上のマウント組織。 </li></ol></li></ol> 3.組織染色<ol><li>脱パラフィン<ol><li>ホットプレートからスライドを収集し、染色ラックに配置します。ヒュームフードで染色ジャーに150ミリリットルのキシレンを添加し、5分間キシレンにラックを浸します。 </li></ol></li><li>水分補給<ol><li> DEPC処理水にエタノール溶液の異なる濃度（100％、95％、70％、50％、30％）を調製し、それぞれ、異なる染色ジャーに溶液150mlを充填します。 </li><li>エタノール濃度は、室温で3分間、各工程を減少させる一連のサンプルを再水和します。 Dを含む別の瓶に1瓶をラック染色スライドを転送ifferentエタノール濃度：100％エタノール、95％エタノール、70％エタノール、50％エタノール、30％エタノール。 </li><li>再水和した後、3分間のddH 2 Oで標本を浸します。 </li></ol></li><li>ヘマトキシリン染色<ol><li> 1.5分間ヘマトキシリン溶液中で組織スライドを浸漬することによって染色組織サンプル。 </li><li>その後数秒間12 N塩酸（HCl）の2滴、とのddH 2 Oで簡単に洗う- 1を含む2 OはのddHで簡単にすすぎます</li></ol></li><li>脱水<ol><li>室温で3分間、エタノール濃度を増加させる一連のサンプルを脱水：30％エタノール、50％エタノール、70％エタノール、95％エタノール、100％エタノール。 5分間のヒュームフードにキシレンで標本をクリアします。 </li></ol></li><li>取り付け<ol><li>スライド上に適切にキシレン系封入剤の600μLをドロップします。慎重に試料の上にカバースリップを配置。良い品質の画像を取得するために形成する気泡を避けてください。 </li><li>スライドを一晩乾燥を放送することを可能にします。翌日、顕微鏡下で試料を観察します。 注：画像は標本の大きさに応じて400倍の倍率25Xで捕捉しました。 </li></ol></li></ol> in situハイブリダイゼーション4 <ol><li>プローブ合成<ol><li>クローン胡蝶蘭のアフロディーテアクチン遺伝子の特定のコード配列プライマーを用いて、5&#39;-GGCAGAGTATGATGAATCTGGTCC-3 &#39;と5&#39;AGGACAGAAGTTCGGCTGGC -3&#39;（242 bpのPCRアンプリコンを得るために）、およびサイクリン; 1遺伝子の特定のコード配列プライマーを用いて、5&#39;-TCGTAGCAAGGTTGCTTGTG-3 &#39;そして、5&#39;ATGAGCATGGCGCTAATACC-3 &#39;（327 bpのPCRアンプリコンを得るために）12が記載されているように。 </li><li>製造業者のプロトコルに従ってベクター（ 例えば、をpGEMT）に特定のコード配列を連結します。 </li><li> （DIG）ジゴキシゲニン生成し、製造元の指示に従って、SP6 / T7 DIG RNAラベリングキットを使用して、センスおよびアンチセンスプローブを標識しました秒。 </li></ol></li><li> in situハイブリダイゼーション<ol><li>ハイブリッドカット法を用いて生成第2および第3腋芽の組織切片（厚さ10μm）を切断し、コーティングされたスライド上にスライスをマウントします。 </li><li>キシレンで脱パラフィン組織切片は、（3.1.1を参照）、エタノールの濃度（3.2.2を参照）減少で再水和し、30分間37℃での2mg / mlのプロテ​​イナーゼKで消化します。 </li><li>プロトコルに従ってin situハイブリダイゼーションを行いますが、以前に59°Cおよびサイクリンのための60°Cのようなアクチンのためのハイブリダイゼーション温度で、 すなわち 、いくつかの変更を加えて11,13を説明; 1 DIG標識RNAプローブNG 40とスライドをハイブリダイズします。 </li><li> 11に記載されるように、ハイブリダイゼーションシグナルを検出するために、ニトロブルーテトラゾリウム/ 5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルホスフェート（NBT / BCIP）溶液を使用。 </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cryosectioning+tissues.">Cryosectioning tissues.</a> Cold Spring Harb Protoc. 3, 1-2 (2008).</li><li>Knox, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Freeze-sectioning+of+plant+tissues.">Freeze-sectioning of plant tissues.</a> Stain Technol. 45, 265-272 (1970).</li><li>Ruan, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+cryosection+method+for+polyethylene+glycol+hydrogels+used+in+tissue+engineering.">An improved cryosection method for polyethylene glycol hydrogels used in tissue engineering.</a> Tissue Eng.: Part C Methods. 19, 794-801 (2013).</li><li>Prychid, C. J., Rudall, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+oxalate+crystals+in+monocotyledons:+A+review+of+their+structure+and+systematics.">Calcium oxalate crystals in monocotyledons: A review of their structure and systematics.</a> Ann Bot. 84, 725-739 (1999).</li><li>Prychid, C. J., Rudall, P. J., Gregory, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systematics+and+biology+of+silica+bodies+in+monocotyledons.">Systematics and biology of silica bodies in monocotyledons.</a> Bot. Rev. 69 (4), 377-440 (2004).</li><li>Arnott, H. J., Pautard, F. G. E., Steinfink, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+of+calcium+oxalate+monohydrate.">Structure of calcium oxalate monohydrate.</a> Nature. 208, 1197-1198 (1965).</li><li>Mitani, N., Yamaji, N., Ma, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+maize+silicon+influx+transporters.">Identification of maize silicon influx transporters.</a> Plant Cell Physiol. 50, 5-12 (2009).</li><li>Hayasaka, T., Fujii, H., Ishiguro, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+silicon+in+preventing+appressorial+penetration+by+the+rice+blast+fungus.">The role of silicon in preventing appressorial penetration by the rice blast fungus.</a> Phytopathology. 98, 1038-1044 (2008).</li><li>Ma, J. F., Yamaji, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicon+uptake+and+accumulation+in+higher+plants.">Silicon uptake and accumulation in higher plants.</a> Trends Plant Sci. 11, 392-397 (2006).</li><li>Chen, W., Tang, C., YL, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ploidy+doubling+by+in+vitro+culture+of+excised+protocorms+or+protocorm-like+bodies+in+Phalaenopsis+species.">Ploidy doubling by in vitro culture of excised protocorms or protocorm-like bodies in Phalaenopsis species.</a> Plant Cell Tiss Org. 98, 229-239 (2009).</li><li>Javelle, M., Marco, C. F., Timmermans, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+Situ+Hybridization+for+the+Precise+Localization+of+Transcripts+in+Plants.">In Situ Hybridization for the Precise Localization of Transcripts in Plants.</a> J. Vis. Exp. (57), e3328 (2011).</li><li>Park, D. J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PCR+Protocols.">PCR Protocols.</a> Methods in Molecular Biology. 687, (2011).</li><li>Lin, H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome-wide+annotation,+expression+profiling,+and+protein+interaction+studies+of+the+core+cell-cycle+genes+in+Phalaenopsis+aphrodite.">Genome-wide annotation, expression profiling, and protein interaction studies of the core cell-cycle genes in Phalaenopsis aphrodite.</a> Plant Mol Biol. 84, 203-226 (2014).</li><li>Lee, Y. -. I., Yeung, E. C., Lee, N., Chung, M. -. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryology+of+Phalaenopsis+amabilis+var.+formosa:+embryo+development.">Embryology of Phalaenopsis amabilis var. formosa: embryo development.</a> Bot Stud. 49, 139-146 (2008).</li><li>Endo, M., Ikusima, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diurnal+rhythm+and+characteristics+of+photosynthesis+and+respiration+in+the+leaf+and+root+of+a+Phalaenopsis+plant.">Diurnal rhythm and characteristics of photosynthesis and respiration in the leaf and root of a Phalaenopsis plant.</a> Plant Cell Physiol. 30, 43-47 (1989).</li><li>Guo, W. J., Lee, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+leaf+and+plant+age,+and+day/night+temperature+on+net+CO2+uptake+in+Phalaenopsis+amabilis+var.+formosa.">Effect of leaf and plant age, and day/night temperature on net CO2 uptake in Phalaenopsis amabilis var. formosa.</a> J. Amer. Soc. Hort. Sci. 131, 320-326 (2006).</li><li>Lewin, J., Reimann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicon+and+plant+growth.">Silicon and plant growth.</a> Ann. Rev. of Plant Physiol. 20, 289-304 (1969).</li><li>Kaufman, P. B., Simpson, T. L., Valcani, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silica+in+shoots+of+higher+plants.">Silica in shoots of higher plants.</a> Silicon and siliceous structures in biological systems. , 409-449 (1981).</li><li>Lundgren, M. R., Osborne, C. P., Christin, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deconstructing+Kranz+anatomy+to+understand+C4+evolution.">Deconstructing Kranz anatomy to understand C4 evolution.</a> J Exp Bot. 65, 3357-3369 (2014).</li><li>Liu, W. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+and+transcriptional+dynamics+of+maize+embryonic+leaves+during+seed+germination.">Anatomical and transcriptional dynamics of maize embryonic leaves during seed germination.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 3979-3984 (2013).</li><li>Driscoll, S. P., Prins, A., Olmos, E., Kunert, K. J., Foyer, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Specification+of+adaxial+and+abaxial+stomata,+epidermal+structure+and+photosynthesis+to+CO2+enrichment+in+maize+leaves.">Specification of adaxial and abaxial stomata, epidermal structure and photosynthesis to CO2 enrichment in maize leaves.</a> J Exp Bot. 57, 381-390 (2006).</li><li>Karlgren, A., Carlsson, J., Gyllenstrand, N., Lagercrantz, U., Sundstr&#246;m, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-radioactive+in+situ+Hybridization+Protocol+Applicable+for+Norway+Spruce+and+a+Range+of+Plant+Species.">Non-radioactive in situ Hybridization Protocol Applicable for Norway Spruce and a Range of Plant Species.</a> J. Vis. Exp. (26), (2009).</li><li>Hejatko, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+hybridization+technique+for+mRNA+detection+in+whole+mount+Arabidopsis+samples.">In situ hybridization technique for mRNA detection in whole mount Arabidopsis samples.</a> Nat Protoc. 1, 1939-1946 (2006).</li><li>Javelle, M., Timmermans, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+localization+of+small+RNAs+in+plants+by+using+LNA+probes.">In situ localization of small RNAs in plants by using LNA probes.</a> Nat Protoc. 7, 533-541 (2012).</li><li>Drea, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+analysis+of+gene+expression+in+plants.">In situ analysis of gene expression in plants.</a> Methods Mol Biol. 513, 229-242 (2009).</li><li>Drea, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+streamlined+method+for+systematic,+high+resolution+in+situ+analysis+of+mRNA+distribution+in+plants.">A streamlined method for systematic, high resolution in situ analysis of mRNA distribution in plants.</a> Plant Methods. 1, 8 (2005).</li></ol>

