우리는 FIM 설치의 건설에 도움이 프로젝트를 시작했습니다 S. 토마스 J. 헤르만과 미국 Burgbacher에 감사드립니다. 이 작품은 DFG (SFB 629 B6)에 의해 투자되었다.

주 : 여기에서, FIM의 사용이 자유 이동 가능 조건 및 열 자극의 영향하에 스크리닝 유생 보행의 편리 높은 처리량 분석을 위해 제공된다. 이러한 후각 자극에 따라 운동 또는 요청에 따라 제공되는 프로토콜에 미묘한 변화가 필요할 수 있습니다 압연 또는 기타 행동의 고해상도 영상의 분석과 같은 다른 응용 프로그램. 실험 1. 셋업 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 통계적으로 의미있는 값을 얻기 위해 총 (필수 1 시간 시간)에서 유전자형 당 약 100 애벌레를 사용합니다. 참고 : 여러 가지 유전자형을 비교하고 다른 일에 기록해야 할 경우는 하루 유전자형 당 애벌레의 동일한 수를 기록한다. </li><li> 대부분의 응용 프로그램의 경우, 매개 변수 분석을위한 10 Hz에서 기록. 필요한 경우 고해상도 이미징 응용 프로그램의 경우, 이미징 속도를 다양하게 조정할 수 있습니다. </li><li> 셋째 령 애벌레, 달걀 누워 후 120 시간에 대한 행동 실험의 추적하십시오. 쉬르 확인문화가 실험 기간 (4.3 참조)에 충분히 애벌레를 얻을 전자. </li><li> 비 자극 응용 프로그램의 경우, 반투명 한천을 포함하는 크롤링 표면을 준비 (섹션 2 참조). 열 구배 애플리케이션 자극 유충 범위를 포함하도록, 혐오 염 한천 배리어 (섹션 3 참조)으로 시야를 둘러싸. 참고 : 다른 응용 프로그램은 서로 다른 표면을 필요로 할 수있다. </li><li> 일정한 환경 조건 (온도, 빛, 공기 흐름, 공기 습도 등)와 함께 방을 사용하십시오. </li></ol> 2. 크롤링 표면 처리 (반투명 한천) 참고 : FIM 설정에서 한천 표면이 촉촉한 크롤링 표면을 제공하기 위해 추가됩니다. 게다가, 그것은 또한 조명 특성을 향상시킨다. <ol style="margin-left: 40px;"><li> 탈 초순수에서 0.8 % 식품 등급 한천을 끓인다. 심사 응용 프로그램의 경우 400 ml의 준비를합니다. </li><li> 별도의 33cm X 33cm 교류에 50 ° C (손 핫)에서 한천을 부어카 프릴 유리 접시입니다. 한천의 표면 장력 때문에 온도를 한천의 슬래브 두께를 정의한다. 50 ° C에서, 두께 2mm 한천 슬래브를 얻을 수있다. 끓는 후 교반과 거품을 방지하기 위해 지속적으로 붓지 마십시오. 약 4 시간의 모든 영상 기간 동안 신선한 한천 석판을 준비합니다. </li><li> 깨끗하고 정렬하고 실험 전 (유전자형 당 1 접시)에 유충을 길들 나머지 0.8 % 한천 용액을 표준 6cm 페트리 접시를 입력합니다. </li><li> 혐오 한천 장벽이 응용 프로그램에 필요한 경우, 섹션 3으로 진행합니다. </li><li> 레코딩 평면 정사각형 표면을 얻기 위해 한천 슬래브의 둘레의 약 2cm 잘라내. 초과 한천을 제거합니다. 참고 : 크기는 응용 프로그램에 따라 다릅니다. </li><li> 직접 부드럽게 아크릴 유리판의 가장자리 글라이딩 한천을 눌러 냉각 후 FIM 설치에 한천 슬래브를 전송합니다. </li></ol> 3. 선택 사항 : 밥통에 혐오 한천 배리어 추가링 표면 (소금 한천) <ol style="margin-left: 40px;"><li> 탈 초순수에 3 M NaCl로 2.5 % 식품 등급 한천을 끓인다. 열 구배에 심사를 들어 200 ml의 준비를합니다. 참고 : 볼륨은 응용 프로그램에 따라 다릅니다. </li><li> 이전에 2cm 넓은 홈을 잘라보기 (22 X 22cm)의 분야를 둘러싼 크롤링 표면을 쏟아 냈다. 주의 : 다른 형태의 배리어 및 뷰 필드가 애플리케이션에 따라 요구 될 수있다. </li><li> 추적 표면보다 0.1 ~ 0.3 cm 높은 소금 한천과 노치를 입력합니다. </li></ol> 4. 플라이 처리 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 후면 65 %의 습도에서 표준 플라이 음식에 실험의 시간으로 조정 12 시간 빛 / 어둠주기와 25 ° C 배양기에 날아간 다. </li><li> 십자가를 들어, CO 2 (30) 처녀 여성 파리와 8 명의 남성을 마취하고 35 ml의 음식을 130 ml의 배양 병에서 그들을 교차. 참고 : 35 ml의 음식과 함께 한 130 ml의 문화 병은 20 ~ 30 패 얻을 것입니다4 시간의 촬상 범위 내에서 세 번째 령 애벌레를 먹었다. 모든 애벌레 령 단계에 대한 이미징 및 추적 작품. </li><li> 후반 세번째 령 애벌레의 움직임을 운전하고 작은 붓을 이용하여 유리 병 벽에서 가장 큰 애벌레를 수집하는 문화 유리 병에 물을 조금 삭제합니다. </li><li> 녹화 전에 2-5 분, 습관화하고 청소를 탈 초순수에서 0.8 % 식품 등급 한천을 포함하는 페트리 접시에 하나의 비디오 전송 애벌레. </li></ol> 5. 녹음을위한 FIM 이미징 설치 (비 자극 조건) 조정 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 필요한 경우 카메라 렌즈의 초점과 조리개를 조정합니다. 각 카메라의 노출 시간을 설정합니다. 주 : 이러한 설정은 실험 중에 변경 될 필요가 없다. </li><li> 한 유충 이미징에 의해 좋은 대조를 얻기 위해 조명 강도를 조정합니다. </li><li> 녹음하는 동안 방 상수의 환경 조건을 유지합니다. 방향 빛 유충을 방해하지 않도록 방을 어둡게. </li></ol> 6. 옵션 : 녹음을위한 FIM 이미지 설정 (점진적 온도 자극 조건) 조정 주 : 열 구배 디바이스는 최고 위치에 맷 블랙 페인트 및 격리 재료와 42 X 42 X 0.2 cm 3 알루미늄 판이다. 