Name: catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model
Uploaded: 2015-01-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 5 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model at JoVE.com

Intramural NIH program supported the development of this model. Publication support was provided by Harvard Apparatus Inc. and ADInstruments Inc. The work by the authors was done as part of US government&#8211;funded research; however, the opinions expressed are not necessarily those of the National Institutes of Health.

Aşağıda açıklanan prosedürler Ulusal Sağlık Enstitüleri Klinik Merkezi Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanan protokol kapsamında gerçekleştirildi. Cerrahi için 1. Hazırlık <ol><li> Gaz kateterler ve aletleri sterilize. </li></ol> 2. Balon hazırlayın <ol><li> Açıklığını sağlamak ve sızıntıyı önlemek için heparinli gliserol (250 IU heparin / 1 ml gliserol) ile kateterler yıkayın. Heparinli gliserol korumak için bir metal durdurucu (20 ga, 15 mm) ile kateterin ucunu takın. </li></ol> 3. Aseptik Workstation hazırlayın <ol><li> Iş istasyonu ve cihaz tepsileri sprey% 70 alkol kullanın. Tepsiye işletim masa ve alet tepsileri ve yer araçlarını kapsayacak şekilde steril örtüyü kullanın. </li></ol> 4. Cerrahi Rats hazırlayın <ol><li> Yer sıçan tek bir Lucite odasında ve bir anestezik maruz; izofluran (% 3-5) karışımıBilinçsiz kadar oksijen ile ed. Odasından sıçan çıkarın ve boyun anterior ve posterior alanlarından kürk tıraş. Gözleri yağ merhemi sürün. </li></ol> 5. Kateter Yerleştirilmesi <ol><li> Ventral pozisyonda ısıtılmış cerrahi masaya anestezi sıçan (ayak tutam tarafından teyit) yerleştirin; (;% 3.5 izofluran) spontan solunum frekanslarında ile anestezi korumak için burun konisi içine burnunu yerleştirin. Yavaşça cerrahi alanı Betadine ve% 70 alkol kullanımını alternatif 3 kez fırçalayın. Cerrahi makas kullanarak scapulalar arasında 0,5 cm&#39;lik orta hat cilt kesi olun. </li><li> Sırtüstü sıçan yerleştirin; yavaşça lastik bantlar kullanarak masanın her tarafında bacaklarını dizginlemek; anestezi korumak. Biraz daha iyi poz için aşırı esneterek boyun altında iki haddelenmiş steril gazlı bez 4x4 yerleştirin. Bir neşter kullanılarak klavikula düzeyinde boyun orta hatta 2 cm ventral servikal cilt kesi sağ olun. </li></ol> 6. SağJuguler Ven Kateterizasyon <ol><li> Bir hemostat kullanarak, açık açık, sağ juguler ven incelemek görselleştirmek ve geminin 5 mm bölümünü izole etmek tükürük ve lenfatik dokular ayırmak. 4-0 ipek sütür kullanarak, geminin en üst düzeye çıkarmak geminin hem kranial ve kaudal ucunda gevşek kravat yerleştirin. Bir mikro cerrahi makas yeterince bir kesi büyük yapmak kullanarak iki bitişik harfler arasındaki geminin doğrultusunda, kateter geçmek ve geminin etrafında kranial bitişik harfleri kravat. </li><li> Mikro diseksiyon kanca ve forseps yardımı ile kalbe doğru kabın içine venöz kateter yerleştirin ve PU 3F segmentinde tüm kap içinde olduğu kadar kateter ilerlemek. Kabına deriye tespit için kafatası ve kuyruk uçlarından bitişik harfler kullanın. </li></ol> 7. Sol Karotis Arter Kateterizasyon <ol><li> Bir hemostat kullanarak, açık açık sol karotis arter ortaya çıkarmak için uzunlamasına omohyoid kas incelemek ve benkabın 5 mm bölümü solate. Tamamen arterden ayrılır (beyaz renkte) vagus siniri emin olun. Özen parçalamak veya sinir kırmak için değil. </li><li> 4-0 ipek sütür kullanarak, geminin kaudal ucunda gevşek kravat yerleştirin geminin kranial ucunu kapalı kravat ve kesi aşağıdaki kan akışını durdurmak için dikiş üzerinde kaudal bir bulldog kelepçe yerleştirin. Bir mikro cerrahi makas kullanarak, yeterince büyük bir kesi, iki bitişik harfler arasındaki geminin doğrultusunda, kateter geçmek olun. Mikro diseksiyon kanca ve forseps yardımı ile kalbe doğru arteriyel kateter yerleştirin. </li><li> Sıkı bulldog kelepçesini çıkarmadan önce geminin içindeki kateter bölümünü tutmak için kilit olmadan pürüzsüz bir iğne tutucu kullanın. Kateterin tüm PU 2F segmentinde kadar yavaş yavaş iğne tutucu gevşeterek kabında ise forseps bir çift ile kateter Advance. Sabitlemek için kateter ve geminin etrafında gevşek kaudal bitişik harfleri Kravat, ama çok tigh değilt, kateter tıkanması için. </li></ol> 8. Tünel geri deri altına Kulak arkasında ve scapulalar arasındaki Kesiden ile 5 cm Tüp, bir düz hemostatın kullanma. Tüp yoluyla Balon exteriorize ve Tüp çıkarın. 9. Yerinde dışarıya Balon Güvenli 4-0 İpek Sütürlerin Üç Paslanmaz Çelik Yara Klipler ventral kesi ve dorsal insizyon kapatın. 10. Post-cerrahi Monitör ve Bakım <ol><li> Kateterizasyon sonrasında, anestezi sonlandırmak ve selüloz yatak ile bir kafeste lateral dekübit pozisyonunda sıçan kurtarmak. Daha sonra günde bir kez en az 4 saat veya ağrı belirtisi gösteren kadar 2 saat aralıklarla sıçan gözlemleyin ve. Sıçan ağrı veya sıkıntı belirtileri gösteriyorsa ketoprofenin [5 mg / kg, deri altı enjeksiyon (SQ)] ver hemen prosedürü ve her 12 saat sonrası. Bizim tecrübelerimize göre, hiçbir sıçan inisiyatif aşağıdaki ağrı için ek analjezi gerektirmiştirl enjeksiyonu. Analjezi ek dozlar için dikkate ortaya istiyorum gözlenen Özellikler ancak sınırlı içerir; anormal duruş; artış solunum hızı, insizyon sitenin savurgan / ungroomed, enfeksiyon / inflamasyon, göz akıntısı, piloerection / azalış (&quot;kirpi haircoat&quot;), sesli veya dokunsal uyaranlara yanıt olarak aktivitesinde azalma. NOT: Sıçanlar çalışmaya alındı ​​edilecek öncesi kateterizasyon ağırlığı&gt; 10 g kazanç 72 saat kurtarıldı. </li></ol> Hemodinamik Sistemine 11. Bağlantı <ol><li> Kurtarma ardından, çalışmada sağlıklı fareler (kilo&gt; 10g) kayıt. Lucite bölme sıçan yerleştirin ve daha önce anlatıldığı gibi anestetize. </li><li> Steril hemostata, mikro forseps, ekli künt iğne ile 1 ml şırınga ile cerrahi masaya steril örtüyü yerleştirin. NOT: hemostatı ipuçları kateter zarar görmesini önlemek için kauçuk ile kaplanmış olmalıdır. Cerrahi üzerinde anestezi sıçan yerleştirinburun konisi içine ventral konumu ve yeri burun tablo kendiliğinden respirations ile anestezi (% 3-5) korumak için. </li><li> Kelepçe arteriyel ve sadece metal fiş pimleri altındaki lastik kaplı hemostatlarla bir çift kullanarak venöz kateterler. Kateterin ucuna metal pimi çıkarın ve bağlı bir kör iğne ile heparin tuzlu su ile dolu bir 1 ml şırınga bağlamak için bir çift forseps kullanır. Buna karşılık, hemostat kaldırmak ve kateterler, patent sağlamak için 0.1 ml çekme. </li><li> , Kateterler yeniden kelepçe iğneyi çıkarın ve ayakkabı kutusu kafesinin üstüne (heparin tuzlu su ile önceden boşaltılan) bir döner bağlı oluyor ve gergin bir uzun kateter bu ucunu. Veri toplama ve kayıt, örnekleme, veya infüzyon için dönüştürücüler bu kateterler bağlayın. NOT: Tüm kateterler kendi kafesine hareket bir hayvanın dizi yetecek kadar uzun sarmal yay kanalları ile korunmaktadır. </li><li> Kateter bağlantısı, anestezi sonlandırmak takiben veselüloz yatak takımları ile bir kafes içinde sternum pozisyonda hayvanları kurtarmak. Elle 0.05 ml heparin tuzlu (50 IU / ml) hayvanların düzenli değerlendirmeler denk 24 saat her 1 saat ile satırları yıkayın, arteriyel kateter açıklığını korumak için. </li></ol> 12. Kan Örnekleme, Basıncı İzleme ve İlaç İdaresi <ol><li> Boş şırınga takın kateter arteriyel ve 0.6 ml satır içi floş çekme bağlı musluğunu için. Örnek şırınga takın örnek almak, ve 0.7 ml heparinli serum fizyolojik floş ardından 0.6 ml satır içi floş dönün. </li><li> Kullanım veri toplama donanım ve yazılım kayıt MAP ve kalp hızı sürekli ölçmek ve. </li><li> Venöz kateter için otomatik ilaç verme sistemi (ADDS) bağlayın. NOT: ADDS vazopressör infüzyon hızı normal fizyolojik aralığında muhafaza baskılara tespit MAP dayalı (yüksek, düşük, ya da 0 doz) ayarlar. </li></ol>

