이 작품은 NCTR / FDA에 의해 자금을 지원했다.

동영상에 표시되지 않지만, 쥐가 먼저 미만의 3 분의 마취의 결과로, pentobarbital 300 밀리그램 / kg의 과다 복용을 부여하고 목 베기에 의해 사망​​했다. 그들의 두뇌는 빠른 속도로 다음했지만주의 깊게 두개골에서 제거하고 5 분을 위해 얼음처럼 차가운 정상적인 생리에 냉각. 그것은 이전에 MAV가 (레이어 I 상단) 피질의 표면에서 분리 될 수 있도록 MAV을 해부 할 시간이 양의 뇌는 쿨하게하는 것이 중요합니다. 뇌 그런 다음 얼음처럼 차가운 정상적인 생리 또는 0.1 M의 인산 나트륨 버퍼 생리 산도 = 7.4의 가득 얼음을 쉬고있는 유리 페트리 접시 (1cm 깊이)의 하단에 배치되었습니다. 모든 해부는 생리에 익숙해 대부분 뇌가 이루어집니다. 1. 뇌의 송과선의 제거 <ol><li> 뇌 등쪽 측면까지를 (페트리 접시의 바닥에 상대적으로) 배치합니다. 뇌의 송과선은 t에 불과 뱃 부리 장식이있는 두 반구 사이에 가장 꼬리 복부 지역에 위치하고 있습니다그는 소뇌 (솔방울 모양의 리 세스)를 아래 또는 colliculi를 통해 meninges의 표면에 있습니다. 처음 두 개의 작은 구부러진 팁 집게를 사용하여 뇌의 송과선을 제거합니다. 이 피질과 같은 색상으로 분홍색이지만, 종종 혈액과 뇌 제거에서 잔류 vasculature의 흔적에 둘러싸여 있습니다. </li></ol> 2. MAV의 제거 <ol><li> &quot;거꾸로&quot;를 통해 뇌를 뒤집기과 척추 동맥, forebrain의 meninges과 vasculature에서 폰스를 덮고 작은 동맥과 meninges를 구분합니다. forebrain MAV의 제거 그 다음 시작됩니다. 이 분해 과정에 ventrally 시작하는 것이 중요합니다. 윌리스의 원의 큰 동맥, 중, 뇌동맥 (MCA)와 앞 동맥 강한하고있는에 &quot;비계&quot;역할을 pial의 작은 표면 동맥과 arterioles 막은 다음 meninges의 나머지 부분과 피질에서 제거 할 수 있습니다. m에 대한 Scremin에 7 리뷰보기광석 시각적 표현과 대뇌 표면 vasculature에 대한 자세한 내용. </li><li> 두 반구를 시작으로, 내부 경동맥 시점에 바로 뒤 뒤 교통 동맥을 잘라야 작은 구부러진 팁 집게를 사용합니다. 따라서, forebrain의 더 앞쪽과 뒤쪽 동맥 나무를 분리. contralateral 반구에 대해 동일한 과정을 반복합니다. </li><li> MCA와 포셉과 앞쪽 동맥 그립, 복부 앞쪽 피질 (piriform, 후각 결절)을 덮고있는 MAV가 후각 기관을 통해 주위를 둘러 해제 될 수 있도록 앞 - 등쪽 방향으로 부드럽게 당겨. 이 훨씬 앞 피질 (cingulated 및 궤도) 커버 MAV의를 제거합니다. </li><li> 페트리 접시에 45-90 ° 각도로 뇌를 켜십시오. 측면 대뇌 피질의 영역을 (세분화 된 섬나라, 보조 somatosensory 및 청각 피질) 주변 MAV의 측면보다 앞쪽 영역은 MCA 및 관련 arter을 그립하여 피질에서 해방 될 수있다이거 야는 부드럽게 피질을 따라 dorsally 당겨. 필요한 경우, 포셉의 끝은 절개 중에 피질에서 주요 동맥를 들고 확보하는 데 사용할 수 있습니다. </li><li> 이제 MAV의 더 뒤쪽 측면 영역을 제거합니다. (참고, 그것은 MAV는 추위와 수화 상태를 유지하려면이 수확 과정에서 다른 한 반구에서 전환하는 것이 가장 좋습니다. 또한, 피질에서 MAV를 자유롭게에 저항이 일시적으로 contralateral 반구 한 반구의 스위치가 발생하는 경우 그리고 나중에 원래 남반구로 이동합니다.) </li><li> 기본 somatosensory을 둘러싼 MAV의 가장 등쪽의 영역을 제거하고 모터 피질 뇌 등쪽 측면까지를 (페트리 접시의 바닥에 상대적으로) 설정하려면 다음과 같이하십시오. 결국 뇌에서 MAV를 확보하려면 sagital 굴을 따라 포셉의 끝 부분을 사용합니다. 수확 MAV의이 부분은 어느 테스트 및 분석을 할 때까지 얼음 차가운 생리에 일시적으로 보관거나 그 이상의 처리를 위해 냉동 할 수 있습니다. 자주피질의 가장 뒤쪽 / 꼬리 지역 (entorhinal 영상 및 대부분의 꼬리 청각 cortices) 덮고있는 MAV는 피질에 부착 남아 있습니다. 의 제거는 retrosplenial 피질과 colliculi 놓인 사이의 MAV가 해부하는 동영상에 나중에 표시됩니다. </li></ol> 3. 맥락막 얼기의 제거 <ol><li> 뇌 등쪽면을 배치하고 큰 집게는 반구 사이의 중간 선을 통해 작은 포셉을 밀어 후 상단에 피질과 코퍼스 callosum (bregma에서 ≈ -3.3 mm)를 통해 구멍에 끝을 사용과 장소에서 개최 해마의 중간 선. </li><li> 측면 뇌실의 대부분을 노출 등쪽 해마와 심장에서 떨어져 callosum과 피질을 끌어 포셉을 사용합니다. 맥락막 얼기가 자리 잡고 있으며 길이를 실행하는 주요 동맥을 demarcating 빨간색 물결 모양 선으로 식별 할 수 있습니다. 세 번째 벤처의 측면 벽을 놀리려는 포셉의 두 끝을 사용하여tricle과 가장 꼬리 끝 (bregma 8에서 ≈ -4.3 mm)에서 확대. </li><li> 작은 집게 사용하여 맥락막 얼기 무료의 끝을 당겨. 그런 다음 심장과 꼬리가있는 / putamen 사이의 매우 앞 지역 (대부분의 뱃 부리 장식이있는 범위 내에서, Bregma에서 ≈ 1.6 mm)로 이동하여 포셉은 심실의이 섹션을 확대하고 맥락막 얼기 무료로 당겨와 함께. 두 번째 남은 맥락막 얼기를 얻기 위해 contralateral 반구에 동일한 절차를 수행합니다. 다시 조직은 하나 테스트 및 분석을 할 때까지 얼음 차가운 생리에 일시적으로 보관거나 그 이상의 처리를 위해 냉동 할 수 있습니다. </li></ol> 4. Retrosplenial, 청각 및 Visual 컴퓨터에 접속을 포함한 피질의 더 꼬리 지역에서뿐만 아니라 그 시상과 Colliculi 놓인 제 3 뇌실에 남아있는 MAV의 제거 <ol><li> 시상 및 colliculi 이상 MAV를 노출 두 반구에서 전체 해마를 제거합니다. 의 제거MAV이 부분은 피질 이상 MAV의 제거보다 훨씬 덜 어렵습니다. </li><li> 시상의 앞쪽 부분을 놓인 부드럽게 caudally 당겨 큰 vasculature을 쥐었고하여 MAV 무료의이 부분을 당겨. 이 vasculature는 위에의 collicular 네트워크에 연결되어 등쪽 해마와 등쪽 시상 네트워크에 혈액을 공급하고 있습니다. 꼬리 동맥 원 vasculature의 마지막 부분에 도달 할 때까지 caudally 점차적으로 무료 supracollicular 네트워크를 그냥 버려 당겨. 