Intramural NIH program supported the development of this model. Publication support was provided by Harvard Apparatus Inc. and ADInstruments Inc. The work by the authors was done as part of US government&#8211;funded research; however, the opinions expressed are not necessarily those of the National Institutes of Health.

아래에서 설명하는 절차는 국립 보건원 (National Institutes of Health)에서 임상 센터의 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인 된 프로토콜의 일환으로 수행되었다. 수술 1. 준비 <ol><li> 가스 카테터 및 악기를 소독. </li></ol> 2. 카테터를 준비 <ol><li> 개방성을 보장하고 유출을 방지하기 위해 헤파린 글리세롤 (250 IU의 헤파린 / 1 ml의 글리세롤)와 카테터를 플래시합니다. 헤파린 글리세롤을 유지하기 위해 금속 스토퍼 (20 GA, 15mm)와 카테터의 끝을 연결합니다. </li></ol> 3. 무균 워크 스테이션을 준비 <ol><li> 워크 스테이션과 악기 트레이 스프레이 70 % 알코올을 사용합니다. 트레이의 운영 테이블과 악기 트레이 및 장소 악기를 다루 멸균 드레이프를 사용합니다. </li></ol> 4. 수술에 대한 쥐를 준비 <ol><li> 장소 쥐 개별적 루 챔버 및 마취제에 노출; 이소 플루 란 (3~5%) 혼합의식이 될 때까지 산소와 에드. 챔버에서 쥐를 제거하고 목의 전방과 후방 지역에서 모피를​​ 면도. 눈에 윤활유 연고를 적용합니다. </li></ol> 5. 카테터 삽입술 <ol><li> 복부 위치에서 가열 수술 테이블에 마취 쥐 (발가락 핀치에 의해 확인)를 배치; (3.5 % 이소 플루 란) 자발적 호흡 마취를 유지하기 위해 코 콘에 코를 배치합니다. 부드럽게 외과 영역을 베타 딘 및 70 % 알콜의 사용을 교대로 3 회 문질러. 수술 용 가위를 사용하여 견갑골 사이에 0.5 cm 중간 선에 피부 절개를합니다. </li><li> 등의 위치에 쥐의 위치를​​ 조정; 부드럽게 고무 밴드를 사용하여 테이블의 각 측면에 다리를 억제; 마취를 유지한다. 약간 더 노출 hyperextend하는 목 아래에 두 개의 압연 멸균 4 × 4 거즈를 놓습니다. 메스를 사용하여 쇄골 수준에서 목의 정중선의 2cm 복부 자궁 경부 피부 절개 권한을 확인합니다. </li></ol> 6. 오른쪽경정맥 도관 <ol><li> 지혈제를 사용하여, 퉁명스럽게, 오른쪽 경정맥을 해부 시각화하고 선박의 5mm 부분을 분리 할 수​​있는 타액과 림프 조직을 분리합니다. 4-0 실크 봉합사를 사용하여, 용기의 노출을 최대화하기 위해 용기의 양쪽 뇌 및 꼬리 단부에 느슨한 넥타이를 배치. 마이크로 수술 가위 충분히 절개가 큰 만들어 사용하면 두 합자 사이의 용기에 맞춰, 카테터를 전달하고 용기 주변의 두개골 끈을 묶을 수 있습니다. </li><li> 마이크로 해부 후크와 집게의 도움으로 심장을 향해 용기에 정맥 카테터를 삽입하고 PU 3 층 세그먼트의 모든 용기가 될 때까지 카테터를 진행합니다. 용기에 카테터를 확보하기 위해 두개골과 꼬리 끝의 합자를 사용합니다. </li></ol> 7. 왼쪽 경동맥 동맥 도관 <ol><li> 지혈제를 사용하면, 퉁명스럽게 왼쪽 경동맥을 노출 길이 방향 omohyoid 근육을 해부하고 난선박의 5mm 부분을 solate. 완전히 동맥에서 분리 (색상 흰색) 미주 신경을 확인합니다. 주의 파쇄 또는 신경을 깰 수 없습니다. </li><li> 4-0 실크 봉합사를 사용하여, 선박의 꼬리 끝에 느슨한 넥타이를 배치 선박의 두개골 끝을 묶고 절개 다음 혈액의 흐름을 중지 봉합 위 꼬리 쪽 불독 클램프를 놓습니다. 마이크로 수술 가위를 사용하여 충분히 큰 절개, 두 합자 사이의 용기에 맞춰, 카테터를 통과 할 수 있습니다. 마이크로 해부 후크와 집게의 도움을 심장쪽으로 동맥 카테터를 삽입합니다. </li><li> 꽉 불독 클램프를 제거하기 전에 용기 내부의 카테터의 부분을 유지하기 위해 잠금없이 부드러운 바늘 홀더를 사용합니다. 카테터의 전체 PU 2F 세그먼트까지 천천히 바늘 홀더를 풀어하면 용기에있는 동안 포셉 쌍 카테터를 전진. 확보하기 위해 카테터와 혈관 주위에 느슨한 꼬리 합자 타이,하지만 그렇게 tigh하지같은 t은 카테터를 폐색합니다. </li></ol> 8. 터널 다시 피하 귀 뒤에 견갑골 사이의 절개를 통해 5cm 튜브, 스트레이트 지혈제를 사용하여. 튜브를 통해 카테터를 외면 화하다하고 튜브를 제거합니다. 9.에서 표면화 카테터를 고정하기 위해 4-0 실크 봉합사와 세 개의 스테인레스 스틸 상처 클립과 복부 절개하고, 지느러미 절개를 닫습니다. 10. 포스트 - 수술 모니터 및 관리 <ol><li> 카테터 삽입 후, 마취를 종료하고 셀룰로오스 침구와 케이지에서 측와위에서 쥐를 복구 할 수 있습니다. 다음 번에 ​​적어도 하루에 4 시간 동안 고통의 흔적을 보여주는 때까지 2 시간 간격으로 쥐를 관찰하고. 쥐가 통증이나 고통의 흔적을 보여줍니다 경우 케토 프로 펜 [5 ㎎ / ㎏, 피하 주사 (SQ)를]주고 즉시 절차마다 12 시간을 게시합니다. 우리의 경험에 의하면, 어떤 쥐 있으면 초기 다음과 같은 고통에 대한 추가 진통제를 필요하지 않은L 주입입니다. 진통제의 추가 용량에 대한 고려를 이끌어내는 것이 관찰 특성은 제한되는 것은 아니지만 포함; 비정상적인 자세; 증가 호흡, 절개 사이트의 비경제 / ungroomed, 감염 / 염증, 눈 방전, 경직에 / 감소 ( &quot;아군 haircoat에&quot;), 청각 또는 촉각 자극에 대한 반응 활성이 감소. 참고 : 쥐를 대상으로한다 사전 도관 무게에서&gt; 10g을 얻을 72 시간 동안 회복했다. </li></ol> 혈역학 시스템 11. 연결 <ol><li> 복구 후, 연구에서 건강한 쥐 (체중 증가&gt; 10g)를 등록. 루 챔버에서 쥐를 놓고 앞서 설명 마취. </li><li> 멸균 지혈, 마이크로 집게, 부착 무딘 바늘로 1 ML의 주사기와 수술 테이블에 멸균 드레이프를 놓습니다. 주 : 지혈의 팁 카테터 손상을 방지하기 위해 고무로 피복한다. 수술에 마취 쥐를 놓습니다코 콘에 복부 위치와 장소 코의 표는 자발적 호흡 마취 (3~5%)을 유지합니다. </li><li> 클램프 동맥 단지 금속 플러그 핀 아래 고무 캡핑 지혈제의 쌍을 사용하여 정맥 카테터. 카테터의 단부에서 금속 핀을 제거 및 장착 무딘 바늘 헤파린 염수로 채워진 1ml를 주사기를 연결하는 한 쌍의 핀셋을 사용한다. 차례로, 지혈제를 제거하고 카테터 특허 있습니다 보장하기 위해 0.1 ml의 철회. </li><li> , 카테터를 다시하는 것은 클램프 바늘을 제거하고 신발 상자 케이지의 상단에 (헤파린 식염수 사전 플러시)이이 회전에 연결되어와 닿는 긴 카테터이 끝을 연결합니다. 데이터 수집 및 녹음, 샘플링, 또는 주입을위한 트랜스 듀서 이러한 카테터를 연결합니다. 참고 : 모든 카테터가 자신의 새장에 운동 동물의 전체 범위를 허용하기에 충분히 긴 코일 스프링 도관으로 보호됩니다. </li><li> 카테터 연결, 마취 종료 후 및셀룰로오스 침구와 케이지에서 흉골 위치에 동물을 복구 할 수 있습니다. 수동으로 0.05 ml의 헤파린 식염수 (50 IU / ㎖) 동물의 정기적 인 평가와 일치 24 시간마다 1 시간으로 줄을 세척, 동맥 카테터의 개방성을 유지하기 위해. </li></ol> 12. 혈액 샘플링, 압력 모니터링 및 약물 관리 <ol><li> 빈 주사기를 연결하는 카테터 동맥 0.6 ml의에게 인라인 플러시를 철회 연결 코크합니다. 샘플 주사기를 연결 샘플을 채취, 0.7 ml의 헤파린 식염수 세척 다음에 0.6 ml의 인라인 높이를 돌려줍니다. </li><li> 사용 데이터 수집 하드웨어 및 소프트웨어는 기록 MAP과 심장 박동이 지속적으로 측정하고 있습니다. </li><li> 정맥 카테터에 자동화 된 약물 전달 시스템 (ADDS)을 연결합니다. 참고 : ADDS는 혈압 상승의 주입 속도 정상적인 생리적 범위 내에서 유지 압력을 감지 MAP에 따라 (높음, 낮음 또는 0 용량)을 조정합니다. </li></ol>