플레이트 양단 calorifiers / 냉각기 및 펌프에 연결된 두 개의 서로 다른 회로에서 물 관류된다 (도 1b 참조). 온도는 -5에서 50 ℃로 조절 될 수있다. <ol style="margin-left: 40px;"><li> 실험에 앞서 열 구배 장치 1 시간 켜고 평형을 원하는 온도 프로파일 및 구성 요소를 구축 할 수 있도록 설정 위에 놓습니다. </li><li> 설정에 소금 장벽으로 크롤링 표면 한천을 전송합니다. </li><li> 한천 위에 방열판을 놓고 (~ 유충 위의 1mm)를 접시와 2mm로 크롤링 표면 사이의 간격을 조정합니다. </li><li> 선형 구배의 수립적어도 0.8 ° C 34 ° C (약. 시야의 배리어에서 2cm)로부터 18 ° C (약. 시야에 대향하는 부위에서 배리어에서 2cm)을 조정하여 행 / cm 1 ° C와 45 ° C의 물 회로의 온도. 참고 : 금속판의 다른 그라데이션 특성을 경험적으로 확인해야 할 다른 온도를 필요로한다. 이러한 설정은 실험 중에 변경 될 필요가 없다. </li><li> 5 절에 설명 된대로 설정을 조정합니다. </li><li> 크롤링 표면이 20 분 동안 실험 전에 그래디언트에서 평형을 허용합니다. 파이로 미터와 온도 구배를 테스트합니다. </li><li> 섹션 8을 진행합니다. </li></ol> 7. FIM 이미징 (비 자극 조건) <ol style="margin-left: 40px;"><li> 부드럽게 요법 이니 배양 접시에서 15 애벌레를 수집하고 추적 표면의 센터로 전송하는 작은 젖은 붓을 사용합니다. 음식이 남아 또는 너무 많이 전송하지 마십시오물 (7.8 참조). </li><li> 기록 1 - 22cm X 22cm 추적 영역에 50 애벌레. (통계 이유는 유전자형 당 최소 100 개인 사용을 위해) 가장 심사 응용 프로그램에 비디오 당 15 동물을 사용합니다. </li><li> 부드럽게 유충을 분리하고 모든 애벌레 기록하기 전에 바로 움직이기 시작 때까지 약 10 ~ 20 초 동안 기다립니다. </li><li> 비 자극 조건에 대한 초당 10 프레임의 속도로 2 분 동안 애벌레 운동을 기록합니다. 출력 형식으로 압축되지 않은 TIF 이미지를 사용합니다. </li><li> 촬영하는 동안, 그들을 길들 유리 병에서 다음 비디오 애벌레를 수집 긴급 :. 빛 기록 유충을 방해하지 마십시오. </li><li> 녹화 후, 큰 붓으로 유충을 제거하고 지역의 안전과 법률 규정에 따라이를 폐기합니다. </li><li> 애벌레를 제거한 후, 청소 및 초순수 탈 이온수로 크롤링 표면에 수분을하기 위해 붓을 사용합니다. </li><li> 긴급 : 항상 촉촉한 표면을 유지하지만 과도한 개월을 피하기후광 또는 녹음에 유충을 둘러싼 방울과 방해 추적으로 볼 수있다 isture. </li></ol> 8. 옵션 : FIM 이미징 (점진적 온도 자극 조건) <ol style="margin-left: 40px;"><li> 온도 구배 (섹션 6 참조)을 설정 한 후에, (8.2 참조) 예 크롤링 표면에 유충을 배치 한 후 20 초 이내에 기록 인스턴트위한 기록 소프트웨어를 준비 비디오 당 프레임의 수를 설정하고, 저장 경로를 정의한다. </li><li> 약간 방열판을 들어 올리고 소금 장벽에서 33 ° C 2cm에서 애벌레를 놓습니다. 더 일반적인 지침은 6과 7을 참조하십시오. 다시 방열판을 내리고 유충 똑바로 움직이기 시작 직후 3 ~ 4 분 동안 녹음을 시작합니다. </li><li> 녹화 후, 직접 청소를 유충을 제거하고 표면에 수분을. 염화나트륨의 확산을 방지하기 위해 소금 한천을 만지지 마십시오. </li><li> 긴급 : 항상 촉촉한 표면을 유지하지만 피후광 또는 녹음에 유충을 둘러싼 방울과 방해 추적으로 볼 수있다 과도한 습기. </li><li> 이미지를 저장하고 다음 동영상을 준비하기 전에 새로운 동물을 수집하는 동안, 한천 표면이 1-2 분 동안 보습 후 다시 평형을 허용합니다. 고온계마다 5 동영상을 이용하여 온도 구배를 제어하고, 필요한 경우 (추적면에 대하여 물 온도, 높이 및 XY 방향)의 온도 조절 장치. </li></ol> 애벌레 로코 9. 추적 참고 : 자세한 내용은 FIMTrack (보충)에 대해 첨부 된 설명서를 참조하십시오. 프로그램 흐름도는 그림 2 참조하십시오. <ol style="margin-left: 40px;"><li> 미리보기 옵션을 사용하여 각각의 실험에 대한 추적 매개 변수를 조정합니다. <ol><li> 카메라와 시야에 따라 cm 당 픽셀을 조정합니다. </li><li> 카메라 설정에 따라 초당 프레임을 조정합니다. </li><li> 일 때문에 밝기 임계 값을 조정모든 동물에서 (피드백이 미리보기에 나와있다) 제대로 감지됩니다. </li><li> 애벌레 영역 크기 임계 값을 조정합니다. 미리보기에서 피드백 옵션을 참고 : 하나의 동물은 빨간색으로 강조 표시됩니다 각 동물의 영역이 파란색으로 주어진다 유충 충돌, 노란색으로 강조 표시됩니다. </li></ol></li><li> 오른쪽 하단에있는 버튼을 사용하여 추적을 시작합니다. 참고 : 성공적으로 추적 한 후, 애벌레 트랙과 계산 된 운동 및 자세 기능을 포함하는 CSV 파일을 갖춘 이미지가 이미지 디렉토리에 저장됩니다. </li><li> 추적 결과를 검토하고 수동으로 조정 FIM 결과 뷰어 모듈 (편집&gt; 결과보기를 ...)를 사용합니다. 필요한 경우, 취제 소스에 열 구배 또는 거리에 대하여 방향을 크롤링, 자극 정권 예에 대한 데이터를 평가하는 자극 영역을 정의합니다. 더 자세한 설명은 매뉴얼 (보충)을 사용하십시오. </li></ol> 상기 데이터의 평가 (10) <ol style="margin-left: 40px;"><li> 엑셀, matlab에로 csv 파일 또는 추가 통계 분석을위한 다른 프로그램을 가져옵니다. </li></ol>

