우리는 특히 일직선으로하다 요네자와에 마리 실험실과 Godenschwege 실험실의 구성원을 인정하고자, 의견 및이 프로토콜과 함께 도움이 될 것이다. 이 작품은 신경계 장애 진흥원과 FM 및 태그 스트로크 부여 R21NS06637 추진하는 사업, AB는 국립 과학 재단 보너스 번호 082925, URM 추진하는 사업 : 미래의 연구자를위한 통합 생물학.

1. 전기 생리학 조작 설정 - 업 <ol><li> 전기 생리학의 장비 설정을위한 필수 장비는 오거 스틴 외 의해 자세하게 설명되어 있습니다. 이 저널 14인치 필요한 electrophysiological apparatuses의 자세한 설명은이 문서를 참조하십시오. </li><li> nanoinjector을 보유하고 육분의 일 micromanipulator을 추가하여 이전에 설명한 전기 생리학 장비 설정 14 수정합니다. 그림 2에 표시된대로 그것은 두 개의 자극 전극 마이크로 사이에 위치해야 동물의 머리에 쉽게 액세스할 수. </li><li> 실험을 시작하기 전에, 당신은 모든 마이크로와 회전의 모든 축에 편안한 범위를 가지고 있는지 확인하고, 모든 전극뿐만 아니라 사출 micropipette은 (단계 2 참조) 동물에 도달할 수있다. </li></ol> 2. Nanoinjection 설정 <ol><li> nanoinjection는 설정 Nanoliter2000 (세계 Precisi 필요합니다계측기에, 사라소타, FL, 미국) 또는 nanoliter 수량에 제어된 주입을 허용 인젝터 비슷한 유형입니다. </li><li> 전극 풀러와 MΩ 80-100의 저항에 벗어서 주입기와 함께 제공된 유리 micropipettes를 사용하여 주사 바늘을 준비합니다. </li><li> 부드러운 주사의 경우 그것은 베벨 각도는 45도 이내에서 11-17 μm의 개구 (그림 3)에 micropipettes을해야합니다. </li><li> 천천히 Nanoliter2000 설명서의 지시에 따라 합성 오일은 기포가 존재하지 않는다는 보장, 해밀턴 주사기를 이용한 사출 micropipette를 backfill. </li><li> 조심스럽게 nanoinjector에 micropipette를 확보하고 Nanoliter2000 설명서의 지시에 따라 여분의 기름을 비우는하여 화합물을로드하기 위하여 그것을 준비합니다. </li><li> micromanipulator에 주입기를 삽입하고 Nanoliter2000 설명서에 지시에 따라 혼합물을로드합니다. micropipette의 일각이 도중에 침입하지 않도록절차. </li><li> Nanoliter2000 설명서의 지시에 따라 인젝터의 제어 상자에 주입되는 nanoliters의 원하는 금액을 설정합니다. 총 금액의 주입 100 NL을 초과하지 말아야합니다. 우리는 식염수 제어 솔루션의 큰 수량은 GFS 회로의 기능에 영향을 미칠 수있는 것으로 나타났습니다. </li><li> 그것은 nanoinjector의 전원 공급 장치가 배경 잡음 (그림 4)로 표시 음반, 방해 때문에 인젝터가 분사 자체의 예외로 녹화 수집하는 동안 컨트롤 박스에서 분리해야하는 것이 중요합니다. 그것을 다시 설정합니다 그러나 컨트롤 박스에 전원 공급 장치를 분리하지 않습니다. </li></ol> 3. Drosophila melanogaster 준비 <ol><li> 이전에 14,15을 설명한대로 CO 2와 함께 또는 얼음 2-6일 오래된 파리를 마취. </li><li> 일단 고정되어 있으며, 작은 접시 부로 동물을 전송하는 족집게 한 켤레를 사용그 다리에서 데리러하여 일 소프트 치과 왁스. 남성 과일 파리가 1.0에 대한 MG 무게와 암컷 과일 파리가 1.2 밀리그램에 대해 무게, 따라서 화합물 - 투 - 체중 비율은 남성 대 여성의 파리에서 다르다는 것을 유의하시기 바랍니다. 따라서, 그것은 실험을 위해 단 한 성별을 사용하는 것이 좋습니다. </li><li> 이전에 14,15을 설명한 바와 같이, 신중 플라이 지느러미 측면을 탑재하고 흉부와 머리가 몸 주위에 배치 부드러운 치과용 왁스로 고정되어 있는지 확인하십시오. 조심스럽게 그들이 흉부 (그림 2, C)에 수직 누워 있도록 날개를 펼쳐. 파리는 가능한 한 작은 손상으로 함께 장착되어야합니다. </li></ol> 4. 이점 Nanoinjection / 전기 생리학 <ol><li> 자극 전극쪽으로 머리와 전기 생리학의 장비에 탑재된 파리를 놓습니다. </li><li> 이전에 14,15 (F를 설명하는 것처럼 해당 자극, 지상 및 녹음 전극과 동물을 찌르려고igure 2, C). TTM 근육에 DLM 및 기타에 달리 원하는 않는 한, 한 기록 전극. DLM 근육은 앞쪽에 Dorso - 중앙 머리카락과 파리의 중간선 사이의 흉부에 위치하고 있습니다. TTM 근육은 플라이 7의 뒷부분과 앞부분 위에 - 날개의 머리카락 사이에 날개 첨부 근처에 위치하고 있습니다. </li><li> 머리 중간 후부 부분에 위치하고 있지만 (그림 2, C) 아직 주입되지 않는 세 ocelli의 중심에있는 화합물을 포함하는 사출 micropipette을 맞춥니다. </li><li> 복합 주입 뇌 자극을 통한 거대 섬유 시스템 (GFS, 그림 1)의 경로를 DLM하는 TTM과 GF에 GF의 기준 녹음을 구하십시오. 전에 이렇게하려면, 10 자극의 10 열차 (40-50 MV) 열차 14,15 (그림 4) 사이에 일초 지연이 100 Hz에서에서 0.03 MS의 기간 동안 주어진 각각 자이언트 섬유 (GFS) 활성화합니다. 야생 유형 sh를 날아ould는 DLM 및 TTM 경로 모두에 자극이 비율로 일대일을 수행하실 수 있습니다. TTM 경로에 DLM과 GF에 GF가 1:1 비율에서 100 Hz에서의 자극을 수행하지 않을 경우 즉시 폐기하십시오. </li><li> 하나의 Hz에서에서 단일 펄스 (그림 4)와 GF의 지속적인 자극으로 전환합니다. </li><li> 신속하게 제어 상자에 주입기를 연결합니다. 배경 잡음은 1 Hz에서 자극의 녹음에 방해가됩니다하더라도, 그것을 중단하지 않습니다. </li><li> 단지 cuticule 아래 플라이의 머리 캡슐로 사출 micropipette를 신중을 삽입하고, 1 Hz로의 자극 (그림 4)을 유지하면서 플라이의 hemolymph으로 화합물의 원하는 금액을 투입. 파리의 개방 순환 시스템으로 인해, 전체 신경계는 초 이내에 화합물에 노출됩니다. 특정 분사 사이트 hemolymph로 화합물을 제공하는 중요한 아니지만, 우리가 집중되는 ocelli의 영역을 찾아D 화합물의 신속하고 심지어는 배포판에 이르게 쉽게 주사를 허용 편리한 사이트로 헤드 캡슐의 가장 지느러미 옆으로에서 중간. </li><li> 즉시 주사의 사이트에서 사출 micropipette를 제거하고 최대 주입 후 1 분 (그림 4)에 1 Hz에서 GF의 자극을 계속하는 동안 컨트롤 상자에서 인젝터를 뽑습니다. </li><li> GFS에 대한 화합물의 더 미묘한 효과를 공개하기 위해서는 열차 사이의 일초 지연이 100 Hz에서 10 자극의 10 열차와 자이언트 섬유 (GFS)을 강조. 최대 15 분 (그림 4)이 패러다임은 5 분 간격으로 GF 경로의 기능을 테스트하기 위해 계속합니다. 그러나, 짧은 간격 이상 모니터링 기간도 가능합니다. </li><li> 화합물 GFS의 신경근육학 분기점 (NMJs)에서 효과를 가지고 있으며, 가능한 화합물의 효과를 좁혀 여부를 테스트하기 위해서는 모터 뉴런 direc를 활성화하기 위해 진행tly 흉부 자극에 의​​해. 100 Hz에서 10 자극의 10 전차와 모터 뉴런을 자극하기 위해 이런 내용 눈에서 자극 전극을 제거하고 흉부의 앞부분 양쪽에 그들을 대체합니다. </li></ol> 참고 : 동영상에 표시되는 전기 생리학의 흔적은 순수한 염료 주입의 효과에 해당하지 않습니다. 5. 대표 결과 거대한 광섬유 시스템의 시냅스를 DLM하는 PSI에 대한 길항제의 영향 Methyllycaconitine 구연산 (행방이 묘연)는 α7 nAChR의 subtypes 특정입니다 nAChR 길항제이다. Dα7 nAChR의 나눠 봤는데요의 유전자 제거 GF-TTM 경로 5,6에 아무런 영향을 미치지 않습니다 동안 GF-DLM 경로에서 시냅스를 DLMn하는 PSI는 적절한 기능을 위해 Dα7 nAChR에 나눠 봤는데요에 따라 다릅니다. 우리의 분석의 특이성과 감도를 입증하기 위해 우리는 다양한 농도 (0, 0.02, 0.04, 0에서 행방이 묘연 주입.식염수 치료를 위해 N = 15); 08, 0.12 NG / MG 46 NL들은 동물의 머리 (N = 10 화합물 처리 당에) 주입. 오직 수컷 파리는 (야생 유형 유전자형 야생 10E의)이 사용되었으며, 화합물의 효과는 주사 후 15 분 총 감시되었다. 그림 5는 기준 주입하기 전에 얻은 녹음과 행방이 묘연하고 염분 제어 솔루션에 대한 응답으로 주입 후 얻은 이들의 차이를 묘사. 