모든 저자는 NHMRC CTC, 시드니, 청소년 당뇨병 연구 재단 (JDRF), 호주의 대학과 레베카 쿠퍼 재단, 호주에서 인프라 지원을 인정합니다. 이 연구는 WW, RJF을 아하기 위해 호주 연구 협의회 (FT110100254)와 JDRF, 호주 (CRN201314)에서 보조금을 통해 자금을 지원하고 MVJ 모든 젖은 실험실 실험을 실시, ASJ 데이터 분석을 수행 하였다. WW는 첫 번째 초안을 썼다. AAH는 연구를 계획하고 데이터를 분석했다. 모든 저자 읽고 게시를 위해 제출 된 원고, 그림 및 워크 시트의 최종 버전에 동의했다.

<ol>
	<li>Ambros, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+functions+of+animal+microRNAs.">The functions of animal microRNAs.</a> Nature. 431, 350-355 (2004).</li><li>Alvarez-Garcia, I., Miska, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+functions+in+animal+development+and+human+disease.">MicroRNA functions in animal development and human disease.</a> Development. 132, 4653-4662 (2005).</li><li>Bartel, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNAs:+genomics,+biogenesis,+mechanism,+and+function.">MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function.</a> Cell. 116, 281-297 (2004).</li><li>Joglekar, M. V., Wei, C., Hardikar, A. 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V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+measurement+of+noncoding+RNA+in+human+serum.">A protocol for measurement of noncoding RNA in human serum.</a> Exp Diabetes Res. 2012, 168368 (2012).</li><li>Turchinovich, A., Weiz, L., Langheinz, A., Burwinkel, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+extracellular+circulating+microRNA.">Characterization of extracellular circulating microRNA.</a> Nucleic Acids Res. 39, 7223-7233 (2011).</li><li>Li, Y., Kowdley, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Method+for+microRNA+isolation+from+clinical+serum+samples.">Method for microRNA isolation from clinical serum samples.</a> Anal Biochem. 431, 69-75 (2012).</li></ol>

제 처리 / 출판 비용은 출판이 원고의 수락 다음, Life 기술이 적용되었다.

정확하고 재현성있는 결과를 얻기 위해 프로브 기반 qPCR의 프로토콜 내에서 중요한 단계는 RT-제품의 동일한 부피 및 농도는 각각 qPCR의 반응에로드되어) 있는지 일을한다, 2) 성분의 정확한 비율 및 볼륨에 필요한 qPCR의 반응은 제조 및 음, 3) 정확하고 일관된 볼륨 각각 qPCR의 반응에 첨가 혼합하고, 여전히 염두하면서 4) 각 샘플과 반응 혼합물의 제조 및 로딩, 가능한 한 짧은 시간에 완료된다 위의 중요한 단계는 앞에서 언급. 마이크로 유체 배열 카드는 적합한 원심 분리기 및 특정 버킷이 필요합니다. 각 버킷은 3 카드 (로드 / 빈)까지 저장할 수 있습니다. 