No conflicts of interest declared.

植物細胞は、植物組織切片中の組織の裂けの問題を引き起こす堅い細胞壁、厳しい繊維、結晶、及び高い水分含量を有します。パラフィン系切片が頻繁に植物組織のために使用されるにもかかわらず、内因性の結晶を多くの場合（ 図1）切片中に植物組織を切ります。そのため、植物細胞内で本質的に高い水分含有量の、クライオスタットベースの切片は、多くの場合、壊れた細胞を引き起こし、組織切片を割りました。 本研究では、ハイブリッド・カットという名前の組み合わせ、パラフィン包埋し、凍結切片プロトコルが開発され、良質の組織切片を得ました。このプロトコルは、パラフィン包埋を導入することにより、高い水分含有量に関連した問題を解決し、（ 図3）を切片中に低温下でパラフィンワックスを硬化させることにより引き裂き影響を低減します。したがって、この修正されたプロトコルのいずれかパラフィン系切断面上有利です。寧または植物組織の完全性を維持するための凍結切片。 この原稿は、ハイブリッドカット法は、結晶（ 図 3-4）の高レベルを含むなど腋芽、種子、およびPLB、などの胡蝶蘭の多くの組織において組織の完全性を保持することを示しています。また、このプロトコルは、このような高シリカ（ 図5-6）が含まれている生殖器官や米、トウモロコシの葉、小麦のように穀物に適しています。おそらく、このプロトコルは、高い繊維を含む植物の木質に適用することができます。 一般的には、固定組織は徹底的にハイブリッドカットのために非常に重要です。私たちは、ホルムアルデヒド-アルコール-酸性酸（FAA）固定液は、しかし、PFAは、RNAの完全性を維持する中で、FAAより良い作品PFAは等軸方向に芽、根、などのいくつかの反抗組織の組織の完全性を維持するよりも優れていることがわかりました。したがって、PFAは、修正することをお勧めしますin situハイブリダイゼーション（ISH）作業のためのサンプル。ここで説明するプロトコルは、RNA ISH実験のために設計されています。したがって、すべての試薬は、DEPC処理してRNアーゼの混入を排除することによって、RNAの分解を避けるために調製しました。ハイブリッドカット部は解剖学的な研究のためであれば、定期的に逆浸透（RO）水とその派生バッファまたは試薬が許容されます。 3mm未満に試料サイズと厚さを減らすこと浸潤のために有用です。また、脱水、浸透のための浸漬時間の増加は、硬い質感組織のために必要です。このプロトコルの制限が不十分な固定、脱水、および試料の浸透により引き起こされる問題に起因する可能性があります。したがって、各ステップの処理時間の調整は、良好な品質のパラフィンブロックを生成するために重要です。通常、硬い組織は、より柔らかい組織よりも長い処理時間を必要とします。 加えて、我々はハイブリッドカットは、組み合わせのwiで正常に働いていたことを示しました第ISHは、選択された転写物（ 図7）の空間分布を提供します。要約すると、このプロトコルは、植物解剖学の研究に有用であり、選択された遺伝子の組織特異的RNAのマップを提供します。加えて、このようなターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼdUTPニック末端標識（TUNEL）アッセイ、蛍光in situハイブリダイゼーション（FISH）、および免疫染色法などの他の分子の研究に適用することができます。結論として、この改良された組織切片プロトコルは有用と植物群落の研究者に役立つの両方です。