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저자는 공개 아무것도 없어

행동 신경 과학에서는 정량적으로 복잡한 행동 특성을 해독 필수입니다. 따라서, 많은 개인은 고해상도로 관찰 자동화되어야 절차는 통계 분석을 위해 필요하다. 여기서, FIM 이미지는, 동물의 넓은 범위의 운동을 모니터링하는 수단을 제공하는 신규 한 간단하고 강력한 촬상 설정을 설명한다. FIM 영상 설정의 효능은 초파리 애벌레, 플라나리아 편형 동물와 C를 사용하여 테스트 하였다 엘레 웜. FIM 기술은 뇌, 기관, 창자 또는 proventriculus 같은 동물의 경우에도 내부 구조를 감지하는 본질적으로 높은 콘트라스트를 제공합니다. 그들은 자동적 동물 (19)의 방향을 식별하는 역할을 할 수 있도록 중요한 것은,이 내부 구조는 견고하게 식별된다. 영화의 품질은 크롤링 표면에 물 과잉에 의해 영향을받을 수있다. 따라서,에 중요한천의 수분을 제어 할 수 있습니다. 표면에 너무 오래 한천 또는 물을 너무 많이 아티팩트가 발생할 수 있습니다. 마찬가지로, 기포가 크롤링 표면에 포함되지 않도록. 일반적으로, 잘 준비된 한천 표면은 4 시간 동안 동영상을 녹화 할 수 있습니다. 때문에 실제 기본 원칙을 FIM 이미징은 최상의 이미지 품질의 결과, 거의 소음 무료 이미지 기록을 생성합니다. 이것은 차례로 후속 컴퓨터 기반 이미지 분석을 용이하게하고 높은 처리량을 가능하게한다. 그러나, 방법론은 직접 한천 표면에 접촉 동물을 분석 제한됩니다. 추적 소프트웨어는 도넛 모양을 형성하는 동물에 의해 도전한다. 이진 표시가 도넛 모양을 인식하고 있지만, 잘못된 척추가 계산 될 수 있습니다. 때문에 추적 테이블 듀얼 및 트리플 컬러 이미지의 모듈 구성에 도달입니다. 또한, 추가 자극 (빛, ​​냄새 물질, 전기 또는 기계적 자극)을 쉽게 할 수 있습니다 델위에서 ivered. FIM 이미지의 힘과 일치하도록 설계 FIMTrack 프로그램 용이 초파리 애벌레 C.을 추적 채용 할 수있다 엘레 또는 플라나리아. 따라서 인해 그것의 간단하고 저렴한 구성에 (http://FIM.uni-muenster.de 참조), FIM 이미징은 생물 의학 응용 프로그램의 광범위한 가능하다 특히 긴급 높은 처리량 연구를 필요로 허용한다.