항상 양동이의 3 슬롯을 점유하고 버킷 원심 분리기의 반대 슬롯에 비슷한 버킷 (이 양동이는 빈 또는 전체 중 3 카드를 포함한다) 배치로 균형되어 있는지 확인합니다. bucke에 카드를 배치하는 동안t 홀더, 8 저수지 위쪽으로 돌출 반응 우물이 원심 분리기의 외부 벽에 직면해야합니다. 실온에서 1 분 동안 331 XG에 카드 스핀. 제 1 스핀 후, 원심 분리기를 열고 시각적 반응 혼합물은 384 웰을 통해 분배 된 보장. 1 시간을 더 동일한 설정에서 스핀을 반복합니다. 양동이에서 카드를 제거하고 8 저수지의 각각에 반응 혼합물의 수준이 균일 있는지 확인하십시오. 저수지에 남아있는 액체 볼륨의 모든 불일치는 더 사용할 카드가 부적절합니다. RT-생성물의 동일한 농도가, 동일한 입력 RNA의 농도는 각각의 RT 반응에 첨가된다. 전체 RNA의 농도는 마이크로 volumespectrophotometer를 사용하여 측정된다. 260/280 비율이 관찰 혈장 / 혈청으로부터 분리 RNA 1.3 정도로 낮을 수있다; 다운 스트림 qPCR에 관련 프로세스 나 데이터 (30)를 생성에이 효과가 나타나지 않습니다. 마찬가지로, 260/280의 비율여기에 테스트 RNA 샘플을 관찰 qPCR에에서 더 이상 효과를 1.3 ~ 1.7 사이에 있었다. 이러한 biofluids시 그러한 낮은 함량 RNA 샘플을 사용할 때, 처리에 앞서 RNA을 정량화하기 어렵다. 우리는 RNA 분리에서 합성 스파이크에서의 사용뿐만 아니라, 역전사 단계가 추천. 우리의 경험, 애기 장대의 miRNA 후보 (ATH-은 miR-159A와 ATH-은 miR-172A)에서 우리의 경험에 더있을 수 있습니다 (예 : CEL-은 miR-39 또는 CEL-은 miR-54) 예쁜 꼬마 선충의 miRNA가 선호된다 A.에서보다 동성 장대. 이러한 특정 스테이지에서 스파이크의 사용은 서로 다른 시간에 복수의 샘플 분석 miRNA에 걸쳐 데이터의 정규화를 설명 할 수있다. cDNA 합성 반응에 고정 된 RNA의 양을 입력하여도 32, 33을 권장한다. miRNA의 정량화를위한​​ 세 가지 프로브 기반 프로토콜은 여기에 설명 된 다양한 양을 필요로총 RNA 입력, 다른 워크 플로우 및 비용. 워크 플로우의 각 miRNA의 타겟의 수와 분석 할 샘플의 수에 따라 서로 다른 스루풋에 맞추도록 설계된다. 처리량이 증가 (384 RXN 3072 RXN RXN 96)을, 반응 당 비용은 단위 시간에 걸쳐 얻어진 데이터의 양이 증가함에 따라 감소한다. 이러한 플랫폼 모두의 TaqMan 화학을 이용하기 때문에, 얻어진 데이터의 품질이 유사 할 것으로 예상 할 수있다. 의 TaqMan qPCR에 혈청 / 혈장 9,11,27에서의 miRNA의 풍부를 식별하기위한 잘 확립 된 방법이다. 여기서 설명하는 세 가지 플랫폼이 동일한 화학을 공유하지만, 반응 부피의 감소는 전 사체의 동적 검출 범위의 감소 (파르 RJ 외., 미발표)로 이끈다. 96 웰 qPCR의 플랫폼은 낮은 처리량,하지만 고감도 플랫폼이며, 우리의 관점에서, 모든 프로브 기반 (또는 기반 염료) PCR 플랫폼의 &quot;황금 표준&quot;. 그러나,이 월샘플의 수백 또는 수천 분석 및 여러 마이크로 RNA에 대한되는 경우 가장 경제적 또는 효율적인 플랫폼을 수 없습니다. 미세 유체 (TLDA)과 nanofluidics은 (OA) 플랫폼은 짧은 시간에 큰 데이터의 수집을 할 수 있도록 설계 높은 처리량 / 콘텐츠 플랫폼이다. 일괄 차이 TLDA 카드에서 관찰되었지만,이 같은 배치에서 TLDA 카드를 요청함으로써 최소화 될 수있다. 낮은 풍요의 miRNA를 TLDA 카드의 다른 배치에 동일한 샘플을 사용하여 테스트 할 때 - 우리는 TLDA 플랫폼 (그림 3) 중간의 17 %에 상당한 변화를 보여 주었다 관찰합니다. 따라서 우리는 TLDA 카드를 사용하여 분석을 위해 동일한 배치 번호를 사용하는 것이 좋습니다. 이 변화는 또한 잠재적 인로드 및 피펫 오류를 포함하여 기술 변화로 인해 수 있습니다. 그러나, 우리는 TLDA 카드의 동일한 배치를 요청 / 주문을 추천합니다. 유의 배치 변화는 OA 플랫폼에서 관찰되지 않았다. 그럼에도 불구하고,의 TaqMan experimen을 기반으로탈 qPCR의 혈장 / 혈청에서의 miRNA의 풍부를 측정하기 위해 제공 쉽게 접근한다. 여기서 설명 낮은, 중간 및 높은 처리량 접근법은 고도로 효율적이고 재현하고 깨끗한 (낮은 배경 잡음) 화학 제를 사용하여 샘​​플의 miRNAs의 범위를 분석 할 수있는 유연성을 제공한다.