이 시점에서, 더 많은주의를 세분화 retrosplenial, 기본 청각 및 시각 cortices의 표면에 남아있는 뒤 복부 MAV를 제거하려면주의해야합니다. 피질의 더 앞쪽 부분을 덮고 MAV의 다른 부분과 마찬가지로,이 조직은 하나 테스트 및 분석을 할 때까지 얼음 차가운 생리에 일시적으로 보관하거나 나중에 처리하기 위해 고정. 이 두 번째 MAV 섹션에서 수확 남은 뒤 복부 MAV는 제거해야합니다그들은 개별적으로 분석 할 경우 d는 피질을 다루는 첫 번째 해부하는 MAV 섹션에 추가되었습니다. </li></ol> 5. 대표 결과 절개가 제대로 실행되면, 결과 MAV의 조직은 45-35에 대한 MG 총 무게가이 그대로 단체에 있어야합니다. 피질의 대부분을 둘러싼 처음 해부하는 MAV 25 밀리그램 및 시상를 덮고있는 MAV에 대해 무게해야 colliculi과 뒤통수 피질 약 15 밀리그램 무게해야합니다. 이 vasculature의 잔류 혈액의 색이 약간 분홍빛이 도는해야합니다. 양국 맥락막 얼기 수확은 각 무게 1-2 MG 두 개의 그대로 조직 샘플에 있어야합니다. 초과 물이 조직 손실을 방지하기 위해, 이러한 렌즈 청소에 사용하는 등 조직 종이를 사용하여 저장 또는 처리하기 전에 MAV에서 제거 할 수 있지만이 해부하는 맥락막 얼기에서 초과 물을 제거하는 좋은 생각이 아닙니다. 그림 1에 생성되었습니다 표현 profil을 비교<html> 사용 제어 조건 하에서 세 지역에서 에스 (striatum, 정수리 피질과 MAV) 애질런트을 014,879 전체 쥐 게놈 4x44K 60mer oligonucleotide 어레이 (G4131F, 애질런트 테크놀로지스, 팔로 알토 (Palo Alto), CA, NCBI GEO 가입 # GPL7294, GSE23093과의 존재 GSE29733 NCBI GEO 저장소). 1) striatum의 정수리 피질에 비해 2) MAV는 정수리 피질에 비교하여 그림에서 두 플롯은 pictorially 표현을 보여줍니다. 이 striatum와 정수리 피질이 훨씬 더 밀접하게 MAV보다 서로 관련이있는 것이 분명하다. MAV로 맥락막 얼기를 비교 데이터는 향후 출판물에 표시됩니다. 그러나, MAV 및 맥락막 얼기의 표현 프로필이 더 가깝게는 striatum와 정수리 피질에보다 서로 관련되어있을 것입니다. 그림 2는 MAV의 차동 유전자 표현 고열에 대응 (EIH) 대 AMPH는 비교 표시 제어하고 서로합니다. 내용은 &quot;&gt; 제어 동물의 MAV의 공식 NCBI 유전자 기호가있는 이상 11,000 유전자의 유전자 발현은 striatum와 정수리 피질에 기록 된 사람들에 비해되었다.이 유전자 2000 이상 MAV의 2.5 배 이상 차이가 표현을했다 두 neuronal이 풍부한 조직에 비해, 그리고 550 유전자 표현의 10 배 이상 차이가 있었다. 이들 중 좀 더 40보다 % (253)는 10 배 또는 MAV에 이상 감소 표현과 유전자 있었고, 관련되었다 neuronal 기능.와 343 유전자는 정수리 피질과 striatum에 비해 MAV의 10 배 이상 표현으로이있었습니다. 유전자의이 목록은 MAV에서 매우 높은 농축과 유전자를 결정하는있는 출발점으로 사용되었습니다. 표 MAV 15 배 표현보다 더 큰 1 목록 유전자는 정수리 피질과 striatum에 비해과 기능에 대해를 분류합니다. 이러한 유전자의 대부분은 혈관 시스템 및 / 또는 면역 시스템에 관련된되었다.이 t는유전자의 ypes은 5에 대한 풍부한해야 - 10 -로 인해 증가 vasculature 자체와 그 안에 존재하는 혈액의 이동이 포착되었다. 그러나, 알려진 일반적인 혈관 기능을 가진 유전자를 들어, 15 배 이상 증가 MAV의 농축을 나타냅니다. 유전자의 숫자였다 매우 큰 배 변화도있었습니다, 1) 세포 외 기질 단백질 (특히 vasculature 관련이 없습니다), 2) 용질 수송 및 3) 지질 및 retinoic 산성 대사. 물론, 몇 가지 성장과 차별화 유전자 나 전사 인자가 발견되었습니다 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/4285/4285fig1.jpg" /> 1 그림. 정수리 컴퓨터에 접속하고 Striatum와 MAV의 유전자 발현의 비교. 정수리 피질과 striatum (위 플롯)와 정수리 피질과 MAV (아래의 음모)의 유전자 발현 수준을 비교 화산 줄거리. 빨간색 기호가 크게 다른 betwe있는 유전자를 나타냅니다실내 P에서 지역 &lt;0.05와 지역 사이 1.5 배 이상 차등 표현되어 있습니다. 검은 색 기호는 크게 (P&gt; 0.05) 지역 사이에 차이가없는 유전자를 대표하고 1.5 배 식에 서로 다른 미만의 거리에 있습니다. 핑크 기호는 P는 &lt;0.05에서 표현의 1.5 배 차이보다하지만, 통계적으로 크게 다른과 유전자를 나타냅니다. 노란색 기호는 1.5 배 이상 표현이 유전자를 식별하지만,이 변경 사항은 P에서 &lt;0.05 통계적으로 의미가 없습니다. 약어 AMPH의 암페타민 EIH 환경에서 비롯된 고열이었을 MAV의 meninges 및 관련 뇌성 vasculature 규격 normothermic 컨트롤 <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/4285/4285fig2.jpg" /> 그림 2. 비교 고열과 MAV의 유전자 발현에 암페타민의 효과. 화산 플롯3 시간의 시점에서 생리, EIH 또는 AMPH 후 MAV의 유전자 발현 수준. 빨간색 기호가 검은 점 / 원은 크게 지역 사이에 차이가없는 유전자를 대표하면서 전혀 다른 것으로 간주되는 유전자를 나타냅니다. 추가 통계 분석 관리 및 치료 사이의 차이가 통계적으로 의미가 사실상 된 표현을 확인하는 데 사용되었다. <table border="1"><tbody><tr><td fo:width="1in"> MAV의 표현 뇌 표현 </td><td fo:width="4.5in"> NCBI 유전자 기호 </td><td fo:width="1.5in"> 조직 특이성 또는보고 기능 (들) </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Col8a1 Anxa2, 데, Esm1, Glycam1, KL, Lect1, Lepr, Lum, Myh11, Ogn, Tagln, Thbs2, Tnnt2 </td><td> Vasculature &amp; 하트 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Ccl19, Cd74, Defb1, Lrrc21, Mgl1, Mrc1, Msln, PLa2g5, Prg4, RT1-BB, RT1 - 다 </td><td> 면역 시스템 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Adh1, Aebp1, Aldh1a2, Gstm2 </td><td> Retinoic 산성 및 지질 처리 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Cdh1, Col3a1, Col1a2, Colec12, Cpxm2, Cpz, Dcn, Emp3, Gpc3, Nupr1, Omd, Pcolce Slamf9, Tmem27, Tspan8 </td><td> 세포 외 기질 및 세포 세포 접합 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Aqp1, Asgr1, Kcnj13, Slc5a5, Slc6a13, Slc6a20, Slc22a6, Sned1, TTR </td><td> 이온 및 용질 항상성 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Alx3, Cdkn1c, Foxc2, Igfbp2, Ifitm1, Ifitm2, Nkx6-1, Osr1, Prrx2, Sfrp1, Tbx15. Upk1b, Wisp2, Wnt6 </td><td> 개발 및 스크립트 규정 </td></tr><tr><td> &gt; 50 배 </td><td> Gpha2, Mfap5, Mpzl2 Plac8, Scgb1c1, Sostdc1, Steap1 </td><td> 알 수없는 및 기타 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </TD&gt; <td> Anxa1, Angpt2, C6, Gjb2, Ptgis, Thbd, Timp1 </td><td> Vasculature &amp; 하트 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> Casp12, Ccl2, Ccr1, Cd14, Cxcl10, Ifitm3, Klra5, Lgals1, Lgals3, Ms4a4a, Ms4a7, Plscr1, Spp1, Xcl1 </td><td> 면역 시스템 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> Col6a3, Cpxm1, Efemp1, Fmod, MGP, Nid2 </td><td> 세포 외 기질 및 세포 세포 접합 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> CP, Cubn, Gcgr, S100a6, Scn7a, 스코틀랜드, Slc4a5, Slc16a11, Slco1a5 </td><td> 이온 및 용질 항상성 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> CFD, Ch25h, Crabp2, Rarres2 </td><td> Retinoic 산성 및 지질 처리 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> Bmp6, Casp12, Dab2, Folr1, Igf2, Msx1, Tbx18, Twist1, Wnt5b </td><td> 개발 및 스크립트 규정 </td></tr><tr><td> 30-50 배 </td><td> Cela3b, Cln6, C1qtnf7, Copz2, Dhrs7c, Gng11, Prss23, Srpx, VIM </td><td> 알 수없는 및 기타 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> ADM, Angpt1, Angptl2, Bgn, Cklf, Cnn1, Cox8h, Ctsk, F13a1, Gja5, Klf4, 훈제 연어, Lyz, Myl9, Procr, Pros1, RT1 - 바, Serpinb10, Serping1, Serpinf1, Tgm2, Tnmd, Trim63, Txnip , Vamp5, Vtn </td><td> Vasculature &amp; 하트 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> 에이다, Bst2, Ccl6, Cd40, Cd68, Ctsc, DAP, Faim3, Fkbp9, Fxyd5, Fmo1, Glipr1, Ier3, Ifi47, Igsf6, MSC, Nfatc4, RT1 - Db1, Serpinb1a, Tir4, Tubb6 </td><td> 면역 시스템 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> Adamtsl4, Col1a1, Crb3, Dpt, Egfl3, Fbn1, Fbln1, Fbln5, Fn1, Itgb4, Lama2, Lgals3bp, Loxl1, Mfap4, Mmp14, Mmp23, Ppic, Serpinh1, Timp3 </td><td> 세포 외 기질 및 세포 세포 접합 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> Cybrd1, Selenbp1, Slc2a4, Slc9A2, Slc13a3, Slc16a4, Slc22a8, Slc22a18 </td><td> 이온 및 용질 항상성 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> Agpat2, Bdh2, Cyp26b1, Lpar3, Ltb4dh, Olr1, Pon3, Rbp1, Rbp4 </td><td> Retinoic 산성 및 지질 처리 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> Atf3, Dkk4, Eya2, Ifitm7, Ltbp1, Mustn1, Nr2f2, Ptrf, Sphk1, Tgfbi, Tcea3 Tcfap2b, Wnt2b, Wnt5a, Zic1 </td><td> 개발 및 스크립트 규정 </td></tr><tr><td> 15 30 배에 </td><td> Adamts12, Adamtsl3, C1r, Crispld2, Crygn, Cyp1b1, DSE, Enpep, Enpp2, Epn3, Flna, Fmo3, Gnmt, Gprc5c, Hspb1, Klc3, Krt18, Krt19, MDK, Mesp1, Ms4a6a, Ms4a6b, Ms4a11, Net1, Pdlim2, Phactr2, Plp2, Ppp1r3b, Pqlc3, Rin3, Spag11, Sult1a1, Tmem106a, Wfikkn2 </td><td> 알 수없는 및 기타 </td></tr></tbody></table> * 표에 포함 된 유전자는 striatum과 pariet에 두 개 이상의 15 배 이상 표현해야합니다알 피질과 배경 레벨 위의 5 배. 각 유전자의 두 비율 (MAV / striatum 또는 MAV / 정수리 피질)의 낮은은 그룹화에 사용되었다. 유전자는 내피 세포에서 발견뿐만 아니라, 가능성이 면역 반응을 중재에 중요한 역할을하고 있습니다. 표 1. 15 배 * 또는 striatum와 정수리 피질에 비해 MAV에 더 증가 표정으로 유전자.