<ol>
	<li>Buckingham, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Indwelling+catheters+for+direct+recording+of+arterial+blood+pressure+and+intravenous+injection+of+drugs+in+the+conscious+rat.">Indwelling catheters for direct recording of arterial blood pressure and intravenous injection of drugs in the conscious rat.</a> J Pharm. Pharmacol. 28 (5), 459-461 (1976).</li><li>Buckle, J. W., Nathaniels, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proceedings:+A+dual+catheter+system+for+the+simultaneous+infusion+and+sampling+of+the+vascular+system+of+the+unrestrained+rat.">Proceedings: A dual catheter system for the simultaneous infusion and sampling of the vascular system of the unrestrained rat.</a> J. Physiol. 242 (2), 55P-56P (1974).</li><li>Solomon, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effective+dosing+of+lipid+A+analogue+E5564+in+rats+depends+on+the+timing+of+treatment+and+the+route+of+Escherichia+coli+infection.">Effective dosing of lipid A analogue E5564 in rats depends on the timing of treatment and the route of Escherichia coli infection.</a> J. Infect. Dis. 193 (5), 634-644 (2006).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bacillus+anthracis+cell+wall+produces+injurious+inflammation+but+paradoxically+decreases+the+lethality+of+anthrax+lethal+toxin+in+a+rat+model.">Bacillus anthracis cell wall produces injurious inflammation but paradoxically decreases the lethality of anthrax lethal toxin in a rat model.</a> Intensive Care Med. 36 (1), 148-156 (2010).</li><li>Quezado, Z. M., Natanson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+hemodynamic+abnormalities+and+vasopressor+therapy+in+sepsis+and+septic+shock.">Systemic hemodynamic abnormalities and vasopressor therapy in sepsis and septic shock.</a> Am. J. Kidney Dis. 20 (3), 214-222 (1992).</li><li>Perdue, P. W., Kazarian, K. K., Nevola, J., Law, W. R., Williams, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+local+and+systemic+antibiotics+in+rat+fecal+peritonitis.">The use of local and systemic antibiotics in rat fecal peritonitis.</a> J. Surg. Res. 57 (3), 360-365 (1994).</li><li>Qiu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+individual+survival+benefits+of+tumor+necrosis+factor+soluble+receptor+and+fluid+administration+are+not+additive+in+a+rat+sepsis+model.">The individual survival benefits of tumor necrosis factor soluble receptor and fluid administration are not additive in a rat sepsis model.</a> Intensive Care Med. 37 (10), 1688-1695 (2011).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severity+of+sepsis+alters+the+effects+of+superoxide+anion+inhibition+in+a+rat+sepsis+model.">Severity of sepsis alters the effects of superoxide anion inhibition in a rat sepsis model.</a> J. Appl. Physiol. 97 (4), 1349-1357 (2004).</li><li>Karzai, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protection+with+antibody+to+tumor+necrosis+factor+differs+with+similarly+lethal+Escherichia+coli+versus+Staphylococcus+aureus+pneumonia+in+rats.">Protection with antibody to tumor necrosis factor differs with similarly lethal Escherichia coli versus Staphylococcus aureus pneumonia in rats.</a> Anesthesiology. 99 (1), 81-89 (2003).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+Arterial+and+Venous+Catheterization+for+Blood+Sampling,+Drug+Administration+and+Conscious+Blood+Pressure+and+Heart+Rate+Measurements.">Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), e3496 (2012).</li></ol>