우리는 행방이 묘연의 주입은 GF-TTM 경로가 영향을받지 남아있는 동안 두뇌에 GFS의 stimulations 100 Hz에서에서 일대일을 따르도록 GF-DLM 경로의 무능력 결과 발견. (그림 5, 상위 및 중간 추적, 데이터가 아닌 파라메 트릭 [테스트 정상과 동등한 차이]가있는 경우를 제외 염분 조절 [0 NG / MG]과 각 시점에서 행방이 묘연의 서로 다른 농도 사이의 수행한 T-테스트, 그렇지 않으면 우리가 사용하는 맨 - 휘트니 순위 합 테스트. * P &lt;0.001). 그러나 일대일 R모터 뉴런은 (그림 5, 하단 트레이스)에 직접 자극을 때 DLM의 esponse은 DLM과 TTM의 NMJ 함수가 행방이 묘연의 영향을받지 않는 것을 보여주 관찰되었다. 행방이 묘연은 더 이상 큰 변화는 시험 기간 중 다음과 같은 십오분 동안 언급되지 않았습니다로서, 0.04, 0.08 및 0.12 NG / 주입 행방이 묘연의 MG에 대한 주입 후 최대 효과 1 분 도달하는 것처럼 보였다. 강한 반응은 0.12 NG / MG의 높은 복용량에 관찰되지 않은 이후 더욱이 화합물은 0.08 NG / MG에서 최대 효과에 도달했습니다. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig1.jpg" alt="그림 1" /> 1 그림. 거대 섬유 시스템 자이언트 섬유 시스템 (GFS)의 다이어그램. (녹색으로 표시 PSI) 자이언트 섬유 (빨간색으로 표시된 GFS) 전기적 시냅스 (갭 분기점)뿐만 아니라 화학적 (cholinergic)쪽으로 주변 Synapsing의 Interneuron과 Tergo Trochanteral 근육 신경 세포 (TTMn, 노란색으로 표시) 5. PS나는 DLMn (파란색으로 표시된 지느러미 세로 근육 신경 세포) 연결로 Dα7 nAChR의 나눠 봤는데요 6 달려 있습니다. 마지막 점프 (TTM, 자주색으로 표시)과 비행 근육쪽으로 TTMn 및 DLMn (DLM, 보라색에 표시된)의 신경근육학 접합 (NMJ)는 glutamatergic입니다. 참고 : PSI 연결에 GF는 전기 화학 모두이다. 그러나 shakB 뮤턴트 (갭 분기점이 결여되어있는)에 응답은 전기적 연결의 부재의 화학 구성 요소의 동작 가능성을 연상하기에 충분 아니라는 것을 보여주는, 두뇌에있는 GFS의 자극에 따라 DLM에서 녹화한 수 없습니다 PSI 5,16-18. PSI 연결에 GF가 갭 접합에 의존하기 때문에,이 그림은 단순상의 이유로 시냅스에서 유일한 갭 접합을 보여줍니다. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2. 마이크로의동부 표준시 - 업. <ol class="ualpha"><li> 이전에 다음 ID로 출판 프로토콜 14 수정된 설정은 동시 nanoinjections와 결합하여 GFS 녹음을위한 사출 micromanipulator에 맞도록 사용됩니다. 탑재 비행 준비는 실험자쪽으로 플라이의 머리를 지향하고 있습니다. 사출 micromanipulator은 (# 1) 텅스텐 자극 전극 (2 #와 # 3)에 대한 두 manipulators 사이 실험자 앞에 위치합니다. 유리 기록 전극 (# 4, # 5)에 대한 두 개의 마이크로는 각각 왼쪽과 오른쪽에 배치됩니다. 텅스텐 접지 전극 (# 6)에 대한 micromanipulator이 중 왼쪽 (여기서는 그림 참조) 또는 오른쪽 뒤로 멀리 배치됩니다. </li><li> 다양한 전극 및 사출 micropipette의 배열의 맨에서 가까이가 볼 수 있습니다. </li><li> 제대로 마운트 디 melanogaster은 전극과 주사 준비 사출 micropipette에 찔려 죽은. 주의 그 동물의 사체수평의 흉부 및 그 날개와 함께 장착되어 밖으로 퍼졌다. 왁스는 안전하게 이동에서 동물을 방해하고 그 몸을 감싸됩니다. 또한 접지 전극 (# 6, 복부), 유리 기록 전극 (짙은 윤곽선으로 강조 흉부의 # 4, # 5,,), 그리고 자극 전극 (# 2, # 3, 각각의 눈을 한 이전 14 설명된대로), 장소에 찔려 죽은됩니다. 사출 micropipette (# 1) 적절히 세 ocelli (동그라미)의 중앙에 정렬합니다. 사출 micropipette의 삽입이 지역에 배치해야합니다. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig3.jpg" alt="그림 3" /> 그림 3. Beveled 사출 micropipette가. 제대로 beveled micropipette의 그림이 여기에 표시됩니다. 전극 개막은 45도 각도로 beveled과 11-17 μm의 사이에 개통이되어야한다. 적절한 beveled 사출 micropipette 최소한의 D와 부드러운 분사 데 중요파리에 amage. <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig4.jpg" alt="그림 4" /> 4 그림. nanoinjection / 전기 생리학 프로토콜의 전체 구조. nanoinjection / 전기 생리학 프로토콜에 대한 전반적인 계획의 대표적인 다이어그램. 열 자극에 각각 (한 기차가 여기에 표시)의 10 열차 100 Hz에서에서 자이언트 섬유 (GFS)을 자극하여베이스 라인 녹음을 얻어 시작합니다. 주입 전에 떨어져 1 Hz에서 제품 stimulations 잠깐만 시작합니다. 주입 시간 (인젝터는 컨트롤 박스에 연결하는 동안) 동안 중대한 배경 잡음을 관찰할 수 있지만, 레코딩을 중단하지 않습니다. 주입 후 (그리고 인젝터는 컨트롤 박스에서 분리), 약 1 분 정도 더를위한 1 Hz로의 자극을 계속합니다. 마지막으로, 100 Hz에서 10 자극의 10 열차와 GFS를 스트레스와 최대 15 분이 패러다임 5 분 간격으로 GF 경로의 기능을 테스트하기 위해 계속해서 진행합니다. 참고 : 녹음 w감수해야은 전반적인 구조를 만들 수 조작해서 얻은 구체적인 결과를 대변하지 않습니다. 아니라 스케일까지, 모든 트레이스가 표시됩니다. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3597/3597fig4large.jpg">큰 이미지를 보시려면 여기를 클릭하세요</a> . <img src="/files/ftp_upload/3597/3597fig5.jpg" alt="그림 5" /> 그림 5. GFS의 행방이 묘연의 효과. <ol class="ualpha"><li> 다양한 농도 (0, 0.02, 0.04, 0.08,에서 과일 파리의 GF-DLM 경로에 α7 nAChR 길항제 Methyllycaconitine의 구연산 (행방이 묘연)의 효과의 그래픽 묘사 0.12 NG / MG N = 10 화합물 처리 당.; N 식염수 치료 = 15). 주사 후 딱 1 분이는 중요하고 즉각적인 효과가 행방이 묘연의 0.04 NG / MG로 보였다. 큰 영향은 또한 GFS의 100Hz 자극에 0.8ng/mg와 행방이 묘연의 0.12ng/mg 같이 있던 아이. 어떤 중요한 차이점은 식염수 컨트롤과 행방이 묘연의 0.02 NG / MG 사이에 언급되지 않았습니다. 또한, 전을 변경할 없습니다N 효과 (15 분) 테스트 기간 동안 일분 게시물 주입 후 보였다. T-테스트는 염분 조절 (0 NG / MG)와 각 시점에서 행방이 묘연의 서로 다른 농도 사이에 수행되었다. SEM * P &lt;0.001 - 레벨은 + / - 의미로보고됩니다. </li><li> 100 Hz에서의 자극에 DLM 응답 샘플 흔적. 톱 추적 뇌의 GF의 자극시 행방이 묘연 주입하기 전에 근육의 반응을 보여줍니다. 근육 각 자극 100 Hz에서에서 일대일로 대응할 수납니다. 중동 성분은 행방이 묘연 주사 (0.12 NG / MG) 이후 DLM의 응답을 표시합니다. 근육 각 자극 100 Hz에서에서 일대일로 대응할 수 없다는 것을 알 수 있습니다. (별표). 하단 추적 흉부의 모터 뉴런의 직접적인 자극시 동일한 준비 (0.12 NG / MG)의 DLM의 반응을 보여줍니다. DLM은 흉부 자극 100 Hz에서에서 일대일을 응답하기 때문에 뇌 stimulations과 응답의 실패는 cholinergic PSI-DLMn 연결에 의한 것이. </li><li> GF-TTM 경로에 따라 달라질 행​​방이 묘연의 농도 (0, 0.02, 0.04, 0.08, 0.12 NG / MG)와 효과의 그래픽 묘사. 더 중요한 효과는 언제든지 지점에서 염분 (0 NG / MG) 및 복합 주사 사이에 본 적이 있었다. T-테스트는 * P &lt;0.001, 각 시간 지점에서 염분 조절 (0 NG / MG)와 행방이 묘연의 서로 다른 농도 사이에 수행되었다. </li><li> 100 Hz에서의 자극에서 TTM 응답 샘플 흔적. 톱 추적 두뇌에 자극을 가진 GF 활성화시 행방이 묘연 주입하기 전에 근육의 반응을 보여줍니다. 근육은 100 Hz에서에서 모든 자극에 응답할 수 있는지 확인합니다. 중동 성분은 행방이 묘연 주사 (0.12 NG / MG) 후 DLM의 반응을 보여줍니다. TTM 근육에서 두뇌의 GF의 자극에 대한 응답은 일대일 남아 있습니다. 하단 추적 흉부의 모터 뉴런 (0.12 NG / MG) 100 Hz로의 자극에 동일한 준비 TTM의 반응을 보여줍니다. </li></ol>