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F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drugs+of+abuse-induced+hyperthermia,+blood-brain+barrier+dysfunction+and+neurotoxicity:+neuroprotective+effects+of+a+new+antioxidant+compound+H-290/51.">Drugs of abuse-induced hyperthermia, blood-brain barrier dysfunction and neurotoxicity: neuroprotective effects of a new antioxidant compound H-290/51.</a> 13, 1903-1923 (2007).</li><li>Ho, E. L., Josephson, S. A., Lee, H. S., Smith, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebrovascular+complications+of+methamphetamine+abuse.">Cerebrovascular complications of methamphetamine abuse.</a> Neurocrit. Care. 10, 295-305 (2009).</li><li>Ohta, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delayed+ischemic+stroke+associated+with+methamphetamine+use.">Delayed ischemic stroke associated with methamphetamine use.</a> J. Emerg. Med. 28, 165-167 (2005).</li><li>Brenner, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuropsychological+and+neuroimaging+findings+in+traumatic+brain+injury+and+post-traumatic+stress+disorder.">Neuropsychological and neuroimaging findings in traumatic brain injury and post-traumatic stress disorder.</a> Dialogues Clin. Neurosci. 13, 311-323 (2011).</li><li>Case, M. 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우리는 공개 할 아무 것도 없습니다. 여기에 제시된 작품은 반드시 식품 의약품 안전청의 의견을 대표하지 않을 수 있습니다.

