우리는 전자 현미경에 대한 위스콘신 매디슨 전자 현미경 시설의 대학에서 BK 8 월 감사드립니다. 이 작품은 NIH 보조금 R01 - DA026067 및 P30 - HD03352 (JSM)을 지원했다.

1. 준비 1-4 <ol><li> 2.5 M의 자당 슬러리의 50 ML을 혼합하여 500 그라디언트 매체의 ML (GM) 버퍼를 준비, 1M 트리스 - HCL, pH7.5 주식 및 0.5 m EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 0.1 ML 2.5 ML, 산도와 8.0 주식 밀리 볼륨 Q 물. 솔루션 나누어지는 및 저장 냉동을 소독 필터. </li><li> 밀리 Q H 2 O.에서 1 ㎜ 솔루션을 만들어 테트로도톡신 (TTX)의 1000x 재고를 준비 TTX의 Aliquots는 -20 ° C.에 저장할 수 있습니다 </li><li> 밀리 Q 물 100 MM 트리스 (산도 7.5), 5 솔루션 MM 나 2 HPO 4, 4 MM KH 2 PO 4, 40 MM NaHCO 3, 800 MM NaCl을 만들어 10X 자극 버퍼를 준비합니다. 주식은 4 저장할 수 있습니다 ° C. </li><li> 사전 냉각 원심 분리기에 4 ° C. </li><li> 밀리 Q 물 2.5 M의 자당 (2 ML) 1 볼륨에 Percoll (18 ML) 9 볼륨을 추가하여 Isosmotic Percoll (SIP)의 주식 솔루션을 준비하고 잘 섞는다. </li><li> GM 버퍼 SIP의 각 금액을 추가하고 각각을 혼합하여 3, 10, 15, 23 %의 그라데이션 레이어를 준비 : </li></ol><img alt="표 0" src="/files/ftp_upload/3196/3196table0.jpg" /><ol start="7"><li> P1000 Gilson Pipetman을 사용하여 대문자로 베크 만의 원심 튜브에 2 ML 23, 15, 10 각각 3 % isosmotic Percoll 솔루션을 pipetting하여 그라데이션 레이어를 붓고. 레이어 사이의 인터페이스는 레이어없이 혼합과 함께 명확하게 뚜렷한해야합니다. 사용하기 전에 적어도 20 분 4 ° C에서 그라디언트를 저장합니다. 당일 사용이 권장되지만 그라디언트 24까지 시간 동안 저장할 수 있습니다. [경험 실험실 인원은 레이어 인터페이스의 시각화를위한 isomotic Percoll 솔루션 파란색 염료를 추가하여 준비 그라디언트를 연습할 수 있습니다.] </li></ol> 2. 마우스 해부 1 <ol><li> 모든 마우스 축산과 안락사 절차 NIH 대학 지침에 따라 수행되었는지 확인합니다. 이산화탄소 질식이나 동물 프로토콜의 승인하는 방법으로 새​​끼 (연령 P13로 P21)를 안락사. </li><li> 해부 보드에 마우스를 핀과 에탄올과 목 및 머리의 뒤쪽을 스프레이. 두개골의 기지에서 척수를 통해자를 날카로운 가위를 사용하여, 두개골의 맨에서 피부를 제거 정수리 뼈 및 interparietal 뼈 사이에 또​​는의 꿈과 피질 영역 사이에 옆으로 두개골을 잘라. 그런 다음 기지에서 코 (sagital 봉합 따라)에 두개골을 잘라, 조심스럽게 옆으로 각 반구를 당겨 부드러운 정수리 뼈를 제거하고 주걱으로 피질을 제거합니다. 소뇌 위 두뇌에 주걱을 넣고 다음 피질을 꺼내서 얼음처럼 차가운 GM 버퍼에 넣습니다. 균질화 단계로 바로 진행합니다. cortices 이것이 부정적인 SNS의 형성에 영향을 미칩니다 매우 오랫동안 얼음처럼 차가운 버퍼에 앉히지 마십시오. </li></ol> 3. homogenate 및 SNS 1-4 준비 <ol><li> 얼음처럼 차가운 GM 버퍼에 cortices을 씻어 차가운 GM 버퍼의 5 ML을 포함하는 유리 다운스 호모 지 나이저 두 cortices을 전송하기만하면됩니다. </li><li> 부드럽게 풀어 유봉의 50-10 스트로크와 cortices를 균질 (유봉 &quot;A&quot;), 꽉 유봉 (유봉 &quot;B&quot;)의 50-10 스트로크로 따라갔다. 뇌졸중은 신속한하지만 기포를 발생하지 않는 정도로 천천히해야합니다. 균질 후 homogenate의 사진이 계획 1입니다. 뇌졸중의 수는 각 균 질기와 함께 pestles에 따라 달라질 수 있습니다. 언제 그라디언트가 뇌졸중의 번호를하지 않을 경우 강력한 SN 밴드를 제공한다 조정 완료. </li><li> 펠렛 셀룰러 파편과 핵 4시 15 ML 원뿔 10 분 1000xg에서 원심 ° 스윙 버킷 로터에서 C (Allegra 6KR 원심 분리기)에 homogenate을 전송합니다. 스펀 homogenate의 사진이 계획 1입니다. </li><li> 4 5 분 32,500 XG에서 Percoll - 자당 기울기, 캡 튜브, 그리고 원심 당 뜨는의 레이어 2 ML ㆍ 고정 앵글 로터에서 C (베크 만 J2 - 21 원심 분리기, JA - 17 로터 ()는 적절한 어댑터를 사용 ) 시약 및 장비 표를 참조하십시오. </li><li> 오프 피펫과 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 SN 밴드 위의 솔루션을 폐기. 23분의 15 %의 인터페이스에서 SN 밴드에서 피펫, 얼음에 원뿔과 가게에 전송할 수 있습니다. 각각의 기울기 또는 한 피질 SN의 0.9-1.1 ML을 생산합니다. </li><li> 12 NM의 최종 농도 1000x CaCl 2를 추가하고 특이 현상이 여기을 억제 1 μm의의 최종 농도 1 MM TTX 주식을 추가 10X 자극 버퍼의 10 분의 1 볼륨을 추가하여 SNS의 ​​소금 농도를 조정합니다. (이것은 다운 스트림 SN 응용 프로그램에 영향을 줍니까 경우 CaCl 2의 추가는 선택 사항입니다.) </li><li> 마이크로 BCA 단백질 분석 키트를 사용하여 SNS의 단백질 농도를 결정합니다. (브래드 포드 단백질 분석이 때문에 Percoll에서 추론을 권장하지 않습니다.) </li><li> SNS는 단백질 transla 직접 신속하게 사용할 수 있습니다기 연구. 