마이크로 RNA (miRNA가)는 유전자 발현 1-3 조정기로서 기능 ~ 22 뉴클레오티드 비 코딩 (NC)의 RNA. 동물의 대부분의 miRNA는 유전자 발현 2-4의 부정적인 규제에 이르게 3 &#39;UTR을 대상으로, mRNA의 DNA 서열의 특정 염기 쌍을 통해 작동합니다. 이것은 일반적으로 mRNA의 번역의 억제를 통해 또는 리보솜 드롭 오프에 의해 발생합니다. 순환의 miRNAs는 당뇨병 5-7, 8, 난소, 전립선 및 유방암 구 (10,11), (12) B 형 간염 및 다른자가 면역 질환과 같은 질병 (13)의 다양한 연구 및 임상 분야에서 새로운 바이오 마커 인 것으로 밝혀졌다. 연구는 더 접근하고 9,11-15 덜 침습적 인 인간 혈장 및 혈청에서 순환뿐만 아니라 다른 세포 또는 조직에서의 miRNA 풍부한를 식별하기 위해 실시되었다. miRNA의 정량화의 다른 방법은 전자되었습니다이러한 표준 96 웰 플레이트 플랫폼 4,12,16-18, 마이크로 유체 카드 플랫폼 12,18-23과 nanofluidics 어레이 플랫폼 17,24 등 여러 플랫폼을 사용하여에 stablished. 정량 실시간 PCR (qPCR에)는 여러 (염료 - 또는 프로브 기반) 화학 물질을 사용하여 성적의 상대 또는 절대 숫자를 측정 할 수있는 기능을 제공합니다. 프로브 기반 실시간 PCR 화학은 단일 전 사체를 검출하기 위해 복사본 낮은 배경 형광 및 높은 감도의 장점을 제공한다. 그것은 상대적으로 정량화 된 miRNA 발현 (25)를 결정하는 그것을 선호하는 방법을, 효과적인 사용이 간단하고 재현성이 높은 비용이다. 전사 (RT) 및 qPCR에 4,26,27 역 : 프로브 기반 qPCR의 방법은 일반적으로 두 단계를 포함한다. 줄기 루프 RT 프라이머 성숙한 또는 기본 miRNA의 분자에 하이브리드 및 보완 (C) DNA로 변환되는 경우 RT이다. cDNA의 생성물의 정량은 miRNA에 특이 PCR 프라이머를 사용하여 수행26 ~ 28. 프로브 기반 qPCR에의 원리는 형광 표지 된 프로브의 가수 분해를 포함 실시간으로 보완 가닥 확장의 검출을 기반으로합니다. 이 프로브는 형광 기자와 FRET (형광 공명 에너지 전송)을 할 수 있도록 단지 떨어져있는 거​​제를 포함하도록 설계되었습니다. 형광 기자 (에미 터)에서 방출의 검출은 소광 분자의 근접에 의해 마스크 처리됩니다. 을 Taq 폴리머 라제 (POL)가 상류 프라이머로부터 연장 및 포크 (프로브의 5 &#39;말단)에 도달 할 때의 Taq의 POL 엑소 뉴 클레아 제 활성은 소광에서 형광 방출의 물리적 분리 / 분리 선도, 프로브 가수 분해한다. 형광 터의 단일 분자의 릴리스는 검출기에 의해 기록이 아니라 / 반응에서 형광 신호의 증분 증가로 제시됩니다. 형광의 증가는 정확한 숨어 있도록, 생성 된 PCR 산물의 양에 비례증폭 된 대상 (26, 28)의 antification. 정량화 된 miRNA의 수요 증가, 높은 처리량에 기술 매체는 더 많은 샘플을 짧은 시간 안에 처리 할 수​​ 있도록 개발되었다. 저밀도의 TaqMan 어레이 (TLDA)은 하나의 플레이트에서 분석의 miRNA의 수의 증가를 제공하고 프로브 기반 qPCR의 화학에 기초하여 중간 처리량 마이크로 유체 혁신적인 디자인이다. TLDA는 cDNA의 합성에 사용되는 프라이머를 RT-소정 풀의 사용을 포함한다. 이러한 cDNA를 다음의 qPCR 22,26,29을 사용하여 여러 miRNAs의 발현을 결정하기 위해 사용자 정의 된 384 웰 미세 유체 카드에 방사된다. 카드의 각 웰 따라서 단일 TLDA 카드 (26)에서 처리 될 수있다 (384)의 반응까지, 특정의 miRNA (들)을 증폭하는 프라이머 및 프로브를 포함 건조. nanofluidics 어레이 유전자 전 사체의 검출을 위해 사용되는 높은 처리량 플랫폼 <sup&gt; 24 같은 프로브 기반 화학 제를 사용하여. 이 관통 구멍 스테인리스 슬라이드 (24)에 3,072의 배열로 33 나노 리터 반응 혼합물의 쉽게 로딩을 용이하게하기 위해 소수성 - 친수성 상호 작용을 제공하는 고유 행렬을 이용한다. 이 문서에서는 혈청 / 플라즈마에서의 miRNA를 정량화 이러한 방법이 수행하고 수행하고 이러한 데이터를 해석 할 때 고려해야 할 중요한 요소 방법을 시연에 초점을 맞추고 있습니다. 계정으로 연결, 개별 장점과 한계는이 문서에서 논의 될 것이다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>96 well-platform</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For Reverse transcription</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan MicroRNA Assays INV SM&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4427975</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/au/en/home/life-science/pcr/real-time-pcr/real-time-pcr-assays/mirna-ncrna-taqman-assays/single-tube-mirna-taqman-assays.html?ICID=search-4427975 
			The assays comes as a pack of RT primers and PCR primer.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4366597 or 4366596</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4366597?ICID=search-4366597 or http://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4366596?ICID=search-4366596 
			The TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit is the same kit used for reverse transcription in all the threeTaqMan platform- 96-well platform, TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For qPCR run on a 96-well platform</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2X TaqMan Fast Universal PCR Master Mix, no AmpErase UNG&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4367846</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4367846?ICID=search-4367846 