パラフィン系セクショニング方法は、解剖学的研究のために広く使用される技術です。無傷の組織の解剖学的構造の保存は形態学的および生物学的研究のために重要です。パラフィン包埋の細胞及び組織形態学を保持するためのパラフィン包埋切片の技術が有利です。また、パラフィンブロックは、長期間にわたって都合よく保存することができます。しかしながら、パラフィン包埋切片は、細胞内の結晶を含有する植物組織には適していません。細胞内の結晶は、多くの場合、切片中にパラフィンリボンや損傷組織の整合性を引き裂きます。 パラフィン切片とは異なり、凍結切片は比較的高速であり、セクションは、固定、シリアル脱水または培地浸透1を埋め込むことなく得ることができます。凍結切片は、免疫組織化学、in-situでのハイブリダイゼーション、および酵素組織化学などの多くのアプリケーションと互換性があります。凍結切片の他の利点はこの方法は、このような高温や化学処理などの潜在的な変性過程を経由しないということなので、細胞分子は、よく組織切片2内に保存されています。凍結切片は、一般に、パラフィン系、動物組織中の研究のために切片よりも好ましいです。温度を凍結することは、時にはセクションの整合性の品質に影響を与える氷結晶の形成を引き起こすためしかし、凍結切片は、植物の最初の選択肢ではありません。スクロース溶液、ポリエチレングリコール（PEG）、またはグリセロール3などの浸透圧調節は、凍結条件下での結晶の氷の形成を減少させることが報告されているが、改善が最適未満です。 異なる環境に適応するために、異なる植物は、多くの場合、別個の組織の質感および植物細胞は、剛性の細胞壁、タフな繊維、および結晶4,5を形成するために進化してきています。例えば、不溶性シュウ酸カルシウム結晶とシリカ体はではかなり一般的です植物6。ケイ酸体/結晶は、植物構造を維持するのを助ける直立、および穀類植物7-9に病気や害虫を防ぐことが報告されています。 鉢植えの蘭とカット花蘭の市場が繁栄され、それが成長産業である。 胡蝶蘭のアフロディーテ （コチョウラン）は台湾で最も重要な輸出観賞用植物の一つです。重要な努力が胡蝶蘭で開花プロセスの形態学的および生理学的変化を理解するために行われてきました。 胡蝶蘭の花のスパイクは、葉の基部の腋芽から開始されます。クールな周囲温度（約1ヶ月半）の期間の後、腋芽は休眠を破る、拡大、若い花のスパイクに発展するために葉の基部から突出しています。生理学的な、細胞、およびスパイク開始の分子プロセスを理解するために、visuaに強固な解剖学的な技術の開発が不可欠ですタイムリーに平安大町組織またはマーカー。しかし、蘭の組織におけるユビキタス結晶の存在は、特に腋芽に、解剖学的作業を困難にしています。 ここでは、これまで技術的に困難であると見なされてきた手に負えない植物組織のセクションの整合性を改善しようとしました。ここでは、ハイブリッドカットという名前の改良されたプロトコルを示します。これは、クライオスタットを用いて実行されるパラフィン系切片法です。パラフィン包埋は、植物組織における高い水分含有量を解決します。パラフィンブロックを低温で硬化切片、問題を引き裂く結晶が減少し、大幅な組織の完全性を改善します。このプロトコルは、かなり扱いにくい植物試料のための組織の整合性を向上させます。

<table><tbody><tr><td>Embedding Center model EC780-1</td><td>CSA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microtome model RM2255</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cryostat model CM 1950</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axio Scope A1 microscope&amp;nbsp;</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Murashige &amp;amp; Skoog medium including vitamins</td><td>Duchefa Biochemia</td><td>M0222.0050</td><td></td></tr><tr><td>RNase free surface decontaminant</td><td>Apex</td><td>10-228</td><td></td></tr><tr><td>Diethyl pyrocarbonate (DEPC)</td><td>Bio Basic Inc.&amp;nbsp;</td><td>D801154</td><td></td></tr><tr><td>Sodium chloride (NaCl)</td><td>MDBio, Inc.</td><td>101-7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Potassium chloride, crystal (KCl)</td><td>J.T. Baker</td><td>7447-40-7</td><td></td></tr><tr><td>Sodium phosphate dibasic (Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7558-79-4</td><td></td></tr><tr><td>Potassium phosphate monobasic (KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7778-77-0</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde (PFA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>16005</td><td></td></tr><tr><td>Sodium hydroxide (NaOH)</td><td>Showa</td><td>19430160</td><td></td></tr><tr><td>Sulfuric acid (H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7664-93-9</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehyde solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>111-30-8</td><td></td></tr><tr><td>Polyoxyethylene 20 sorbitan monolaurate (Tween 20)</td><td>J.T. Baker</td><td>9005-64-5</td><td></td></tr><tr><td>Octyl Phenol Ethoxylate (Triton X100)</td><td>J.T. Baker</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>Glass scintillation vials</td><td>Newastar</td><td>DG60805-00020</td><td></td></tr><tr><td>Desiccator vacuum</td><td>Violet Bioscience Inc.</td><td>TS-402030</td><td></td></tr><tr><td>Rotary vane pump RZ2.5</td><td>Vacuubrand</td><td>36149406</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>J.T. Baker</td><td>64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>Sub-X&amp;nbsp;</td><td>Leica Surgipath</td><td>3803670</td><td>Xylene substitute</td></tr><tr><td>Paraplast Plus&amp;nbsp;</td><td>Leica Surgipath</td><td>39602004</td><td>Tissue embedding paraffin</td></tr><tr><td>SUPERFROST micro slide glass</td><td>Matsunami</td><td>S7441</td><td></td></tr><tr><td>FSC 22 Clear&amp;nbsp;</td><td>Leica Surgipath</td><td>3801480</td><td>Optimal Cutting Temperature compound (OCT)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Xylenes, Purified</td><td>Leica Surgipath</td><td>3803665</td><td></td></tr><tr><td>Hematoxylin</td><td>Merck</td><td>HX305311</td><td></td></tr><tr><td>Hydrochloric acid (HCl)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Micromount</td><td>Leica Surgipath</td><td>3801731</td><td>Mounting medium</td></tr><tr><td>pGEM T-easy vector</td><td>Promega</td><td>A1360</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Roche</td><td>3115879001</td><td></td></tr><tr><td>SP6/T7 DIG RNA Labeling Kit</td><td>Roche</td><td>11175025910</td><td></td></tr><tr><td>NBT/BCIP stock solution</td><td>Roche</td><td>11681451001</td><td></td></tr></tbody></table>