The authors have no potential conflicts of interest.

<html> Doğru, böylece damar erişim gerektiren, hemodinamik izleme gerçekleştirmek için yeteneği hastalığın klinik modeline tedavi yaklaşımları zorunlu kılmaktadır incelenmesi. Sepsis Bizim modelinde, arteriyel kateterizasyon sistemik basınç izleme sağlar ve venöz kateterizasyon, standart klinik tedavinin uygulanması için izin verir. Sepsis için standart tedavi antibiyotik infüzyon istenen aralığında arter basıncı korumak için bakteriyel enfeksiyon ve sıvıların ve vazopresörlerin infüzyon tedavi içerir. Her iki kateterler, kan örneği almak için kullanılır. Bu tasarımda, programlanabilir infüzyon uygulaması arter basınçları ortalama gerçek zamanlı dayalı vazopressör infüzyon hızının otomatik tetikleme ile pompaları sağlık personeli tarafından ve klinik öncesi ayar yapar manuel titrasyon gerektiren klinik ortamda üzerinden bir ilerlemedir Hayvanların çok sayıda eğitim mümkün bu tedavi yönteminin kullanın. . Bir içine juguler venöz kateter kaybolmaması,; e_content &quot;&gt; Bazı komplikasyonlar modelinin geliştirilmesinde erken yaşanmış Bu kısmi arteriyel ve sıkılaştırılması yerinden venöz kateterler, PU2 ve PU3 bileşenleri bağları, (% 1-2), hem tıkanıklığı dahil 2 L / dk O 2 debi ile izofluran konsantrasyonuna 2-3.5% tutarak çözüldü kurtarma (pulmoner trombüs veya diğer organ hasarı belirgin) sonra açıklanamayan ani ölüm, (% 1-2), küçük dal, (&lt;% 1) . kanama, lokal enfeksiyon ve öz-hasarın Diğer sık ​​görülen cerrahi komplikasyon gözlenmemiştir. Bir kez cerrahi yeterlilik elde edilir, her bir işlem en fazla 15 dakika içinde tamamlanması gerekir. Sağlıklı kurtarma olarak ölçülen başarı oranı ve Patent kateterler, içinde &quot;olabilir başarısız bir kateter için veri kaybı ve gerekli hayvan sayısını ve hesabı en aza indirmek için bir kez tam eğitimli. Bir ek hayvan, her çalışmaya dahil 90% aşması bekleniyor olabilirkomplikasyonları nedeniyle sadece füzyon &quot;ya da ölüm. Bu prosedür en kritik adım, kateter tasarımı ve yerleşimi olduğunu. malzemeler çok kolay sıkma yapmadan damar duvarını delmek şekilde değil ucundaki yumuşak olması gerekiyor. kateter gövdesi sert yeterince kabına ilerlemek mümkün ve yerine tespit edilmelidir (ucu hariç) olmalıdır. 1 bağlantılı arteriyel kateter ve 2 farklı çap boru için bağlanan boru çapları 3 göstermektedir venöz kateter için. Bu bileşenler ucundaki kateter çapını azaltmak için birbirlerine arasında kaydırılır ve muhafaza kap veya kalp kateteri yerleştirilmesini temin etmek için ilave dübel ile birbirine yapıştırılır. Bir kez iyileşti ve döner ve sabrının bağlı, MAP ve CVP dalga Şekil 2&#39;de gösterilen verilere benzer görünmelidir. Arteriyel kateter patenc korumak içinizleme sırasında y saatlik heparin tuz akışı (0.05 mi) yapılmalıdır. Sürekli infüzyon venöz kateter açıklığını korur. Hat bağlantısı ve floş sırasında, yakın ilgi hattında hava kabarcığı vardır sigortalamak için ödenmelidir. ≥0.1ml bir hava kabarcığı, akciğer, beyin ve diğer organlarda bir embolisine neden olabilir. Hemodinamik dalga kaydedilir ve çalışma boyunca analiz edilmiştir. X ekseni zaman sıkıştırarak olduğunda, Şekil 3, 1 saat boyunca MAP ve CVP değişiklikleri ve aynı zamanda kuru ve vazopresör infüzyon etkideki değişiklikleri gösterir. prosedür birkaç potansiyel sınırlamalar vardır. Bizim çalışmalarda, kateterler kadar 11 gün süreyle patent kalır. Bu kateterler Bu dönemde ötesinde patent kalacağını ne kadar bilinmemektedir. Tarif edildiği gibi kateterler sığdırmak için, kabaca, kemirgen ağırlığı ile ilişkilidir az vasküler boyutu vardır, bu çalışmaya dahil hayvanlar gerektiren daha büyük olduğu200 gr. daha küçük bir kateter çapına kullanımı açıklığını azaltarak akış dirençleri artmasına neden olur. Santral venöz basınç önlemleri Kavuşturulması çalışma döneminde büyüklüğü ve büyüme için hesaba yeterli atrium kesin kateter yerleştirilmesi gerekir ve bir meydan okuma olabilir. Bir kez hakim, arteriyel ve vasküler kateterizasyon enstrümantasyon sırasında herhangi bir ağrı ve sıkıntı minimize veya bir kez kurtarıldı tutarken sıvıların veya tedavilerin hemodinamik izleme, kan örneklemesi ve infüzyon gerektiren kemirgen modellerinde geniş bir yelpazede için temel sağlayabilir. Aslında, femoral ven önceki JOVE yayın 10 anlatan kateterizasyon ile birlikte, başarıyla 3 implante kateter ile bu modeli gerçekleştirdik.