<ol>
	<li>Buckingham, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Indwelling+catheters+for+direct+recording+of+arterial+blood+pressure+and+intravenous+injection+of+drugs+in+the+conscious+rat.">Indwelling catheters for direct recording of arterial blood pressure and intravenous injection of drugs in the conscious rat.</a> J Pharm. Pharmacol. 28 (5), 459-461 (1976).</li><li>Buckle, J. W., Nathaniels, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proceedings:+A+dual+catheter+system+for+the+simultaneous+infusion+and+sampling+of+the+vascular+system+of+the+unrestrained+rat.">Proceedings: A dual catheter system for the simultaneous infusion and sampling of the vascular system of the unrestrained rat.</a> J. Physiol. 242 (2), 55P-56P (1974).</li><li>Solomon, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effective+dosing+of+lipid+A+analogue+E5564+in+rats+depends+on+the+timing+of+treatment+and+the+route+of+Escherichia+coli+infection.">Effective dosing of lipid A analogue E5564 in rats depends on the timing of treatment and the route of Escherichia coli infection.</a> J. Infect. Dis. 193 (5), 634-644 (2006).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bacillus+anthracis+cell+wall+produces+injurious+inflammation+but+paradoxically+decreases+the+lethality+of+anthrax+lethal+toxin+in+a+rat+model.">Bacillus anthracis cell wall produces injurious inflammation but paradoxically decreases the lethality of anthrax lethal toxin in a rat model.</a> Intensive Care Med. 36 (1), 148-156 (2010).</li><li>Quezado, Z. M., Natanson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+hemodynamic+abnormalities+and+vasopressor+therapy+in+sepsis+and+septic+shock.">Systemic hemodynamic abnormalities and vasopressor therapy in sepsis and septic shock.</a> Am. J. Kidney Dis. 20 (3), 214-222 (1992).</li><li>Perdue, P. W., Kazarian, K. K., Nevola, J., Law, W. R., Williams, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+local+and+systemic+antibiotics+in+rat+fecal+peritonitis.">The use of local and systemic antibiotics in rat fecal peritonitis.</a> J. Surg. Res. 57 (3), 360-365 (1994).</li><li>Qiu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+individual+survival+benefits+of+tumor+necrosis+factor+soluble+receptor+and+fluid+administration+are+not+additive+in+a+rat+sepsis+model.">The individual survival benefits of tumor necrosis factor soluble receptor and fluid administration are not additive in a rat sepsis model.</a> Intensive Care Med. 37 (10), 1688-1695 (2011).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severity+of+sepsis+alters+the+effects+of+superoxide+anion+inhibition+in+a+rat+sepsis+model.">Severity of sepsis alters the effects of superoxide anion inhibition in a rat sepsis model.</a> J. Appl. Physiol. 97 (4), 1349-1357 (2004).</li><li>Karzai, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protection+with+antibody+to+tumor+necrosis+factor+differs+with+similarly+lethal+Escherichia+coli+versus+Staphylococcus+aureus+pneumonia+in+rats.">Protection with antibody to tumor necrosis factor differs with similarly lethal Escherichia coli versus Staphylococcus aureus pneumonia in rats.</a> Anesthesiology. 99 (1), 81-89 (2003).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+Arterial+and+Venous+Catheterization+for+Blood+Sampling,+Drug+Administration+and+Conscious+Blood+Pressure+and+Heart+Rate+Measurements.">Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), e3496 (2012).</li></ol>