			The 2X TaqMan Fast Universal PCR Master Mix is used for qPCR on&#160; the two TaqMan platforms-96-well platform and TLDA.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MicroAmp Optical Adhesive Film</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>4311971</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4311971?ICID=search-product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MicroAmp Fast Optical 96-Well Reaction Plate, 0.1 mL&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>4346907</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4346907?ICID=search-product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics platform (TLDA)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For Reverse transcription</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refer to 96-well platform TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit kit (4366597 or 4366596) (as shown above).</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Megaplex RT Primers, Human Pool A v2.1</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4399966</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4399966?ICID=search-4399966 
			The Megaplex RT Primers, Human Pool A v2.1 is used for RT on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Megaplex RT Primers, Human Pool B v3.0</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4444281</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4444281?ICID=search-4444281 
			The Megaplex RT Primers, Human Pool B v3.0 is used for RT on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OR</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>OR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Megaplex Primer Pools, Human Pools Set v3.0</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4444750</td>
			<td>http://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4444750?ICID=search-4444750 
			The Megaplex Primer Pools, Human Pools Set v3.0 is used for RT on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For Pre-amplification</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan PreAmp Master Mix</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4391128 or 4488593</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4391128?ICID=search-4391128 or http://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4488593 
			The TaqMan PreAmp Master Mix is used for pre-amplification of qPCR on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Megaplex PreAmp Primers, Human Pool B v3.0&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4444303</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4444303?ICID=search-4444303 
			The Megaplex PreAmp Primers, Human Pool B v3.0 is used for pre-amplification of qPCR on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Megaplex PreAmp Primers, Human Pool A v2.1</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4399233</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4399233?ICID=search-4399233 
			The Megaplex PreAmp Primers, Human Pool A v2.1 is used for pre-amplification of qPCR on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1X TE Buffer (100 mL)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>12090-015</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/12090015?ICID=search-product 