Sıçanların Arteriyel ve venöz kateterizasyon uzun laboratuvar araştırmalarında kullanılmıştır. 1, 2 Kateterizasyon sistolik, diyastolik ve ortalama arter basıncı (OAB), kalp atım hızı (KAH) ve santral venöz basınç dahil olmak üzere hemodinamik parametrelerin izlenmesi için kullanılabilir (CVP) . 3,4 Buna ek olarak, bu kateter standart tedavi veya potansiyel tedaviler enfüzyon ve kan örneklemesi ayrıca, bir hastalık ya da tedavi altında yatan mekanizma analizine izin verir. Bu nedenle, küçük bir hayvan modelinde damar yolu olan klinik performansı önlemler ve tedavi etkilerinin araştırılması için kritik önem taşır. Kritik hastalık altında yatan nedenleri araştırmak için, ilk insan durumunu simüle etmek için bir model geliştirilmesi önemlidir. Bakteri bilinen bir miktarda içi trakeal aşılama başarıyla pnömoni patogenezi, daha sonra sepsis içine gelişen ciddi pulmoner enfeksiyon üretmek için kullanılır olmuştur.3, 5 hemodinamik önlemler İzleme ve standart klinik tedavi sağlayan rutin destekleyici bakım simüle etmek çok önemlidir. Standart klinik tedavi altta yatan enfeksiyon ve sıvı ve vazopresörlerin yönetimini temizleyerek yardımcı olur antibiyotik infüzyon içerir, iki terapiler kan basıncını korumak için septik hastalarda kullanılan. 5-7 Vasküler erişim, biz çalışma zaman özellikle patent kateterler implantasyon özellikle önemlidir sepsis için araştırma tedaviler. Uzun yıllar boyunca, kemirgenler için standart klinik tedavi yönetmek yeteneği implante kateter ve doğru zamanla küçük hacimli sunmak için infüzyon teknolojisi yeteneğini oluşturmak için gerekli özelliklere sahip malzemelerin mevcudiyeti ile sınırlı kalmıştır. Buna ek olarak, belirli bir hemodinamik ölçüm sürekli izlenmesi yanıt olarak bir infüzyon tetiklemek için yeteneği, tutarlı ve tekrarlanabilir bir stand için izin verirDaha büyük örneği kullanılarak kemirgen çalışmaları tipik boyutları ard tedavi modeli. 8, 9 Bu teknolojik sınırlamalar malzeme ve hassas donanım hemodinamik parametreleri izlerken aynı anda rutin tedaviler sağlamak için ama üstesinden edilmiş, arteriyel ve venöz damar yolu hem mevcut olmalıdır. Video bir anestezi sıçan karotis arter ve juguler ven kateteri sık yerleştirilmesi için cerrahi teknik detayları. 72 saat geri kazanma periyodunu takiben, hayvanlar yeniden anestezi ve hemodinamik izleme sistemine takılan kateterlerin bağlamak için kullanılan kemirgen muhafazaya bağlı bir bağlayıcı ve döner kurulum bağlı. Çalışma sırasında, sistem, bir sıvı infüzyon için izin veren, belirli bir infüzyon hızında belirli bir ses seviyesini sağlayan veya belirli bir basınç aralığını korumak için tespit edilen ortalama arter basıncı üzerinde bağlı bir enfüzyon hızı sağlar otomatik bir sistem ya göre. Sıvı infüzyon sistemiprogramlanabilir şırınga veri toplama sisteminin dijital çıkışlı bu arayüz pompaları ve MAP izleme yazılımı tarafından kontrol edilir kullanır. , basınçları izleme sıvıları ve vazopressörler beslerken, ve hayvanları işlemek zorunda kalmadan kan örnekleme yaparken halata ve döner kurulum çalışma sırasında sıçan serbest dolaşımını sağlar. 24 Araçlı hayvanları izleme genişletilebilir donanım ile (bizim kurulumunda) 2 kateter her ile 12 enstrümante hayvanların eş zamanlı izlenmesi, her deneyde birden tabakalı grupları incelemek için esneklik büyük bir olanak. Bu kateterizasyon prosedürü kadar 11 gün süreyle izlenmesi, örnekleme ve tedavi için damar yolu gerektiren benzer kemirgen modelleri kullanmak araştırma olanakları için yararlı olabilir. Bu prosedürü dikkate araştırma tesisi daha sonra bu hayvanların bakımını developin için kemirgenler ile deneyim ve uygun destek yapıya sahipseg Bu beceriler (naif sıçan, kateter bileşenleri ve teknik masraflar dahil) az $ 50 dolardan fazla 180 Kateterize sıçan başına toplam maliyeti azaltarak ve zamanlama esnekliği artırarak, önemli bir maliyet tasarrufu sağlayabilir (naif sıçan şirketi teslimat takvimi vs kolayca kullanılabilir arasında) sıçanları implante. Bu prosedürün başarısı kateterizasyon gerçekleştiren kişinin becerilerine bağlıdır. Bu prosedür yetkin olmak için gerekli eğitim hayvanlar&gt;% 90 Elde edilen kateter açıklık oranı ile 20 40 sıçanlardan değişmektedir.