The authors have no potential conflicts of interest.

<html> 따라서 혈관을 정확하게 찾아 요구 혈역학 모니터링을 수행 할 수있는 능력은 질병의 임상 적 치료 모델 접근법을 필요 조사. 패혈증의 우리의 모델에서 동맥 도관은 전신 압력 모니터링을 제공하고, 정맥 카테터는 표준 임상 치료의 응용 프로그램에 대한 수 있습니다. 패혈증 치료에 대한 표준 항생제의 투여는 원하는 범위 내의 동맥 압력을 유지하도록 유체 및 세균 감염 및 혈관 수 축제의 주입을 치료 포함한다. 두 카테터 혈액 샘플링을 위해 사용된다. 이러한 설계에서, 프로그램 가능한 주입 애플리케이션은 동맥 압력을 의미 실시간에 기초하여 혈관 수 축제 주입 속도를 자동으로 트리거링 펌프 의료진 및 전임상 설정하게 매뉴얼에 적정을 필요 임상 위에 미리이고 동물의 많은 연구를위한 가능한이 치료 방법으로 사용합니다. .에 경정맥 정맥 카테터의 잘못된 배치, e_content &quot;&gt; 어떤 합병증이 모델의 개발 초기에 경험 한 이들은 부분적인 동맥과 긴축에서 정맥 카테터, PU2 및 PU3 구성 요소에 대한 관계, (1-2 %) 모두의 폐색을 포함 2 L / 분의 O 2 유량 이소 플루 란 농도를 2-3.5 %를 유지하여 해결 복구 (아무 폐 혈전이나 다른 장기 손상 분명) 후 원인 불명의 돌연사, (1-2 %), 소규모 지사, (&lt;1 %) . 출혈, 지역 감염 및 자해 손상의 다른 일반적인 수술 합병증은 관찰되지 않았다. 일단 수술 능력이 달성되고, 각 절차없이 15 분 이상에 완료 할 수 있어야합니다. 건강 회복으로 측정 성공의 속도와 특허 카테터에서 &quot;일 수있다 실패한 카테터의 데이터 손실과 필요한 동물의 총 수와 계정을 최소화하기 위해 한 번 완전히 훈련시켰다. 부가 각 동물을 대상으로 90 %를 초과 할 것으로 예상 될 수있다인한 합병증 만 융합 &quot;또는 사망. 이 과정에서 가장 중요한 단계는 카테터의 설계 및 배치이다. 재료는 너무 쉽게 압착없이 혈관 벽을 관통하지 않도록 부드러운 선단부 할 필요가있다. 카테터의 몸은 뻣뻣 충분히 용기에 진출 할 수 있도록 제자리에 고정 될 (팁 제외)이어야한다. (1)가 연결된 동맥 카테터 및 2 개의 다른 직경의 튜브에 대한 연결된 튜브의 3 직경을 보여줍니다 정맥 카테터합니다. 이러한 구성 요소는 카테터 팁에 직경 감소를 서로 슬라이딩되고 유지되는 용기 또는 심장 내의 카테터의 위치를​​ 확인하기 위해 추가 된 앵커와 함께 접착된다. 일단 복구 및 회전과 밧줄에 연결,지도 및 CVP 파형은 그림 2에 표시되는 데이터 유사하게 나타납니다. 동맥 카테터 patenc을 유지하기 위해모니터링 중 Y는 시간당 헤파린 염수 플러시 (0.05 ml)을 수행한다. 연속 주입은 정맥 카테터 개통을 유지합니다. 라인 연결 및 세척시주의가 라인에 기포가없는 보장하기 위해 지불해야합니다. ≥0.1ml의 기포는 폐, 뇌 등의 장기에 색전증이 발생할 수 있습니다. 혈역학 파형 기록과 연구의 과정을 통해 분석한다. x 축에 시간을 압축 할 때, 그림 3은 1 ​​시간에 걸쳐지도와 CVP의 변화뿐만 아니라 속도와 혈압 상승 주입의 효과의 변화를 보여줍니다. 절차는 몇 가지 잠재적 인 제한 사항이 있습니다. 우리의 연구에서, 카테터는 최​​대 11 일 동안 특허 남아있다. 이 카테터는이 기간 이후 특허 남아있을 시간을 알 수 없습니다. 설명 된대로 카테터를 맞추기 위해, 약 설치류 무게와 상관 관계 최소 혈관 크기,가, 대상으로 동물을 필요로하는보다 커야합니다200g. 카테터 작은 직경의 사용을 감소 개통 유동 저항이 증가 될 것이다. 중심 정맥 압력 조치를 얻으면 연구 기간 동안 크기와 성장을위한 계정에 충분한 아트리움에서 정확한 카테터 배치를 요구하고 도전 일 수있다. 일단 마스터 동맥 혈관 카테터는 계측시 통증과 고통을 최소화하거나 번 회수 처리하는 동안 유체 또는 요법 혈역학 모니터링, 채혈, 및 주입을 요구하는 설치류 모델의 다양한위한 기초를 제공 할 수있다. 사실, 대퇴 정맥의 이전 조브 간행물 (10) 기술 카테터와 함께, 우리는 성공적으로 3 이식 카테터와이 모델을 수행했습니다.