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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Passover+locus+in+Drosophila+melanogaster:+complex+complementation+and+different+effects+on+the+giant+fiber+neural+pathway.">The Passover locus in Drosophila melanogaster: complex complementation and different effects on the giant fiber neural pathway.</a> Genetics. 126, 1045-1059 (1990).</li><li>Gorczyca, M., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+cholinergic+synapse+in+the+giant+fiber+pathway+of+Drosophila+using+conditional+mutations+of+acetylcholine+synthesis.">Identification of a cholinergic synapse in the giant fiber pathway of Drosophila using conditional mutations of acetylcholine synthesis.</a> J. Neurogenet. 1, 289-313 (1984).</li><li>Allen, M. J., Murphey, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chemical+component+of+the+mixed+GF-TTMn+synapse+in+Drosophila+melanogaster+uses+acetylcholine+as+its+neurotransmitter.">The chemical component of the mixed GF-TTMn synapse in Drosophila melanogaster uses acetylcholine as its neurotransmitter.</a> The European journal of neuroscience. 26, 439-445 (2007).</li><li>Mejia, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+approach+for+in+vivo+screening+of+toxins+using+the+Drosophila+Giant+Fiber+circuit.">A novel approach for in vivo screening of toxins using the Drosophila Giant Fiber circuit.</a> Toxicon. 56, 1398-1407 (2010).</li><li>Stork, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organization+and+function+of+the+blood-brain+barrier+in+Drosophila.">Organization and function of the blood-brain barrier in Drosophila.</a> J. Neurosci. 28, 587-597 (2008).</li></ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