대부분의 동물은 매우 정교하고 제어 된 방식으로 이동할 수있는 능력을 가지고있다. 유전 적 기초 기본 운동 제어를 해독하기 위해서는 정량적으로 다른 행동 패턴을 평가하는 것이 필수입니다. 이러한 관점에서, 초파리는 이상적인 모델이 될 수있다. 자유롭게 비행 초파리의 추적 감질 1-4 발생하지만 상대적으로 낮은 속도로 두 가지 차원에서 초파리 애벌레의 크롤링 때문에 쉽게 모니터링 할 수있다. 적절한 조명과 함께 카메라 기반의 설정은 이미지 5를 획득하는 데 사용됩니다. 사건이나 투과광 모두 행동 실험 6,7에 사용된다. 그러나, 애벌레와 애벌레 운동의 크롤링 표면 충실한 기록 가능한 빛의 반사의 반투명 몸에 도전 할 수있다. 이러한 문제를 극복하기 위해, 어떤 복잡한 방법이 고안되었다. 최근, 암시 야 조명은 전경 / 배경 계속을 향상시키기 위해 도입되었다RAST 8. 카메라로 기록, 렌즈가없는 광학 이미징에 대한 대안으로 이미지 센서리스 온칩 (on-chip) 획득 기술은 9 ~ 11 도입되었습니다. 여러 추적 프로그램은 상용 소프트웨어 (12) 및 사용자 정의 솔루션을 포함하여, 최근에 도입되고있다. 높은 처리량 추적 프로그램에 대한 예는 멀티 웜 추적기 (MWT) 아르 (13)과 Multianimal 보행 그리고 트랙 (MAGAT) 8. 충돌 동물 여러 새로운 동물 정체성으로 이어질 수 있도록 모두 공통으로, 여러 개의 동물은 하나의 오픈 필드 경기장에서 추적 할 수있다. 이러한 한계를 극복하기 위해, 멀티 웰 설정 개별 웰 (14) (12)으로 분리하는 동물을 도입 하였다. 단일 개인의 운동을 정밀하게 정량화 현미경 (15)과 결합하여 가동 추적 스테이지를 사용함으로써 달성 될 수있다. 그러나, 이러한 모든 접근 방식 중 하나를 비용 효율적이지, 부족 충분한 재솔루션 또는 높은 처리량 표현형에 대한 소요 시간이 너무. 좌절 전체 내부 반사 (FTIR) (16) (도 1)에 기초하여 상기 언급 된 한계를 극복하기 위해, 우리가 개발 한 FIM (FTIR 기반 이미징 방법). 이 새로운 이미징 방식은 전례없는 높은 콘트라스트를 제공하고, 심지어 동물 (16)를 크롤링의 멀티 컬러 녹음을 할 수 있습니다. 이 편리하고 효과적인 방법의 기본 원리는 쉽다. 아크릴 유리판을 빛으로 범람 (예를 들어, 875 적외선 ㎚). 아크릴 인해 유리 및 공기의 굴절률이 다른으로, 광은 완전히 유리 / 공기 경계에서 반사된다. 아크릴 유리의 어떠한 가열 (16)을 언급하지 않습니다. 높은 굴절률을 가진 물체가 빛을 홍수 테이블을 터치하는 경우에만 이러한 개체를 입력 빛을 수 있습니다. 동물이 표면을 터치하면 빛이 반사되어 (그림 1) 아래에서 캡처 할 수 있습니다. 이에 의해, 접촉 만동물의 영역은 전반적으로 검은 배경으로 상세한 영상을 수있는 밝은 반점으로 나타납니다. 따라서, FIM-영상은 컴퓨터 비전 알고리즘에 대한 완벽한 동영상을 녹화 할 수 있습니다. FIM의 간단하고 강력한 사용 해주기로 이동할 복잡한 동물 행동의 상세한 분석 높은 처리량을 제공 및 처리 내용을 연구에 사용될 수있다 : 예를 들어, 후각 (8), (16); 비전 17 thermosensation (18). <img alt="그림 1" fo:content-width="6.5in" src="/files/ftp_upload/52207/52207fig1highres.jpg" width="650" /> 열 자극 통합 및 기본 물리적 원리 1. FIM 설치 그림. (A) FIM 설치. 조명 강도는 전면 패널에서 조절 될 수있다. (B) 열 자극을 제공하기 위해, 블랙, 알루미늄 판을 그린 양쪽에 온수와 냉수 관류, 한천 표면 위에 2mm를 배치되는자체는 두께 2mm이다. 구배는 온도차에 의해 방열기 판과 한천에 확립된다 (C) 좌절 전반사의 물리적 원리는 :. 아크릴 유리판 외광에 의해 조명된다. θ 1, θ 2, θ 3은 빛의 반사 각도를 나타냅니다. N 1, N 2, N 3 n은 각각 공기, 아크릴 유리, 한천과 유충의 굴절률을 표시하고 불평등 N &lt;n은 1 &lt;n은 2 &lt;없음 3을 충족해야합니다. 굴절로 인해, 반사각 전환하는 동안 변경한다. 각도가 임계각 이하인 경우, 빛이 더 이상 반영되지 않습니다, 층을 통과 할 수 아래에서 캡처 할 수 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52207/52207fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> SPFIM 분석 할 수있는 프로세스의 ectrum은 광범위합니다. 더 이상의 조정없이, FIM 이미지는 초파리 (도 5b)의 모든 유생을 모니터링하는 데 사용할 수있는 성인 초파리 19 피트의 인쇄를 수행하기 위해 사용될 수있다. C.의 마찬가지로, 궤적 엘레 또는 플라나리아 편형 동물의 이동이 용이 (그림 5C)를 기록 할 수있다. 곰팡이 균사 또는 루트 모발 성장에도 분석이 가능한 19 나타납니다. 현재 FIM 설정에서, 4 × 16 적외선 발광 다이오드 (IR-LED)는 (그림 1) 추적 테이블이라고, 32 X 32cm 2 아크릴 유리판에 통합되어 있습니다. IR-LED의 강도를 용이 펄스 폭 변조 (PWM)를 통해 회로에 접속 된 마이크로 제어기에 의해 수행 될 수있는 추적 테이블 물체의 무게에 따라 조정된다. FIM은 조명 강도의 넓은 범위에 걸쳐 매우 높은 콘트라스트 이미지를 산출한다. 중요한 것은 세대이미 전반적으로 낮은 적외선 irridation에서 우수한 결과를 로지로. 적외선 필터와 카메라가 설치에 추가 자극에 통합 할 수 있습니다 추​​적 테이블 아래에 배치됩니다. 열 자극에 쉽게 방열기 판에 의해 도포 될 수 있고, 광 자극은 LCD 프로젝터에 의해 적용된다. 또한 방향제 간단한 뚜껑 (8)에 의해 기울기에 함유 될 수있다. 열 구배 실험을 위해, 방열기 판은 각각 양측에 냉온수 관류 및 유충 (도 1b) 위에 2mm 배치. 고 대비, 고품질의 영화의 생성을 정교한 컴퓨터 기반 이미지 분석을위한 가능성을 열어, 따라서 우리는 이미지에서 기능의 큰 세트를 추출 할 수있다 (그림 2) FIMTrack 소프트웨어를 구현했습니다. 상반기 주요 기능은 동물 (그림 3A)의 윤곽에서 정의되었다. 이러한 기능은베이스 라인을 제공주어진 시점 (그림 3B)에서 동물 모양과 특정 자극에 자신의 위치를 설명 여섯 보조 기능의 추가로 계산. 현재, 아홉 급 기능 시간적 측면을 통합함으로써 기본 및 보조 기능 (도 3c)와 함께 동물의 운동을 특성화되는 계산된다. <img alt="그림 2" fo:content-width="6.5in" src="/files/ftp_upload/52207/52207fig2highres.jpg" width="650" /> 그림 2. FIMTrack 개요, 알고리즘 워크 플로우와 애벌레 표현입니다. (A) 어떻게 FIMTrack를 사용합니다. 이미지가로드됩니다. 회색 값을 임계 값과 하나의 유충을 정의 애벌레 크기 임계 값을 설정해야합니다. 애벌레 지역은 [최소 크기, 최대 크기]에 있어야합니다. 추적 강조 표시된 버튼으로 시작됩니다. (B) 추적 워크 플로우를. 시작 버튼이 클릭되면, 배경 이미지는 CAlculated (시간에 최소한의 강도). 만큼 왼쪽 프레임이 있기 때문에, 유충은 회색 임계 값과 min- 및 최대 크기 임계 값을 기준으로 분할된다. 애벌레 표현이 계산되는 모든 세분화를 들어 ((C)에 비교). 각각의 새로운 모델이 올바른 트랙을 사용할 수있는 경우 주어진 궤도에 연결되어 있습니다. 최종 프레임에 도달하면, 마무리 처리 후 출력 생성 뒤에 행해진 다. (C) 유생 표현. 동물은 머리와 꼬리 포인트 (시간 및 t)로 구성되어 있습니다. 이들 점 사이의 척추 포인트 S의 임의의 홀수 번호가 나는 반경 R I로 설정 될 수있다. 또한, 질량 m과 각도 γ 굽힘 본체의 중심이 계산된다. 여러 운동 관련 매개 변수가 보라색 선으로 스케치한다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52207/52207fig2highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> FIMTrack에 의해 계산 3. 특징을 그림. 동물의 윤곽에 따라 (A) 1 차 기능을 제공합니다. (B) 보조 기능, 주요 기능을 기반으로. (C) 고등 기능, 연속적인 프레임 및 추가 입력의 기본 기능에 따라 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52207/52207fig3highres.jpg" target="_blank">이의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 그림.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="823">
	<tbody>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:191px;">Name of the Material/Equipment</td>
			<td style="width:191px;">Source</td>
			<td style="width:191px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:251px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:191px;">FIM setup</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;">details for construction or purchase of setups is available upon request</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Acrylic glass plate</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;">Additional for agar pouring</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;">Heat radiator plate</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;">Aluminum plate (paintet in matt black) perfusable on opposing sites with adjustable mounting</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:191px;">Water calorifier/cooling pumps and hoses</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;">based on GE healthcare MultiTempIII (No.: 18-1102-78) and Dr Bruno Lange GmBH (Typ: LTG013)</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Standard Camera (4 MP)</td>
			<td style="width:191px;">Basler</td>
			<td style="width:191px;">acA2040-25gm</td>
			<td style="width:251px;">Camera defaultly used for the FIM setup</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Test Camera (1.4 MP)</td>
			<td style="width:191px;">QImaging</td>
			<td style="width:191px;">&#160;1394 firewire (01- QIC-F-M-12 MONO)</td>
			<td style="width:251px;">Camera used for comparison</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Test Camera (0.8 MP)</td>
			<td style="width:191px;">Point Grey</td>
			<td style="width:191px;">Dragonfly 2 (DR2-13S2M/C-CS)</td>
			<td style="width:251px;">Camera used for comparison</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Test Camera (0.3 MP)</td>
			<td style="width:191px;">Sony</td>
			<td style="width:191px;">PS Eye USB2.0 camera</td>
			<td style="width:251px;">Camera used for comparison</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:191px;">Computer</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;">equipped with at least i5 Intel processor or better, 16 GB RAM and sufficient HDD storage space [&#62;1TB]</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:191px;">Standard Fly food</td>
			<td style="width:191px;">Custom&#160;</td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:191px;">Standard Fly vials 135 ml</td>
			<td style="width:191px;">Sarstedt AG&#38;Co, N&#252;mbrecht, Germany</td>
			<td style="width:191px;">78,895</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Petri dishes 9cm</td>
			<td style="width:191px;">Sarstedt AG&#38;Co, N&#252;mbrecht, Germany</td>
			<td style="width:191px;">821,473</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Ultrapure deionized water</td>
			<td style="width:191px;">Merck Millipore, Darmstadt, Germany</td>
			<td style="width:191px;">Synergy&#160;</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">NaCl</td>
			<td style="width:191px;">Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany</td>
			<td style="width:191px;">3957.2</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Food grade agar</td>
			<td style="width:191px;">AppliChem GmbH, Darmstadt, Germany</td>
			<td style="width:191px;">A0917,5000</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Paintbrush (small and large)</td>
			<td style="width:191px;">Milan</td>
			<td style="width:191px;">Aquarell 310 Size 0 and 2</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:191px;">Pyrometer</td>
			<td style="width:191px;">Trotec</td>
			<td style="width:191px;">BP20</td>
			<td style="width:251px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