쥐의 동맥과 정맥 카테터는 긴 실험실 연구에 사용되어왔다. 1, 2 도관은 수축기, 이완기 동맥압 (MAP)을 의미, 심박수 (HR) 및 중심 정맥 압력을 포함하여 혈역학 적 변수의 모니터링에 사용 할 수 있습니다 (CVP) . 3,4 또한, 이러한 카테터 표준 치료 요법 또는 잠재적 주입뿐만 아니라 채혈은 상기 질병 또는 치료의 기본 메커니즘을 분석 할 수있다. 따라서, 작은 동물 모델에서 혈관 통로를 갖는 임상 성능 측정 및 치료 효과를 연구하는데 중요하다. 중요한 질환의 근본 원인을 연구하기 위해, 먼저 사람의 상태를 시뮬레이션 모델을 개발하는 것이 중요하다. 박테리아의 알려진 양의 내부 기관 접종이 성공적으로 폐렴의 발병 후 패혈증으로 발전 심각한 폐 감염을 재현하는 데 사용되었습니다.3, 5 혈역학 적 조치를 모니터링 및 표준 임상 치료를 제공하는 일상적인지지 요법을 시뮬레이션하는 것이 중요합니다. 임상적인 치료가 기본이 감염과 체액 및 혈관 수 축제를 투여 클리어 에이즈 항생제의 투여를 포함 두 치료제는 혈압을 유지 패혈증 환자에 사용될. 5-7 혈관 통로를 우리가 공부 때 특히 특허 카테터의 주입은 특히 중요 패혈증에 대한 임상 치료. 수년 동안, 쥐에게 표준 임상 치료를 관리 할 수​​있는 능력은 이식 카테터 정확하게 시간에 걸쳐 소량을 제공하는 주입 기술의 능력을 구성하는데 필요한 특성을 갖는 재료의 가용성에 의해 제한되었다. 또한, 특정 혈역학 측정 지속적인 모니터링에 응답하여 주입을 유발하는 능력은 일관되고 재현 가능한 스탠드 허용더 큰 샘플을 사용하는 설치류 연구의 일반적인 크기 ARD 치료 모델. 8, 9 이러한 기술적 한계 재료 및 정밀 하드웨어가 혈역학 적 매개 변수를 모니터링하면서 동시에 일상적인 치료를 제공하는 것이 아니라 극복되고, 동맥과 정맥 혈관 통로를 모두 사용할 수 있어야합니다. 비디오는 마취 된 쥐의 경동맥 및 일반 경정맥 카테터를 주입하는 수술 기법을 자세히 설명합니다. 72 시간 회복 기간 후에, 동물을 다시 마취되며 혈역학 모니터링 시스템에 주입 카테터를 연결하는 데 사용되는 설치류 하우징에 부착 테더과 회전 연결 셋업. 연구하는 동안, 시스템이 수액 허용 일정한 주입 속도로 소정 부피를 전달 또는 소정 압력 범위를 유지하도록 검출 평균 동맥압에 따라 주입 속도를 제공하는 자동화 된 시스템 중 하나에 기초하여. 수액 시스템프로그래머블 주사기 데이터 수집 시스템의 디지털 출력과 인터페이스하는 펌프와 MAP 모니터링 소프트웨어를 사용하여 제어된다. , 압력을 모니터링 유체 및 혈관 수 축제를 주입하고, 동물을 조작 할 필요없이 혈액 샘플링을 수행하는 동안 밧줄과 회전 설정은 연구 기간 동안 쥐의 자유로운 이동을 허용한다. 24 계측 동물을 모니터링까지 확장 하드웨어 (우리의 설정에서) 2 카테터 각각 최대 12 계측 동물의 동시 모니터링은 각 실험에서 여러 층화 그룹을 연구하기위한 유연성의 큰 거래를 할 수 있습니다. 이 카테터 절차는 최대 11 일 동안 모니터링, 샘플링 및 치료를위한 혈관 접근을 필요로하는 유사한 설치류 모델을 사용 연구 시설에 도움이 될 수 있습니다. 이 과정을 고려하여 연구 기관은 이러한 동물을 유지 developin 설치류 경험과 적절한지지 구조체를 가지고 있다면g 이러한 기술은 (순진한 쥐, 카테터 구성 요소 및 기술 비용을 포함) $ 50 이하 달러 이상 (180)로부터 카테터 쥐 당 총 비용을 절감하고 스케줄링 유연성을 증가, 상당한 비용 절감을 제공 할 수 있습니다 (순진한 쥐 회사의 납품 일정 대 쉽게 사용할 수 있습니다 의) 쥐를 이식. 이 절차의 성공은 catheterizations을 수행하는 개인의 능력에 따라 달라집니다. 이 절차에 능숙하게하는 데 필요한 교육 동물&gt; 90 %의 결과 카테터 개통 률 20 ~ 40 쥐에서 원거리있다.