<table><tbody><tr><td>Straight micro dissecting forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-8102</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Delicate straight hemostatic forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-7114</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Delicate curved hemostatic forceps</td><td>Miltex</td><td>&amp;nbsp;7-4</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Serrefine curved, very delicate micro clamp</td><td>Roboz</td><td>RS-5471</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Micro dissecting hook</td><td>Miltex</td><td>19-220</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Angled on edge micro dissecting spring scissor</td><td>Roboz</td><td>RS-5618</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Light operating scissor</td><td>Roboz</td><td>RS-6750</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Scalpel handle and blade (#10)</td><td>Cincinnati Surgical</td><td>RS-9843</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Pack of 4-0 silk suture with curved needle</td><td>Ethicon</td><td>FS-2</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Straight micro suturing needle holder</td><td>Roboz</td><td>RS-6410</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Wound clip</td><td>Stoelting</td><td>59027</td><td>surgical instrument</td></tr><tr><td>Sterile gauze 2&quot;x2&quot;&amp;nbsp;</td><td>Dynarex</td><td>3362</td><td>consumable</td></tr><tr><td>Gauze 4&quot;x4&quot;&amp;nbsp;</td><td>Covidien</td><td>2556</td><td>consumable</td></tr><tr><td>Anesthesia vaporizer</td><td>Surgivet</td><td>V703001</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Lucite box</td><td>Custom</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Baxter</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Downdraft Table</td><td>Airscience</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Table top surgical platform</td><td>Custom</td><td></td><td>equipment</td></tr><tr><td>Arterial Catheter</td><td>Custom - Scientific Commodities Inc.</td><td></td><td>consumable</td></tr><tr><td>Venous Catheter</td><td>Custom - Scientific Commodities Inc.</td><td></td><td>consumable</td></tr><tr><td>Data acquisition system</td><td>ADInstruments</td><td>Powerlab 16/30</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Data analysis software</td><td>ADInstruments</td><td>LabChart v7.3</td><td>equipment</td></tr><tr><td>Programmable infusion pumps</td><td>Harvard Apparatus</td><td>PHD Ultra</td><td>equipment</td></tr></tbody></table>

catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model

Kritik hastalık incelemek için küçük bir hayvan modelinin başarısı, kısmen, insan durumunu simüle etmek modelin yeteneğine bağlıdır. Bakteri bilinen bir miktarda içi trakeal aşılama başarıyla sonra sepsis içine geliştirir pnömoni patogenezi yeniden oluşturmak için kullanılır olmuştur. Hemodinamik parametreleri İzleme ve antibiyotikler, sıvı ve kan basıncını korumak için uyuşturucu yapmak ama bu modelde rutin destekleyici bakım taklit için kritik infüzyonu dahil olmak üzere standart klinik tedavi sağlayarak böylece arteriyel ve venöz damar erişim gerektirir. Video bir anestezi sıçan karotis arter ve juguler ven kateteri sık yerleştirilmesi için cerrahi teknik detayları. 72 saat geri kazanma periyodunu takiben, hayvanlar yeniden anestezi ve hemodinamik izleme sistemine takılan kateterlerin bağlayan kemirgen muhafazaya bağlı bir bağlayıcı ve döner kurulum bağlı. Bu kurulum serbest hareketine izin verirsürekli sıvı ve ilaç beslerken, baskılar izleme (antibiyotikler, vazopressörler) ve kan örneklemesi yapılırken çalışma sırasında sıçan.