기술 MAV의 측면과 맥락막 얼기의 해부 그보다는 뇌가 생리 인산염은 버퍼 정상적인 생리 또는 나트륨에 대부분의 시간을 &#39;잠수&#39;할 MAV의 해부 동안 중요합니다. MAV, 피질은 절개 중에 탈수 할 수 있도록하는이 MAV 및 / 또는 피질에서 이러한 준수 MAV 섹션을 제거 할 수 없다는의 결과 수확 대뇌 피질의 조직의 양을 증가 대뇌 피질의 레이어 I.에 단단히 준수 MAV가 발생합니다. 또한, 인내는 해부시 필요합니다. 한 해부 동안 한 반구에서 피질에서 MAV를 제거하는 일부 저항을 발생한다면, 다른 반구로 전환 및 저항가 발생했습니다 옆에 나중에 다시 이동합니다. 이 방법은 완벽하게 연습을 수행하고 MAV 조직의 지속적으로 균일 한 수확이 달성되기 전에 15-5에 대한 &#39;실천&#39;dissections이 필요합니다. 해부와 레모을 시작하는 방법뇌의 바닥에있는 동맥 원에서 MAV의 발 지원으로 큰 vasculature를 사용하여 meninges의 제거 촉진 &quot;비계를.&quot; 대부분 원래 희생 후 MAV의 vasculature에있는 혈액은 절개 중에 배출해야하고, MAV에서 수확 RNA의 5 % 이하의 피가 기원해야합니다. 그것은 전에 목 베기 및 뇌 제거에, 조직 학적 기술을 사용하여, 생리의 50-70 ML과 동물을 관류하여 거의 모든 혈액을 제거 할 수 있습니다. 그러나 다음 해부 동안 MAV 조직을 시각화하기가 훨씬 더 어렵습니다. MAV의 조직의 &quot;오염&quot;의 세 가지 가능성이 가장 높은 소식통은 뇌의 송과선, 대뇌 피질의 레이어 I 조직 및 잔여 후각 망울 조직이지만이 준비 뇌하수체 조직을 얻을 수도 있습니다. MAV에 솔방울 모양의 오염은 색이 진한 빨간색 원형 1~2밀리미터 직경 영역을 포함하는 MAV에 의해 검출된다. 주요 기능뇌의 송과선의는 일반적으로 MAV에서 완전히 다른 것으로 간주됩니다. 의 주요 기능은 circadian 리듬 9 측면을 조절 멜라토닌, 그리고 지질 전구체의 lipoxygenation 10을 생산하는 것입니다. lipoxygenase 활동을 조절 유전자 훈제 연어가 주로 뇌의 송과선 10 성인에 존재하는 것으로 생각되었지만, 결과는 또한 MAV에 상당한 수준의 지속적 존재 나타냅니다. 거기에 동봉 색상의 훨씬 창백 일부 1~2mm의 밀도의 조직을 갖는 분홍빛이 도는 웹과 같은 MAV 조직에 잔류 피질이나 후각 망울 오염 결과. 이것은 버퍼의 표면에 MAV &quot;를 떠&quot;다음 두 해부 집게를 사용하여 무거운 대뇌 피질이나 전구 조직을 제거하여 발견 할 수 있습니다. 대뇌 피질의 레이어 나 조직, hypothalamic 조직 또는 뇌의 송과선에서 MAV의 오염이 존재하는 경우, 여러 유전자가 signifi을해야합니다&quot;새로&quot;해부에 일반적으로 존재하는 것보다 더 cantly 표현. 뇌의 송과선과 MAV의 오염은 arylalkylamine 멜라토닌의 합성에 필요한입니다 (Aanat) N-아세틸 높은 표현하게됩니다. 솔방울 모양의 오염 MAV를 해부하는 동안 발생하는 경우 불행하게도, MAV의 훈제 연어의 수준을 정확하게 결정 할 수 없습니다. 대뇌 피질의 조직과 MAV의 오염은 hippocalcin (Hpca), parvalbumin (Pvalb) 및 / 또는 neuronal pentraxin 수용체 (Nptxr)와 같은 신경 세포 특정 유전자의 이상 표현하게됩니다. hypothalamic 조직과 MAV의 오염은 성장 호르몬 1 (Gh1), ​​proopiomelanocortin (Pomc)의 높은 표현하게됩니다. 수확 조직의 일부 오염 물질이 존재하는 경우,이 유전자의 대부분은 식별 및 유전자 발현 분석에 사용되지 수 있습니다. 이 순환 blo에 존재하는 유전자에 특히 중요합니다아직 MAV 또는 맥락막 얼기에 존재 할 수 있습니다 OD. 수확 MAV 및 맥락막 얼기에서 유전자 발현 데이터를 Interpretting 관련 meninges (MAV)과 맥락막 얼기와 함께 뇌성 표면 (표면) vasculature은 대 혈액 흐름과 뇌척수 (CSF) 항상성 4,11, 12, 13, 14, 15, 16, 17 필요합니다. 조직 수확은 생화학 및 생리학 분석에 적합하며, MAV는 유전자 발현 분석을 통해 암페타민과 고열의 1,2에서 생산 손상에 민감 할 표시되었습니다. 이러한 결과는 심각한 고열 및 일반 18,19,20에서 뇌 vasculature에 암페타민에 노출에 대해 알려진 무엇에 상응합니다. 인간 임상 데이터는 경막 하 vasculature는 암페타민과 메스암페타민 (21, 22)에 의해 손상에 민감 있다는 믿음을 지원합니다. 뿐만 아니라, 전공 및 부전공 뇌성 vasculatures은 includ두부 외상 23,24 25 진탕 종류를 조사 할 때 잠재적으로 높은 관심을 끌 수있는 MAV에 수확하는 meninges의 pial 층에 사람들을 들죠. MAV에서 나왔고 현재 유전자 발현 프로필은 pial 그리고 아마도 거미집 모양의 수막 멤브레인은 CSF의 구성을 조절에 예상보다 큰 역할을 할 수 있음을 나타냅니다. 앞으로 현미경 기술을 해부의 사용을 통해, 그것은 더 pial와 거미집 모양의 멤브레인은 큰 동맥 vasculature 존재에서 그리고 아마도 서로 분리 될 수 있도록 MAV를 포함하는 조직을 분리 할 수​​도 있습니다. 이것은 수확 MAV의이 3 구성 요소의 각각의 기능의 더 나은 해석을 수있게 될 것입니다.