<table><tbody><tr><td>Straight micro dissecting forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-8102</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Delicate straight hemostatic forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-7114</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Delicate curved hemostatic forceps</td><td>Miltex</td><td>&amp;nbsp;7-4</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Serrefine curved, very delicate micro clamp</td><td>Roboz</td><td>RS-5471</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Micro dissecting hook</td><td>Miltex</td><td>19-220</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Angled on edge micro dissecting spring scissor</td><td>Roboz</td><td>RS-5618</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Light operating scissor</td><td>Roboz</td><td>RS-6750</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Scalpel handle and blade (#10)</td><td>Cincinnati Surgical</td><td>RS-9843</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Pack of 4-0 silk suture with curved needle</td><td>Ethicon</td><td>FS-2</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Straight micro suturing needle holder</td><td>Roboz</td><td>RS-6410</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Wound clip</td><td>Stoelting</td><td>59027</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Sterile gauze 2&quot;x2&quot;&amp;nbsp;</td><td>Dynarex</td><td>3362</td><td>consumable</td></tr><tr><td>Gauze 4&quot;x4&quot;&amp;nbsp;</td><td>Covidien</td><td>2556</td><td>consumable</td></tr><tr><td>Anesthesia vaporizer</td><td>Surgivet</td><td>V703001</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Lucite box</td><td>Custom</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Baxter</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Downdraft Table</td><td>Airscience</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Table top surgical platform</td><td>Custom</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Arterial Catheter</td><td>Custom - Scientific Commodities Inc.</td><td></td><td>consumable</td></tr><tr><td>Venous Catheter</td><td>Custom - Scientific Commodities Inc.</td><td></td><td>consumable</td></tr><tr><td>Data acquisition system</td><td>ADInstruments</td><td>Powerlab 16/30</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Data analysis software</td><td>ADInstruments</td><td>LabChart v7.3</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Programmable infusion pumps</td><td>Harvard Apparatus</td><td>PHD Ultra</td><td>equipment</td></tr></tbody></table>

catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model

중요한 질병을 연구하는 작은 동물 모델의 성공은, 부분적으로, 사람의 상태를 모의하는 모델의 능력에 의존한다. 박테리아의 알려진 양의 내부 기관 접종이 성공적으로 다음 패혈증으로 발전 폐렴의 발병을 재현하는 데 사용되었습니다. 혈역학 적 매개 변수를 모니터링 및 항생제, 수액과 혈압을 유지하기 위해 약물 수행하는하지만이 모델의 일상적인지지 요법을 시뮬레이션하는 것이 중요합니다의 주입을 포함하여 표준 임상 치료를 제공하기 때문에 동맥과 정맥 혈관 통로가 모두 필요합니다. 비디오는 마취 된 쥐의 경동맥 및 일반 경정맥 카테터를 주입하는 수술 기법을 자세히 설명합니다. 72 시간 회복 기간 후에, 동물을 다시 마취되며 혈역학 모니터링 시스템에 주입 카테터를 연결 설치류 하우징에 부착 테더과 회전 연결 셋업. 이 설정의 자유로운 이동을 허용지속적으로 유체 및 약물을 주입, 압력 모니터링 (항생제, 혈관 수 축제) 및 혈액 샘플링을 수행하는 동안 연구 기간 동안 쥐입니다.