Damar basıncı değişikliği hemodinamik dalga formları ile temsil edilen elektrik sinyalleri haline dönüştürür sıvı dolu, kateter yolu ile (Şekil 1) iletilir ve dönüştürülür (Şekil 2, 3). Vasküler erişim olmadan, bu önlemlerin yapılamadı. Dalga Gerçek zamanlı streaming temelini yenmek için bir ritmi değişikliklere (Şekil 2) tespiti ve analizi için izin verir. Dalga zaman ölçeğini Sıkıştırma uzun süre (gün dakika) üzerinde meydana gelen değişiklikleri vazopressör infüzyon oranlarındaki değişikliklerle ilişkili olabilir (Şekil 3, üst 4 dalga) (Şekil 3, düşük 4 dalga) ölçülmesi için izin verir. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig1.jpg" /> Şekil 1. Kateter Tasarım: arteriyel ve venöz kateter PU, poliüretan bileşenlerinin Detayları;. PE, polietilen (segment uzunluğu) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig1highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig2.jpg" /> Şekil 7 sn boyunca 4 tipik kemirgenler 7 gün sonrası kateterizasyon 2. Gerçek zamanlı MAP dalga. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig2highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig3.jpg" /> 1 saat boyunca 4 tipik kemirgenler (üst 4 dalga) 7 gün sonrası kateterizasyon Şekil 3. Zaman-sıkıştırılmış MAP dalga. MAP (düşük 4 dalga formları) ortalama zaman, bu değer tetik için kullanılır KATIYOR yüksek (&lt;90 mmHg) düşük (&lt;100 mmHg) veya stop (&gt; 110) infüzyon pompası akış yanıtı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig3highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model at JoVE.com

Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

Karotis Arter ve Ven Juguler kateterizasyon bir Bilinçli Rat Modelinde, İnfüzyonları ve Kan Örnekleme hemodinamik Tedbirleri Gerçekleştirme

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

catheterization-carotid-artery-jugular-vein-to-perform-hemodynamic

Research

JoVE Journal

Medicine

71.7K Görüntüleme.  National Institutes of Health. Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

Video: Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Hyperinsulinemic-Euglycemic Clamp in the Conscious Rat

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, T2D results in elevated blood glucose levels. The "gold-standard" in assessing insulin sensitivity is a hyperinsulinemic-euglycemic clamp or insulin clamp. In this procedure, insulin is infused at a constant rate resulting in a drop in blood glucose. To maintain blood glucose at a constant level, exogenous glucose (D50) is infused into the venous circulation. The amount of glucose infused to maintain homeostasis is indicative of insulin sensitivity. Here, we show the basic clamp procedure in the chronically catheterized, unrestrained, conscious rat. This model allows blood to be collected with minimal stress to the animal. Following the induction of anesthesia, a midline incision is made and the left common carotid artery and right jugular vein are catheterized. Inserted catheters are flushed with heparinized saline, then exteriorized and secured. Animals are allowed to recover for 4-5 days prior to experiments, with weight gain monitored daily. Only those animals who regain weight to pre-surgery levels are used for experiments. On the day of the experiment, rats are fasted and connected to pumps containing insulin and D50. Baseline glucose is assessed from the arterial line and used a benchmark throughout the experiment (euglycemia). Following this, insulin is infused at a constant rate into the venous circulation. To match the drop in blood glucose, D50 is infused. If the rate of D50 infusion is greater than the rate of uptake, a rise in glucose will occur. Similarly, if the rate is insufficient to match whole body glucose uptake, a drop will occur. Titration of glucose continues until stable glucose readings are achieved. Glucose levels and glucose infusion rates during this stable period are recorded and reported. Results provide an index of whole body insulin sensitivity. The technique can be refined to meet specific experimental requirements. It is further enhanced by the use of radioactive tracers that can determine tissue specific insulin-stimulated glucose uptake as well as whole body glucose turnover.

The hyperinsulinemic-euglycemic clamp is the "gold standard" for the assessment of insulin action. Insulin is infused at a constant rate stimulating glucose uptake. The amount of exogenous glucose infused to counter this drop is indicative of insulin sensitivity. Here the procedure is performed on a conscious, unrestrained rat.

Bilinçli Rat hiperinsülinemik öglisemik Kelepçe

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, ...