여기서 제시 nanoinjection / 전기 생리학 bioassay은 과일 파리의 신경계에있는 화합물의 신속한 상영을 허용합니다. 이것은 잘 특성화의 연결 회로에서 분자 표적의 다양한 효과를 유도 화합물의 소량을 필요로 생체내 기법의 소설이다. 이 방법은 알 수없는 독소에서 상용 pharmacological 중개사에게 서로 다른 화합물의 bioactivity을 테스트하는 데 사용할 수 있습니다. 여기 과?...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> 녹음 유리 전극 : borosilicate 유리 모세관 </td><td> 세계 정밀 계측기 </td><td> 1B100F-4 </td><td> 1.0mm OD, 0.58mm ID </td></tr><tr><td> 자극기 </td><td> 잔디 인 스트 루먼트 </td><td> 모델 S48 </td><td></td></tr><tr><td> 증폭기 </td><td> 인스 트루먼 트의 주식을 얻는 </td><td> 모델 5A </td><td></td></tr><tr><td> 데이터 수집 소프트웨어 : Digidata </td><td> 분자 장치 </td><td> 모델 1440A </td><td></td></tr><tr><td> 데이터 수집 소프트웨어 : pCLAMP </td><td> 분자 장치 </td><td> 버전 10 </td><td></td></tr><tr><td> Stereomicroscope with 광섬유 현미경 링 조명기 </td><td> AmScope </td><td> SM-4T 모델명 HL250-AR </td><td></td></tr><tr><td> 장착에 대한 범위를 해부 </td><td> AmScope </td><td> SM-2TZ </td><td></td></tr><tr><td> 연 수동 Micromanipulator 및 기울이기 자료 </td><td> 세계 정밀 계측기 </td><td> 모델 # M3301 연 : 모델 # 연을-M3-L </td><td></td></tr><tr><td> Drosophila melanogaster 야생 10E의 유전자형 (야생 형 변종) </td><td> 블루밍턴 증권 센터 </td><td> 주식 # 3892 </td><td></td></tr><tr><td> 수직 피펫 풀러 </td><td> 데이비드 Kopf 인 스트 루먼트 </td><td> 700c 모델 </td><td></td></tr><tr><td> 사출 유리 micropipettes : Borosilicate 유리 모세관 </td><td> 세계 정밀 계측기 </td><td> 카탈로그 # 4878 </tD&gt; <td> 1.14mm OD, 0.5mm ID </td></tr><tr><td> 실리콘 오일 </td><td> 어부 </td><td> 카탈로그 # S159-500 </td><td></td></tr><tr><td> Beveler </td><td> 셔터 악기 (주) </td><td> KT 브라운 유형 모델 # BV-10 </td><td></td></tr><tr><td> Nanoliter2000 </td><td> 세계 정밀 계측기 </td><td> 카탈로그 # B203XVY </td><td></td></tr><tr><td> 파란색 식용 색소 </td><td> 맥코믹 </td><td> N / A </td><td> 성분 : 물, 프로필렌 글리콜, FD &amp; C 파랑 1, 0.1 % 항균제 (방부제). </td></tr><tr><td> Methyllycaconitine 구연산 (행방이 묘연) </td><td> Bioscience Tocris </td><td> 카탈로그 # 1029 </td><td></td></tr><tr><td> 플라스틱 왁스 스틱 </td><td> Hygenic 공사 (Akron 오하이오주 미국) </td><td></td><td></td></tr></tbo다이&gt; </table>