hybrid-cut: an improved sectioning method for recalcitrant plant tissue samples

植物の部分の整合性を維持することは、セルラー、組織、あるいは臓器レベルでの詳細な解剖学的構造を研究するために不可欠です。しかし、いくつかの植物細胞は、硬い細胞壁、強靭な繊維および結晶を有します （シュウ酸カルシウム、シリカ、 等 ）、及び高い含水量は、多くの場合、植物組織切片中の組織の完全性を破壊すること。 本研究では、単純なハイブリッドカット組織切片法を確立します。このプロトコルは、パラフィン系切片法を修正し、異なる植物からの組織切片の完全性を改善します。植物組織は、-16℃の低温槽に切片の前にパラフィンに包埋しました。パラフィンブロック、減少引き裂きや引っかき傷、および大幅に改善組織の完全性は、低温で硬化セクショニング。このプロトコルは、成功したシュウ酸カルシウムが豊富な胡蝶蘭の組織ならびに生殖orgaがなどの反抗組織に適用し、NS、米、トウモロコシ、小麦の葉。また、ハイブリッドカットからの組織切片の高品質は、目的の遺伝子の空間的発現パターンを提供するために、in situハイブリダイゼーション（ISH） にと組み合わせて使用することができます。結論として、このプロトコルは、高結晶またはシリカ含有量を含む応性植物組織に特に有用です。良質の組織切片は、形態学的および他の生物学的研究を有効にします。