fim imaging and fimtrack: two new tools allowing high-throughput and cost effective locomotion analysis

신경 네트워크 기능의 분석은 행동 특성의 신뢰성있는 측정이 필요합니다. 자유롭게 움직이는 동물의 행동이 어느 정도 변수이기 때문에, 많은 동물은 유의 한 데이터를 획득하기 위해 분석되어야한다. 이는 다시 운동 패턴의 컴퓨터를 이용한 자동화 된 정량화가 필요합니다. 반투명의 작은 거의 움직이는 물체의 콘트라스트가 높은 화상을 얻기 위해,라는 FIM 좌절 전반사에 기초한 새로운 자기 공명 영상 법이 개발되었다. 이 설정에서, 동물은 기본 크롤링 표면과의 접촉 매우 특정한 위치에서 적외선 빛으로 조명. 이 방법론은 매우 높은 콘트라스트 이미지를 초래한다. 이어서, 이들의 높은 콘트라스트 이미지는 설정된 윤곽 추적 알고리즘을 사용하여 처리된다. 이를 바탕으로, 우리는 정량적 운동의 큰 다양성을 설명하는 데 필요한 특징을 추출하는 역할을 FIMTrack 소프트웨어 개발특성. 이 소프트웨어 패키지의 개발 과정에서, 우리는 추가 모듈을 쉽게 추가 할 수 있도록 오픈 소스 아키텍처에 우리의 노력을 집중했다. 프로그램은 플랫폼 독립적 인 동작 및 데이터 분석을 통해 사용자를 안내 직관적 GUI 수반한다. 모든 운동 매개 변수 값은 상기 데이터 분석 있도록 CSV 파일의 형태로 주어진다. 또한, 추적 소프트웨어에 통합 결과 뷰어 대화식 검토 자극 적분 동안 필요할 수있는 바와 같이, 출력을 조정하는 기회를 제공한다. FIM과 FIMTrack의 힘은 초파리 애벌레의 운동을 연구에 의해 입증된다.

다른 해상도 속성과 여러 다른 카메라 이미징 (그림 4) 시험 하였다. 적절한 IR 필터가 장착 모든 카메라. 이 시험에서 가장 저렴한 가격 카메라 저해상도에 따르면, 시야각은 10 ㎝로 제한된다. 최상의 결과를 4 메가​​ 픽셀 (MP) 카메라를 사용하여 얻을 수 있었다. 이 세 번째 령 유충의 길이 당 100 픽셀의 해상도에 이르게 쉽게 내부 구조를 인식 할 수있었습니다. 또한, 동물의 연동 운동을 쉽게 (도 4A)를 추출 할 수있다. 그러나, 하나는 여전히 또한 FIMTrack 의해 분석 될 수 저렴 카메라를 사용하여 높은 콘트라스트 영화를 얻을 수있다. 8 비트의 깊이와 1392 X 1040 픽셀의 해상도를 가진 1.4 MP 카메라를 이용하면 약 절반 가격이며 시야 제 3 령 유충 길이 당 45 픽셀의 해상도를 허용한다. 머리하지만 다른 내부 구조를 인식 할 수 없습니다 (그림 4B). 추적 및 연동 운동의 검출이 가능하지만 정확도는 (그림 4B)을 감소한다. 1.4 MP 카메라에 필적하는 공간 해상도와 저렴 0.8 MP 카메라, 애벌레 머리 (그림 4C) 더 이상 충실하게 인식 할 수 없습니다. 추적 및 연동 분석이 가능하지만, 증가 된 잡음에 기초하여 더 많은 지터를 포함. 놀랍게도, 심지어 낮은 해상도 USB 웹캠 (20 €, 그림 4D 이하, 0.3 MP 카메라) 유생의 궤적을 계산하는 데 충분한 품질의 동영상을 제공합니다. 연동이 영역으로부터 계산 될 수 있지만, 성능은 매우 잡음이다. 우리의 설정에서 우리는 일상적으로 4 MP 카메라를 사용합니다. 스크리닝,이 카메라는 분명히 높은 처리량 분석이 가능되도록 동시에 다수의 동물을 분석 할 수있는 기회를 제공 22cm X 22cm 아레나 모니터링 허용한다. 이 설정을 사용하여 유충의 길이 난스틸 녹화 연동 운동의 분석을 허용 40 픽셀로 표시 s는. 열 구배 15 유생의 궤적은 예시적인 화상도 5a에 제시되어있다. 또한, 매크로 렌즈의 사용은 많은 내부 장기가 표시되고 헤드 인식이 더 (그림 5B)를 향상 매우 높은 해상도와 이미지 유충에 있습니다. 또한 이들은 넓은 범위 (20)의 동작의 더 상세한 분석을 위해 사용될 수있다. 같은 설정은 쉽게 이미지 C.를 크롤링하는 데 사용할 수 있습니다 엘레 웜 (그림 5C). <img alt="그림 4" fo:content-width="6.5in" src="/files/ftp_upload/52207/52207fig4highres.jpg" width="650" /> 그림 다른 카메라 4. FIM 이미징 및 추적 결과. 왼쪽 (A) : 초당 10 프레임으로 4 MP 카메라를 사용하여 촬영 10cm X 10cm 추적 단계에 크롤 링 세 애벌레의 FIM 영상. 중간 :클리핑 및 단일 유충의 대량 궤도의 중심. 동물의 영역이 표시된다. 오른쪽 : 유충의 면적은 100 프레임 이상 꾸몄다. (A)와 동일하지만, 0.8 MP 카메라를 사용하여 촬영 빨간색 화살표가 잘린 이미지의 시점을 나타냅니다. (A)와 동일하지만, 1.4 MP 카메라를 사용하여 촬영 (B). (C). (D) 동급 ( A)하지만 0.3 MP 카메라를 사용하여 촬영. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52207/52207fig4highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" fo:content-width="6.5in" src="/files/ftp_upload/52207/52207fig5highres.jpg" width="650" /> 그림 5. 열 자극, 높은 해상도 응용 프로그램. (A) 열 자극 응용 프로그램 (그림 1 비교). 궤적은 FI를 통해 계산MTrack. (B) 매크로 렌즈를 사용하여, 세 번째 두 번째와 첫 번째 령 유충의 높은 해상도 응용 프로그램 이미지. 셋째 령 유충의 길이는 2.5 × 2.5 cm의 시각 필드 (400)의 픽셀에 의해 표현된다. (C) C. 엘레 웜은 FIM 이미지를 사용하여 캡처. 스케일 막대가 표시됩니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52207/52207fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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FIM Imaging and FIMtrack: Two New Tools Allowing High-throughput and Cost Effective Locomotion Analysis