다른 응용 프로그램에 대한 SN lysate는 청소 또는 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 집중 수 있습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 : 마우스 대뇌 피질이 불연속 Percoll - 자당의 그라디언트 (제도 1), 6 밴드 또는 분수에 균질하고 분리되었을 때 (그림 1) 볼 수 있었다. 그것은 이전에 높은 분자량 밴드의 성분이 멤브레인 및 myelin 상처와 pelleted 자료 (표 1) mitochondria 또는 organelles 포함된 것을 대뇌 피질 3,5 쥐에 대한 표시되었다. 23 % / 15 % 인터페이스 (밴드 5) 농축 SNS가 포함되어 있습니다. 그대로 SNS를 포함 23 % / 15 % 인터페이스에서 밴드는 등 이전에 설명한 전자 현미경 (EM)에 의해 제거되고 검사되었습니다. 2,6 그들이 그대로 시냅스 vesicles의 존재와 presynaptic 및 postsynaptic 요소의 보전 (그림을 보여주 2). 사전 및 postsynaptic 구획의 분리는 신호와 두 구획에서 발생 단백질 합성을 조사하는 것이 중요합니다. 7-13 Percoll - 자당 기울기 우리가 SN 분율의 작은 세포, 핵 및 organelle 오염을 보았다 그래서 원유 정제하지만 전체 분리 좋았어요. 서양 얼룩 검사를하면, Percoll의 분수는 SN 밴드 (그림 3, 표 2)에서 시냅스 순도 증가 예상 단백질 마커가 포함되어 있습니다. 시냅스의 연결과 마커는 풍부한 SN 밴드 (밴드 5) 유지했지만 다른 마커의 풍부한이 크게 감소되었다. 구조와 시냅스 마커가 유지 또는 개선하는 동안 특히, GFAP, glial 원산지 astrocyte와 종양 세포에 대한 표지 및 Lamin - B1, 핵 마커의 존재는 무시할 수 있었다. 또한, 단백질 합성에 역할을 같은 mitochondria와 잠돌군 Zz 등 organelles,에 대한 마커의 유지가 발생했습니다. BCA 단백질 분석에 의해 결정으로 SN 밴드에 대한 일반적인 수율은 μL 당 단백질의 250-500 NG했다. SNS가 50 μm의 glutamate/10 μm의 글리신과 자극을 때 SNS의 ​​활동이 드 노보 단백질 합성의 양에 의해 결정되었다 [35S] - 메트로의 설립 (그림 4)에 의해 같은 모니터링을 제시 2. 자연적으로 흐르는 것과, 반사적으로 흐르는 translational 활동은 1.56 배 증가했다 (GLU) 또는 Pin1 억제제의 juglone와 활성화 배 5.12. Pin1 억제는 [35S] - 메트로의 설립에있는 증가 드 노보 단백질 합성에 의한되었는지 확인하려면 증가의 단백질 합성 2. 초래하는 것으로 알려져 있습니다, 우리는 40 μm의의 anisomycin, 단백질 합성 억제제를 추가하고, 정관에 표시된 감소를 봤어요 기초 수준에 비해 GLU의 존재와 부재 인치 또한, 2 %는 SNS의 ​​무결성을 방해 트리톤 - X 100의 추가에 따라, 기초 번역 75 % 감소했다. 2 또한, 대부분의 시냅스 마커 농축을 보여주 밴드 (B4 - B6) 검사 때, SNS 또는 밴드 5 드 노보 단백질 합성 (그림 5)에 대한 가장 큰 활동을했다. 따라서 불연속 Percoll - 자당의 그라디언트 신속하게 단백질 번역을 공부하는 데 사용할 수있는 매우 적극적이고 풍부한 SN 밴드를 생산하고 있습니다. 기계적 손상이 엄격한 조건에 의해 발생되기 때문에 불연속 Percoll - 자당 기울기 절차는 다른 방법보다 더 유리합니다. 대뇌 피질의 homogenate를 통과하는 여과 방식에 비해 크기 감소가 3,14-15 Percoll 방법이 큰 활동을 더 SNS를 형성되는 일련의 필터를 통해 전달됩니다. 로 여과 방법으로 준비 SNS의 ​​나누어지는이 23분의 15 %의 인터페이스에서 훨씬 적은 SNS와 깨진 세포막의 큰 금액이있다 Percoll - 자당 기울기를 통해 전달되었다 그림 6에서 볼. 드 노보 단백질 합성이 S35 - 충족의 설립을 통해 측정되었을 때, 여과 방법으로 준비 SNS (그림 7) 훨씬 덜 활성화되었다. translational 활동을 극대화하기 위해 우리는 나이가 P14와 P18 사이 마우스를 사용합니다. SN은 성인 마우스에서 준비하지만, 우리는 청소년 생쥐 (그림 8)에서 준비 SN와 함께 크게 증가 translational 활동을 볼 수 있습니다. <img alt="표 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196table1.jpg" /> 표 1. 균질 마우스 피질의 불연속 Percoll - 기울기 fractionations에서 밴드의 성분. 3,5 <img alt="표 2" src="/files/ftp_upload/3196/3196table2.jpg" /> 표 2. 불연속 Percoll - 자당 기울기 밴드 성분 서양 볼트 분석 요약. 밴드 분수의 각각에 대해 상대 단백질 농도는 불연속 Percol를 사용하여 격리나 - 자당 기울기는 서양 얼룩에 의해 결정됩니다. 없음 단백질 선물 (-), 0 ≥ 0.2 (+), 0.2 ≥ 0.8 (++), 또는&gt; 0.8 (+++) 접어 N의 뜨는 (S, 피질 homogenate를 centrifuged) 대표의 단백질 선물보다 큰 = 3. <img alt="제도 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196scheme1.jpg" /> 계획 1 : 불연속 Percoll - 자당 밀도 구배를 사용하여 SN 준비의 도식 마우스 뇌 cortices가, 해부 균질, 비 균질 조직, 세포 등 핵 및 세포막과 같은 전체 organelles를 제거하는 낮은 속도로 centrifuged했다.. 불연속 기울기 명확하게 레이어를 정의해야합니다. 삽입 그림은 레이어를 시각화하기 위해 설명을 목적으로 파란 염색되어있는 레이어의 예제를 보여줍니다. 뜨는은 불연속 Percoll - 자당 기울기 위에 계층과 중간 속도 centrifuged입니다. SN 대역은 다음 그라디언트에서 검색하고 사용할 준비가됩니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig1.jpg" /> 그림 1. 