paired nanoinjection and electrophysiology assay to screen for bioactivity of compounds using the drosophila melanogaster giant fiber system

생체내 활동에 대한 심사 화합물은 pharmacological 대리인의 1,2로 발전 수 있습니다 후보자를 식별하기위한 첫 단계로 사용할 수 있습니다. 우리는 mediates Drosophila melanogaster 3,4에서 탈출 반응의 연결 회로의 기능에 대한 화합물의 bioactive modulatory 효과의 검출을 허용 소설 nanoinjection / 전기 생리학 분석을 개발했습니다. 우리 Drosophila 자이언트 섬유 시스템 (GFS, 그림 1)과 같은 작은 분자 또는 펩티드와 같은 화합물, 여러 종류의 검사를 허용 사용하고, 오직 최소한의 수량이 효과를 이끌어내는 데 필요한 생체내 분석, 인치 또한, Drosophila GFS는 신경이나 근육에있는 잠재적인 분자 표적의 큰 다양성을 제공합니다. 주변 Synapsing Interneuron (PSI)과 Tergo Trochanteral 근육 신경 세포 (TTMn) 5 진입 화학적으로 거대 섬유 (GFS)은 전기 시냅스 (갭 분기점)뿐만 아니라 (cholinergic) </&gt;를 한모금. DLMn (지느러미 세로 근육 신경 세포) 연결에 대한 PSI는 Dα7 nicotinic 아세틸콜린 수용체 (nAChRs) 6에 따라 다릅니다. 마지막으로, 점프 (TTM)과 비행 근육 (DLM)와 TTMn과 DLMn의 신경근육학 분기점 (NMJ)는 7-12 glutamatergic 있습니다. 여기서는 자이언트 섬유 시스템 13 어떻게 회로의 기능에 대한 화합물의 효과를 모니터링하는 방법에서 electrophysiological 세포내 음반을 획득하면서, 화합물의 nanoliter 수량을 주입하는 방법을 보여줍니다. 우리는 연결을 DLMn 위해 PSI 있지만 연결 또는 점프 또는 비행 근육에 NMJ의 기능을 TTMn하는 GF을 방해 methyllycaconitine의 구연산 (행방이 묘연), nAChR 길항제와 분석의 특이성을 보여줍니다. 이 동영상을 시작하기 전에 당신이주의 깊게보고 D. melan의 거대한 섬유 통로에서 &quot;Electrophysiological 레코딩라는 주피터 비디오 친숙해지 것이 중요합니다동영상이 여기에 제시된대로 오거 스틴 외 7에서 ogaster는 &quot;이 기존의 기법에 대한 확장으로 만들어졌습니다. 여기서만 이점 nanoinjections 및 모니터링 기술의 추가에 상세히 electrophysiological 녹음 방법과 초점을 사용합니다.