혈관 압력의 변화 혈역학 파형으로 표시되는 전기 신호로 유체 가득 카테터를 통해 (그림 1) 전송 및 변환됩니다 (그림 2, 3). 혈관을 사용할 수없는 경우, 이러한 조치는 할 수 없습니다. 파형의 실시간 스트리밍 기반을 이길 수있는 비트의 변경 (그림 2)의 검출 및 분석 할 수 있습니다. 파형의 시간 척도를 압축하면 더 긴 기간 (일 분)을 통해 발생하는 변경 혈압 상승의 주입 속도의 변화와 상관 관계가 될 수있다 (그림 3, 상위 4 파형) (그림 3, 하위 4 파형)을 정량화 할 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig1.jpg" /> 그림 1. 카테터 디자인 : 동맥과 정맥 카테터 PU, 폴리 우레탄의 구성 요소의 세부 사항;. PE, 폴리에틸렌 (세그먼트 길이) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig2.jpg" /> 그림 7 초 이상 4 일반적인 설치류 칠일 후 카테터 2. 실시간 MAP 파형. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig2highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig3.jpg" /> 1 시간 이상 4 일반적인 설치류 (상위 4 파형) 칠일 후 카테터의 그림 3. 시간 압축 MAP 파형. MAP는 (하위 4 파형)를 평균하면, 그 값이 트리거에 사용되는 ADDS 높은 (&lt;90 mmHg로) 낮은 (&lt;100 mmHg로) 또는 중지 (&gt; 110) 주입 펌프의 유량 응답. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig3highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

경동맥과 경정맥의 도관은 의식 쥐 모델에서, 혼합 및 혈액 샘플링을 혈역학 적 조치를 수행하는

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

71.8K 조회수.  National Institutes of Health. Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

비디오: Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Hyperinsulinemic-Euglycemic Clamp in the Conscious Rat

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, T2D results in elevated blood glucose levels. The "gold-standard" in assessing insulin sensitivity is a hyperinsulinemic-euglycemic clamp or insulin clamp. In this procedure, insulin is infused at a constant rate resulting in a drop in blood glucose. To maintain blood glucose at a constant level, exogenous glucose (D50) is infused into the venous circulation. The amount of glucose infused to maintain homeostasis is indicative of insulin sensitivity. Here, we show the basic clamp procedure in the chronically catheterized, unrestrained, conscious rat. This model allows blood to be collected with minimal stress to the animal. Following the induction of anesthesia, a midline incision is made and the left common carotid artery and right jugular vein are catheterized. Inserted catheters are flushed with heparinized saline, then exteriorized and secured. Animals are allowed to recover for 4-5 days prior to experiments, with weight gain monitored daily. Only those animals who regain weight to pre-surgery levels are used for experiments. On the day of the experiment, rats are fasted and connected to pumps containing insulin and D50. Baseline glucose is assessed from the arterial line and used a benchmark throughout the experiment (euglycemia). Following this, insulin is infused at a constant rate into the venous circulation. To match the drop in blood glucose, D50 is infused. If the rate of D50 infusion is greater than the rate of uptake, a rise in glucose will occur. Similarly, if the rate is insufficient to match whole body glucose uptake, a drop will occur. Titration of glucose continues until stable glucose readings are achieved. Glucose levels and glucose infusion rates during this stable period are recorded and reported. Results provide an index of whole body insulin sensitivity. The technique can be refined to meet specific experimental requirements. It is further enhanced by the use of radioactive tracers that can determine tissue specific insulin-stimulated glucose uptake as well as whole body glucose turnover.

The hyperinsulinemic-euglycemic clamp is the "gold standard" for the assessment of insulin action. Insulin is infused at a constant rate stimulating glucose uptake. The amount of exogenous glucose infused to counter this drop is indicative of insulin sensitivity. Here the procedure is performed on a conscious, unrestrained rat.

의식 랫에서 인슈린 과다 - Euglycemic 클램프

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, ...

연구

의학

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

혈액 샘플링, 마약 관리 및 의식 검사 중 혈압과 심장 박동을 측정 대퇴 동맥혈과 정맥 Catheterization

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

2-Vessel Occlusion/Hypotension: A Rat Model of Global Brain Ischemia

Cardiac arrest followed by resuscitation often results in dramatic brain damage caused by ischemia and subsequent reperfusion of the brain. Global brain ischemia produces damage to specific brain regions shown to be highly sensitive to ischemia 1. Hippocampal neurons have higher sensitivity to ischemic insults compared to other cell populations, and specifically, the CA1 region of the hippocampus is particularly vulnerable to ischemia/reperfusion 2.
The design of therapeutic interventions, or study of mechanisms involved in cerebral damage, requires a model that produces damage similar to the clinical condition and in a reproducible manner. Bilateral carotid vessel occlusion with hypotension (2VOH) is a model that produces reversible forebrain ischemia, emulating the cerebral events that can occur during cardiac arrest and resuscitation. We describe a model modified from Smith et al. (1984) 2, as first presented in its current form in Sanderson, et al. (2008) 3, which produces reproducible injury to selectively vulnerable brain regions 3-6. The reliability of this model is dictated by precise control of systemic blood pressure during applied hypotension, the duration of ischemia, close temperature control, a specific anesthesia regimen, and diligent post-operative care. An 8-minute ischemic insult produces cell death of CA1 hippocampal neurons that progresses over the course of 6 to 24 hr of reperfusion, while less vulnerable brain regions are spared. This progressive cell death is easily quantified after 7-14 days of reperfusion, as a near complete loss of CA1 neurons is evident at this time.
In addition to this brain injury model, we present a method for CA1 damage quantification using a simple, yet thorough, methodology. Importantly, quantification can be accomplished using a simple camera-mounted microscope, and a free ImageJ (NIH) software plugin, obviating the need for cost-prohibitive stereology software programs and a motorized microscopic stage for damage assessment.