ハイブリッドカットは、組織切片の完全性を向上させます 生殖花の構造の解剖学を理解することは蘭花開始の基本的なメカニズムを調査するために重要です。しかし、 胡蝶蘭における細胞内のシュウ酸カルシウム結晶の蓄積は、このような研究に困難な作業になります。切削プロセス（ 図1）中に結晶によって引き起こさ裂けに関連する問題を回避するために、我々はハイブリッドカットというシステムを開発しました。このプロトコルは、従来のパラフィン包埋し、凍結切片技術を兼ね備えています。彼らは組織の剛性と高い結晶含有量のために悪名高いですので、我々は最初の胡蝶蘭の腋芽にハイブリッドカットをテストしました。腋芽組織を4％PFA（プロトコル、ステップ1.3を参照）で修正されました。シリアルエタノール脱水し、パラフィンワックス私の後nfiltration、腋芽をパラフィンブロックに包埋しました。ブロックは、（ 図2A）セクショニング前に適当な大きさにトリミングしました。 、OCTの少量次いでクライオスタット段階（ 図2B）の中心に適用しました。パラフィンブロックは、その後、10月を介してステージに貼り付けました。ステージは、（ 図2C）をセクショニングする前に、OCTの完全な凝固を可能にするために10分間クライオスタット中でインキュベートした後、凍結切片を-16で行いました °C室（ 図2D）。 比較として、 胡蝶蘭の腋芽を含むパラフィンブロックは、通常のミクロトーム切片を行いました。 図1Aに示すように、パラフィンリボンの深刻な引き裂きをミクロトーム切片後に観察されました。組織の完全性と細胞構造は、また、（ 図1B）妥協しました。ハイブリッドカット、一方で、保持構造的完全性（ 図3B）で製造無傷組織切片（ 図3A）。 P.の様々な組織にハイブリッドカットの応用アフロディーテ さらにハイブリッドカットの従順をテストするために、我々は胡蝶蘭の異なる組織をテストしました。原因硬化種皮の良い組織の完全性と種子のセクションを得ることがしばしば困難です。このプロトコルを使用して、種子の詳細な構造は、（ 図4A）切片後に保存しました。 図4A、プロテインボディー、共通ストレージ製品14に示すように、明確に識別することができます。ハイブリッドカットも正常に働いており、1ヶ月齢のプロトコームのシュート頂端分裂組織（種子から発芽した構造）（ 図4B）の詳細な構造を示し、プロトコーム様体（のPLB、 図4C）。細胞内の結晶はPLBのセクションで観察された。 胡蝶蘭が厚いとジューシーな葉を持っており、彼らはベンケイソウ型有機酸代謝（CAM）光合成15を -typeを行います。葉身の横断面は、木部と師部（ 図4D）を含む大きな葉肉細胞と維管束を示しました。いくつかの気孔開口部は昼間（ 図4D）の間に背軸葉の表面上に観察されました。実際には、CAM植物は炭素利得を最大化するが、同時に乾燥条件15,16の下で夜に、そのstomatesを開くことによって、水の損失を最小限にするために進化しました。 Pの根端分裂組織アフロディーテは、 図4Eに示されています。根端細胞は非常によく（ 図4E）を切片後に保存された結晶、かなりの数が含まれているように見えました。若い花のスパイクの縦のセクションでは、インフォーマント！を提供しました若い花のprimordials（ 図4F）のアーキテクチャに関するイオン。また、萼片、花弁、唇弁、および花粉塊は明らかに、この5ミリメートルの花のつぼみ（ 図4G）に分化を完了した若い花芽の縦断面から同定することができました。結晶は若い花芽の萼片に蓄積されたことに注意してください。要するに、このプロトコルは、組織の完全性を維持するために、一貫して動作し、解剖学的および可能な細胞の研究を可能にする、完全な形態を生成します。 ハイブリッドカットは穀物における組織の完全性を保持します また、ハイブリッドカット高シリカ含有量17,18が含まれているような米、小麦、トウモロコシなどの穀物でテスト。 図5に示すように、米、小麦、トウモロコシの葉の横断面の組織の完全性が大幅にハイによって改善されましたブリッドカット方法を。木部、師部、葉肉細胞、stomates、および水の損失を回避するために、葉身のローリング制御bulliform細胞が明らかにイネの葉の切片から同定されました。クランツの解剖学、葉肉細胞、およびトウモロコシの葉19,20の維管束が明確に同定されました。トウモロコシの葉の向軸と背軸両側のstomatesの高密度（ 図5）を見つけるために興味深いでした。トウモロコシにおける0.7の向軸と背軸気孔の割合は、以前に21に報告されています。また、このプロトコルはまた、米、小麦、トウモロコシ（ 図6）からの小穂の詳細な細胞形態を提供するために、正常に働いていました。小穂は、豊富なシリカ9を含むことが知られています。通常、それは組織切片を行うことが困難になります。 in situハイブリダイゼーション その場ハイブリダイゼーション（ISH）は、組織レベル11での遺伝子発現パターンを局在化するために開発されました、 22-25。また、ISHは、細胞を提供することができ、多細胞生物におけるmRNA分布のいくつかのケースでは、サブセルラー、解像度26。 ISHの間に、RNAおよび組織の完全性は、選択された転写物についての信頼性の高い空間情報を取得することが不可欠です。我々はハイブリッドカットプロトコルを使用してISHをテストしたアクチン遺伝子 （PATC157348）プライマー5&#39;-GGCAGAGTATGATGAATCTGGTCC-3を用いてクローニング&#39;と5&#39;- AGGACAGAAGTTCGGCTGGC -3」された242 bpのPCRアンプリコンを得るために、 サイクリンB1：。。特定の1（PATC146999）遺伝子コード配列プライマーを用いて、5&#39;-TCGTAGCAAGGTTGCTTGTG-3 &#39;と5&#39;- ATGAGCATGGCGCTAATACC-3&#39; 327 bpのPCRアンプリコンを取得します。 ISH、 アクチンおよびサイクリンB1の後：1の遺伝子発現 若い成熟した腋芽でモニターしました 強いシグナルが3 回目の腋芽に検出して（ 図7）。両方の遺伝子は、 第2および第3の腋芽の分裂組織細胞で発現させました。これらの結果は、ハイブリッドカットが良い解剖学的構造を保持し、空間的な遺伝子発現パターンを提供することを実証しました。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig1.jpg" /> 図1： 従来のパラフィン切片は、組織の重度のティアリングが発生 胡蝶蘭の腋芽を含むパラフィンブロックは、通常のミクロトーム切片を行いました。パラフィンリボンの重度の引き裂きは、伝統的なミクロトーム切片後に観察された（A） </stronグラム&gt;。組織の完全性と細胞構造はまた、（B）損なわれました。矢印は、組織切片の深刻な引き裂きを示しています。アローヘッドは、水晶体を示しています。スケールバーは100μm。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig2.jpg" /> 図2： ハイブリッドカットセクショニング法腋芽組織は、PFAで固定し、組織をパラフィンワックスを浸透させ、脱水し、パラフィンブロックに包埋しました。パラフィンブロックを適切な大きさ（A）にトリミングしました。最適切削温度化合物（OCT）は、クライオスタット段階（B）の中心に適用しました。パラフィンブロックをクライオスタットステージに10月に取り付けました。低温下では、パラフィンブロック<html> 10月（C）を介してクライオスタットステージに貼り付けました。組織切片を、-16℃の（D）にクライオスタットチャンバ内で切断しました。スケールバーは0.5センチメートル（A）、および1センチメートル（BD）を表す。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig3.jpg" /> 図 3： ハイブリッドカットは、セクションの整合性が向上しました 胡蝶蘭の腋芽を含むパラフィンブロックは、優れた組織の完全性（B）を持つセクションを（A）を切片ハイブリッドカットを施し、ハイブリッドカット法を作製しました。矢じりは、腋芽組織に埋め込まれた内因性の結晶体を示しています。スケールバーは100μm。目標確認= &quot;_空白&quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig4.jpg" /> 図4： 胡蝶 蘭 の様々な組織切片にハイブリッドカットの適用さまざまな蘭。 組織は、成熟期（A）中のラン種、プロトコームの縦断面図（B）、プロトコーム様体（PLB）の縦断面図（C）の横断面の長手方向断面として、ハイブリッドカット法を用いて切断しました葉身（D）、根（E）の縦断面図、若い花のスパイク（F）、および若い花芽（G）の縦断面の縦断面図。組織切片をヘマトキシリンにより染色しました。 SC、種皮。 PB、タンパク体; M、分裂組織; MP、母PLB。 DP、娘PLB。広告、向軸葉の表面; Abを、背軸葉の表面;セント、気孔; MC、葉肉細胞; VB、維管束。 RC、ルートキャップ。 FB、花芽。 SE、がく片。 PE、花びら。ラ、唇弁。ポー、花粉塊。 Roを、小嘴。カルシウム、カルス。矢印は結晶を示しています。スケールバーは20μmで（AE）及び200μmの（FG）を表す。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig5.jpg" /> 図5：ハイブリッドカットは、いくつかの穀物で葉組織の整合性を保持し 、従来のパラフィン法（左側のパネル）と、この研究（右側のパネル）で開発されたハイブリッドカット技術を使用して、葉組織の比較。画像は米、小麦、トウモロコシの葉の横断面を示しています。 MC、葉肉細胞; Phは、師部;セント、気孔; BC、BU<html> lliformセル。矢印は、組織切片の引き裂きを示しています。矢頭は、シリカ体を示しています。青い破線の円は、C4トウモロコシにおけるクランツの解剖学を示しています。スケールは20μmでバー。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図6" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig6.jpg" /> 図6： ハイブリッドカットは、いくつかの穀物に小穂の組織の完全性を保持し 、従来のパラフィンおよびハイブリッドカットの方法の間の小穂のセクションの組織の整合性の比較。矢印は、組織切片の引き裂きを示しています。矢頭は、シリカ体を示しています。スケールバーは20μm（米）、および200ミクロン（小麦、トウモロコシ）。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig6large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 1 &quot;&gt;：&quot;キープtogether.within-ページ= FO &quot;ENT <img alt="図7" src="/files/ftp_upload/54754/54754fig7.jpg" /> 図7： アクチン および サイクリン の in situハイブリダイゼーション ; 2 番目の腋芽と3 番目の腋芽の胡蝶 蘭 の腋窩芽で 1 発現パターンの組織切片は、ハイブリッドカット法を用いて調製しました。 アクチンおよびサイクリンの40 ngの合計; 1 DIG標識プローブは、ハイブリダイゼーションのために使用しました。センスプローブを陰性対照として使用しました。矢印は腋芽の生殖分裂組織を示しています。スケールは100μmのバー。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54754/54754fig7large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

Watch this Scientific Journal Video about Hybrid-Cut: An Improved Sectioning Method for Recalcitrant Plant Tissue Samples at JoVE.com

Hybrid-Cut: An Improved Sectioning Method for Recalcitrant Plant Tissue Samples

This protocol describes a simple Hybrid-Cut tissue sectioning method that is useful for recalcitrant plant tissues. Good quality tissue sections enable anatomical studies and other biological studies including in situ hybridization (ISH).