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약 / 장비의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td> 보통 식염 (9g 생리 / 1 리터 H 2 O) </td><td> 사내 </td><td></td><td> 해부 버퍼 </td></tr><tr><td> 0.1 M의 인산 나트륨의 pH를 7.4 </td><td> 사내 </td><td></td><td> 해부 버퍼 </td></tr><tr><td> 뼈 Rongeurs </td><td> Roboz </td><td> RS-8300 </td><td> 해골 뼈 제거 </td></tr><tr><td> 집게 - 구부러진 팁 (4 &quot;길이 및 0.8 mm 폭 팁) </td><td> Roboz </td><td> RS-5135 또는 RS-5137 </td><td> 해부 포셉 </td></tr><tr><td> 집게 - 스트레이트 팁 (5.5 &quot;길이) </td><td> Roboz </td><td> RS-8124 또는 RS-8104 </td><td> 엄지 드레싱 포셉 </td></tr></tbody></table>

a visual description of the dissection of the cerebral surface vasculature and associated meninges and the choroid plexus from rat brain

이 비디오 프리젠 테이션을 지원하는 forebrain 기능, 적절한 뇌 내에 거주하지, 가장 중요한 두 높은 혈관 구조를 수확하는 방법을 보여 만들어졌습니다. 그들은 관련된 meninges (MAV)와 뇌성 혈액 흐름과 뇌척수 (CSF) 항상성에 필요한 맥락막 얼기와 함께 대뇌 표면 (표면) vasculature 있습니다. 수확 조직 생화학 및 생리학 분석에 적합하며, MAV는 암페타민과 고열의 1,2에서 생산 손상에 민감 할 표시되었습니다. 머리 외상의 진탕 종류를 조사 할 때뿐만 아니라, MAV에 수확 전공 및 부전공 뇌성 vasculatures 가능성이 높은 관심입니다. 이 프리젠 테이션에 해부하는 MAV는 pial과 meninges의 거미집 모양의 막 (이하 경질)과 전공 및 부전공 뇌성 표면 vasculature의 일부 구성되어 있습니다. 신경 얼기는 해부하는 맥락막은 리터에 거주 구조입니다Oldfield와 매킨리 3,4,5,6에 의해 설명 된대로 ateral은 심실이 수축하지. 이 두 조직을 수확에 사용되는 방법은 meninges과 더 큰 뇌성 표면 vasculature이없는 지역 대뇌 피질의 조직의 수확을 촉진하고, 등이 소요 두 조직의 절개 등 striatum, 시상 하부, 해마 같은 다른 뇌 조직을 수확과 호환됩니다 5-10 분 총에서. 그림과 같이이 프리젠 테이션에 설명 된 해부하는 MAV 및 맥락막 얼기의 유전자 발현 수준은 NCBI GEO 저장소에서 GSE23093 (MAV)와 GSE29733 (맥락막 얼기)에서 찾을 수 있습니다. 이 데이터되었으며, 더 MAV 및 맥락막 얼기의 기능을 이해하는 방법과 신경성 등 심각한 고열과 AMPH 등의 이벤트가 부정적인 자신의 기능에 영향을 미칠하는 데 사용하고 있습니다.

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A Visual Description of the Dissection of the Cerebral Surface Vasculature and Associated Meninges and the Choroid Plexus from Rat Brain

이 동영상 프리젠 테이션 forebrain 기능을 지원하는 가장 중요한 두 높은 혈관 구조를 수확하는 방법을 보여줍니다. 그들은 관련된 meninges (MAV)와 뇌성 혈액 흐름과 뇌척수 (CSF) 항상성에 필요한 맥락막 얼기와 함께 대뇌 표면 (표면) vasculature 있습니다.

쥐의 뇌에서 뇌 표면 Vasculature 및 관련 Meninges의 해부 및 맥락막 얼기의 시각적 설명

This video presentation was created to show a method of harvesting the two most important highly vascular structures, not residing within the brain ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

47.9K 조회수.  National Center for Toxicological Research. 이 동영상 프리젠 테이션 forebrain 기능을 지원하는 가장 중요한 두 높은 혈관 구조를 수확하는 방법을 보여줍니다. 그들은 관련된 meninges (MAV)와 뇌성 혈액 흐름과 뇌척수 (CSF) 항상성에 필요한 맥락막 얼기와 함께 대뇌 표면 (표면) vasculature 있습니다.

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Focal Cerebral Ischemia Model by Endovascular Suture Occlusion of the Middle Cerebral Artery in the Rat

Stroke is the leading cause of disability and the third leading cause of death in adults worldwide1. In human stroke, there exists a highly variable clinical state; in the development of animal models of focal ischemia, however, achieving reproducibility of experimentally induced infarct volume is essential. The rat is a widely used animal model for stroke due to its relatively low animal husbandry costs and to the similarity of its cranial circulation to that of humans2,3. In humans, the middle cerebral artery (MCA) is most commonly affected in stroke syndromes and multiple methods of MCA occlusion (MCAO) have been described to mimic this clinical syndrome in animal models. Because recanalization commonly occurs following an acute stroke in the human, reperfusion after a period of occlusion has been included in many of these models. In this video, we demonstrate the transient endovascular suture MCAO model in the spontaneously hypertensive rat (SHR). A filament with a silicon tip coating is placed intraluminally at the MCA origin for 60 minutes, followed by reperfusion. Note that the optimal occlusion period may vary in other rat strains, such as Wistar or Sprague-Dawley. Several behavioral indicators of stroke in the rat are shown. Focal ischemia is confirmed using T2-weighted magnetic resonance images and by staining brain sections with 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) 24 hours after MCAO.

Surgical induction of ischemic brain damage in the rat is a widely used model for stroke research. Here we demonstrate the induction of focal cerebral ischemia by occlusion of the middle cerebral artery. Visualization of the resulting infarct by histological staining and magnetic resonance imaging is also shown.

쥐 중간 대뇌 동맥의 폐색의 Endovascular 봉합사에 의해 초점 대뇌 국소 빈혈 모델

Stroke is the leading cause of disability and the third leading cause of death in adults worldwide1. In human stroke, there exists a highly variable ...

연구

신경과학

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to monitor the disease course in the follow-up period. Changes in the VEP parameters closely correlate with pathological damage in the optic nerve. This protocol provides a detailed description about the rodent model of optic nerve microinjection, in which a partial demyelination lesion is produced in the optic nerve. VEP recording techniques are also discussed. Using skull implanted electrodes, we are able to acquire reproducible intra-session and between-session VEP traces. VEPs can be recorded on individual animals over a period of time to assess the functional changes in the optic nerve longitudinally. The optic nerve demyelination model, in conjunction with the VEP recording protocol, provides a tool to investigate the disease processes associated with demyelination and remyelination, and can potentially be employed to evaluate the effects of new remyelinating drugs or neuroprotective therapies.

Focal demyelination is induced in the optic nerve using lysolecithin microinjection. Visual evoked potentials are recorded via skull electrodes implanted over the visual cortex to examine the signal conduction along the visual pathway in vivo. This protocol details the surgical procedures underlying electrode implantation and optic nerve microinjection.

