Intramural NIH program supported the development of this model. Publication support was provided by Harvard Apparatus Inc. and ADInstruments Inc. The work by the authors was done as part of US government&#8211;funded research; however, the opinions expressed are not necessarily those of the National Institutes of Health.

아래에서 설명하는 절차는 국립 보건원 (National Institutes of Health)에서 임상 센터의 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인 된 프로토콜의 일환으로 수행되었다. 수술 1. 준비 <ol><li> 가스 카테터 및 악기를 소독. </li></ol> 2. 카테터를 준비 <ol><li> 개방성을 보장하고 유출을 방지하기 위해 헤파린 글리세롤 (250 IU의 헤파린 / 1 ml의 글리세롤)와 카테터를 플래시합니다. 헤파린 글리세롤을 유지하기 위해 금속 스토퍼 (20 GA, 15mm)와 카테터의 끝을 연결합니다. </li></ol> 3. 무균 워크 스테이션을 준비 <ol><li> 워크 스테이션과 악기 트레이 스프레이 70 % 알코올을 사용합니다. 트레이의 운영 테이블과 악기 트레이 및 장소 악기를 다루 멸균 드레이프를 사용합니다. </li></ol> 4. 수술에 대한 쥐를 준비 <ol><li> 장소 쥐 개별적 루 챔버 및 마취제에 노출; 이소 플루 란 (3~5%) 혼합의식이 될 때까지 산소와 에드. 챔버에서 쥐를 제거하고 목의 전방과 후방 지역에서 모피를​​ 면도. 눈에 윤활유 연고를 적용합니다. </li></ol> 5. 카테터 삽입술 <ol><li> 복부 위치에서 가열 수술 테이블에 마취 쥐 (발가락 핀치에 의해 확인)를 배치; (3.5 % 이소 플루 란) 자발적 호흡 마취를 유지하기 위해 코 콘에 코를 배치합니다. 부드럽게 외과 영역을 베타 딘 및 70 % 알콜의 사용을 교대로 3 회 문질러. 수술 용 가위를 사용하여 견갑골 사이에 0.5 cm 중간 선에 피부 절개를합니다. </li><li> 등의 위치에 쥐의 위치를​​ 조정; 부드럽게 고무 밴드를 사용하여 테이블의 각 측면에 다리를 억제; 마취를 유지한다. 약간 더 노출 hyperextend하는 목 아래에 두 개의 압연 멸균 4 × 4 거즈를 놓습니다. 메스를 사용하여 쇄골 수준에서 목의 정중선의 2cm 복부 자궁 경부 피부 절개 권한을 확인합니다. </li></ol> 6. 오른쪽경정맥 도관 <ol><li> 지혈제를 사용하여, 퉁명스럽게, 오른쪽 경정맥을 해부 시각화하고 선박의 5mm 부분을 분리 할 수​​있는 타액과 림프 조직을 분리합니다. 4-0 실크 봉합사를 사용하여, 용기의 노출을 최대화하기 위해 용기의 양쪽 뇌 및 꼬리 단부에 느슨한 넥타이를 배치. 마이크로 수술 가위 충분히 절개가 큰 만들어 사용하면 두 합자 사이의 용기에 맞춰, 카테터를 전달하고 용기 주변의 두개골 끈을 묶을 수 있습니다. </li><li> 마이크로 해부 후크와 집게의 도움으로 심장을 향해 용기에 정맥 카테터를 삽입하고 PU 3 층 세그먼트의 모든 용기가 될 때까지 카테터를 진행합니다. 용기에 카테터를 확보하기 위해 두개골과 꼬리 끝의 합자를 사용합니다. </li></ol> 7. 왼쪽 경동맥 동맥 도관 <ol><li> 지혈제를 사용하면, 퉁명스럽게 왼쪽 경동맥을 노출 길이 방향 omohyoid 근육을 해부하고 난선박의 5mm 부분을 solate. 완전히 동맥에서 분리 (색상 흰색) 미주 신경을 확인합니다. 주의 파쇄 또는 신경을 깰 수 없습니다. </li><li> 4-0 실크 봉합사를 사용하여, 선박의 꼬리 끝에 느슨한 넥타이를 배치 선박의 두개골 끝을 묶고 절개 다음 혈액의 흐름을 중지 봉합 위 꼬리 쪽 불독 클램프를 놓습니다. 마이크로 수술 가위를 사용하여 충분히 큰 절개, 두 합자 사이의 용기에 맞춰, 카테터를 통과 할 수 있습니다. 