ハイブリッドカット：手に負えない植物組織試料のための改善されたセクショニング方法

Maintaining plant section integrity is essential for studying detailed anatomical structures at the cellular, tissue, or even organ level. However, some ...

hybrid-cut-an-improved-sectioning-method-for-recalcitrant-plant

Research

JoVE Journal

Biology

18.8K ビュー.  Academia Sinica. This protocol describes a simple Hybrid-Cut tissue sectioning method that is useful for recalcitrant plant tissues. Good quality tissue sections enable anatomical studies and other biological studies including in situ hybridization (ISH).

ビデオ: Hybrid-Cut: An Improved Sectioning Method for Recalcitrant Plant Tissue Samples

Thin Sectioning of Slice Preparations for Immunohistochemistry

Many investigations in neuroscience, as well as other disciplines, involve studying small, yet macroscopic pieces or sections of tissue that have been preserved, freshly removed, or excised but kept viable, as in slice preparations of brain tissue.  Subsequent microscopic studies of this material can be challenging, as the tissue samples may be difficult to handle.  Demonstrated here is a method for obtaining thin cryostat sections of tissue with a thickness that may range from 0.2-5.0 mm.  We routinely cut 400 micron thick Vibratome brain slices serially into 5-10 micron coronal cryostat sections.  The slices are typically first used for electrophysiology experiments and then require microscopic analysis of the cytoarchitecture of the region from which the recordings were observed.  We have constructed a simple device that allows controlled and reproducible preparation and positioning of the tissue slice.  This device consists of a cylinder 5 cm in length with a diameter of 1.2 cm, which serves as a freezing stage for the slice.  A ring snugly slides over the cylinder providing walls around the slice allowing the tissue to be immersed in freezing compound (e.g., OCT).  This is then quickly frozen with crushed dry ice and the resulting  wafer  can be position easily for cryostat sectioning.  Thin sections can be thaw-mounted onto coated slides to allow further studies to be performed, such as various staining methods, in situ hybridization, or immunohistochemistry, as demonstrated here.

The present method allows reproducible cryostat sectioning of small, difficult-to-manage, tissue pieces, such as biopsies and brain slices. We utilize a simple aluminum freezing stage to facilitate handling of tissue and a standard cryostat to routinely produce 5-10 micron serial sections from 400 micron thick brain slices.

免疫組織化学のためのスライス標本の薄いセクショニング

Many investigations in neuroscience, as well as other disciplines, involve studying small, yet macroscopic pieces or sections of tissue that have been ...

生物学

Non-radioactive in situ Hybridization Protocol Applicable for Norway Spruce and a Range of Plant Species

The high-throughput expression analysis technologies available today give scientists an overflow of expression profiles but their resolution in terms of tissue specific expression is limited because of problems in dissecting individual tissues. Expression data needs to be confirmed and complemented with expression patterns using e.g. in situ hybridization, a technique used to localize cell specific mRNA expression. The in situ hybridization method is laborious, time-consuming and often requires extensive optimization depending on species and tissue. In situ experiments are relatively more difficult to perform in woody species such as the conifer Norway spruce (Picea abies). Here we present a modified DIG in situ hybridization protocol, which is fast and applicable on a wide range of plant species including P. abies. With just a few adjustments, including altered RNase treatment and proteinase K concentration, we could use the protocol to study tissue specific expression of homologous genes in male reproductive organs of one gymnosperm and two angiosperm species; P. abies, Arabidopsis thaliana and Brassica napus. The protocol worked equally well for the species and genes studied. AtAP3 and BnAP3 were observed in second and third whorl floral organs in A. thaliana and B. napus and DAL13 in microsporophylls of male cones from P. abies. For P. abies the proteinase K concentration, used to permeablize the tissues, had to be increased to 3 g/ml instead of 1 g/ml, possibly due to more compact tissues and higher levels of phenolics and polysaccharides. For all species the RNase treatment was removed due to reduced signal strength without a corresponding increase in specificity. By comparing tissue specific expression patterns of homologous genes from both flowering plants and a coniferous tree we demonstrate that the DIG in situ protocol presented here, with only minute adjustments, can be applied to a wide range of plant species. Hence, the protocol avoids both extensive species specific optimization and the laborious use of radioactively labeled probes in favor of DIG labeled probes. We have chosen to illustrate the technically demanding steps of the protocol in our film.
Anna Karlgren and Jenny Carlsson contributed equally to this study.
Corresponding authors: Anna Karlgren at Anna.Karlgren@ebc.uu.se and Jens F. Sundstr&#246;m at Jens.Sundstrom@vbsg.slu.se

Non-radioactive in situ Hybridization Protocol Applicable for Norway Spruce and a Range of Plant Species

We describe a modified DIG in situ hybridization protocol, which is fast and applicable on a wide range of plant species including Norway spruce. With just a few adjustments, including altered RNase treatment and proteinase K concentration, the protocol may be used in studies of different tissues and species.

非放射性その場で</emノルウェースプルースと植物種の範囲に適用>ハイブリダイゼーションプロトコール

The high-throughput expression analysis technologies available today give scientists an overflow of expression profiles but their resolution in terms of ...

Multimodal Hierarchical Imaging of Serial Sections for Finding Specific Cellular Targets within Large Volumes

Targeting specific cells at ultrastructural resolution within a mixed cell population or a tissue can be achieved by hierarchical imaging using a combination of light and electron microscopy. Samples embedded in resin are sectioned into arrays consisting of ribbons of hundreds of ultrathin sections and deposited on pieces of silicon wafer or conductively coated coverslips. Arrays are imaged at low resolution using a digital consumer like smartphone camera or light microscope (LM) for a rapid large area overview, or a wide field fluorescence microscope (fluorescence light microscopy (FLM)) after labeling with fluorophores. After post-staining with heavy metals, arrays are imaged in a scanning electron microscope (SEM). Selection of targets is possible from 3D reconstructions generated by FLM or from 3D reconstructions made from the SEM image stacks at intermediate resolution if no fluorescent markers are available. For ultrastructural analysis, selected targets are finally recorded in the SEM at high-resolution (a few nanometer image pixels). A ribbon-handling tool that can be retrofitted to any ultramicrotome is demonstrated. It helps with array production and substrate removal from the sectioning knife boat. A software platform that allows automated imaging of arrays in the SEM is discussed. Compared to other methods generating large volume EM data, such as serial block-face SEM (SBF-SEM) or focused ion beam SEM (FIB-SEM), this approach has two major advantages: (1) The resin-embedded sample is conserved, albeit in a sliced-up version. It can be stained in different ways and imaged with different resolutions. (2) As the sections can be post-stained, it is not necessary to use samples strongly block-stained with heavy metals to introduce contrast for SEM imaging or render the tissue blocks conductive. This makes the method applicable to a wide variety of materials and biological questions. Particularly prefixed materials e.g., from biopsy banks and pathology labs, can directly be embedded and reconstructed in 3D.