			The 1X TE Buffer is used for pre-amplification of qPCR on&#160; the two TaqMan platforms- TLDA and OpenArray.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>To load and run the 384 well microfluidics (TLDA) card</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan Array Human MicroRNA A+B Cards Set v3.0&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>4444913</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4444913</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nanofluidics platform (OpenArray)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For Reverse transcription</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refer to 96-well platform TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit kit (4366597 or 4366596) (as shown above).</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>For Pre-amplification</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refer to TLDA pre-amplification reagents (as shown above)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>To load and run the slides</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan OpenArray Human MicroRNA Panel, QuantStudio 12K Flex (1 panel)</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4470187</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4470187?ICID=search-4470187</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>QuantStudio 12K Flex OpenArray Accessories Kit&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4469576</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4469576?ICID=search-4469576</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OpenArray 384-well Sample Plates&#160;&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4406947</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4406947?ICID=search-4406947</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaqMan OpenArray Real-Time PCR Master Mix</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4462159</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4462159?ICID=search-4462159</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OpenArray AccuFill System Tips&#160;</td>
			<td>Applied Biosystems 
			&#160;</td>
			<td>4457246</td>
			<td>https://www.lifetechnologies.com/order/catalog/product/4457246?ICID=search-4457246</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Others</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nuclease-Free Water</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>129117</td>
			<td>http://www.qiagen.com/products/catalog/lab-essentials-and-accessories/nuclease-free-water</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

probe-based real-time pcr approaches for quantitative measurement of micrornas

이 정확하고 재현성있는 분석을 제공 가장 민감한 검출 방법 중 하나이기 때문에 프로브 계 정량적 PCR (qPCR에)는, 전 사체 존재비를 측정하는 선호 방법이다. 프로브 기반 화학 다른 (염료 기반) 화학에 비해 최소한의 배경 형광을 제공합니다. 현재, 성적 증명서 풍부을 정량하는 그 사용 프로브 기반 화학 사용할 수있는 여러 가지 플랫폼이 있습니다. 96 웰 플레이트 (96) 그러나 qPCR에 샘플 또는 miRNA에 단지 최대 하나의 실행이 시험 될 수있는 가장 통상적으로 사용되는 방법이다. 샘플들의 다수 / miRNA가 분석되어야한다면 이는 시간 소모적이고 지루한 작업이다. 이러한 미세 유체 (예를 들면의 TaqMan 어레이 카드) 및 nanofluidics 배열 (예 : OpenArray) 제공 용이성 높은 처리량 프로브 기반 플랫폼은 재현하고 효율적으로 짧은 시간에 많은 수의 샘플에서 여러 마이크로 RNA의 풍요 로움을 감지한다. 여기서 우리는 실험 설정을 보여차 처리량의 증가 수준을 제공하는 프로브 기반 화학, 세 가지 서로 다른 플랫폼 (96 웰 플레이트, 미세 유체 및 nanofluidics 배열)를 사용하여 혈청 또는 혈장-EDTA 샘플에서 miRNA의 정량을위한 프로토콜입니다.