마이크로 해부 후크와 집게의 도움을 심장쪽으로 동맥 카테터를 삽입합니다. </li><li> 꽉 불독 클램프를 제거하기 전에 용기 내부의 카테터의 부분을 유지하기 위해 잠금없이 부드러운 바늘 홀더를 사용합니다. 카테터의 전체 PU 2F 세그먼트까지 천천히 바늘 홀더를 풀어하면 용기에있는 동안 포셉 쌍 카테터를 전진. 확보하기 위해 카테터와 혈관 주위에 느슨한 꼬리 합자 타이,하지만 그렇게 tigh하지같은 t은 카테터를 폐색합니다. </li></ol> 8. 터널 다시 피하 귀 뒤에 견갑골 사이의 절개를 통해 5cm 튜브, 스트레이트 지혈제를 사용하여. 튜브를 통해 카테터를 외면 화하다하고 튜브를 제거합니다. 9.에서 표면화 카테터를 고정하기 위해 4-0 실크 봉합사와 세 개의 스테인레스 스틸 상처 클립과 복부 절개하고, 지느러미 절개를 닫습니다. 10. 포스트 - 수술 모니터 및 관리 <ol><li> 카테터 삽입 후, 마취를 종료하고 셀룰로오스 침구와 케이지에서 측와위에서 쥐를 복구 할 수 있습니다. 다음 번에 ​​적어도 하루에 4 시간 동안 고통의 흔적을 보여주는 때까지 2 시간 간격으로 쥐를 관찰하고. 쥐가 통증이나 고통의 흔적을 보여줍니다 경우 케토 프로 펜 [5 ㎎ / ㎏, 피하 주사 (SQ)를]주고 즉시 절차마다 12 시간을 게시합니다. 우리의 경험에 의하면, 어떤 쥐 있으면 초기 다음과 같은 고통에 대한 추가 진통제를 필요하지 않은L 주입입니다. 진통제의 추가 용량에 대한 고려를 이끌어내는 것이 관찰 특성은 제한되는 것은 아니지만 포함; 비정상적인 자세; 증가 호흡, 절개 사이트의 비경제 / ungroomed, 감염 / 염증, 눈 방전, 경직에 / 감소 ( &quot;아군 haircoat에&quot;), 청각 또는 촉각 자극에 대한 반응 활성이 감소. 참고 : 쥐를 대상으로한다 사전 도관 무게에서&gt; 10g을 얻을 72 시간 동안 회복했다. </li></ol> 혈역학 시스템 11. 연결 <ol><li> 복구 후, 연구에서 건강한 쥐 (체중 증가&gt; 10g)를 등록. 루 챔버에서 쥐를 놓고 앞서 설명 마취. </li><li> 멸균 지혈, 마이크로 집게, 부착 무딘 바늘로 1 ML의 주사기와 수술 테이블에 멸균 드레이프를 놓습니다. 주 : 지혈의 팁 카테터 손상을 방지하기 위해 고무로 피복한다. 수술에 마취 쥐를 놓습니다코 콘에 복부 위치와 장소 코의 표는 자발적 호흡 마취 (3~5%)을 유지합니다. </li><li> 클램프 동맥 단지 금속 플러그 핀 아래 고무 캡핑 지혈제의 쌍을 사용하여 정맥 카테터. 카테터의 단부에서 금속 핀을 제거 및 장착 무딘 바늘 헤파린 염수로 채워진 1ml를 주사기를 연결하는 한 쌍의 핀셋을 사용한다. 차례로, 지혈제를 제거하고 카테터 특허 있습니다 보장하기 위해 0.1 ml의 철회. </li><li> , 카테터를 다시하는 것은 클램프 바늘을 제거하고 신발 상자 케이지의 상단에 (헤파린 식염수 사전 플러시)이이 회전에 연결되어와 닿는 긴 카테터이 끝을 연결합니다. 데이터 수집 및 녹음, 샘플링, 또는 주입을위한 트랜스 듀서 이러한 카테터를 연결합니다. 참고 : 모든 카테터가 자신의 새장에 운동 동물의 전체 범위를 허용하기에 충분히 긴 코일 스프링 도관으로 보호됩니다. </li><li> 카테터 연결, 마취 종료 후 및셀룰로오스 침구와 케이지에서 흉골 위치에 동물을 복구 할 수 있습니다. 수동으로 0.05 ml의 헤파린 식염수 (50 IU / ㎖) 동물의 정기적 인 평가와 일치 24 시간마다 1 시간으로 줄을 세척, 동맥 카테터의 개방성을 유지하기 위해. </li></ol> 12. 혈액 샘플링, 압력 모니터링 및 약물 관리 <ol><li> 빈 주사기를 연결하는 카테터 동맥 0.6 ml의에게 인라인 플러시를 철회 연결 코크합니다. 샘플 주사기를 연결 샘플을 채취, 0.7 ml의 헤파린 식염수 세척 다음에 0.6 ml의 인라인 높이를 돌려줍니다. </li><li> 사용 데이터 수집 하드웨어 및 소프트웨어는 기록 MAP과 심장 박동이 지속적으로 측정하고 있습니다. </li><li> 정맥 카테터에 자동화 된 약물 전달 시스템 (ADDS)을 연결합니다. 참고 : ADDS는 혈압 상승의 주입 속도 정상적인 생리적 범위 내에서 유지 압력을 감지 MAP에 따라 (높음, 낮음 또는 0 용량)을 조정합니다. </li></ol>