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Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

급속한<em&gt; 생체내에서</em&gt; 검정의 거대한 섬유 시스템 (GFS)를 사용 neuromodulatory 화합물을위한 테스트<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;이 설명되어 있습니다. GFS의 electrophysiological 기록과 함께 동물의 머리에 Nanoinjections는 신경이나 근육에있는 화합물의 bioactivity를 공개하실 수 있습니다.

를 사용하여 화합물 Bioactivity위한 이점 Nanoinjection 및 화면에 대한 전기 생리학 분석 Drosophila melanogaster 거대 섬유 시스템

Screening compounds for in vivo activity can be used as a first step to identify candidates that may be developed into pharmacological agents1,2. We ...

paired-nanoinjection-electrophysiology-assay-to-screen-for

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

13.0K 조회수.  Florida Atlantic University. 급속한 생체내에서 검정의 거대한 섬유 시스템 (GFS)를 사용 neuromodulatory 화합물을위한 테스트 Drosophila melanogaster이 설명되어 있습니다. GFS의 electrophysiological 기록과 함께 동물의 머리에 Nanoinjections는 신경이나 근육에있는 화합물의 bioactivity를 공개하실 수 있습니다.

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Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster

When startled adult D. melanogaster react by jumping into the air and flying away. In many invertebrate species, including D. melanogaster, the "escape" (or "startle") response during the adult stage is mediated by the multi-component neuronal circuit called the Giant Fiber System (GFS). The comparative large size of the neurons, their distinctive morphology and simple connectivity make the GFS an attractive model system for studying neuronal circuitry. The GFS pathway is composed of two bilaterally symmetrical Giant Fiber (GF) interneurons whose axons descend from the brain along the midline into the thoracic ganglion via the cervical connective. In the mesothoracic neuromere (T2) of the ventral ganglia the GFs form electro-chemical synapses with 1) the large medial dendrite of the ipsilateral motorneuron (TTMn) which drives the tergotrochanteral muscle (TTM), the main extensor for the mesothoracic femur/leg, and 2) the contralateral peripherally synapsing interneuron (PSI) which in turn forms chemical (cholinergic) synapses with the motorneurons (DLMns) of the dorsal longitudinal muscles (DLMs), the wing depressors. The neuronal pathway(s) to the dorsovental muscles (DVMs), the wing elevators, has not yet been worked out (the DLMs and DVMs are known jointly as indirect flight muscles - they are not attached directly to the wings, but rather move the wings indirectly by distorting the nearby thoracic cuticle) (King and Wyman, 1980; Allen et al., 2006). The di-synaptic activation of the DLMs (via PSI) causes a small but important delay in the timing of the contraction of these muscles relative to the monosynaptic activation of TTM (~0.5 ms) allowing the TTMs to first extend the femur and propel the fly off the ground. The TTMs simultaneously stretch-activate the DLMs which in turn mutually stretch-activate the DVMs for the duration of the flight. The GF pathway can be activated either indirectly by applying a sensory (e.g."air-puff" or "lights-off") stimulus, or directly by a supra-threshold electrical stimulus to the brain (described here). In both cases, an action potential reaches the TTMs and DLMs solely via the GFs, PSIs, and TTM/DLM motoneurons, although the TTMns and DLMns do have other, as yet unidentified, sensory inputs. Measuring "latency response" (the time between the stimulation and muscle depolarization) and the "following to high frequency stimulation" (the number of successful responses to a certain number of high frequency stimuli) provides a way to reproducibly and quantitatively assess the functional status of the GFS components, including both central synapses (GF-TTMn, GF-PSI, PSI-DLMn) and the chemical (glutamatergic) neuromuscular junctions (TTMn-TTM and DLMn-DLM). It has been used to identify genes involved in central synapse formation and to assess CNS function.

Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster

The Giant Fiber System is a simple neuronal circuit of adult Drosophila melanogaster containing the largest neurons in the fly. We describe the protocol for monitoring synaptic transmission through this pathway by recording post synaptic potentials in dorsal longitudinal (DLM) and tergotrochanteral (TTM) muscles following direct stimulation of the Giant Fiber interneurons.

의 거대한 섬유 패스에서 Electrophysiological 레코딩 D. melanogaster</em

When startled adult D. melanogaster react by jumping into the air and flying away. In many invertebrate species, including D. melanogaster, the "escape" ...