miRNA의 프로브 기반 분석 qPCR의 반응에 권장되는 볼륨은 20 μL이다. 참고 : 5 μL의 반응 부피가 20 μL 부피 4,7,30을 사용하여 달성 된 것과 유사한 결과를 얻을 수 있다는 것을 확인했다. 5 μL로 반응 부피를 낮추면 감도의 상당한 손실없이 시약 비용의 75 % 감소를 허용한다. 그림 2에 제시된 바와 같이, 반응 20 μL의 볼륨과 5 μL 최대 (0.92 R 2, P = 0.0002)와 39 회까지 강력한 협력 관계를 보여줍니다. 마이크로 유체 어레이는 통상적 인 96 개의 웰 플레이트 PCR들에 비해 다수의 샘플을 분석하는 더 효율적인 방법이다 (카드, 카드 B의 경우) 약 5 시간에 시료에서 발현 754 miRNA에 대한 데이터를 획득하기위한 수단을 제공한다. &lt;B는 개성 - 알트 플롯을 (표시 - 우리는 같은 샘플에 대한 miRNA의 마이크로 유체 배열 카드 비교 (샘플 및 반복 샘플)도 3a를.강한&gt; 3A) 및 이들 샘플 테스트를 모든 754의 miRNA에 대한 상관 관계 플롯 (3B). 카드 (카드 A와 B) 여러 위치에서 모두 랜덤하게 배치 된 3 가지 제어 miRNA가 (U6, RNU44 및 RNU48)이 있습니다. U6주기 임계 값 (CT) 값이 2 실행 사이에 비교하면, 우리는 값 (표 4) 사이에 유의 한 차이가 관찰되지 않았다. 그것은 U6는 평가 샘플에서 더 풍부 (낮은 코네티컷 값)에서 표현되는 점에 유의하는 것이 중요하다. 우리는 전체 공동 효율 98 %의 결정 (그림 3C-D)와 miRNA가 유사한 표현했다 런 (N = 150) 모두에서 0-19.99 사이 코네티컷 값이 모두의 miRNA를 비교했다. betwee 상당한 차이가있는 miRNA의 수입니다. - 모두 실행 20과 29.99 사이에 코네티컷 값이있는 모든 277의 miRNAs 중 16 미르는 원래 반복 실행 (F 그림 3E) 사이에 크게 차이코네티컷 값이 모두 실행 (- H 그림 3G)에 대해 30 ~ 40 사이에서 선택했을 때 N 실행은 (327의 89) 증가했다. nanofluidics 어레이 플랫폼은도 4a에 나타낸 바와 같이 테스트 각 혈청 / 혈장 샘플로부터 754 miRNA에 대한 데이터를 제공하며 이러한 증폭 곡선을 검토하는 것이 중요 -. 그것은 모든 qPCR에와 같이 - 결과가 참 증폭 나타내는되도록. (48) 서브 어레이의 각 (그림 1) 또한 세 가지 가장 인기있는 &quot;가사&quot;ncRNAs에 대한 분석이 포함되어 있습니다. U6는 RNU44 및 RNU48도 4b는 U6의 전형적인 클러스터링이 하나의 샘플에서 복제 보여줍니다. 이러한 복제물 낮은 표준 편차 (SD &lt;0.5) 표시 등 안정성의 지표입니다. 대안 적으로,도 4C는 제 2 샘플에서 U6의 복제물 (SD&gt; 0.5)의 변동성이 증가 보여준다. 이 유효성 O를 부정하지 않습니다나머지 분석 f를, 비록 그것은보다 철저한 비판을 필요로한다. U6는 생체 액에서 가장 &quot;가사&quot;의 miRNAs와 같은 변수 표현을 할 수 있습니다. 이것은도 4c에 설명 된 샘플 중 하나는도 4b에 제시된 것 이상 U6 콘텐츠를 4 배 표시 주목해야한다. 도 4c에 제시된 샘플 U6의 레벨이 하나의 패널 (b)에 제시된보다 처음부터 75 % 이하이기 때문에, 큰 기술적 변동은 작은 반응 부피 (17)에 의해 악화된다 사체의 푸 아송 분포로 인해 예상된다. 실행이 완료되면 또 다른 유용한 도구는 수출에 사용할 수있는 품질 관리 (QC) 이미지입니다. 이들의 선택은 각각의 관통 구멍이 올바르게 (도 5)로드되었는지 확인 ROX, qPCR에 시약 믹스 검색된 패시브 염료의 형광을 사용한다. EN 관통 구멍, 또는 실제로<html> 타이어 부분 배열이 불충분 샘플 볼륨, 증발, 384 웰 샘플 플레이트, 완전히 Accufill 시스템 또는 끝에서 샘플 플레이트 씰, 또는 결함을 제거하기 위해 실패의 우물에 존재하는 거품 인해로드되지 않을 수 있습니다. 