<ol>
	<li>Buckingham, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Indwelling+catheters+for+direct+recording+of+arterial+blood+pressure+and+intravenous+injection+of+drugs+in+the+conscious+rat.">Indwelling catheters for direct recording of arterial blood pressure and intravenous injection of drugs in the conscious rat.</a> J Pharm. Pharmacol. 28 (5), 459-461 (1976).</li><li>Buckle, J. W., Nathaniels, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proceedings:+A+dual+catheter+system+for+the+simultaneous+infusion+and+sampling+of+the+vascular+system+of+the+unrestrained+rat.">Proceedings: A dual catheter system for the simultaneous infusion and sampling of the vascular system of the unrestrained rat.</a> J. Physiol. 242 (2), 55P-56P (1974).</li><li>Solomon, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effective+dosing+of+lipid+A+analogue+E5564+in+rats+depends+on+the+timing+of+treatment+and+the+route+of+Escherichia+coli+infection.">Effective dosing of lipid A analogue E5564 in rats depends on the timing of treatment and the route of Escherichia coli infection.</a> J. Infect. Dis. 193 (5), 634-644 (2006).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bacillus+anthracis+cell+wall+produces+injurious+inflammation+but+paradoxically+decreases+the+lethality+of+anthrax+lethal+toxin+in+a+rat+model.">Bacillus anthracis cell wall produces injurious inflammation but paradoxically decreases the lethality of anthrax lethal toxin in a rat model.</a> Intensive Care Med. 36 (1), 148-156 (2010).</li><li>Quezado, Z. M., Natanson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+hemodynamic+abnormalities+and+vasopressor+therapy+in+sepsis+and+septic+shock.">Systemic hemodynamic abnormalities and vasopressor therapy in sepsis and septic shock.</a> Am. J. Kidney Dis. 20 (3), 214-222 (1992).</li><li>Perdue, P. W., Kazarian, K. K., Nevola, J., Law, W. R., Williams, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+local+and+systemic+antibiotics+in+rat+fecal+peritonitis.">The use of local and systemic antibiotics in rat fecal peritonitis.</a> J. Surg. Res. 57 (3), 360-365 (1994).</li><li>Qiu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+individual+survival+benefits+of+tumor+necrosis+factor+soluble+receptor+and+fluid+administration+are+not+additive+in+a+rat+sepsis+model.">The individual survival benefits of tumor necrosis factor soluble receptor and fluid administration are not additive in a rat sepsis model.</a> Intensive Care Med. 37 (10), 1688-1695 (2011).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severity+of+sepsis+alters+the+effects+of+superoxide+anion+inhibition+in+a+rat+sepsis+model.">Severity of sepsis alters the effects of superoxide anion inhibition in a rat sepsis model.</a> J. Appl. Physiol. 97 (4), 1349-1357 (2004).</li><li>Karzai, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protection+with+antibody+to+tumor+necrosis+factor+differs+with+similarly+lethal+Escherichia+coli+versus+Staphylococcus+aureus+pneumonia+in+rats.">Protection with antibody to tumor necrosis factor differs with similarly lethal Escherichia coli versus Staphylococcus aureus pneumonia in rats.</a> Anesthesiology. 99 (1), 81-89 (2003).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+Arterial+and+Venous+Catheterization+for+Blood+Sampling,+Drug+Administration+and+Conscious+Blood+Pressure+and+Heart+Rate+Measurements.">Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), e3496 (2012).</li></ol>