FIM은 C. 작은 이동 물체를 추적하도록 설계된 신규 한 비용 효율적인 이미징 시스템 엘레, planaria 초파리 애벌레. 첨부 FIMTrack 프로그램은 빠르고 효율적인 데이터 분석을 제공하도록 설계되었습니다. 이 도구들을 함께 행동 특성의 높은 처리량 분석을 할 수 있습니다.

FIM 이미징 및 FIMtrack : 높은 처리량 및 비용 효율적인 로코 분석을 허용하는 두 가지 새로운 도구

The analysis of neuronal network function requires a reliable measurement of behavioral traits. Since the behavior of freely moving animals is variable to ...

fim-imaging-fimtrack-two-new-tools-allowing-high-throughput-cost

Research

JoVE Journal

Neuroscience

11.6K 조회수.  Westfälische Wilhelms-Universität Münster.  FIM은 C. 작은 이동 물체를 추적하도록 설계된 신규 한 비용 효율적인 이미징 시스템 엘레, planaria 초파리 애벌레. 첨부 FIMTrack 프로그램은 빠르고 효율적인 데이터 분석을 제공하도록 설계되었습니다. 이 도구들을 함께 행동 특성의 높은 처리량 분석을 할 수 있습니다. 

비디오: FIM Imaging and FIMtrack: Two New Tools Allowing High-throughput and Cost Effective Locomotion Analysis

Design and Construction of a Cost Effective Headstage for Simultaneous Neural Stimulation and Recording in the Water Maze

Headstage preamplifiers and source followers are commonly used to study neural activity in behavioral neurophysiology experiments. Available commercial products are often expensive, not easily customized, and not submersible. Here we describe a method to design and build a customized, integrated circuit headstage for simultaneous 4-channel neural recording and 2-channel simulation in awake, behaving animals. The headstage is designed using a free, commercially available CAD-type design package, and can be modified easily to accommodate different scales (e.g. to add channels). A customized printed circuit board is built using surface mount resistors, capacitors and operational amplifiers to construct the unity gain source follower circuit. The headstage is made water-proof with a combination of epoxy, parafilm and a synthetic rubber putty. We have successfully used this device to record local field potentials and stimulate different brain regions simultaneously via independent channels in rats swimming in a water maze. The total cost is &lt; $30/unit and can be manufactured readily.

We present a low-cost method to design and construct a light headstage pre-amplifier system with simultaneous neural recording and stimulation capability. This device can be waterproofed for use in swimming animals.

동시 신경 자극과 워터 미로에서 녹음을위한 설계 및 비용 효율적인 Headstage 구축

Headstage preamplifiers and source followers are commonly used to study neural activity in behavioral neurophysiology experiments. Available commercial ...

연구

신경과학

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge. Gene targeting to generate constitutive or conditional loss of function knockouts remains cost and labor intensive, as well as time consuming. Adding to these challenges, retina expressed genes may have essential roles outside the retina leading to unintended confounds when using a knockout approach. Furthermore, the ability to ectopically express a gene in a gain of function experiment can be extremely valuable when attempting to identify a role in cell fate specification and/or terminal differentiation.
We present a method for the rapid and efficient incorporation of DNA plasmids into the neonatal mouse retina by electroporation. The application of short electrical impulses above a certain field strength results in a transient increase in plasma membrane permeability, facilitating the transfer of material across the membrane 1,2,3,4. Groundbreaking work demonstrated that electroporation could be utilized as a method of gene transfer into mammalian cells by inducing the formation of hydrophilic plasma membrane pores allowing the passage of highly charged DNA through the lipid bilayer 5. Continuous technical development has resulted in the viability of electroporation as a method for in vivo gene transfer in multiple mouse tissues including the retina, the method for which is described herein 6, 7, 8, 9, 10. 
DNA solution is injected into the subretinal space so that DNA is placed between the retinal pigmented epithelium and retina of the neonatal (P0) mouse and electrical pulses are applied using a tweezer electrode. The lateral placement of the eyes in the mouse allows for the easy orientation of the tweezer electrode to the necessary negative pole-DNA-retina-positive pole alignment. Extensive incorporation and expression of transferred genes can be identified by postnatal day 2 (P2). Due to the lack of significant lateral migration of cells in the retina, electroporated and non-electroporated regions are generated. Non-electroporated regions may serve as internal histological controls where appropriate. 
Retinal electroporation can be used to express a gene under a ubiquitous promoter, such as CAG, or to disrupt gene function using shRNA constructs or Cre-recombinase. More targeted expression can be achieved by designing constructs with cell specific gene promoters. Visualization of electroporated cells is achieved using bicistronic constructs expressing GFP or by co-electroporating a GFP expression construct. Furthermore, multiple constructs may be electroporated for the study of combinatorial gene effects or simultaneous gain and loss of function of different genes. Retinal electroporation may also be utilized for the analysis of genomic cis-regulatory elements by generating appropriate expression constructs and deletion mutants. Such experiments can be used to identify cis-regulatory regions sufficient or required for cell specific gene expression 11. Potential experiments are limited only by construct availability.

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

A method for the incorporation of plasmid DNA into murine retinal cells for the purpose of performing either gain- or loss of function studies in vivo is presented. This method capitalizes on the transient increase in permeability of cell plasma membranes induced by the application of an external electrical field.

개발 마우스 망막의 생체내 Electroporation에

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge.  Gene targeting to generate ...

Automated High-throughput Behavioral Analyses in Zebrafish Larvae

We have created a novel high-throughput imaging system for the analysis of behavior in 7-day-old zebrafish larvae in multi-lane plates. This system measures spontaneous behaviors and the response to an aversive stimulus, which is shown to the larvae via a PowerPoint presentation. The recorded images are analyzed with an ImageJ macro, which automatically splits the color channels, subtracts the background, and applies a threshold to identify individual larvae placement in the lanes. We can then import the coordinates into an Excel sheet to quantify swim speed, preference for edge or side of the lane, resting behavior, thigmotaxis, distance between larvae, and avoidance behavior. Subtle changes in behavior are easily detected using our system, making it useful for behavioral analyses after exposure to environmental toxicants or pharmaceuticals.