구멍을 통해 현실의 분석이로드되지 않을 때, &quot;탐지&quot;로 라벨의 miRNA를 방지하기 위해 확인해야하는 모든 언로드. 이런 문제가 발생하면, 샘플 / mastermix의 적어도 5 μL를 384- 웰 샘플 플레이트의 각 웰에로드되었는지 확인, 샘플 플레이트가 적절히 로딩 전에 원심 분리하여, 호일 시일을 완전히 제거하고,로드 OpenArray 슬라이드 밀​​봉 및 모든 연속적인 실행을 위해 할당 된 시간 내에서 실행됩니다. 로딩 문제가 여전히 지속되면, 이러한 가능성이 특정 배치 또는 배열의 많은 또는 관련 소모품 및 추가 지원에 관한 될 수있다 제조 업체를 찾아야한다. &quot;SRC =&quot;/ 파일 / ftp_upload / 52586 / 52586fig1.jpg &quot;/&gt; 그림 1 : Nanofluidics 배열 워크 플로우 샘플의 레이아웃 : (A) 각 384 웰 샘플 플레이트는 최대 8 nanofluidics 배열에 대한 샘플을 보유 할 수 있습니다. (B) 희석은 사전 증폭 된 cDNA를 인접한 8 웰 그룹에 수영장과 풀 B로, 8 우물 (4 행으로 2 열)에 배치됩니다. 각 원은 잘 하나를 나타냅니다. (C) 샘플 플레이트의 각 웰은 nanofluidics 어레이의 하나의 부분 배열에로드한다. 각각의 작은 사각형은 하나의 부분 배열을 나타냅니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/52586/52586fig2.jpg" /> 그림 2 : 기존의 96 웰 PCR 플랫폼을위한 협력 관계 분석 : 20 μL와 CT 값 (39주기)의 표준 96 웰 플레이트 플랫폼을 사용의 TaqMan 실시간 qPCR에 5 μL 반응 볼륨 사이의 협력 관계. 우리는 4 개의 마이크로 RNA를 비교 (은 miR-375, 4 다른 인간의 혈청 및 혈장 샘플은 miR-30C 미르-30D 미르-7). 다른 사람들이 발견 할 때부터 만 11 데이터 포인트는 플롯됩니다. R 2 = 0.92, P = 0.0002. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/52586/52586fig3.jpg" /> . 그림 3 : (- B) 마이크로 유체 배열 카드를 사용하여 miRNA의 프로파일 링을 순환 2 미세 유체 카드 (카드 및 카드-B)를 사용하여, 754의 miRNA의 프로파일이 생성됩니다. 여기에 도시 된 바와 같이, 우리는 2 미세 유체 배열에 대해 동일한 샘플을 사용은 마이크로 유체 카드 결과의 재현성을 확인하기 위해 실행됩니다. 우리는 0-19.99 사이 코네티컷 값으로, 전체의 miRNAs의 유사한 표현을 관찰 (C - D). 반복 실행 사이의 20-29.99과 유의 한 차이 (- F E) 사이의 코네티컷 값을 몇 가지의 miRNA (277의 16)이있다. (327)의 여든 아홉높은 코네티컷 값이 마이크로 RNA (30 ~ 40)은 모두 실행 (- H G) 사이에 유의 한 차이를 나타냈다. &#160; 데이터가 짝 T 테스트를 사용하여 분석 하였다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52586/52586fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52586/52586fig4.jpg" /> 그림 4 : PCR 제품 증폭 곡선의 대표 프로필 : 인간 혈장 샘플에 대한 모든 miRNA의 대상의 결합 (A) 증폭 곡선의 대표적인 그림입니다. U6에 대한 분석 (공통 제어 ncRNA)는 모든 부분 배열에 배치됩니다. (B)의 샘플은 &lt;(0.5 (C)가 높은 표준 편차 SD)를 보여줍니다 동안 (0.5 낮은 변동성 SD)&gt;을 U6는 복제 내을 보여줍니다. 