Tıp

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

Kan Örnekleme, İlaç İdaresi ve Bilinçli Kan Basıncı ve Nabız ölçümleri Femoral Arter ve Venöz Kateterizasyon

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

2-Vessel Occlusion/Hypotension: A Rat Model of Global Brain Ischemia

Cardiac arrest followed by resuscitation often results in dramatic brain damage caused by ischemia and subsequent reperfusion of the brain. Global brain ischemia produces damage to specific brain regions shown to be highly sensitive to ischemia 1. Hippocampal neurons have higher sensitivity to ischemic insults compared to other cell populations, and specifically, the CA1 region of the hippocampus is particularly vulnerable to ischemia/reperfusion 2.
The design of therapeutic interventions, or study of mechanisms involved in cerebral damage, requires a model that produces damage similar to the clinical condition and in a reproducible manner. Bilateral carotid vessel occlusion with hypotension (2VOH) is a model that produces reversible forebrain ischemia, emulating the cerebral events that can occur during cardiac arrest and resuscitation. We describe a model modified from Smith et al. (1984) 2, as first presented in its current form in Sanderson, et al. (2008) 3, which produces reproducible injury to selectively vulnerable brain regions 3-6. The reliability of this model is dictated by precise control of systemic blood pressure during applied hypotension, the duration of ischemia, close temperature control, a specific anesthesia regimen, and diligent post-operative care. An 8-minute ischemic insult produces cell death of CA1 hippocampal neurons that progresses over the course of 6 to 24 hr of reperfusion, while less vulnerable brain regions are spared. This progressive cell death is easily quantified after 7-14 days of reperfusion, as a near complete loss of CA1 neurons is evident at this time.
In addition to this brain injury model, we present a method for CA1 damage quantification using a simple, yet thorough, methodology. Importantly, quantification can be accomplished using a simple camera-mounted microscope, and a free ImageJ (NIH) software plugin, obviating the need for cost-prohibitive stereology software programs and a motorized microscopic stage for damage assessment.

Bilateral carotid occlusion coupled with systemic hypotension produces global brain ischemia in the rat, resulting in damage to the hippocampus with reproducible severity. Animal subjects are impaired with predictable patterns of brain damage, they recover expediently, and mortality rates are comparatively low.

2-Gemi Tıkanıklığı / Hipotansiyon: Küresel Beyin İskemi Rat Modeli

Cardiac arrest followed by resuscitation often results in dramatic brain damage caused by ischemia and subsequent reperfusion of the brain. Global brain ...

A Model of Chronic Nutrient Infusion in the Rat

Chronic exposure to excessive levels of nutrients is postulated to affect the function of several organs and tissues and to contribute to the development of the many complications associated with obesity and the metabolic syndrome, including type 2 diabetes. To study the mechanisms by which excessive levels of glucose and fatty acids affect the pancreatic beta-cell and the secretion of insulin, we have established a chronic nutrient infusion model in the rat. The procedure consists of catheterizing the right jugular vein and left carotid artery under general anesthesia; allowing a 7-day recuperation period; connecting the catheters to the pumps using a swivel and counterweight system that enables the animal to move freely in the cage; and infusing glucose and/or Intralipid (a soybean oil emulsion which generates a mixture of approximately 80% unsaturated/20% saturated fatty acids when infused with heparin) for 72 hr. This model offers several advantages, including the possibility to finely modulate the target levels of circulating glucose and fatty acids; the option to co-infuse pharmacological compounds; and the relatively short time frame as opposed to dietary models. It can be used to examine the mechanisms of nutrient-induced dysfunction in a variety of organs and to test the effectiveness of drugs in this context.

A protocol for chronic infusions of glucose and Intralipid in rats is described. This model can be used to study the impact of nutrient excess on organ function and physiological parameters.

Sıçan Kronik Besin İnfüzyon Bir Model

Chronic exposure to excessive levels of nutrients is postulated to  affect the function of several organs and tissues and to contribute to the  ...

Hemodynamic Characterization of Rodent Models of Pulmonary Arterial Hypertension

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle proliferation and obliteration of pulmonary arterioles. This in turn results in right ventricular (RV) failure, with significant morbidity and mortality. Rodent models of PAH, in the mouse and the rat, are important for understanding the pathophysiology underlying this rare disease. Notably, different models of PAH may be associated with different degrees of pulmonary hypertension, RV hypertrophy and RV failure. Therefore, a complete hemodynamic characterization of mice and rats with PAH is critical in determining the effects of drugs or genetic modifications on the disease. 
Here we demonstrate standard procedures for assessment of right ventricular function and hemodynamics in both rat and mouse PAH models. Echocardiography is useful in determining RV function in rats, although obtaining standard views of the right ventricle is challenging in the awake mouse. Access for right heart catheterization is obtained by the internal jugular vein in closed-chest mice and rats. Pressures can be measured using polyethylene tubing with a fluid pressure transducer or a miniature micromanometer pressure catheter. Pressure-volume loop analysis can be performed in the open chest. After obtaining hemodynamics, the rodent is euthanized. The heart can be dissected to separate the RV free wall from the left ventricle (LV) and septum, allowing an assessment of RV hypertrophy using the Fulton index (RV/(LV+S)). Then samples can be harvested from the heart, lungs and other tissues as needed.

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a disease of pulmonary arterioles that leads to their obliteration and the development of right ventricular failure. Rodent models of PAH are critical in understanding the pathophysiology of PAH. Here we demonstrate hemodynamic characterization, with right heart catheterization and echocardiography, in the mouse and rat.