Our laboratory developed a novel high-throughput automated imaging system that is useful for the detection of several different behaviors in 7-day-old zebrafish larvae. The system can be used for detecting subtle changes in behavior after the larvae have been exposed to environmental toxicants or pharmaceuticals.

Zebrafish의 유충에 자동으로 높은 처리량 행동 분석

We have created a novel high-throughput imaging system for the analysis of behavior in 7-day-old zebrafish larvae in multi-lane plates. This system ...

Functional Interrogation of Adult Hypothalamic Neurogenesis with Focal Radiological Inhibition

The functional characterization of adult-born neurons remains a significant challenge. Approaches to inhibit adult neurogenesis via invasive viral delivery or transgenic animals have potential confounds that make interpretation of results from these studies difficult. New radiological tools are emerging, however, that allow one to noninvasively investigate the function of select groups of adult-born neurons through accurate and precise anatomical targeting in small animals. Focal ionizing radiation inhibits the birth and differentiation of new neurons, and allows targeting of specific neural progenitor regions. In order to illuminate the potential functional role that adult hypothalamic neurogenesis plays in the regulation of physiological processes, we developed a noninvasive focal irradiation technique to selectively inhibit the birth of adult-born neurons in the hypothalamic median eminence. We describe a method for Computer tomography-guided focal irradiation (CFIR) delivery to enable precise and accurate anatomical targeting in small animals. CFIR uses three-dimensional volumetric image guidance for localization and targeting of the radiation dose, minimizes radiation exposure to nontargeted brain regions, and allows for conformal dose distribution with sharp beam boundaries. This protocol allows one to ask questions regarding the function of adult-born neurons, but also opens areas to questions in areas of radiobiology, tumor biology, and immunology. These radiological tools will facilitate the translation of discoveries at the bench to the bedside.

The function of adult-born mammalian neurons remains an active area of investigation. Ionizing radiation inhibits the birth of new neurons. Using computer tomography-guided focal irradiation (CFIR), three-dimensional anatomical targeting of specific neural progenitor populations can now be used to assess the functional role of adult neurogenesis.

초점 방사선 억제와 성인 시상 하부의 신경 발생의 기능 심문

The functional characterization of adult-born neurons remains a significant challenge. Approaches to inhibit adult neurogenesis via invasive viral ...

High-throughput Analysis of Mammalian Olfactory Receptors: Measurement of Receptor Activation via Luciferase Activity

Odorants create unique and overlapping patterns of olfactory receptor activation, allowing a family of approximately 1,000 murine and 400 human receptors to recognize thousands of odorants. Odorant ligands have been published for fewer than 6% of human receptors1-11. This lack of data is due in part to difficulties functionally expressing these receptors in heterologous systems. Here, we describe a method for expressing the majority of the olfactory receptor family in Hana3A cells, followed by high-throughput assessment of olfactory receptor activation using a luciferase reporter assay. This assay can be used to (1) screen panels of odorants against panels of olfactory receptors; (2) confirm odorant/receptor interaction via dose response curves; and (3) compare receptor activation levels among receptor variants. In our sample data, 328 olfactory receptors were screened against 26 odorants. Odorant/receptor pairs with varying response scores were selected and tested in dose response. These data indicate that a screen is an effective method to enrich for odorant/receptor pairs that will pass a dose response experiment, i.e. receptors that have a bona fide response to an odorant. Therefore, this high-throughput luciferase assay is an effective method to characterize olfactory receptors&#8212;an essential step toward a model of odor coding in the mammalian olfactory system.

Olfactory receptor activation patterns encode odor identity, but the lack of published data identifying odorant ligands for mammalian olfactory receptors hinders the development of a comprehensive model of odor coding. This protocol describes a method to facilitate high-throughput identification of olfactory receptor ligands and quantification of receptor activation.

루시 페라 제 활동을 통해 수용체 활성화의 측정 : 포유류의 후각 수용체의 높은 처리량 분석

Odorants create unique and overlapping patterns of olfactory receptor activation, allowing a family of approximately 1,000 murine and 400 human receptors ...

Two Algorithms for High-throughput and Multi-parametric Quantification of Drosophila Neuromuscular Junction Morphology

Synaptic morphology is tightly related to synaptic efficacy, and in many cases morphological synapse defects ultimately lead to synaptic malfunction. The Drosophila larval neuromuscular junction (NMJ), a well-established model for glutamatergic synapses, has been extensively studied for decades. Identification of mutations causing NMJ morphological defects revealed a repertoire of genes that regulate synapse development and function. Many of these were identified in large-scale studies that focused on qualitative approaches to detect morphological abnormalities of the Drosophila NMJ. A drawback of qualitative analyses is that many subtle players contributing to NMJ morphology likely remain unnoticed. Whereas quantitative analyses are required to detect the subtler morphological differences, such analyses are not yet commonly performed because they are laborious. This protocol describes in detail two image analysis algorithms "Drosophila NMJ Morphometrics" and "Drosophila NMJ Bouton Morphometrics", available as Fiji-compatible macros, for quantitative, accurate and objective morphometric analysis of the Drosophila NMJ. This methodology is developed to analyze NMJ terminals immunolabeled with the commonly used markers Dlg-1 and Brp. Additionally, its wider application to other markers such as Hrp, Csp and Syt is presented in this protocol. The macros are able to assess nine morphological NMJ features: NMJ area, NMJ perimeter, number of boutons, NMJ length, NMJ longest branch length, number of islands, number of branches, number of branching points and number of active zones in the NMJ terminal.

Two Algorithms for High-throughput and Multi-parametric Quantification of Drosophila Neuromuscular Junction Morphology

Two image analysis algorithms, "Drosophila NMJ Morphometrics" and "Drosophila NMJ Bouton Morphometrics" were created, to automatically quantify nine morphological features of the Drosophila neuromuscular junction (NMJ).

높은 처리량 및 다중 파라 메트릭 정량화를위한 ​​두 알고리즘<em&gt; 초파리</em&gt; 신경 근육 접합 형태학

Synaptic morphology is tightly related to synaptic efficacy, and in many cases morphological synapse defects ultimately lead to synaptic malfunction. The ...