The authors have no potential conflicts of interest.

<html> 따라서 혈관을 정확하게 찾아 요구 혈역학 모니터링을 수행 할 수있는 능력은 질병의 임상 적 치료 모델 접근법을 필요 조사. 패혈증의 우리의 모델에서 동맥 도관은 전신 압력 모니터링을 제공하고, 정맥 카테터는 표준 임상 치료의 응용 프로그램에 대한 수 있습니다. 패혈증 치료에 대한 표준 항생제의 투여는 원하는 범위 내의 동맥 압력을 유지하도록 유체 및 세균 감염 및 혈관 수 축제의 주입을 치료 포함한다. 두 카테터 혈액 샘플링을 위해 사용된다. 이러한 설계에서, 프로그램 가능한 주입 애플리케이션은 동맥 압력을 의미 실시간에 기초하여 혈관 수 축제 주입 속도를 자동으로 트리거링 펌프 의료진 및 전임상 설정하게 매뉴얼에 적정을 필요 임상 위에 미리이고 동물의 많은 연구를위한 가능한이 치료 방법으로 사용합니다. .에 경정맥 정맥 카테터의 잘못된 배치, e_content &quot;&gt; 어떤 합병증이 모델의 개발 초기에 경험 한 이들은 부분적인 동맥과 긴축에서 정맥 카테터, PU2 및 PU3 구성 요소에 대한 관계, (1-2 %) 모두의 폐색을 포함 2 L / 분의 O 2 유량 이소 플루 란 농도를 2-3.5 %를 유지하여 해결 복구 (아무 폐 혈전이나 다른 장기 손상 분명) 후 원인 불명의 돌연사, (1-2 %), 소규모 지사, (&lt;1 %) . 출혈, 지역 감염 및 자해 손상의 다른 일반적인 수술 합병증은 관찰되지 않았다. 일단 수술 능력이 달성되고, 각 절차없이 15 분 이상에 완료 할 수 있어야합니다. 건강 회복으로 측정 성공의 속도와 특허 카테터에서 &quot;일 수있다 실패한 카테터의 데이터 손실과 필요한 동물의 총 수와 계정을 최소화하기 위해 한 번 완전히 훈련시켰다. 부가 각 동물을 대상으로 90 %를 초과 할 것으로 예상 될 수있다인한 합병증 만 융합 &quot;또는 사망. 이 과정에서 가장 중요한 단계는 카테터의 설계 및 배치이다. 재료는 너무 쉽게 압착없이 혈관 벽을 관통하지 않도록 부드러운 선단부 할 필요가있다. 카테터의 몸은 뻣뻣 충분히 용기에 진출 할 수 있도록 제자리에 고정 될 (팁 제외)이어야한다. (1)가 연결된 동맥 카테터 및 2 개의 다른 직경의 튜브에 대한 연결된 튜브의 3 직경을 보여줍니다 정맥 카테터합니다. 이러한 구성 요소는 카테터 팁에 직경 감소를 서로 슬라이딩되고 유지되는 용기 또는 심장 내의 카테터의 위치를​​ 확인하기 위해 추가 된 앵커와 함께 접착된다. 일단 복구 및 회전과 밧줄에 연결,지도 및 CVP 파형은 그림 2에 표시되는 데이터 유사하게 나타납니다. 동맥 카테터 patenc을 유지하기 위해모니터링 중 Y는 시간당 헤파린 염수 플러시 (0.05 ml)을 수행한다. 연속 주입은 정맥 카테터 개통을 유지합니다. 라인 연결 및 세척시주의가 라인에 기포가없는 보장하기 위해 지불해야합니다. ≥0.1ml의 기포는 폐, 뇌 등의 장기에 색전증이 발생할 수 있습니다. 혈역학 파형 기록과 연구의 과정을 통해 분석한다. x 축에 시간을 압축 할 때, 그림 3은 1 ​​시간에 걸쳐지도와 CVP의 변화뿐만 아니라 속도와 혈압 상승 주입의 효과의 변화를 보여줍니다. 절차는 몇 가지 잠재적 인 제한 사항이 있습니다. 우리의 연구에서, 카테터는 최​​대 11 일 동안 특허 남아있다. 이 카테터는이 기간 이후 특허 남아있을 시간을 알 수 없습니다. 설명 된대로 카테터를 맞추기 위해, 약 설치류 무게와 상관 관계 최소 혈관 크기,가, 대상으로 동물을 필요로하는보다 커야합니다200g. 카테터 작은 직경의 사용을 감소 개통 유동 저항이 증가 될 것이다. 중심 정맥 압력 조치를 얻으면 연구 기간 동안 크기와 성장을위한 계정에 충분한 아트리움에서 정확한 카테터 배치를 요구하고 도전 일 수있다. 일단 마스터 동맥 혈관 카테터는 계측시 통증과 고통을 최소화하거나 번 회수 처리하는 동안 유체 또는 요법 혈역학 모니터링, 채혈, 및 주입을 요구하는 설치류 모델의 다양한위한 기초를 제공 할 수있다. 사실, 대퇴 정맥의 이전 조브 간행물 (10) 기술 카테터와 함께, 우리는 성공적으로 3 이식 카테터와이 모델을 수행했습니다.