This protocol targets specific cells in tissue for imaging at nanoscale resolution using a scanning electron microscope (SEM). Large numbers of serial sections from resin-embedded biological material are first imaged in a light microscope to identify the target and then in a hierarchical manner in the SEM.

大ボリューム内の特定の細胞内標的を見つけるため連続切片的階層構造イメージング

Targeting specific cells at ultrastructural resolution within a mixed cell population or a tissue can be achieved by hierarchical imaging using a ...

発生生物学

Preparation of Non-human Primate Brain Tissue for Pre-embedding Immunohistochemistry and Electron Microscopy

Despite all the technological advances at the light microscopy&#160;level, electron microscopy remains the only tool in neuroscience to examine and characterize ultrastructural and morphological details of neurons, such as synaptic contacts. Good preservation of brain tissue for electron microscopy can be obtained by rigorous cryo-fixation methods, but these techniques are rather costly and limit the use of immunolabeling, which is crucial to understand the connectivity of identified neuronal systems. Freeze-substitution methods have been developed to allow the combination of cryo-fixation with immunolabeling. However, the reproducibility of these methodological approaches usually relies on costly freezing devices. Moreover, achieving reliable results with this technique is very time-consuming and skill-challenging. Hence, the traditional chemically fixed brain, particularly with acrolein fixative, remains a time-efficient and low-cost method to combine electron microscopy with immunohistochemistry. Here, we provide a reliable experimental protocol using chemical acrolein fixation that leads to the preservation of primate brain tissue and is compatible with pre-embedding immunohistochemistry and transmission electron microscopic examination.

Here, we provide an easy, low-cost, and time-efficient protocol to chemically fix primate brain tissue with acrolein fixative, allowing for long-term preservation that is compatible with pre-embedding immunohistochemistry for transmission electron microscopy.

プレ埋め込み免疫組織化学および電子顕微鏡のための非ヒト霊長類脳組織の調製

Despite all the technological advances at the light microscopy&#160;level, electron microscopy remains the only tool in neuroscience to examine and ...

神経科学

The Cutting and Floating Method for Paraffin-embedded Tissue for Sectioning

Sectioning of the paraffin-embedded tissue is widely used in histology and pathology. However, it is tedious. To improve this method, several commercial companies have devised complex section transfer systems using fluid water. To simplify this technology, we created a simple method using homemade equipment that combines cutting and floating within a simple thermostatic chamber; therefore, the sections automatically enter the water bath on the water surface. The hippocampus from adult mouse brains, adult mouse kidneys, embryonic mouse brains, and adult zebrafish eyes were cut using both conventional paraffin sectioning and the presented method for comparison. Statistical analysis shows that our improved method saved time and produced higher quality sections. In addition, paraffin sectioning of a whole specimen in a short time is easy for junior operators.

Here, we present a protocol to improve paraffin sectioning. This method combines cutting and floating using a simple thermostatic chamber to avoid the transfer process required by the conventional method. As a result, the efficiency and the number of intact paraffin sections were greatly improved.

切削とフローティング区分のための組織のパラフィン包埋法

Sectioning of the paraffin-embedded tissue is widely used in histology and pathology. However, it is tedious. To improve this method, several commercial ...

Sampling Strategies and Processing of Biobank Tissue Samples from Porcine Biomedical Models

In translational medical research, porcine models have steadily become more popular. Considering the high value of individual animals, particularly of genetically modified pig models, and the often-limited number of available animals of these models, establishment of (biobank) collections of adequately processed tissue samples suited for a broad spectrum of subsequent analyses methods, including analyses not specified at the time point of sampling, represent meaningful approaches to take full advantage of the translational value of the model. With respect to the peculiarities of porcine anatomy, comprehensive guidelines have recently been established for standardized generation of representative, high-quality samples from different porcine organs and tissues. These guidelines are essential prerequisites for the reproducibility of results and their comparability between different studies and investigators. The recording of basic data, such as organ weights and volumes, the determination of the sampling locations and of the numbers of tissue samples to be generated, as well as their orientation, size, processing and trimming directions, are relevant factors determining the generalizability and usability of the specimen for molecular, qualitative, and quantitative morphological analyses. Here, an illustrative, practical, step-by-step demonstration of the most important techniques for generation of representative, multi-purpose biobank specimen from porcine tissues is presented. The methods described here include determination of organ/tissue volumes and densities, the application of a volume-weighted systematic random sampling procedure for parenchymal organs by point-counting, determination of the extent of tissue shrinkage related to histological embedding of samples, and generation of randomly oriented samples for quantitative stereological analyses, such as isotropic uniform random (IUR) sections generated by the &#34;Orientator&#34; and &#34;Isector&#34; methods, and vertical uniform random (VUR) sections.

The practical application and performance of methods for generation of representative tissue samples of porcine animal models for a broad spectrum of downstream analyses in biobank projects are demonstrated, including volumetry, systematic random sampling, and differential processing of tissue samples for qualitative and quantitative morphologic and molecular analyses types.

サンプリング戦略とブタの生物医学的モデルからバイオバンク組織サンプルの処理

In translational medical research, porcine models have steadily become more popular. Considering the high value of individual animals, particularly of ...

医学

High Resolution Quantification of Crystalline Cellulose Accumulation in Arabidopsis Roots to Monitor Tissue-specific Cell Wall Modifications

Plant cells are surrounded by a cell wall, the composition of which determines their final size and shape. The cell wall is composed of a complex matrix containing polysaccharides that include cellulose microfibrils that form both crystalline structures and cellulose chains of amorphous organization. The orientation of the cellulose fibers and their concentrations dictate the mechanical properties of the cell. Several methods are used to determine the levels of crystalline cellulose, each bringing both advantages and limitations. Some can distinguish the proportion of crystalline regions within the total cellulose. However, they are limited to whole-organ analyses that are deficient in spatiotemporal information. Others relying on live imaging, are limited by the use of imprecise dyes. Here, we report a sensitive polarized light-based system for specific quantification of relative light retardance, representing crystalline cellulose accumulation in cross sections of Arabidopsis thaliana roots. In this method, the cellular resolution and anatomical data are maintained, enabling direct comparisons between the different tissues composing the growing root. This approach opens a new analytical dimension, shedding light on the link between cell wall composition, cellular behavior and whole-organ growth.