연구

신경과학

Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection

To analyze the axonal and dendritic morphology of neurons, it is essential to obtain accurate labeling of neuronal structures. Preparing well labeled samples with little to no tissue damage enables us to analyze cell morphology and to compare individual samples to each other, hence allowing the identification of mutant anomalies.
In the demonstrated dissection method the nervous system remains mostly inside the adult fly. Through a dorsal incision, the abdomen and thorax are opened and most of the internal organs are removed. Only the dorsal side of the ventral nerve cord (VNC) and the cervical connective 
(CvC) containing the big axons of the giant fibers (GFs)1 are exposed, while the brain containing the GF cell body and dendrites remains2 in the 
intact head. In this preparation most nerves of the VNC should remain attached to their muscles. 
Following the dissection, the intracellular filling of the giant fiber (GF) with a fluorescent dye is demonstrated. In the CvC the GF axons are located at the dorsal surface and thus can be easily visualized under a microscope with differential interference contrast (DIC) optics. This allows the injection of the GF axons with dye at this site to label the entire GF including the axons and their terminals in the VNC. This method results in reliable and strong staining of the GFs allowing the neurons to be imaged immediately after filling with an epifluorescent microscope. Alternatively, the fluorescent signal can be enhanced using standard immunohistochemistry procedures3 suitable for high resolution confocal microscopy.

Whole Mount Preparation of the Adult Drosophila Ventral Nerve Cord for Giant Fiber Dye Injection

An in vivo dissection of the adult Drosophila ventral nerve cord (VNC) is demonstrated. This particular dissection method causes little damage to the VNC allowing the subsequent labeling of the giant fiber neurons with fluorescent dye for high resolution imaging.

성인 전체 마운트 준비 Drosophila</em장 섬유 염료 주입을위한> 복부 신경 코드

To analyze the axonal and dendritic morphology of neurons, it is essential to obtain accurate labeling of neuronal structures. Preparing well labeled ...

Labeling of Single Cells in the Central Nervous System of Drosophila melanogaster

In this article we describe how to individually label neurons in the embryonic CNS of Drosophila melanogaster by juxtacellular injection of the lipophilic fluorescent membrane marker DiI. This method allows the visualization of neuronal cell morphology in great detail. It is possible to label any cell in the CNS: cell bodies of target neurons are visualized under DIC optics or by expression of a fluorescent genetic marker such as GFP. After labeling, the DiI can be transformed into a permanent brown stain by photoconversion to allow visualization of cell morphology with transmitted light and DIC optics. Alternatively, the DiI-labeled cells can be observed directly with confocal microscopy, enabling genetically introduced fluorescent reporter proteins to be colocalised. The technique can be used in any animal, irrespective of genotype, making it possible to analyze mutant phenotypes at single cell resolution.

Labeling of Single Cells in the Central Nervous System of Drosophila melanogaster

We present a technique for labeling single neurons in the central nervous system (CNS) of Drosophila embryos, which allows the analysis of neuronal morphology by either transmitted light or confocal microscopy.

의 중추 신경계에 단일 세포의 라벨<em&gt; Drosophila melanogaster</em

In this  article we describe how to individually label neurons in the embryonic CNS of Drosophila melanogaster by juxtacellular injection of the ...

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by stressed conspecifics due to an odorant released during stress known as the Drosophila stress odorant (dSO). Through the use of the T-maze apparatus, one can quantify the avoidance of the dSO by responder flies in a very affordable and robust assay. Conditions necessary to obtain a strong performance are presented here. A stressful experience is necessary for the flies to emit dSO, as well as enough emitter flies to cause a robust avoidance response to the presence of dSO. Genetic background, but not their group size, strongly altered the avoidance of the dSO by the responder flies. Canton-S and Elwood display a higher performance in avoiding the dSO than Oregon and Samarkand strains. This behavioral assay will allow identification of mechanisms underlying this social behavior, and the assessment of the influence of genes and environmental conditions on both emission and avoidance of the dSO. Such an assay can be included in batteries of simple diagnostic tests used to identify social deficiencies of mutants or environmental conditions of interest.

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

사회 회피의 정량화에 대한 간단한 분석<em&gt; 초파리</em

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To complicate matters even further, the odors detected by the insect nervous system usually are not single compounds but mixtures whose composition and concentration ratios vary. This leads to an almost infinite amount of different olfactory stimuli which have to be evaluated by the nervous system.
To understand which aspects of an odor stimulus determine its evaluation by the fly, it is therefore desirable to efficiently examine odor-guided behavior towards many odorants and odor mixtures. To directly correlate behavior to neuronal activity, behavior should be quantified in a comparable time frame and under identical stimulus conditions as in neurophysiological experiments. However, many currently used olfactory bioassays in Drosophila neuroethology are rather specialized either towards efficiency or towards resolution.
Flywalk, an automated odor delivery and tracking system, bridges the gap between efficiency and resolution. It allows the determination of exactly when an odor packet stimulated a freely walking fly, and to determine the animal&#180;s dynamic behavioral reaction.

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

The automated tracking system Flywalk is used for high-resolution quantification of odor-guided behavior in Drosophila melanogaster.

에서 냄새 유도 행동의 고해상도 정량화<em&gt; 초파리</em사용&gt;<em&gt; Flywalk</em&gt; 패러다임

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To ...