쥐의 동맥과 정맥 카테터는 긴 실험실 연구에 사용되어왔다. 1, 2 도관은 수축기, 이완기 동맥압 (MAP)을 의미, 심박수 (HR) 및 중심 정맥 압력을 포함하여 혈역학 적 변수의 모니터링에 사용 할 수 있습니다 (CVP) . 3,4 또한, 이러한 카테터 표준 치료 요법 또는 잠재적 주입뿐만 아니라 채혈은 상기 질병 또는 치료의 기본 메커니즘을 분석 할 수있다. 따라서, 작은 동물 모델에서 혈관 통로를 갖는 임상 성능 측정 및 치료 효과를 연구하는데 중요하다. 중요한 질환의 근본 원인을 연구하기 위해, 먼저 사람의 상태를 시뮬레이션 모델을 개발하는 것이 중요하다. 박테리아의 알려진 양의 내부 기관 접종이 성공적으로 폐렴의 발병 후 패혈증으로 발전 심각한 폐 감염을 재현하는 데 사용되었습니다.3, 5 혈역학 적 조치를 모니터링 및 표준 임상 치료를 제공하는 일상적인지지 요법을 시뮬레이션하는 것이 중요합니다. 임상적인 치료가 기본이 감염과 체액 및 혈관 수 축제를 투여 클리어 에이즈 항생제의 투여를 포함 두 치료제는 혈압을 유지 패혈증 환자에 사용될. 5-7 혈관 통로를 우리가 공부 때 특히 특허 카테터의 주입은 특히 중요 패혈증에 대한 임상 치료. 수년 동안, 쥐에게 표준 임상 치료를 관리 할 수​​있는 능력은 이식 카테터 정확하게 시간에 걸쳐 소량을 제공하는 주입 기술의 능력을 구성하는데 필요한 특성을 갖는 재료의 가용성에 의해 제한되었다. 또한, 특정 혈역학 측정 지속적인 모니터링에 응답하여 주입을 유발하는 능력은 일관되고 재현 가능한 스탠드 허용더 큰 샘플을 사용하는 설치류 연구의 일반적인 크기 ARD 치료 모델. 8, 9 이러한 기술적 한계 재료 및 정밀 하드웨어가 혈역학 적 매개 변수를 모니터링하면서 동시에 일상적인 치료를 제공하는 것이 아니라 극복되고, 동맥과 정맥 혈관 통로를 모두 사용할 수 있어야합니다. 비디오는 마취 된 쥐의 경동맥 및 일반 경정맥 카테터를 주입하는 수술 기법을 자세히 설명합니다. 72 시간 회복 기간 후에, 동물을 다시 마취되며 혈역학 모니터링 시스템에 주입 카테터를 연결하는 데 사용되는 설치류 하우징에 부착 테더과 회전 연결 셋업. 연구하는 동안, 시스템이 수액 허용 일정한 주입 속도로 소정 부피를 전달 또는 소정 압력 범위를 유지하도록 검출 평균 동맥압에 따라 주입 속도를 제공하는 자동화 된 시스템 중 하나에 기초하여. 수액 시스템프로그래머블 주사기 데이터 수집 시스템의 디지털 출력과 인터페이스하는 펌프와 MAP 모니터링 소프트웨어를 사용하여 제어된다. , 압력을 모니터링 유체 및 혈관 수 축제를 주입하고, 동물을 조작 할 필요없이 혈액 샘플링을 수행하는 동안 밧줄과 회전 설정은 연구 기간 동안 쥐의 자유로운 이동을 허용한다. 24 계측 동물을 모니터링까지 확장 하드웨어 (우리의 설정에서) 2 카테터 각각 최대 12 계측 동물의 동시 모니터링은 각 실험에서 여러 층화 그룹을 연구하기위한 유연성의 큰 거래를 할 수 있습니다. 이 카테터 절차는 최대 11 일 동안 모니터링, 샘플링 및 치료를위한 혈관 접근을 필요로하는 유사한 설치류 모델을 사용 연구 시설에 도움이 될 수 있습니다. 이 과정을 고려하여 연구 기관은 이러한 동물을 유지 developin 설치류 경험과 적절한지지 구조체를 가지고 있다면g 이러한 기술은 (순진한 쥐, 카테터 구성 요소 및 기술 비용을 포함) $ 50 이하 달러 이상 (180)로부터 카테터 쥐 당 총 비용을 절감하고 스케줄링 유연성을 증가, 상당한 비용 절감을 제공 할 수 있습니다 (순진한 쥐 회사의 납품 일정 대 쉽게 사용할 수 있습니다 의) 쥐를 이식. 이 절차의 성공은 catheterizations을 수행하는 개인의 능력에 따라 달라집니다. 이 절차에 능숙하게하는 데 필요한 교육 동물&gt; 90 %의 결과 카테터 개통 률 20 ~ 40 쥐에서 원거리있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="715">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:299px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:131px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">straight micro dissecting forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-8102</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">delicate straight hemostatic forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-7114</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">delicate curved hemostatic forceps</td>
			<td>Miltex</td>
			<td style="width:119px;">&#160;7-4</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serrefine curved, very delicate micro clamp</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5471</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro dissecting hook</td>
			<td>Miltex</td>
			<td style="width:119px;">19-220</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">angled on edge micro dissecting spring scissor</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5618</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">light operating scissor</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-6750</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">scalpel handle and blade (#10)</td>
			<td>Cincinnati Surgical</td>
			<td style="width:119px;">RS-9843</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pack of 4-0 silk suture with curved needle</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">FS-2</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">straight micro suturing needle holder</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-6410</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">wound clip</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td style="width:119px;">59027</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sterile gauze 2&#34;x2&#34;&#160;</td>
			<td>Dynarex</td>
			<td style="width:119px;">3362</td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">gauze 4&#34;x4&#34;&#160;</td>
			<td>Covidien</td>
			<td style="width:119px;">2556</td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Anesthesia vaporizer</td>
			<td>Surgivet</td>
			<td style="width:119px;">V703001</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">lucite box</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">isoflurane</td>
			<td>Baxter</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">downdraft Table</td>
			<td>Airscience</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">table top surgical platform</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">arterial Catheter</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">venous Catheter</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Data Acquisition System</td>
			<td style="width:131px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;">Powerlab 16/30</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Data Analysis software</td>
			<td style="width:131px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;">LabChart v7.3</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Programmable infusion pumps</td>
			<td style="width:131px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">PHD Ultra</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model

중요한 질병을 연구하는 작은 동물 모델의 성공은, 부분적으로, 사람의 상태를 모의하는 모델의 능력에 의존한다. 박테리아의 알려진 양의 내부 기관 접종이 성공적으로 다음 패혈증으로 발전 폐렴의 발병을 재현하는 데 사용되었습니다. 혈역학 적 매개 변수를 모니터링 및 항생제, 수액과 혈압을 유지하기 위해 약물 수행하는하지만이 모델의 일상적인지지 요법을 시뮬레이션하는 것이 중요합니다의 주입을 포함하여 표준 임상 치료를 제공하기 때문에 동맥과 정맥 혈관 통로가 모두 필요합니다. 비디오는 마취 된 쥐의 경동맥 및 일반 경정맥 카테터를 주입하는 수술 기법을 자세히 설명합니다. 72 시간 회복 기간 후에, 동물을 다시 마취되며 혈역학 모니터링 시스템에 주입 카테터를 연결 설치류 하우징에 부착 테더과 회전 연결 셋업. 이 설정의 자유로운 이동을 허용지속적으로 유체 및 약물을 주입, 압력 모니터링 (항생제, 혈관 수 축제) 및 혈액 샘플링을 수행하는 동안 연구 기간 동안 쥐입니다.