Bilateral carotid occlusion coupled with systemic hypotension produces global brain ischemia in the rat, resulting in damage to the hippocampus with reproducible severity. Animal subjects are impaired with predictable patterns of brain damage, they recover expediently, and mortality rates are comparatively low.

2 혈관 폐색 / 저혈압 : 세계적인 두뇌 국소 빈혈의 쥐 모델

Cardiac arrest followed by resuscitation often results in dramatic brain damage caused by ischemia and subsequent reperfusion of the brain. Global brain ...

A Model of Chronic Nutrient Infusion in the Rat

Chronic exposure to excessive levels of nutrients is postulated to affect the function of several organs and tissues and to contribute to the development of the many complications associated with obesity and the metabolic syndrome, including type 2 diabetes. To study the mechanisms by which excessive levels of glucose and fatty acids affect the pancreatic beta-cell and the secretion of insulin, we have established a chronic nutrient infusion model in the rat. The procedure consists of catheterizing the right jugular vein and left carotid artery under general anesthesia; allowing a 7-day recuperation period; connecting the catheters to the pumps using a swivel and counterweight system that enables the animal to move freely in the cage; and infusing glucose and/or Intralipid (a soybean oil emulsion which generates a mixture of approximately 80% unsaturated/20% saturated fatty acids when infused with heparin) for 72 hr. This model offers several advantages, including the possibility to finely modulate the target levels of circulating glucose and fatty acids; the option to co-infuse pharmacological compounds; and the relatively short time frame as opposed to dietary models. It can be used to examine the mechanisms of nutrient-induced dysfunction in a variety of organs and to test the effectiveness of drugs in this context.

A protocol for chronic infusions of glucose and Intralipid in rats is described. This model can be used to study the impact of nutrient excess on organ function and physiological parameters.

쥐의 만성 영양 주입의 모델

Chronic exposure to excessive levels of nutrients is postulated to  affect the function of several organs and tissues and to contribute to the  ...

A Rat Model of Ventricular Fibrillation and Resuscitation by Conventional Closed-chest Technique

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic components of cardiopulmonary resuscitation in humans is herein described. The model was developed in 1988 and has been used in approximately 70 peer-reviewed publications examining a myriad of resuscitation aspects including its physiology and pathophysiology, determinants of resuscitability, pharmacologic interventions, and even the effects of cell therapies. The model featured in this presentation includes: (1) vascular catheterization to measure aortic and right atrial pressures, to measure cardiac output by thermodilution, and to electrically induce ventricular fibrillation; and (2) tracheal intubation for positive pressure ventilation with oxygen enriched gas and assessment of the end-tidal CO2. A typical sequence of intervention entails: (1) electrical induction of ventricular fibrillation, (2) chest compression using a mechanical piston device concomitantly with positive pressure ventilation delivering oxygen-enriched gas, (3) electrical shocks to terminate ventricular fibrillation and reestablish cardiac activity, (4) assessment of post-resuscitation hemodynamic and metabolic function, and (5) assessment of survival and recovery of organ function. A robust inventory of measurements is available that includes &#8211; but is not limited to &#8211; hemodynamic, metabolic, and tissue measurements. The model has been highly effective in developing new resuscitation concepts and examining novel therapeutic interventions before their testing in larger and translationally more relevant animal models of cardiac arrest and resuscitation.

This article describes a rat model of electrically-induced ventricular fibrillation and resuscitation by chest compression, ventilation, and delivery of electrical shocks that simulates an episode of sudden cardiac arrest and conventional cardiopulmonary resuscitation. The model enables gathering insights on the pathophysiology of cardiac arrest and exploration of new resuscitation strategies.

기존의 폐쇄 가슴 기술에 의해 쥐의 심실 세동의 모델 및 소생

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic ...

Hemodynamic Characterization of Rodent Models of Pulmonary Arterial Hypertension

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle proliferation and obliteration of pulmonary arterioles. This in turn results in right ventricular (RV) failure, with significant morbidity and mortality. Rodent models of PAH, in the mouse and the rat, are important for understanding the pathophysiology underlying this rare disease. Notably, different models of PAH may be associated with different degrees of pulmonary hypertension, RV hypertrophy and RV failure. Therefore, a complete hemodynamic characterization of mice and rats with PAH is critical in determining the effects of drugs or genetic modifications on the disease. 
Here we demonstrate standard procedures for assessment of right ventricular function and hemodynamics in both rat and mouse PAH models. Echocardiography is useful in determining RV function in rats, although obtaining standard views of the right ventricle is challenging in the awake mouse. Access for right heart catheterization is obtained by the internal jugular vein in closed-chest mice and rats. Pressures can be measured using polyethylene tubing with a fluid pressure transducer or a miniature micromanometer pressure catheter. Pressure-volume loop analysis can be performed in the open chest. After obtaining hemodynamics, the rodent is euthanized. The heart can be dissected to separate the RV free wall from the left ventricle (LV) and septum, allowing an assessment of RV hypertrophy using the Fulton index (RV/(LV+S)). Then samples can be harvested from the heart, lungs and other tissues as needed.

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a disease of pulmonary arterioles that leads to their obliteration and the development of right ventricular failure. Rodent models of PAH are critical in understanding the pathophysiology of PAH. Here we demonstrate hemodynamic characterization, with right heart catheterization and echocardiography, in the mouse and rat.

폐동맥 고혈압의 설치류 모델의 혈역학 특성

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle ...