불연속 Percoll - 자당 기울기에 Homogenate 분별화. 마우스 대뇌 피질은 균질 6 밴드 또는 분수로 상승을주는 불연속 Percoll - 자당 기울기에서 분리되었다. 정화, 활성 SNS는 (*) 밴드 5 발견되었습니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig2.jpg" /> 그림 2. SN의 준비는 presynaptic 및 postsynaptic 요소를 유지 SNS의 ​​이종 혼합주세요. C57BL / 6 마우스 (연령 P13로 P21)에서 준비 SN 준비의 전자 현미경을 보존 presynaptic과 postsynaptic 요소와 이전에 설명하고 보여주는 SNS로 수행되었다 2. 6 빨간색 화살표 지점 포스트 시냅스 밀도 수 있습니다. 스케일 바는 1 μm의 수 있습니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig3.jpg" /> 그림 3. SN의 준비 서양 얼룩 분석 시냅스와의 연결 마커가 정화 SNS 유지다고했다 (밴드 5) 그러나 다른 마커의 풍부한이 크게 감소했습니다. 뜨는의 Immunoblots (S, 대뇌 피질의 homogenate를 centrifuged)과 불연속의 밴드 1-6은 Percoll - 자당 기울기는 (postsynaptic 밀도 β - 굴지 (구조,로드 컨트롤), GFAP (astrocytic), GP73 (잠돌군 Zz), HSC70 (세포질과 핵), Lamin - B1 (핵), Prohibitin (mitochondrial) PSD95에 대한 읽혔어요 ), SNAP25 (시냅스), Synaptophysin (시냅스)와 β3 - Tubulin (신경 세포 특정). 밴드는 N = 3 대표, 폭풍 860 Phosphorimager를 사용하여 시각되었습니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig4.jpg" /> 그림 4. SNS가 활성화되고 [35S] - 메트로 정관을 통해 드 노보 단백질 합성을 나타냅니다. SNS는 ° C 10 분 37 미리 equilibrated되었습니다. 그렇다면 SNS 37 40 μm의의 anisomycin 또는 1 μm의의 juglone로 15 분에 대한 치료 또는 pretreated되었습니다 ° C 번 만났고, 20 μl 익스프레스 프로 라벨 플러스 또는 마이너스 GLU 37, S35 쉬운 태그 믹스 [35S]의 또한 다음 ° C 30 분. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig5.jpg" /> 그림 5. 불연속 Percoll - 자당 기울기에서 밴드 5 드 노보 단백질 합성의 최고 수준이 포함되어 있습니다. 밴드 4, 5 및 6 뜨는 (S, 대뇌 피질의 homogenate를 centrifuged가) 37 미리 equilibrated되었습니다 ° C 10 분. 그런 다음, [35S] - 만났고, 익스프레스 프로 라벨 믹스 S35 쉬운 태그가 추가, 플러스, 마이너스 37 GLU ° C 30 분했습니다. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig6.jpg" /> 그림 6. 여과 방법에서 준비 SNS는 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법에서 준비 SNS 이상 깨진 세포막 이하 모든 SNS가 포함되어 있습니다. SNS는 이전에 설명한대로 기공 크기를 감소로 필터 일련의를 통해 균질 피질을 전달하여 준비되었습니다. 여과 방법으로 준비 SNS의 ​​3,14-15 나누어지는가 불연속 Percoll - 자당 기울기를 통해 centrifuged과 이에 상응하는 금액에 비해되었습니다 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법을 사용하여 소재. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig7.jpg" /> 그림 7. 여과 방법에서 준비 SNS는 SNS가 서있 준비 미만 드 노보 단백질 합성 활동을 포함m 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법. SNS는 이전에 설명한대로 감소 기공 크기로 필터 3,14-15 일련의를 통해 균질 피질을 통과하여하고 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법에 의해 준비되었다. 모두 준비에서 SNS 37 미리 equilibrated되었습니다 ° C 10 분. 그런 다음, [35S] - 만났고, 익스프레스 프로 라벨 믹스 S35 쉬운 태그가 추가, 플러스, 마이너스 37 GLU ° C 30 분했습니다. 샘플은, 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트를 사용하여 준비 15 % polyacrylamide 젤에서 실행, 건조 및 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, N = 3 대표, ± SEM을 사용하여 quantitated되었습니다. <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig8.jpg" /> 그림 8. 젊은 마우스 (P14)에서 SNS는 나이가 생쥐 (P85)보다 큰 translational 활동을했습니다. SNS가에 GLU와 함께 10 분 37 preequilibrated 불연속 Percoll - 자당 기울기 방법, ° C를 사용하여 서로 다른 세 생쥐의 준비를 취급 또는 치료했다 [35S]의 존재 - 메트로, 스냅 냉동, 30 분 (특급 프로 라벨 S35 쉬운 태그 믹스)와 나중에 피어스 SDS - PAGE 샘플 준비 키트와 청소. SNS는 다음 12% SDS - polyacrylamide 겔에서 실행 말린 N = 3, ± SEM의 분자 역학 스톰 860 phosphorimager, 대표에 몇 군데 있었다. P14 생쥐에서 SNS는 P85 생쥐보다 적어도 3 배 이상 활성화되었습니다.