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense organs provide an excellent model system for the study of mechanosensation. This protocol describes a simple touch behavior in fruit flies which can be used to identify mutations that interfere with mechanosensation. The tactile stimulation of a macrochaete bristle on the thorax of flies elicits a grooming reflex from either the first or third leg. Mutations that interfere with mechanotransduction (such as NOMPC), or with other aspects of the reflex arc, can inhibit the grooming response. A traditional screen of adult behaviors would have missed mutants that have essential roles during development. Instead, this protocol combines the touch screen with mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) to allow for only limited regions of homozygous mutant cells to be generated and marked by the expression of green fluorescent protein (GFP). By testing MARCM clones for abnormal behavioral responses, it is possible to screen a collection of lethal p-element mutations to search for new genes involved in mechanosensation that would have been missed by more traditional methods.

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

In order to identify novel mutations affecting mechanosensation, we designed an assay that measures the behavioral response to tactile stimulation of fly bristles in mutant clones generated by the MARCM method. The combination of techniques allows for the identification of mechanosensitive mutations that would otherwise be lethal.

의 Mechanosensation에 대한 행동 분석 클론의 MARCM은 기반<em&gt; 초파리</em

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. When selecting sites to deposit their eggs, female flies are capable of ranking the relative attractiveness of their options and choosing the &#34;greater of two goods.&#34; However, most egg-laying preference assays are not practical if one wants to take a systematic genetic screening approach to search for the circuit basis underlying this simple decision-making process, as they are population-based and laborious to set up. To increase the throughput of studying of egg-laying preferences of single females, we developed custom chambers that each can simultaneously assay egg-laying preferences of up to thirty individual flies as well as a protocol that ensures each female has a high egg-laying rate (so that their preference is readily discernable and more convincing). Our approach is simple to execute and produces very consistent results. Additionally, these chambers can be equipped with different attachments to allow video recording the egg-laying animals and to deliver light for optogenetics studies. This article provides the blueprints for fabricating these chambers and the procedure for preparing the flies to be assayed in these chambers.

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

This protocol describes a high throughput assay for testing egg-laying preferences of Drosophila melanogaster at single-animal resolution. This assay provides a simple, efficient, and scalable platform to identify genes and circuit components that control a simple decision-making process.

높은 처리량 분석은 개인의 알을 낳는 환경 설정을 검사합니다<em&gt; 노랑 초파리</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

사용 보상 추구 행동의 변화를 측정하는 간단한 방법<em&gt; 노랑 초파리</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of the right type and quantity of food therefore has a major influence on quality of life. Research on feeding behavior focuses on the underlying processes that ensure actual feeding and unravels the role of factors regulating internal energy homeostasis and the neuronal bases of decision-making. The model organism Drosophila melanogaster, with its great variety of genetically traceable tools for labeling and manipulating single neurons, allows mapping of neuronal networks and identification of molecular signaling cascades involved in the regulation of food intake. This report demonstrates the CApillary FEeder assay (CAFE) and shows how to measure food intake in a group of flies for time spans ranging from hours to days. This easy-to-use assay consists of glass capillaries filled with liquid food that flies can freely access and feed on. Food consumption in the assay is accurately determined using simple measurement tools. Herein we describe step-by-step the method from setup to successful execution of the CAFE assay, and provide practical examples to analyze the food intake of a group of flies under controlled conditions. The reader is guided through possible limitations of the assay, and advantages and disadvantages of the method compared to other feeding assays in D. melanogaster are evaluated.

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

The CApillary FEeder (CAFE) assay is a simple, budget-friendly, highly reliable method for investigating mechanisms underlying food intake. Used with the highly versatile genetic model organism Drosophila melanogaster, it provides a powerful means of gaining new insights into regulatory mechanisms of food intake.

모세관 공급 분석은 식품 섭취를 측정<em&gt; 노랑 초파리</em

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of ...

Analyzing Synaptic Modulation of Drosophila melanogaster Photoreceptors after Exposure to Prolonged Light

The nervous system has the remarkable ability to adapt and respond to various stimuli. This neural adjustment is largely achieved through plasticity at the synaptic level. The Active Zone (AZ) is the region at the presynaptic membrane that mediates neurotransmitter release and is composed of a dense collection of scaffold proteins. AZs of Drosophila melanogaster (Drosophila) photoreceptors undergo molecular remodeling after prolonged exposure to natural ambient light. Thus the level of neuronal activity can rearrange the molecular composition of the AZ and contribute to the regulation of the functional output.
Starting from the light exposure set-up preparation to the immunohistochemistry, this protocol details how to quantify the number, the spatial distribution, and the delocalization level of synaptic molecules at AZs in Drosophila photoreceptors. Using image analysis software, clusters of the GFP-fused AZ component Bruchpilot were identified for each R8 photoreceptor (R8) axon terminal. Detected Bruchpilot spots were automatically assigned to individual R8 axons. To calculate the distribution of spot frequency along the axon, we implemented a customized software plugin. Each axon&#39;s start-point and end-point were manually defined and the position of each Bruchpilot spot was projected onto the connecting line between start and end-point. Besides the number of Bruchpilot clusters, we also quantified the delocalization level of Bruchpilot-GFP within the clusters. These measurements reflect in detail the spatially resolved synaptic dynamics in a single neuron under different environmental conditions to stimuli.

Analyzing Synaptic Modulation of Drosophila melanogaster Photoreceptors after Exposure to Prolonged Light

Here we show how to quantify the number and spatial distribution of synaptic active zones in Drosophila melanogaster&#160;photoreceptors, highlighted with a genetically encoded molecular marker, and their modulation after prolonged exposure to light.

의 시냅틱 변조 분석<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 장시간 빛에 노출 후 광수

The nervous system has the remarkable ability to adapt and respond to various stimuli. This neural adjustment is largely achieved through plasticity at ...