High-throughput Analysis of Locomotor Behavior in the Drosophila Island Assay

Advances in next-generation sequencing technologies contribute to the identification of (candidate) disease genes for movement disorders and other neurological diseases at an increasing speed. However, little is known about the molecular mechanisms that underlie these disorders. The genetic, molecular, and behavioral toolbox of Drosophila melanogaster makes this model organism particularly useful to characterize new disease genes and mechanisms in a high-throughput manner. Nevertheless, high-throughput screens require efficient and reliable assays that, ideally, are cost-effective and allow for the automatized quantification of traits relevant to these disorders. The island assay is a cost-effective and easily set-up method to evaluate Drosophila locomotor behavior. In this assay, flies are thrown onto a platform from a fixed height. This induces an innate motor response that enables the flies to escape from the platform within seconds. At present, quantitative analyses of filmed island assays are done manually, which is a laborious undertaking, particularly when performing large screens.
This manuscript describes the &#34;Drosophila Island Assay&#34; and &#34;Island Assay Analysis&#34; algorithms for&#160;high-throughput, automated data processing and quantification of island assay data. In the setup, a simple webcam connected to a laptop collects an image series of the platform while the assay is performed. The &#34;Drosophila Island Assay&#34; algorithm developed for the open-source software Fiji processes these image series and quantifies, for each experimental condition, the number of flies on the platform over time. The &#34;Island Assay Analysis&#34; script, compatible with the free software R, was developed to automatically process the obtained data and to calculate whether treatments/genotypes are statistically different. This greatly improves the efficiency of the island assay and makes it a powerful readout for basic locomotion and flight behavior. It can thus be applied to large screens investigating fly locomotor ability, Drosophila models of movement disorders, and drug efficacy.

High-throughput Analysis of Locomotor Behavior in the Drosophila Island Assay

The island assay is a relatively new, cost-effective assay that can be used to evaluate the basic locomotor behavior of Drosophila melanogaster. This manuscript describes algorithms for automatic data processing and objective quantification of island assay data, making this assay a sensitive, high-throughput readout for large genetic or pharmacological screens.

Drosophila 섬 분석 결과에서 운전 행동의 높은 처리량 분석

Advances in next-generation sequencing technologies contribute to the identification of (candidate) disease genes for movement disorders and other ...

Two-photon Calcium Imaging in Neuronal Dendrites in Brain Slices

Calcium (Ca2+) imaging is a powerful tool to investigate the spatiotemporal dynamics of intracellular Ca2+ signals in neuronal dendrites. Ca2+ fluctuations can occur through a variety of membrane and intracellular mechanisms and play a crucial role in the induction of synaptic plasticity and regulation of dendritic excitability. Hence, the ability to record different types of Ca2+ signals in dendritic branches is valuable for groups studying how dendrites integrate information. The advent of two-photon microscopy has made such studies significantly easier by solving the problems inherent to imaging in live tissue, such as light scattering and photodamage. Moreover, through combination of conventional electrophysiological techniques with two-photon Ca2+ imaging, it is possible to investigate local Ca2+ fluctuations in neuronal dendrites in parallel with recordings of synaptic activity in soma. Here, we describe how to use this method to study the dynamics of local Ca2+ transients (CaTs) in dendrites of GABAergic inhibitory interneurons. The method can be also applied to studying dendritic Ca2+ signaling in different neuronal types in acute brain slices.

We present a method combining whole-cell patch-clamp recordings and two-photon imaging to record Ca2+ transients in neuronal dendrites in acute brain slices.

두뇌 조각에서 신경 모 수석에서 2 광자 칼슘 이미지

Calcium (Ca2+) imaging is a powerful tool to investigate the spatiotemporal dynamics of intracellular Ca2+ signals in neuronal dendrites. Ca2+ ...

A High-Throughput Image-Guided Stereotactic Neuronavigation and Focused Ultrasound System for Blood-Brain Barrier Opening in Rodents

The blood-brain barrier (BBB) has been a major hurdle for the treatment of various brain diseases. Endothelial cells, connected by tight junctions, form a physiological barrier preventing large molecules (&#62;500 Da) from entering the brain tissue. Microbubble-mediated focused ultrasound (FUS) can be used to induce a transient local BBB opening, allowing larger drugs to enter the brain parenchyma.
In addition to large-scale clinical devices for clinical translation, preclinical research for therapy response assessment of drug candidates requires dedicated small animal ultrasound setups for targeted BBB opening. Preferably, these systems allow high-throughput workflows with both high-spatial precision as well as integrated cavitation monitoring, while still being cost effective in both initial investment and running costs.
Here, we present a bioluminescence and X-ray guided stereotactic small animal FUS system that is based on commercially available components and fulfills the aforementioned requirements. A particular emphasis has been placed on a high degree of automation facilitating the challenges typically encountered in high-volume preclinical drug evaluation studies. Examples of these challenges are the need for standardization in order to ensure data reproducibility, reduce intra-group variability, reduce sample size and thus comply with ethical requirements and decrease unnecessary workload. The proposed BBB system has been validated in the scope of BBB opening facilitated drug delivery trials on patient-derived xenograft models of glioblastoma multiforme and diffuse midline glioma.

The blood-brain barrier (BBB) can be temporarily disrupted with microbubble-mediated focused ultrasound (FUS). Here, we describe a step-by-step protocol for high-throughput BBB opening in vivo using a modular FUS system accessible for non-ultrasound experts.

설치류의 혈액 뇌 장벽 개방을 위한 고처리량 이미지 유도 입체 신경 탐색 및 집중 초음파 시스템

The blood-brain barrier (BBB) has been a major hurdle for the treatment of various brain diseases. Endothelial cells, connected by tight junctions, form a ...

Efficient and Cost Effective Electroporation Method to Study Primary Cilium-Dependent Signaling Pathways in the Granule Cell Precursor

The primary cilium is a critical signaling organelle found on nearly every cell that transduces Hedgehog (Hh) signaling stimuli from the cell surface. In the granule cell precursor (GCP), the primary cilium acts as a pivotal signaling center that orchestrates precursor cell proliferation by modulating the Hh signaling pathway. The investigation of primary cilium-dependent Hh signaling machinery is facilitated by in vitro genetic manipulation of the pathway components to visualize their dynamic localization to the primary cilium. However, transfection of transgenes in the primary cultures of GCPs using the currently known electroporation methods is generally costly and often results in low cell viability and undesirable transfection efficiency. This paper introduces an efficient, cost-effective, and simple electroporation protocol that demonstrates a high transfection efficiency of ~80-90% and optimal cell viability. This is a simple, reproducible, and efficient genetic modification method that is applicable to the study of the primary cilium-dependent Hedgehog signaling pathway in primary GCP cultures.

Here, we present a reproducible in vitro electroporation protocol for genetic manipulation of primary cerebellar granule cell precursors (GCPs) that is cost-effective, efficient, and viable. Moreover, this protocol also demonstrates a straightforward method for the molecular study of primary cilium-dependent Hedgehog signaling pathways in primary GCP cells.

과립 세포 전구체에서 1 차적인 실륨 의존적 신호 경로를 연구하는 효율적이고 비용 효율적인 전기 포기법

The primary cilium is a critical signaling organelle found on nearly every cell that transduces Hedgehog (Hh) signaling stimuli from the cell surface. In ...