High Resolution Quantification of Crystalline Cellulose Accumulation in Arabidopsis Roots to Monitor Tissue-specific Cell Wall Modifications

Crystalline cellulose is an important constituent of the plant cell wall. However, its quantification at a cellular resolution is technically challenging. Here, we report the use of polarized light technology and root cross sections to obtain information of cell wall composition at a spatiotemporal resolution.

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;ルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します

Plant cells are surrounded by a cell wall, the composition of which determines their final size and shape. The cell wall is composed of a complex matrix ...

Laser-Capture Microdissection RNA-Sequencing for Spatial and Temporal Tissue-Specific Gene Expression Analysis in Plants

The development of a complex multicellular organism is governed by distinct cell types that have different transcriptional profiles. To identify transcriptional regulatory networks that govern developmental processes it is necessary to measure the spatial and temporal gene expression profiles of these individual cell types. Therefore, insight into the spatio-temporal control of gene expression is essential to gain understanding of how biological and developmental processes are regulated. Here, we describe a laser-capture microdissection (LCM) method to isolate small number of cells from three barley embryo organs over a time-course during germination followed by transcript profiling. The method consists of tissue fixation, tissue processing, paraffin embedding, sectioning, LCM and RNA extraction followed by real-time PCR or RNA-seq. This method has enabled us to obtain spatial and temporal profiles of seed organ transcriptomes from varying numbers of cells (tens to hundreds), providing much greater tissue-specificity than typical bulk-tissue analyses. From these data we were able to define and compare transcriptional regulatory networks as well as predict candidate regulatory transcription factors for individual tissues. The method should be applicable to other plant tissues with minimal optimization.

Presented here is a protocol for laser-capture microdissection (LCM) of plant tissues. LCM is a microscopic technique for isolating areas of tissue in a contamination-free manner. The procedure includes tissue fixation, paraffin embedding, sectioning, LCM and RNA extraction. RNA is used in the downstream tissue-specific, temporally resolved analysis of transcriptomes.

植物における空間的および時間的組織特異的な遺伝子発現解析のためのレーザー捕捉マイクロ解離RNAシーケンシング

The development of a complex multicellular organism is governed by distinct cell types that have different transcriptional profiles. To identify ...

A Simple Dry Sectioning Method for Obtaining Whole-Seed-Sized Resin Section and Its Applications

The morphology, size and quantity of cells, starch granules&#160;and protein bodies in seed determine the weight and quality of seed. They are significantly different among different regions of seed. In order to view the morphologies of cells, starch granules and protein bodies clearly, and quantitatively analyze their morphology parameters accurately, the whole-seed-sized section is needed. Though the whole-seed-sized paraffin section can investigate the accumulation of storage materials in seeds, it is very difficult to quantitatively analyze the morphology parameters of cells and storage materials due to the low resolution of the thick section. The thin resin section has high resolution, but the routine resin sectioning method is not suitable to prepare the whole-seed-sized section of mature seeds with a large volume and high starch content. In this study, we present a simple dry sectioning method for preparing the whole-seed-sized resin section. The technique can prepare the cross and longitudinal whole-seed-sized sections of developing, mature, germinated, and cooked seeds embedded in LR White resin, even for large seeds with high starch content. The whole-seed-sized section can be stained with fluorescent brightener 28, iodine, and Coomassie brilliant blue R250 to specifically exhibit the morphology of cells, starch granules, and protein bodies clearly, respectively. The image obtained can also be analyzed quantitatively to show the morphology parameters of cells, starch granules, and protein bodies in different regions of seed.

This technique allows for the fast and simple preparation of whole-seed-sized resin section for the observation and analysis of cells, starch granules, and protein bodies in different regions of the seed.

全種サイズ樹脂断面の簡易ドライ断面化方法とその応用

The morphology, size and quantity of cells, starch granules&#160;and protein bodies in seed determine the weight and quality of seed. They are ...

Microscopy Techniques for Interpreting Fungal Colonization in Mycoheterotrophic Plants Tissues and Symbiotic Germination of Seeds

Structural botany is an indispensable perspective to fully understand the ecology, physiology, development, and evolution of plants. When researching mycoheterotrophic plants (i.e., plants that obtain carbon from fungi), remarkable aspects of their structural adaptations, the patterns of tissue colonization by fungi, and the morphoanatomy of subterranean organs can enlighten their developmental strategies and their relationships with hyphae, the source of nutrients. Another important role of symbiotic fungi is related to the germination of orchid seeds; all Orchidaceae species are mycoheterotrophic during germination and seedling stage (initial mycoheterotrophy), even the ones that photosynthesize in adult stages. Due to the lack of nutritional reserves in orchid seeds, fungal symbionts are essential to provide substrates and enable germination. Analyzing germination stages by structural perspectives can also answer important questions regarding the fungi interaction with the seeds. Different imaging techniques can be applied to unveil fungi endophytes in plant tissues, as are proposed in this article. Freehand and thin sections of plant organs can be stained and then observed using light microscopy. A fluorochrome conjugated to wheat germ agglutinin can be applied to the fungi and co-incubated with Calcofluor White to highlight plant cell walls in confocal microscopy. In addition, the methodologies of scanning and transmission electron microscopy are detailed for mycoheterotrophic orchids, and the possibilities of applying such protocols in related plants is explored. Symbiotic germination of orchid seeds (i.e., in the presence of mycorrhizal fungi) is described in the protocol in detail, along with possibilities of preparing the structures obtained from different stages of germination for analyses with light, confocal, and electron microscopy.

This protocol aims to provide detailed procedures for collecting, fixing, and maintaining mycoheterotrophic plant samples, applying different microscopy techniques such as scanning and transmission electron microscopy, light, confocal, and fluorescence microscopy to study fungal colonization in plants tissues and seeds germinated with mycorrhizal fungi.

菌従属栄養植物組織における真菌のコロニー形成と種子の共生発芽を解釈するための顕微鏡技術

Structural botany is an indispensable perspective to fully understand the ecology, physiology, development, and evolution of plants. When researching ...

ハイブリッドカット：手に負えない植物組織試料のための改善されたセクショニング方法

要約

さらに動画を探す

この動画の章