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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+neuronal+excitability,+synaptic+plasticity,+and+learning+in+aged+Kvbeta1.1+knockout+mice.">Increased neuronal excitability, synaptic plasticity, and learning in aged Kvbeta1.1 knockout mice.</a> Curr. Biol. 14, 1907-1915 (2004).</li><li>Norris, C. M., Halpain, S., Foster, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversal+of+Age-Related+Alterations+in+Synaptic+Plasticity+by+Blockade+of+L-Type+Ca21+Channels.">Reversal of Age-Related Alterations in Synaptic Plasticity by Blockade of L-Type Ca21 Channels.</a> J. Neurosci. 18, 3171-3179 (1998).</li><li>Sallert, M., Malkki, H., Segerstr&#228;lea, M., Tairaa, T., Lauri, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+the+kainate+receptor+agonist+ATPA+on+glutamatergic+synaptic+transmission+and+plasticity+during+early+postnatal+development.">Effects of the kainate receptor agonist ATPA on glutamatergic synaptic transmission and plasticity during early postnatal development.</a> Neuropharm. 52, 1354-1365 (2007).</li><li>Quinlan, E. M., Philpot, B. D., Huganir, R. L., Bear, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid,+experience-dependent+expression+of+synaptic+NMDA+receptors+in+visual+cortex+in+vivo.">Rapid, experience-dependent expression of synaptic NMDA receptors in visual cortex in vivo.</a> Nat. Neurosci. 2, 357-35 (1999).</li><li>Scheetz, A. J., Nairn, A. C., Constantine-Patton, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NMDA+receptor-mediated+control+of+proteins+synthesis+at+developing+synapses.">NMDA receptor-mediated control of proteins synthesis at developing synapses.</a> Nat. Neurosci. 3, 211-216 (2000).</li><li>Villasana, L. E., Klann, E., Tejada-Simon, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+isolation+of+synaptoneurosomes+and+postsynaptic+densities+from+adult+mouse+hippocampus.">Rapid isolation of synaptoneurosomes and postsynaptic densities from adult mouse hippocampus.</a> J. Neurosci. Methods. 158, 30-36 (2006).</li><li>Weiler, I. J., Greenough, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabotropic+glutamate+receptors+trigger+postsynaptic+protein+synthesis.">Metabotropic glutamate receptors trigger postsynaptic protein synthesis.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 7168-7171 (1993).</li><li>Gray, E. G., Whittaker, V. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+isolation+of+nerve+endings+from+brain:+An+electron+microscopic+study+of+cell+fragments+derived+by+homogenization+and+centrifugation.">The isolation of nerve endings from brain: An electron microscopic study of cell fragments derived by homogenization and centrifugation.</a> J. Anat. 96, 79-88 (1962).</li><li>Gylys, K. H., Fein, J. A., Yang, F., Cole, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enrichment+of+Presynaptic+and+Postsynaptic+Markers+by+Size-Based+Gating+Analysis+of+Synaptosome+Preparations+From+Rat+and+Human+Cortex.">Enrichment of Presynaptic and Postsynaptic Markers by Size-Based Gating Analysis of Synaptosome Preparations From Rat and Human Cortex.</a> Cytometry A. 60, 90-96 (2004).</li><li>Haj&#243;s, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+method+for+the+preparation+of+synaptosomal+fractions+in+high+purity.">An improved method for the preparation of synaptosomal fractions in high purity.</a> Brain Res. 93, 485-489 (1975).</li><li>Bai, F., Witzmann, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptosome+Proteomics.">Synaptosome Proteomics.</a> Subcell. Biochem. 43, 77-98 (2007).</li><li>Rao, A., Steward, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+that+protein+constituents+of+postsynaptic+membrane+specializations+are+locally+synthesized:+analysis+of+proteins+synthesized+within+synaptosomes.">Evidence that protein constituents of postsynaptic membrane specializations are locally synthesized: analysis of proteins synthesized within synaptosomes.</a> J Neurosci. 11, 2881-2895 (1991).</li><li>Pertoft, H., Laurent, T. C., Catsimpoolas, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isopycnic+separation+of+cells+and+cell+organelles+by+centrifugation+and+modified+colloidal+silica+gradients.">Isopycnic separation of cells and cell organelles by centrifugation and modified colloidal silica gradients.</a> Methods of Cell Separation. , 25-65 (1977).</li><li>Ramarao, C. S., Acharya, S. R., Krishnan, K. S., Kenkare, U. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+affinity+uptake+of+L-glutamate+and+&amp;gamma;-aminobutyric+acid+in+Drosophila+melanogaster.">High affinity uptake of L-glutamate and &amp;gamma;-aminobutyric acid in Drosophila melanogaster.</a> J. Biosci. 11, 119-135 (1987).</li><li>Munteanu, L. S., Dinu, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fractionation+of+granulocytes+from+whole+human+blood+by+centrifugation.+Practical+hints.">Fractionation of granulocytes from whole human blood by centrifugation. Practical hints.</a> Romanian J. Biophys. 14, 53-58 (2004).</li><li>Vlasselaer, P., Van Palathumpat, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+separation+composition,+kit+and+method.">Cell separation composition, kit and method.</a> US patent. , (1997).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