혈관 압력의 변화 혈역학 파형으로 표시되는 전기 신호로 유체 가득 카테터를 통해 (그림 1) 전송 및 변환됩니다 (그림 2, 3). 혈관을 사용할 수없는 경우, 이러한 조치는 할 수 없습니다. 파형의 실시간 스트리밍 기반을 이길 수있는 비트의 변경 (그림 2)의 검출 및 분석 할 수 있습니다. 파형의 시간 척도를 압축하면 더 긴 기간 (일 분)을 통해 발생하는 변경 혈압 상승의 주입 속도의 변화와 상관 관계가 될 수있다 (그림 3, 상위 4 파형) (그림 3, 하위 4 파형)을 정량화 할 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig1.jpg" /> 그림 1. 카테터 디자인 : 동맥과 정맥 카테터 PU, 폴리 우레탄의 구성 요소의 세부 사항;. PE, 폴리에틸렌 (세그먼트 길이) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig2.jpg" /> 그림 7 초 이상 4 일반적인 설치류 칠일 후 카테터 2. 실시간 MAP 파형. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig2highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/51881/51881fig3.jpg" /> 1 시간 이상 4 일반적인 설치류 (상위 4 파형) 칠일 후 카테터의 그림 3. 시간 압축 MAP 파형. MAP는 (하위 4 파형)를 평균하면, 그 값이 트리거에 사용되는 ADDS 높은 (&lt;90 mmHg로) 낮은 (&lt;100 mmHg로) 또는 중지 (&gt; 110) 주입 펌프의 유량 응답. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig3highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

경동맥과 경정맥의 도관은 의식 쥐 모델에서, 혼합 및 혈액 샘플링을 혈역학 적 조치를 수행하는

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

71.3K 조회수.  National Institutes of Health. Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

비디오: Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

혈액 샘플링, 마약 관리 및 의식 검사 중 혈압과 심장 박동을 측정 대퇴 동맥혈과 정맥 Catheterization

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

연구

의학

Training a Sophisticated Microsurgical Technique: Interposition of External Jugular Vein Graft in the Common Carotid Artery in Rats

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in peripheral arterial bypass surgery as well as in arteriovenous fistulas.1-5 The experimental procedure of vein graft interposition in the common carotid artery by using the cuff-technique has been applied in several research projects to examine the aetiology of neointimal hyperplasia and therapeutic options to address it. 6-8 The cuff prevents vessel anastomotic remodeling and induces turbulence within the graft and thereby the development of neointimal hyperplasia.
Using the superior caval vein graft is an established small-animal model for venous arterialization experiment.9-11 This current protocol refers to an established jugular vein graft interposition technique first described by Zou et al., 9 as well as others.12-14 Nevertheless, these cited small animal protocols are complicated.
To simplify the procedure and to minimize the number of experimental animals needed, a detailed operation protocol by video training is presented. This video should help the novice surgeon to learn both the cuff-technique and the vein graft interposition. Hereby, the right external jugular vein was grafted in cuff-technique in the common carotid artery of 21 female Sprague Dawley rats categorized in three equal groups that were sacrificed on day 21, 42 and 84, respectively. Notably, no donor animals were needed, because auto-transplantations were performed. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice. In addition, the graft patency rate was 60 % for the first 10 operated animals and 82 % for the remaining 11 animals. The blood flow at the time of sacrifice was 8&plusmn;3 ml/min. In conclusion, this surgical protocol considerably simplifies, optimizes and standardizes this complicated procedure. It gives novice surgeons easy, step-by-step instruction, explaining possible pitfalls, thereby helping them to gain expertise fast and avoid useless sacrifice of experimental animals.

Neointimal hyperplasia is the primary cause of stenosis in arterialized veins. We propose a new protocol whereby the right external jugular vein is grafted using the cuff technique in the common carotid artery of Sprague Dawley rats. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice.

쥐 온목 동맥에 개재 외부 경정맥 정맥 이식의 : 정교한 Microsurgical 기술을 교육

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in ...

Adult Mouse Venous Hypertension Model: Common Carotid Artery to External Jugular Vein Anastomosis.

The understanding of the pathophysiology of brain arteriovenous malformations and arteriovenous fistulas has improved thanks to animal models. A rat model creating an artificial fistula between the common carotid artery (CCA) and the external jugular vein (EJV) has been widely described and proved technically feasible. This construct provokes a consistent cerebral venous hypertension (CVH), and therefore has helped studying the contribution of venous hypertension to formation, clinical symptoms, and prognosis of brain AVMs and dural AVFs. Equivalent mice models have been only scarcely described and have shown trouble with stenosis of the fistula. An established murine model would allow the study of not only pathophysiology but also potential genetic therapies for these cerebrovascular diseases.
We present a model of arteriovenous fistula that produces a durable intracranial venous hypertension in the mouse. Microsurgical anastomosis of the murine CCA and EJV can be difficult due to diminutive anatomy and frequently result in a non-patent fistula. In this step-by-step protocol we address all the important challenges encountered during this procedure. Avoiding excessive retraction of the vein during the exposure, using 11-0 sutures instead of 10-0, and making a carefully planned end-to-side anastomosis are some of the critical steps. Although this method requires advanced microsurgical skills and a longer learning curve that the equivalent in the rat, it can be consistently developed.
This novel model has been designed to integrate transgenic mouse techniques with a previously well-established experimental system that has proved useful to study brain AVMs and dural AVFs. By opening the possibility of using transgenic mice, a broader spectrum of valid models can be achieved and genetic treatments can also be tested. The experimental construct could also be further adapted to the study of other cerebrovascular diseases related with venous hypertension such as migraine, transient global amnesia, transient monocular blindness, etc.