Shunt Surgery, Right Heart Catheterization, and Vascular Morphometry in a Rat Model for Flow-induced Pulmonary Arterial Hypertension

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt (MCT+Flow). The shunt is created by inserting an 18-G needle from the abdominal aorta into the adjacent caval vein. Increased pulmonary flow has been demonstrated as an essential trigger for a severe form of PAH with distinct phases of disease progression, characterized by early medial hypertrophy followed by neointimal lesions and the progressive occlusion of the small pulmonary vessels. To measure the right heart and pulmonary hemodynamics in this model, right heart catheterization is performed by inserting a rigid cannula containing a flexible ball-tip catheter via the right jugular vein into the right ventricle. The catheter is then advanced into the main and the more distal pulmonary arteries. The histopathology of the pulmonary vasculature is assessed qualitatively, by scoring the pre- and intra-acinar vessels on the degree of muscularization and the presence of a neointima, and quantitatively, by measuring the wall thickness, the wall-lumen ratios, and the occlusion score.

This protocol describes a surgical procedure to create a model for flow-induced pulmonary arterial hypertension (PAH) in rats and the procedures to analyze the principle hemodynamic and histological end-points in this model.

흐름 유도 된 폐동맥 고혈압에 대한 쥐 모델에서 션트 수술, 오른쪽 심장 도관 및 혈관 형태 계측

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt ...

Continuous Blood Sampling in Small Animal Positron Emission Tomography/Computed Tomography Enables the Measurement of the Arterial Input Function

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal blood time-activity concentration also known as arterial input function (AIF) is a key point, especially for the characterization of animal disease models and the introduction of newly developed radiotracers. The knowledge of radiotracer availability in the blood helps to interpret PET/CT-derived data of tissue activity. For this purpose, online blood sampling during the PET/CT imaging is advisable to measure the AIF. In contrast to manual blood sampling and image-derived approaches, continuous online blood sampling has several advantages. Besides the minimized blood loss, there is an improved resolution and a superior accuracy for the blood activity measurement. However, the major drawback of online blood sampling is the costly and time-consuming preparation to catheterize the femoral vessels of the animal. Here, we describe an easy and complete workflow for catheterization and continuous blood sampling during small animal PET/CT imaging and compared it to manual blood sampling and an image-derived approach. Using this highly-standardized workflow, the determination of the fluorodeoxyglucose ([18F]FDG) AIF is demonstrated. Further, this procedure can be applied to any radiotracer in combination with different animal models to create fundamental knowledge of tracer kinetic and model characteristics. This allows a more precise evaluation of the behavior of pharmaceuticals, both for diagnostic and therapeutic approaches in the preclinical research of oncological, neurodegenerative and myocardial diseases.

Here a protocol for continuous blood sampling during PET/CT imaging of rats to measure the arterial input function (AIF) is described. The catheterization, the calibration and setup of the system and the data analysis of the blood radioactivity are demonstrated. The generated data provide input parameters for subsequent bio-kinetic modeling.

작은 동물 양전자 방출 단층 촬영 / 컴퓨터 단층 촬영에서 지속적인 혈액 샘플링은 동맥 입력 기능의 측정을 가능하게

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal ...

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, which could potentially affect results. The jugular vein cannulation (JVC) in rats is a widely used model for repeated blood collection but requires adequate training of surgery skills and animal care. This article details the microsurgical procedures for establishing and maintaining a permanent JVC rat model with specific focus on the placement and sealing of the jugular cannula. The importance of monitoring physiological (e.g., body weight, food, and water intake) and hematological parameters, was highlighted with results presented for 6 days post-surgery during the rat&#39;s recovery. The drug-plasma concentration-time profile of orally administered natural phenol ellagic acid was determined in the JVC rat model.

Detailed microsurgical techniques are demonstrated to establish a longer-term jugular vein cannulation rat model for sequential blood collection in the same animal. Physiological and hematological parameters have been monitored during the rat's recovery phase. This model has been applied to study pharmacokinetics of orally administered polyphenol without inducing animal stress.

경구 투여 약물의 연속 혈액 샘플링을 위해 쥐에서 영구적 인 경정맥 절개술을 확립하는 미세 외과 기술

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

의식이 있는 쥐에서 반복적인 혈액 수집을 위한 쇄골하 정맥 천자 방법

Subclavian Vein Blood Sampling in Conscious Rats

There are several established methods for obtaining repeated blood samples from rats, with the most commonly employed methods being lateral tail vein sampling without anesthesia and jugular vein sampling with anesthesia. However, most of these methods require assistance and anesthetic equipment and sometimes pose difficulties in terms of blood collection or the poor quality of blood samples. In addition, these methods of blood collection consume significant time and human resources when repeated blood sampling is required for a large number of rats. This study presents a technique for repetitive blood sampling in non-anesthetized rats by a single proficient individual. Highly satisfactory blood samples can be obtained by puncturing the subclavian vein. The method demonstrated an impressive overall success rate of 95%, with a median time of merely 2 min from rat restraint to the completion of blood collection. Furthermore, performing consecutive blood collections within the designated range does not inflict any harm on the rats. This method is worth promoting for blood collection, especially in large-scale pharmacokinetic studies.

저자 스포트라이트: Developing an Efficient Blood Collection Method in Non-Anesthetized Rats 

Here we present a combination of effective rat restriction and subclavian vein puncture methods that enable rapid, safe, and repeated blood collection in rats without anesthesia.

의식이 있는 쥐의 쇄골하 정맥 혈액 샘플링

There are several established methods for obtaining repeated blood samples from rats, with the most commonly employed methods being lateral tail vein ...