여기에 설명된 불연속 Percoll - 자당 기울기 준비는 시냅스 전송 실험의 다양한 사용할 수 있습니다 적극적인 SNS를 분리하기 위해 빠르고 안정적​​인 방법입니다. Dunkley 외., 3,4가 개발한 방법을 기반으로 그라데이션이 방법은 서로 관련된 두 - 사전 및 postsynaptic 멤브레인 - 파생 vesicles를 분리 subcellular 두뇌 분획화 절차입니다. 더 정화 않고 이러한 SNS가 immunoprecipitation, 서부 blotting, 유동?...

<table border="1"><tbody><tr><th> 시약의 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 댓글 (옵션) </th></tr><tr><td> 마이크로 BCA 단백질 분석 키트 </td><td> 찌르다 </td><td> 23,235 </td><td></td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 어부 </td><td> C79 - 500 </td><td></td></tr><tr><td> CO 2 가스 </td><td> Airgas (UW - MDS) </td><td> CD 50 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) </td><td> RPI </td><td> E57020 </td><td></td></tr><tr><td> EtOH </td><td> 어부 </td><td> A407SK - 4 </td><td></td></tr><tr><td> HCL </td><td> 어부 </td><td> A142 - 212 </td><td></td></tr><tr><td> Percoll </td><td> GE 헬스케어 </td><td> 17-0891-01 </td><td></td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 어부 </td><td> P285 - 500 </td><td></td></tr><tr><td> PierceSDS 페이지 샘플 준비 키트 </td><td> 찌르다 </td><td> 89,888 </td><td></td></tr><tr><td> NaCl </td><td> RPI </td><td> S23020 </td><td></td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 어부 </td><td> BP328 - 500 </td><td></td></tr><tr><td> 나이 검사하고 사진을 사 </td><td> 어부 </td><td> S381 - 500 </td><td></td></tr><tr><td> 자당 </td><td> RPI </td><td> S24060 </td><td></td></tr><tr><td> 트리스베이스 </td><td> RPI </td><td> T60040 </td><td></td></tr><tr><td> 테트로도톡신 </td><td> 시그마 </td><td> T5651 </td><td></td></tr><tr><td> 익스프레스 프로 라벨 S35 쉬운 태그 믹스 </td><td> Perkin 엘머 </td><td> NEG772 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><th> 장비 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 댓글 (옵션) </th></tr><tr><td> 해부 도구 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 다운스 호모 지 나이저, 7 ML (두 유리와 함께 제공 &quot;A&quot;와 &quot;B&quot;표시 pestles) </td><td> Wheaton의 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> P1000 Gilson Pipetman </td><td> Gilson </td><td> F123602 </td><td></td></tr><tr><td> Allegra 6KR의 원심 분리기 </td><td> 베크 만 보습 바로 앞에 달린 풀베는 날 </td><td> 366830 </td><td></td></tr><tr><td> GH 3.8 로터, 섹시한 버킷 로터 </td><td> 베크 만 보습 바로 앞에 달린 풀베는 날 </td><td> 360581 </td><td></td></tr><tr><td> 베크 만 J2 - 21 원심 분리기 </td><td> 베크 만 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 모자와 베크 만 튜브 </td><td> 베크 만 </td><td> 355672 </td><td></td></tr><tr><td> 흰색 벽으로 둘러싸인 어댑터 </td><td> 베크 만 </td><td> 342327 </td><td></td></tr><tr><td> 블루 벽으로 둘러싸인 어댑터 </td><td> 베크 만 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> JA - 17 로터, 고정 앵글 로터 </td><td> 베크 만 </td><td> 369691 </td><td></td></tr></tbody></table> 서부 blots에 사용되는 항체의 테이블 : <table border="1"><tbody><tr><th> 항체의 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 호스트 종 </th><th> 희석 팩터 </th></tr><tr><td> β - 굴지 </td><td> 시그마 </td><td> A5441 </td><td> 마우스 </td><td> 1:2000 </td></tr><tr><td> GFAP </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 65343 </td><td> 마우스 </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> GP73 </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 134509 </td><td> 토끼 </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> HSC70 </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 7298 </td><td> 마우스 </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> Laminβ </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 6261 </td><td> 염소 </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> Prohibitin </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 28259 </td><td> 토끼 </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> PSD95 </td><td> Millipore </td><td> MAB1596 </td><td> 마우스 </td><td> 5 μg / μL </td></tr><tr><td> SNAP25 </td><td> AbCam </td><td> ab5666 - 100 </td><td> 토끼 </td><td> 1:2000 </td></tr><tr><td> Synaptophysin </td><td> Millipore </td><td> MAB368 </td><td> 마우스 </td><td> 1:500 </td></tr><tr><td> β - 3 - Tubulin </td><td> 산타 크루즈 </td><td> SC - 80016 </td><td> 마우스 </td><td> 1:200 </td></tr></tbody></table>

preparation of synaptoneurosomes from mouse cortex using a discontinuous percoll-sucrose density gradient

Synaptoneurosomes (SNS)는 마우스 뇌 피질의 균질화 및 분별화 후 얻을 수 있습니다. 그들은 vesicles 또는 대뇌 피질의 조직이 균질 때 축삭 터미널에서 멀리 휴식 격리 터미널을 resealed 있습니다. SNS는 시냅스 전달의 연구에 유용하게하는, 사전과 postsynaptic 특성을 보유합니다. 그들의 연결 신호에 사용되는 분자 기계를 유지하고 이해, 스토리지 및 신경 전달 물질의 릴리스 할 수 있습니다. 적극적인 SNS의 생산과 격리 세포 독성하고 의한 SNS의 기계적 손상이 낮은 활동에 발생할 수 고밀도, 그리고 여과 및 원심 분리 방식에 의한 확장 원심 분리를 요구할 수 Ficoll 같은 문제를 사용하여 medias 수 있습니다. 그러나, SNS를 분리 불연속 Percoll - 자당 밀도 그라디언트의 사용 translationally 적극적인 SNS의 좋은 수율을 생산하는 빠른 방법을 제공합니다. 이 펠렛 SNS 그리고이 기계 고장의 원인이되는, isotonic 조건을 고용하고 적은 짧은 원심 분리를 돌면서을 보유하고 원심 분리 단계를 피할 수로 Percoll - 자당 기울기 방법은 신속하고 부드러운 있습니다.

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Preparation of Synaptoneurosomes from Mouse Cortex using a Discontinuous Percoll-Sucrose Density Gradient

마우스 뇌 피질에서 translationally 활성화, 손상 synaptoneurosomes (SNS)를 준비하는 방법을 설명합니다. 이 메서드는 활성화된 SNS의 빠른 준비를 위해 허용하는 불연속 Percoll - 자당 밀도 기울기를 사용합니다.