We describe a method for creating a reliable model of cerebral venous hypertension in the adult mouse. This model has been widely described and tested in the rat. This new counterpart in the mice opens the possibility of using genetic modified animals and thereby broadens the applications of the model.

성인 마우스 정맥 ​​고혈압 모델 : 외부 경정맥 정맥 문합에 경동맥.

The understanding of the pathophysiology of brain arteriovenous malformations and arteriovenous fistulas has improved thanks to animal models. A rat model ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study model. As the use of mouse models are often a vital step in preclinical drug discovery and drug development1-8, it is necessary to design a system to introduce drugs into mice in a uniform, reproducible manner. Ideally, the system should permit the collection of blood samples at regular intervals over a set time course. The ability to measure drug concentrations by mass-spectrometry, has allowed investigators to follow the changes in plasma drug levels over time in individual mice1, 9, 10. In this study, paclitaxel was introduced into transgenic mice as a continuous arterial infusion over three hours, while blood samples were simultaneously taken by retro-orbital bleeds at set time points. Carotid artery infusions are a potential alternative to jugular vein infusions, when factors such as mammary tumors or other obstructions make jugular infusions impractical. Using this technique, paclitaxel concentrations in plasma and tissue achieved similar levels as compared to jugular infusion. In this tutorial, we will demonstrate how to successfully catheterize the carotid artery by preparing an optimized catheter for the individual mouse model, then show how to insert and secure the catheter into the mouse carotid artery, thread the end of the catheter out through the back of the mouse&#8217;s neck, and hook the mouse to a pump to deliver a controlled rate of drug influx. Multiple low volume retro-orbital bleeds allow for analysis of plasma drug concentrations over time.

This method was developed with the goal of delivering a steady drug solution via the carotid artery, to assess the pharmacokinetics of novel drugs in mouse models.

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and cellular mechanisms involved in vascular smooth muscle dedifferentiation, neointima formation and vascular remodeling. Male Sprague-Dawley rats are the most frequently employed animals for this model. Female rats are not preferred as female hormones are protective against vascular diseases and thus introduce a variation into this procedure. The left carotid is typically injured with the right carotid serving as a negative control. Left carotid injury is caused by the inflated balloon that denudes the endothelium and distends the vessel wall. Following injury, potential therapeutic strategies such as the use of pharmacological compounds and either gene or shRNA transfer can be evaluated. Typically for gene or shRNA transfer, the injured section of the vessel lumen is locally transduced for 30 min with viral particles encoding either a protein or shRNA for delivery and expression in the injured vessel wall. Neointimal thickening representing proliferative vascular smooth muscle cells usually peaks at 2 weeks after injury. Vessels are mostly harvested at this time point for cellular and molecular analysis of cell signaling pathways as well as gene and protein expression. Vessels can also be harvested at earlier time points to determine the onset of expression and/or activation of a specific protein or pathway, depending on the experimental aims intended. Vessels can be characterized and evaluated using histological staining, immunohistochemistry, protein/mRNA assays, and activity assays. The intact right carotid artery from the same animal is an ideal internal control. Injury-induced changes in molecular and cellular parameters can be evaluated by comparing the injured artery to the internal right control artery. Likewise, therapeutic modalities can be evaluated by comparing the injured and treated artery to the control injured only artery.

This protocol uses a balloon catheter to cause an intraluminal injury on the rat carotid artery and henceforth elicit neointimal hyperplasia. This is a well-established model for studying the mechanisms of vascular remodeling in response to injury. It is also widely used to determine the validity of potential therapeutic approaches.

쥐 경동맥의 혈관 풍선 부상과 관내 관리

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and ...

A Rabbit Model of Durable Transgene Expression in Jugular Vein to Common Carotid Artery Interposition Grafts

Vein graft bypass surgery is a common treatment for occlusive arterial disease; however, long-term success is limited by graft failure due to thrombosis, intimal hyperplasia, and atherosclerosis. The goal of this article is to demonstrate a method for placing bilateral venous interposition grafts in a rabbit, then transducing the grafts with a gene transfer vector that achieves durable transgene expression. The method allows the investigation of the biological roles of genes and their protein products in normal vein graft homeostasis. It also allows the testing of transgenes for the activities that could prevent vein graft failure, e.g., whether the expression of a transgene prevents the neointimal growth, reduces the vascular inflammation, or reduces atherosclerosis in rabbits fed with a high-fat diet. During an initial survival surgery, the segments of right and left external jugular vein are excised and placed bilaterally as reversed end-to-side common carotid artery interposition grafts. During a second survival surgery, performed 28 days later, each of the grafts is isolated from the circulation with vascular clips and the lumens are filled (via an arteriotomy) with a solution containing a helper-dependent adenoviral (HDAd) vector. After a 20-min incubation, the vector solution is aspirated, the arteriotomy is repaired, and flow is restored. The veins are harvested at time points dictated by individual experimental protocols. The 28-day delay between the graft placement and the transduction is necessary to ensure the adaptation of the vein graft to the arterial circulation. This adaptation avoids rapid loss of transgene expression that occurs in vein grafts transduced before or immediately after grafting. The method is unique in its ability to achieve durable, stable transgene expression in grafted veins. Compared to other large animal vein graft models, rabbits have advantages of low cost and easy handling. Compared to rodent vein graft models, rabbits have larger and easier-to-manipulate blood vessels that provide abundant tissue for analysis.