실험 시신경의 탈수 초화의 쥐 모델에서 시각 유발 전위 기록

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Observation of the Ciliary Movement of Choroid Plexus Epithelial Cells Ex Vivo

The choroid plexus is located in the ventricular wall of the brain, the main function of which is believed to be production of cerebrospinal fluid. Choroid plexus epithelial cells (CPECs) covering the surface of choroid plexus tissue harbor multiple unique cilia, but most of the functions of these cilia remain to be investigated. To uncover the function of CPEC cilia with particular reference to their motility, an ex vivo observation system was developed to monitor ciliary motility during embryonic, perinatal and postnatal periods. The choroid plexus was dissected out of the brain ventricle and observed under a video-enhanced contrast microscope equipped with differential interference contrast optics. Under this condition, a simple and quantitative method was developed to analyze the motile profiles of CPEC cilia for several hours ex vivo. Next, the morphological changes of cilia during development were observed by scanning electron microscopy to elucidate the relationship between the morphological maturity of cilia and motility. Interestingly, this method could delineate changes in the number and length of cilia, which peaked at postnatal day (P) 2, while the beating frequency reached a maximum at P10, followed by abrupt cessation at P14. These techniques will enable elucidation of the functions of cilia in various tissues. While related techniques have been published in a previous report1, the current study focuses on detailed techniques to observe the motility and morphology of CPEC cilia ex vivo.

Observation of the Ciliary Movement of Choroid Plexus Epithelial Cells Ex Vivo

In this study, a detailed light microscopic technique was optimized for real-time observation and analysis of the motion of CPEC cilia ex vivo together with an electron microscopic method for ultrastructural analysis.

맥락총 상피 세포의 섬모 운동의 관측<em&gt; 전의 VIVO</em

The choroid plexus is located in the ventricular wall of the brain, the main function of which is believed to be production of cerebrospinal fluid. ...

Recording Synaptic Plasticity in Acute Hippocampal Slices Maintained in a Small-volume Recycling-, Perfusion-, and Submersion-type Chamber System

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful analysis of synaptic transmission modulation when performing field potential or intracellular recordings. This manuscript describes methodological aspects that might be helpful in improving experimental conditions for the maintenance of acute brain slices and for recording field excitatory postsynaptic potentials in a commercially available submersion chamber with an outflow-carbogenation unit. The outflow-carbogenation helps to stabilize the oxygen level in experiments that rely on the recycling of a small buffer reservoir to enhance the cost-efficiency of drug experiments. In addition, the manuscript presents representative experiments that examine the effects of different carbogenation modes and stimulation paradigms on the activity-dependent synaptic plasticity of synaptic transmission.

This protocol describes the stabilization of the oxygen level in a small volume of recycled buffer and methodological aspects of recording activity-dependent synaptic plasticity in submerged acute hippocampal slices.

급성 Hippocampal 조각에 작은 볼륨 재활용-, 관류-침수 형 챔버 시스템 유지에 시 냅 스가 소성을 기록

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful ...

Live Imaging of Primary Cerebral Cortex Cells Using a 2D Culture System

During cerebral cortex development, progenitor cells undergo several rounds of symmetric and asymmetric cell divisions to generate new progenitors or postmitotic neurons. Later, some progenitors switch to a gliogenic fate, adding to the astrocyte and oligodendrocyte populations. Using time-lapse video-microscopy of primary cerebral cortex cell cultures, it is possible to study the cellular and molecular mechanisms controlling the mode of cell division and cell cycle parameters of progenitor cells. Similarly, the fate of postmitotic cells can be examined using cell-specific fluorescent reporter proteins or post-imaging immunocytochemistry. More importantly, all these features can be analyzed at the single-cell level, allowing the identification of progenitors committed to the generation of specific cell types. Manipulation of gene expression can also be performed using viral-mediated transfection, allowing the study of cell-autonomous and non-cell-autonomous phenomena. Finally, the use of fusion fluorescent proteins allows the study of symmetric and asymmetric distribution of selected proteins during division and the correlation with daughter cells fate. Here, we describe the time-lapse video-microscopy method to image primary cerebral cortex murine cells for up to several days and analyze the mode of cell division, cell cycle length and fate of newly generated cells. We also describe a simple method to transfect progenitor cells, which can be applied to manipulate genes of interest or simply label cells with reporter proteins.

Live imaging is a powerful tool to study cellular behaviors in real time. Here, we describe a protocol for time-lapse video-microscopy of primary cerebral cortex cells that allows a detailed examination of the phases enacted during the lineage progression from primary neural stem cells to differentiated neurons and glia.

2D 문화 시스템을 사용 하 여 기본 대뇌 피 질 세포의 영상 라이브

During cerebral cortex development, progenitor cells undergo several rounds of symmetric and asymmetric cell divisions to generate new progenitors or ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor determining patient outcome and is therefore frequently taken as a study endpoint. However, in small animal studies on SAH, quantification of cerebral vasospasm is a major challenge. Here, an ex vivo method is presented that allows quantification of volumes of entire vessel segments, which can be used as an objective measure to quantify cerebral vasospasm. In a first step, endovascular casting of the cerebral vasculature is performed using a radiopaque casting agent. Then, cross-sectional imaging data are acquired by micro computed tomography. The final step involves 3-dimensional reconstruction of the virtual vascular tree, followed by an algorithm to calculate center lines and volumes of the selected vessel segments. The method resulted in a highly accurate virtual reconstruction of the cerebrovascular tree shown by a diameter-based comparison of anatomical samples with their virtual reconstructions. Compared with vessel diameters alone, the vessel volumes highlight the differences between vasospastic and non-vasospastic vessels shown in a series of SAH and sham-operated mice.

The goal of this article is to present a method that allows a 3-dimensional reconstruction of the cerebrovascular tree in mice after micro computed tomography and determination of volumes of entire vessel segments that can be used to quantify cerebral vasospasm in murine models of subarachnoid hemorrhage.