불연속 Percoll - 자당 밀도 구배를 사용하여 마우스를 접속에서 Synaptoneurosomes의 준비

Synaptoneurosomes (SNs) are obtained after homogenization and fractionation of mouse brain cortex. They are resealed vesicles or isolated terminals that ...

preparation-synaptoneurosomes-from-mouse-cortex-using-discontinuous

Research

JoVE Journal

Neuroscience

31.2K 조회수.  University of Wisconsin. 마우스 뇌 피질에서 translationally 활성화, 손상 synaptoneurosomes (SNS)를 준비하는 방법을 설명합니다. 이 메서드는 활성화된 SNS의 빠른 준비를 위해 허용하는 불연속 Percoll - 자당 밀도 기울기를 사용합니다.

비디오: Preparation of Synaptoneurosomes from Mouse Cortex using a Discontinuous Percoll-Sucrose Density Gradient

Chronic Imaging of Mouse Visual Cortex Using a Thinned-skull Preparation

In vivo imaging using two-photon laser scanning microscopy (2PLSM) allows the study of living cells and neuronal processes in the intact brain. The technique presented here allows the imaging of the same area of the brain at several time points (chronic imaging) with microscopic resolution allowing the tracking of dendritic spines which are the small structures that represent the majority of postsynaptic excitatory sites in the CNS. The ability to clearly resolve fine cortical structures over several time points has many advantages, specifically in the study of brain plasticity in which morphological changes at synapses and circuit remodeling may help explain underlying mechanisms. In this video and supplementary material, we show a protocol for chronic in vivo imaging of the intact brain using a thinned-skull preparation. The thinned-skull preparation is a minimally invasive approach, which avoids potential damage to the dura and/or cortex, thus reducing the onset of an inflammatory response. When this protocol is performed correctly, it is possible to clearly monitor changes in dendritic spine characteristics in the intact brain over a prolonged period of time.

In this video and supplemental material, we show a protocol for chronic in vivo imaging of the intact brain using a thinned-skull preparation.

Thinned - 해골 준비를 사용하여 마우스 시각 피질의 만성 이미징

In vivo imaging using two-photon laser scanning microscopy (2PLSM) allows the study of living cells and neuronal processes in the intact brain. The ...

연구

신경과학

Patch Clamp Recordings from Mouse Retinal Neurons in a Dark-adapted Slice Preparation

Our visual experience is initiated when the visual pigment in our retinal photoreceptors absorbs photons of light energy and initiates a cascade of intracellular events that lead to closure of cyclic-nucleotide-gated channels in the cell membrane. The resulting change in membrane potential leads in turn to reductions in the amount of neurotransmitter release from both rod and cone synaptic terminals. To measure how the light-evoked change in photoreceptor membrane potential leads to downstream activity in the retina, scientists have made electrophysiological recordings from retinal slice preparations for decades1,2. In the past these slices have been cut manually with a razor blade on retinal tissue that is attached to filter paper; in recent years another method of slicing has been developed whereby retinal tissue is embedded in low gelling temperature agar and sliced in cool solution with a vibrating microtome3,4. This preparation produces retinal slices with less surface damage and very robust light-evoked responses. Here we document how this procedure can be done under infrared light to avoid bleaching the visual pigment.

Here we describe a procedure for generating dark-adapted slices of the mouse retina for electrophysiological recordings.

어두운 적응 슬라이스 준비에 마우스 망막 뉴런에서 패치 클램프 레코딩

Our visual experience is initiated when the visual pigment in our retinal photoreceptors absorbs photons of light energy and initiates a cascade of ...

Isolating LacZ-expressing Cells from Mouse Inner Ear Tissues using Flow Cytometry

Isolation of specific cell types allows one to analyze rare cell populations such as stem/progenitor cells. Such an approach to studying inner ear tissues presents a unique challenge because of the paucity of cells of interest and few transgenic reporter mouse models. Here, we describe a protocol using fluorescence-conjugated probes to selectively label LacZ-positive cells from the neonatal cochleae.
The most common underlying pathology of sensorineural hearing loss is the irreversible damage and loss of cochlear sensory hair cells, which are required to transduce sound waves to neural impulses. Recent evidence suggests that the murine auditory and vestibular organs harbor stem/progenitor cells that may have regenerative potential1,2. These findings warrant further investigation, including identifying specific cell types with stem/progenitor cell characteristics. The Wnt signaling pathway has been demonstrated to play a critical role in maintaining stem/progenitor cell populations in several organ systems3-7. We have recently identified Wnt-responsive Axin2-expressing cells in the neonatal cochlea, but their function is largely unknown8.
To better understand the behavior of these Wnt-responsive cells in vitro, we have developed a method of isolating Axin2-expressing cells from cochleae of Axin2-LacZ reporter mice9. Using flow cytometry to isolate Axin2-LacZ positive cells from the neonatal cochleae, we could in turn execute a variety of experiments on live cells to interrogate their behavior as stem/progenitor cells. Here, we describe in detail the steps for the microdissection of neonatal cochlea, dissociation of these tissues, labeling of the LacZ-positive cells using a fluorogenic substrate, and cell sorting. Techniques for dissociating cochleae into single cells and isolating cochlear cells via flow cytometry have been described2,10-12. We have made modifications to these techniques to establish a novel protocol to isolate LacZ-expressing cells from the neonatal cochlea.

Flow cytometry is a powerful tool allowing for the isolation and study of specific cell populations. This protocol describes steps for isolating LacZ-expressing cells from cochlear tissues from neonatal transgenic mice. Dissociated cochlear cells were labeled using fluorescent-conjugated substrates of &#946;-galactosidase prior to separation via flow cytometry.

분리 LacZ를 표현 유동세포계측법를 사용하여 마우스 내이 (内耳) 조직의 세포를

Isolation of specific cell types allows one to analyze rare cell populations such as stem/progenitor cells. Such an approach to studying inner ear tissues ...