This method describes the placement of interposition vein grafts in rabbits, the transduction of the grafts, and the achievement of durable transgene expression. This allows the investigation of physiological and pathological roles of transgenes and their protein products in grafted veins, and testing of gene therapies for vein graft disease.

일반적인 경 동맥 중재 이식 정 맥 경에서에서 튼튼한 Transgene 식의 토끼 모델

Vein graft bypass surgery is a common treatment for occlusive arterial disease; however, long-term success is limited by graft failure due to thrombosis, ...

Phase Contrast Magnetic Resonance Imaging in the Rat Common Carotid Artery

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous studies have shown that abnormal blood flow may be associated with systemic vascular risk. Thus, PC-MRI can facilitate the translation of data obtained from animal models of cardiovascular diseases to pertinent clinical investigations. In this report, we describe the procedure for measuring blood flow in the common carotid artery (CCA) of rats using cine-gated PC-MRI and discuss relevant analysis methods. This procedure can be performed in a live, anesthetized animal and does not require euthanasia after the procedure. The proposed scanning parameters yield repeatable measurements for blood flow, indicating excellent reproducibility of the results. The PC-MRI procedure described in this article can be used for pharmacological testing, pathophysiological assessment, and cerebral hemodynamics evaluation.

The overall goal of this procedure is to measure the blood flow in the rat common carotid artery by using noninvasive phase contrast magnetic resonance imaging.

쥐 일반적인 경 동맥에 단계 대조 자기 공명 영상

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the luminal surface area in arteries thereby reducing adequate blood flow to organs and distal tissues. Clinically, revascularization procedures such as balloon angioplasty with or without stent placement aim to restore blood flow. Although these procedures reestablish blood flow by reducing plaque burden, they damage the vessel wall, which initiates the arterial healing response. The prolonged healing response causes arterial restenosis, or re-narrowing, ultimately limiting the long-term success of these revascularization procedures. Therefore, preclinical animal models are integral for analyzing the pathophysiological mechanisms driving restenosis, and provide the opportunity to test novel therapeutic strategies. Murine models are cheaper and easier to operate on than large animal models. Balloon or wire injury are the two commonly accepted injury modalities used in murine models. Balloon injury models in particular mimic the clinical angioplasty procedure and cause adequate damage to the artery for the development of restenosis. Herein we describe the surgical details for performing and histologically analyzing the modified, pressure-controlled rat carotid artery balloon injury model. Additionally, this protocol highlights how local periadventitial application of therapeutics can be used to inhibit neointimal hyperplasia. Lastly, we present light sheet fluorescence microscopy as a novel approach for imaging and visualizing the arterial injury in three-dimensions.

The rat carotid artery balloon injury mimics the clinical angioplasty procedure performed to restore blood flow in atherosclerotic vessels. This model induces the arterial injury response by distending the arterial wall, and denuding the intimal layer of endothelial cells, ultimately causing remodeling and an intimal hyperplastic response.

쥐 경동맥 압력 제어 세그먼트 풍선 부상 과식 치료 응용 프로그램

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, which could potentially affect results. The jugular vein cannulation (JVC) in rats is a widely used model for repeated blood collection but requires adequate training of surgery skills and animal care. This article details the microsurgical procedures for establishing and maintaining a permanent JVC rat model with specific focus on the placement and sealing of the jugular cannula. The importance of monitoring physiological (e.g., body weight, food, and water intake) and hematological parameters, was highlighted with results presented for 6 days post-surgery during the rat&#39;s recovery. The drug-plasma concentration-time profile of orally administered natural phenol ellagic acid was determined in the JVC rat model.

Detailed microsurgical techniques are demonstrated to establish a longer-term jugular vein cannulation rat model for sequential blood collection in the same animal. Physiological and hematological parameters have been monitored during the rat's recovery phase. This model has been applied to study pharmacokinetics of orally administered polyphenol without inducing animal stress.

경구 투여 약물의 연속 혈액 샘플링을 위해 쥐에서 영구적 인 경정맥 절개술을 확립하는 미세 외과 기술

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to detect drug exposure. The rat blood sampling method determines the quality of the plasma and further affects the precision of the test results. The subclavian vein blood collection method described in this protocol collects blood samples repeatedly in the conscious state of animals to meet the needs of PK and TK tests. The skills of restraint handling and appropriate procedure of needle incision ensure the success rate of blood collection. It is easy to operate while ensuring the quality of plasma and at the same time catering to animal welfare. However, this method requires skilled operation, and an improper one may cause animal weakness, pain, lameness, and even mortality. The current method has been used in the testing facility for a 4-week oral toxicity study in Sprague Dawley (SD) rats with TK. The maximum amount of blood collected within 24 h did not exceed 20% of the animal's total blood. The animals' body weight was more than 200 g for males and females. The data showed that the animals' bodyweight increased steadily every week, and the clinical observation was normal after repetitive sample collection.

The present protocol describes a simple and efficient method for collecting blood from the subclavian vein in rats. It enables rapid, timely, and easily identifiable sampling without anesthesia and obtains high-quality blood through repetitive sample collection.

의식 쥐의 쇄골 하 정맥에서 반복적 인 혈액 샘플링

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...