Pulmoner Hipertansiyon Kemirgen Modeller Hemodinamik Karakterizasyonu

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a rare disease of the pulmonary vasculature characterized by endothelial cell apoptosis, smooth muscle ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

Eşzamanlı elektrokardiyografi kayıt ve invaziv kan basınç ölçüm sıçanlarda

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

Continuous Blood Sampling in Small Animal Positron Emission Tomography/Computed Tomography Enables the Measurement of the Arterial Input Function

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal blood time-activity concentration also known as arterial input function (AIF) is a key point, especially for the characterization of animal disease models and the introduction of newly developed radiotracers. The knowledge of radiotracer availability in the blood helps to interpret PET/CT-derived data of tissue activity. For this purpose, online blood sampling during the PET/CT imaging is advisable to measure the AIF. In contrast to manual blood sampling and image-derived approaches, continuous online blood sampling has several advantages. Besides the minimized blood loss, there is an improved resolution and a superior accuracy for the blood activity measurement. However, the major drawback of online blood sampling is the costly and time-consuming preparation to catheterize the femoral vessels of the animal. Here, we describe an easy and complete workflow for catheterization and continuous blood sampling during small animal PET/CT imaging and compared it to manual blood sampling and an image-derived approach. Using this highly-standardized workflow, the determination of the fluorodeoxyglucose ([18F]FDG) AIF is demonstrated. Further, this procedure can be applied to any radiotracer in combination with different animal models to create fundamental knowledge of tracer kinetic and model characteristics. This allows a more precise evaluation of the behavior of pharmaceuticals, both for diagnostic and therapeutic approaches in the preclinical research of oncological, neurodegenerative and myocardial diseases.

Here a protocol for continuous blood sampling during PET/CT imaging of rats to measure the arterial input function (AIF) is described. The catheterization, the calibration and setup of the system and the data analysis of the blood radioactivity are demonstrated. The generated data provide input parameters for subsequent bio-kinetic modeling.

Küçük hayvan Pozitron Emisyon Tomografi/Bilgisayarlı tomografi sürekli kan örnekleme arteriyel giriş fonksiyon ölçümü sağlar

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal ...

Establishment of Deep Hypothermic Circulatory Arrest in Rats

Deep hypothermic circulatory arrest (DHCA) is routinely applied during surgeries for complex congenital heart disease and aortic arch disease. The present study aims to provide a method for establishing DHCA in rats. To evaluate the impact of the DHCA process on vital signs, a normal temperature cardiopulmonary bypass (CPB) rat model without circulatory arrest was used as a control. As expected, DHCA led to a significant decrease in body temperature and mean arterial blood pressure. The blood gas analysis indicated that DHCA increased lactic acid levels but did not influence the blood pH and the concentrations of hemoglobin, hematocrit, Na+, Cl&#8722;, K+, and glucose. Furthermore, compared with the normal temperature CPB rats, the results of the transmission electron microscopy showed a mild increase in hippocampal autophagosomes in the DHCA rats.

This protocol presents the establishment of deep hypothermic circulatory arrest in rats, which can be applied to investigate systemic inflammatory response syndrome, ischemia/reperfusion injury, oxidative stress, neuroinflammation, etc.

Sıçanlarda Derin Hipotermik Dolaşım Tutuklamasının Kurulması

Deep hypothermic circulatory arrest (DHCA) is routinely applied during surgeries for complex congenital heart disease and aortic arch disease. The present ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, which could potentially affect results. The jugular vein cannulation (JVC) in rats is a widely used model for repeated blood collection but requires adequate training of surgery skills and animal care. This article details the microsurgical procedures for establishing and maintaining a permanent JVC rat model with specific focus on the placement and sealing of the jugular cannula. The importance of monitoring physiological (e.g., body weight, food, and water intake) and hematological parameters, was highlighted with results presented for 6 days post-surgery during the rat&#39;s recovery. The drug-plasma concentration-time profile of orally administered natural phenol ellagic acid was determined in the JVC rat model.

Detailed microsurgical techniques are demonstrated to establish a longer-term jugular vein cannulation rat model for sequential blood collection in the same animal. Physiological and hematological parameters have been monitored during the rat's recovery phase. This model has been applied to study pharmacokinetics of orally administered polyphenol without inducing animal stress.

Oral Yoldan Verilen İlacın Seri Kan Örneklemesi için Sıçanlarda Kalıcı Juguler Ven Kanülasyonu Oluşturma Mikrocerrahi Becerileri

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

Bilinçli Sıçanlarda Tekrarlanan Kan Alımı için Subklavyen Ven Ponksiyon Yöntemi

Subclavian Vein Blood Sampling in Conscious Rats

There are several established methods for obtaining repeated blood samples from rats, with the most commonly employed methods being lateral tail vein sampling without anesthesia and jugular vein sampling with anesthesia. However, most of these methods require assistance and anesthetic equipment and sometimes pose difficulties in terms of blood collection or the poor quality of blood samples. In addition, these methods of blood collection consume significant time and human resources when repeated blood sampling is required for a large number of rats. This study presents a technique for repetitive blood sampling in non-anesthetized rats by a single proficient individual. Highly satisfactory blood samples can be obtained by puncturing the subclavian vein. The method demonstrated an impressive overall success rate of 95%, with a median time of merely 2 min from rat restraint to the completion of blood collection. Furthermore, performing consecutive blood collections within the designated range does not inflict any harm on the rats. This method is worth promoting for blood collection, especially in large-scale pharmacokinetic studies.

Yazar Spotlight: Anestezi Uygulanmamış Sıçanlarda Etkili Bir Kan Alma Yöntemi Geliştirme 

Here we present a combination of effective rat restriction and subclavian vein puncture methods that enable rapid, safe, and repeated blood collection in rats without anesthesia.

Bilinçli Sıçanlarda Subklavyen Ven Kan Örneklemesi

There are several established methods for obtaining repeated blood samples from rats, with the most commonly employed methods being lateral tail vein ...