Visualization and Genetic Manipulation of Dendrites and Spines in the Mouse Cerebral Cortex and Hippocampus using In utero Electroporation

In utero electroporation (IUE) has become a powerful technique to study the development of different regions of the embryonic nervous system 1-5. To date this tool has been widely used to study the regulation of cellular proliferation, differentiation and neuronal migration especially in the developing cerebral cortex 6-8. Here we detail our protocol to electroporate in utero the cerebral cortex and the hippocampus and provide evidence that this approach can be used to study dendrites and spines in these two cerebral regions.
Visualization and manipulation of neurons in primary cultures have contributed to a better understanding of the processes involved in dendrite, spine and synapse development. However neurons growing in vitro are not exposed to all the physiological cues that can affect dendrite and/or spine formation and maintenance during normal development. Our knowledge of dendrite and spine structures in vivo in wild-type or mutant mice comes mostly from observations using the Golgi-Cox method 9. However, Golgi staining is considered to be unpredictable. Indeed, groups of nerve cells and fiber tracts are labeled randomly, with particular areas often appearing completely stained while adjacent areas are devoid of staining. Recent studies have shown that IUE of fluorescent constructs represents an attractive alternative method to study dendrites, spines as well as synapses in mutant / wild-type mice 10-11 (Figure 1A). Moreover in comparison to the generation of mouse knockouts, IUE represents a rapid approach to perform gain and loss of function studies in specific population of cells during a specific time window. In addition, IUE has been successfully used with inducible gene expression or inducible RNAi approaches to refine the temporal control over the expression of a gene or shRNA 12. These advantages of IUE have thus opened new dimensions to study the effect of gene expression/suppression on dendrites and spines not only in specific cerebral structures (Figure 1B) but also at a specific time point of development (Figure 1C).
Finally, IUE provides a useful tool to identify functional interactions between genes involved in dendrite, spine and/or synapse development. Indeed, in contrast to other gene transfer methods such as virus, it is straightforward to combine multiple RNAi or transgenes in the same population of cells. 
In summary, IUE is a powerful method that has already contributed to the characterization of molecular mechanisms underlying brain function and disease and it should also be useful in the study of dendrites and spines.

Visualization and Genetic Manipulation of Dendrites and Spines in the Mouse Cerebral Cortex and Hippocampus using In utero Electroporation

This article describes in detail a protocol to electroporate in utero the cerebral cortex and the hippocampus at E14.5 in mice. We also show that this is a valuable method to study dendrites and spines in these two cerebral regions.

사용하는 마우스 대뇌 피질과 해마의 시각화 및 Dendrites와 쪽이의 유전자 조작<em&gt; utero에서</em&gt; Electroporation

In utero electroporation (IUE) has become a powerful technique to study the development of different regions of the embryonic nervous system 1-5. To date ...

Live Imaging of Mitosis in the Developing Mouse Embryonic Cortex

Although of short duration, mitosis is a complex and dynamic multi-step process fundamental for development of organs including the brain. In the developing cerebral cortex, abnormal mitosis of neural progenitors can cause defects in brain size and function. Hence, there is a critical need for tools to understand the mechanisms of neural progenitor mitosis. Cortical development in rodents is an outstanding model for studying this process. Neural progenitor mitosis is commonly examined in fixed brain sections. This protocol will describe in detail an approach for live imaging of mitosis in ex vivo embryonic brain slices. We will describe the critical steps for this procedure, which include: brain extraction, brain embedding, vibratome sectioning of brain slices, staining and culturing of slices, and time-lapse imaging. We will then demonstrate and describe in detail how to perform post-acquisition analysis of mitosis. We include representative results from this assay using the vital dye Syto11, transgenic mice (histone H2B-EGFP and centrin-EGFP), and in utero electroporation (mCherry-&#945;-tubulin). We will discuss how this procedure can be best optimized and how it can be modified for study of genetic regulation of mitosis. Live imaging of mitosis in brain slices is a flexible approach to assess the impact of age, anatomy, and genetic perturbation in a controlled environment, and to generate a large amount of data with high temporal and spatial resolution. Hence this protocol will complement existing tools for analysis of neural progenitor mitosis.

Neural progenitor mitosis is a critical parameter of neurogenesis. Much of our understanding of neural progenitor mitosis is based on analysis of fixed tissue. Live imaging in embryonic brain slices is a versatile technique to assess mitosis with high temporal and spatial resolution in a controlled environment.

개발 마우스 배아의 피질 유사 분열의 라이브 영상

Although of short duration, mitosis is a complex and dynamic multi-step process fundamental for development of organs including the brain. In the ...

Two-Photon in vivo Imaging of Dendritic Spines in the Mouse Cortex Using a Thinned-skull Preparation

In the mammalian cortex, neurons form extremely complicated networks and exchange information at synapses. Changes in synaptic strength, as well as addition/removal of synapses, occur in an experience-dependent manner, providing the structural foundation of neuronal plasticity. As postsynaptic components of the most excitatory synapses in the cortex, dendritic spines are considered to be a good proxy of synapses. Taking advantages of mouse genetics and fluorescent labeling techniques, individual neurons and their synaptic structures can be labeled in the intact brain. Here we introduce a transcranial imaging protocol using two-photon laser scanning microscopy to follow fluorescently labeled postsynaptic dendritic spines over time in vivo. This protocol utilizes a thinned-skull preparation, which keeps the skull intact and avoids inflammatory effects caused by exposure of the meninges and the cortex. Therefore, images can be acquired immediately after surgery is performed. The experimental procedure can be performed repetitively over various time intervals ranging from hours to years. The application of this preparation can also be expanded to investigate different cortical regions and layers, as well as other cell types, under physiological and pathological conditions.

Two-Photon in vivo Imaging of Dendritic Spines in the Mouse Cortex Using a Thinned-skull Preparation

Time-lapse imaging in the living animal provides valuable information on structural reorganization in the intact brain. Here, we introduce a thinned-skull preparation that allows transcranial imaging of fluorescently labeled synaptic structures in the living mouse cortex by two-photon microscopy.

두 광자<em&gt; 생체</em&gt; 시닝 두개골 준비를 사용하여 마우스 피질 돌기 쪽의 영상

In the mammalian cortex, neurons form extremely complicated networks and exchange information at synapses. Changes in synaptic strength, as well as ...