거미 막 밑 출혈의 Murine 모델에 대뇌 Vasospasm의 정량화에 대 한 체적 메서드

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

Effects of Blast-induced Neurotrauma on Pressurized Rodent Middle Cerebral Arteries

Though there have been studies on the histopathological and behavioral effects of blast exposure, fewer have been dedicated to blast&#39;s cerebral vascular effects. Impact (i.e., non-blast) traumatic brain injury (TBI) is known to decrease pressure autoregulation in the cerebral vasculature in both humans and experimental animals. The hypothesis that blast-induced traumatic brain injury (bTBI), like impact TBI, results in impaired cerebral vascular reactivity was tested by measuring myogenic dilatory responses to reduced intravascular pressure in rodent middle cerebral arterial (MCA) segments from rats subjected to mild bTBI using an Advanced Blast Simulator (ABS) shock tube. Adult, male Sprague-Dawley rats were anesthetized, intubated, ventilated and prepared for Sham bTBI (identical manipulation and anesthesia except for blast injury) or mild bTBI. Rats were randomly assigned to receive Sham bTBI or mild bTBI followed by sacrifice 30 or 60 min post-injury. Immediately after bTBI, righting reflex (RR) suppression times were assessed, euthanasia at the time points post-injury was completed, the brain was harvested and the individual MCA segments were collected, mounted and pressurized. As the intraluminal pressure perfused through the arterial segments was reduced in 20 mmHg increments from 100 to 20 mmHg, MCA diameters were measured and recorded. With decreasing intraluminal pressure, MCA diameters steadily increased significantly above baseline in the Sham bTBI groups while MCA dilator responses were significantly reduced (p &#60; 0.05) in both bTBI groups as evidenced by the impaired, smaller MCA diameters recorded for the bTBI groups. In addition, RR suppression in the bTBI groups was significantly (p &#60; 0.05) higher than in the Sham bTBI groups. MCA&#39;s collected from the Sham bTBI groups exhibited typical vasodilatory properties to decreases in intraluminal pressure while MCA&#39;s collected following bTBI exhibited significantly impaired myogenic vasodilatory responses to reduced pressure that persisted for at least 60 min after bTBI.

Here, we present a protocol to describe methods for ex vivo vascular reactivity determination following a primary blast traumatic brain injury (bTBI) using isolated, pressurized, rodent middle cerebral arterial (MCA) segments. bTBI induction is accomplished using a shock tube, also known as an Advanced Blast Simulator (ABS) device.

가압된 설치류에 폭발을 이용한 Neurotrauma의 효과 중간 대뇌 동맥

Though there have been studies on the histopathological and behavioral effects of blast exposure, fewer have been dedicated to blast&#39;s cerebral ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to intracranial delivery, intra-arterial administration of NSCs is less invasive and produces a more diffuse distribution of NSCs within the brain parenchyma. Further, intra-arterial delivery allows the first-pass effect in the brain circulation, lessening the potential for trapping of cells in peripheral organs, such as liver and spleen, a complication associated with peripheral injections. Here, we detail the methodology, in both mice and rats, for delivery of NSCs through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) to the ipsilateral hemisphere after an ischemic stroke. Using GFP-labeled NSCs, we illustrate the widespread distribution achieved throughout the rodent ipsilateral hemisphere at 1 d, 1 week and 4 weeks after postischemic delivery, with a higher density in or near the ischemic injury site. In addition to long-term survival, we show evidence of differentiation of GFP-labeled cells at 4 weeks. The intra-arterial delivery approach described here for NSCs can also be used for administration of therapeutic compounds, and thus has broad applicability to varied CNS injury and disease models across multiple species.

A method for delivering neural stem cells, adaptable for injecting solutions or suspensions, through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) after ischemic stroke is reported. Injected cells are distributed broadly throughout the brain parenchyma and can be detected up to 30 d after delivery.

쥐와 마우스 두뇌에 신경 줄기 세포의 동맥 내 납품: 대뇌 허혈에 응용 프로그램

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Measuring Post-Stroke Cerebral Edema, Infarct Zone and Blood-Brain Barrier Breakdown in a Single Set of Rodent Brain Samples

One of the most common causes of morbidity and mortality worldwide is ischemic stroke. Historically, an animal model used to stimulate ischemic stroke involves middle cerebral artery occlusion (MCAO). Infarct zone, brain edema and blood-brain barrier (BBB) breakdown are measured as parameters that reflect the extent of brain injury after MCAO. A significant limitation to this method is that these measurements are normally obtained in different rat brain samples, leading to ethical and financial burdens due to the large number of rats that need to be euthanized for an appropriate sample size. Here we present a method to accurately assess brain injury following MCAO by measuring infarct zone, brain edema and BBB permeability in the same set of rat brains. This novel technique provides a more efficient way to evaluate the pathophysiology of stroke.

This protocol describes a novel technique of measuring the three most important parameters of ischemic brain injury on the same set of rodent brain samples. Using only one brain sample is highly advantageous in terms of ethical and economic costs.

설치류 뇌 샘플의 단일 세트에서 뇌졸중 후 뇌 부종, 경색 영역 및 혈액 뇌 장벽 고장 측정

One of the most common causes of morbidity and mortality worldwide is ischemic stroke. Historically, an animal model used to stimulate ischemic stroke ...

Extraction and Dissection of the Domesticated Pig Brain

Use of the pig as a preclinical and translatable animal model has been well-documented and accepted by research fields investigating cardiovascular systems, gastrointestinal systems, and nutrition, and the pig is increasingly being used as a large animal model in neuroscience. Furthermore, the pig is an accepted model to study neurodevelopment as it displays brain growth and development patterns similar to what occurs in humans. As a less common animal model in neuroscience, surgical and dissection procedures on pigs may not be as familiar or well-practiced among researchers. Therefore, a standardized visual protocol detailing consistent extraction and dissection methods may prove valuable for researchers working with the pig. The following video showcases a technique to remove the pig brain while keeping the cortex and brainstem intact and reviews methods to dissect several commonly investigated brain regions including the brainstem, cerebellum, midbrain, hippocampus, striatum, thalamus, and medial prefrontal cortex. The purpose of this video is to provide researchers with the tools and knowledge necessary to consistently perform a brain extraction and dissection on the four-week-old pig.

This protocol details the technique for removal of the pig brain in its entirety and dissection of several brain regions commonly studied in neuroscience.

길들여진 돼지 뇌의 추출 및 해부

Use of the pig as a preclinical and translatable animal model has been well-documented and accepted by research fields investigating cardiovascular ...