Preparation of Synaptic Plasma Membrane and Postsynaptic Density Proteins Using a Discontinuous Sucrose Gradient

Neuronal subcellular fractionation techniques allow the quantification of proteins that are trafficked to and from the synapse. As originally described in the late 1960&#8217;s, proteins associated with the synaptic plasma membrane can be isolated by ultracentrifugation on a sucrose density gradient. Once synaptic membranes are isolated, the macromolecular complex known as the post-synaptic density can be subsequently isolated due to its detergent insolubility. The techniques used to isolate synaptic plasma membranes and post-synaptic density proteins remain essentially the same after 40 years, and are widely used in current neuroscience research. This article details the fractionation of proteins associated with the synaptic plasma membrane and post-synaptic density using a discontinuous sucrose gradient. Resulting protein preparations are suitable for western blotting or 2D DIGE analysis.

This article details the enrichment of proteins associated with the synaptic plasma membrane by ultracentrifugation on a discontinuous sucrose gradient. The subsequent preparation of post-synaptic density proteins is also described. Protein preparations are suitable for western blotting or 2D DIGE analysis.

불연속 자당 구배를 사용 시냅틱 세포막과 시냅스 밀도 단백질의 제조

Neuronal subcellular fractionation techniques allow the quantification of proteins that are trafficked to and from the synapse. As originally described in ...

Investigating the Function of Deep Cortical and Subcortical Structures Using Stereotactic Electroencephalography: Lessons from the Anterior Cingulate Cortex

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure involves the chronic placement of multiple depth electrodes into regions of the brain typically inaccessible via subdural grid electrode placement. SEEG thus provides a unique opportunity to investigate brain function. In this paper we demonstrate how SEEG can be used to investigate the role of the dorsal anterior cingulate cortex (dACC) in cognitive control. We include a description of the SEEG procedure, demonstrating the surgical placement of the electrodes. We describe the components and process required to record local field potential (LFP) data from consenting subjects while they are engaged in a behavioral task. In the example provided, subjects play a cognitive interference task, and we demonstrate how signals are recorded and analyzed from electrodes in the dorsal anterior cingulate cortex, an area intimately involved in decision-making. We conclude with further suggestions of ways in which this method can be used for investigating human cognitive processes.

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is an operative technique used in epilepsy surgery to help localize seizure foci. It also affords a unique opportunity to investigate brain function. Here we describe how SEEG can be used to investigate cognitive processes in human subjects.

정위 뇌파를 사용하여 깊은 피질의 기능 및 피질 하 구조 조사 : 전방에 cingulate 피질 수업

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure ...

Live Imaging of Primary Cerebral Cortex Cells Using a 2D Culture System

During cerebral cortex development, progenitor cells undergo several rounds of symmetric and asymmetric cell divisions to generate new progenitors or postmitotic neurons. Later, some progenitors switch to a gliogenic fate, adding to the astrocyte and oligodendrocyte populations. Using time-lapse video-microscopy of primary cerebral cortex cell cultures, it is possible to study the cellular and molecular mechanisms controlling the mode of cell division and cell cycle parameters of progenitor cells. Similarly, the fate of postmitotic cells can be examined using cell-specific fluorescent reporter proteins or post-imaging immunocytochemistry. More importantly, all these features can be analyzed at the single-cell level, allowing the identification of progenitors committed to the generation of specific cell types. Manipulation of gene expression can also be performed using viral-mediated transfection, allowing the study of cell-autonomous and non-cell-autonomous phenomena. Finally, the use of fusion fluorescent proteins allows the study of symmetric and asymmetric distribution of selected proteins during division and the correlation with daughter cells fate. Here, we describe the time-lapse video-microscopy method to image primary cerebral cortex murine cells for up to several days and analyze the mode of cell division, cell cycle length and fate of newly generated cells. We also describe a simple method to transfect progenitor cells, which can be applied to manipulate genes of interest or simply label cells with reporter proteins.

Live imaging is a powerful tool to study cellular behaviors in real time. Here, we describe a protocol for time-lapse video-microscopy of primary cerebral cortex cells that allows a detailed examination of the phases enacted during the lineage progression from primary neural stem cells to differentiated neurons and glia.

2D 문화 시스템을 사용 하 여 기본 대뇌 피 질 세포의 영상 라이브

During cerebral cortex development, progenitor cells undergo several rounds of symmetric and asymmetric cell divisions to generate new progenitors or ...

Characterization and Isolation of Mouse Primary Microglia by Density Gradient Centrifugation

Microglia, the resident immune cells in the brain, are the first responders to inflammation or injury in the central nervous system. Recent research has revealed microglia to be dynamic, capable of assuming both pro-inflammatory and anti-inflammatory phenotypes. Both M1 (pro-inflammatory) and M2 (pro-reparative) phenotypes play an important role in neuroinflammatory conditions such as perinatal brain injury, and exhibit differing functions in response to certain environmental stimuli. The modulation of microglial activation has been noted to confer neuroprotection thus suggesting microglia may have therapeutic potential in brain injury. However, more research is required to better understand the role of microglia in disease, and this protocol facilitates that. The protocol described below combines a density gradient centrifugation process to reduce cellular debris, with magnetic separation, producing a highly pure sample of primary microglial cells that can be used for in vitro experimentation, without the need for 2-3 weeks culturing. Additionally, the characterization steps yield robust functional data about microglia, aiding studies to better our understanding of the polarization and priming of these cells, which has strong implications in the field of regenerative medicine.

A protocol for the isolation of primary microglia from murine brains is presented. This technique aids in furthering the current understanding of neurological conditions. Density gradient centrifugation and magnetic separation are combined to produce sufficient yield of a highly pure sample. Furthermore, we outline the steps for characterization of microglia.

특성화 및 조밀도 기온 변화도 원심 분리 하 여 마우스 기본 Microglia의 절연

Microglia, the resident immune cells in the brain, are the first responders to inflammation or injury in the central nervous system. Recent research has ...