두 샘플자는 tota 있습니다인간 혈장에서 분리 리터의 RNA. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52586/52586fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/52586/52586fig5.jpg" /> 그림 5 : Nanofluidics 배열의 QC 분석 : 올바르게로드 nanofluidics 배열 (왼쪽)와 잘못 넣었 nanofluidics 배열 (오른쪽)의 품질 관리 (QC) 이미지. (qPCR에 시약 믹스에 존재) 수동 염료, ROX는 올바르게로드 관통 구멍을 나타 내기 위해 형광. 오른쪽에 배열 통공 qPCR의 시약 믹스로드되지 이들은 위음성 PCR 반응으로 식별되어야 몇몇 하위 어레이 / 갖는다. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td> 5 μL 반응 당 볼륨 (μL) </td></TR&gt; <tr><td> RT 완충액 (10 배) </td><td> 0.5 </td></tr><tr><td> 의 dNTPs (100 mM의) </td><td> 0.05 </td></tr><tr><td> 의 RNase 억제제 </td><td> 0.6 </td></tr><tr><td> 뉴 클레아없는 물 </td><td> 1.39 </td></tr><tr><td> 역전사 효소 </td><td> 0.33 </td></tr><tr><td> 총 볼륨 </td><td> 2.33 </td></tr></tbody></table> 표 A : 표준 96 웰 플레이트 플랫폼을 사용의 TaqMan 실시간 qPCR에 대한 5 μL RT 반응 준비 RT 시약 믹스 구성 요소. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td> 5 μL 반응 당 볼륨 (μL) </td><td> 20 μL 반응 당 볼륨 (μL) </td></tr><tr><td> 고속 PCR의 mastermix (2 배) </td><td> 2.5 </td><td> (10) </td></tr><tr><td> 의 TaqMan qPCR의 분석 (20 배) * </td><td> 0.25 </td><td> (1) </td></tr><tr><td> 뉴 클레아 무료물 </td><td> 1.45 </td><td> 5.8 </td></tr><tr><td> 총 양 : </td><td> 4.2 </td><td> 16.8 </td></tr></tbody></table> * 테스트 선택한 miRNA를 기반​​으로 분석 구성 요소입니다. 표 1B : 표준 96 웰 플레이트 플랫폼을 사용의 TaqMan 실시간 qPCR에 대한 5 또는 20 μL qPCR의 반응 준비 qPCR에 시약 믹스 구성 요소. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td> 반응 당 볼륨 (μL) </td></tr><tr><td> Megaplex의 RT 프라이머 (10 배) </td><td> 0.8 </td></tr><tr><td> dTTp (100 mM의)과의 dNTPs </td><td> 0.2 </td></tr><tr><td> Multiscribe 역전사 효소 (50 U / μL) </td><td> 1.5 </td></tr><tr><td> 10 배 RT 버퍼 </td><td> 0.8 </td></tr><tr><td> 의 MgCl 2 (25 mM의) </td><td> 0.9 </td></tr><tr><td> 의 RNase 억제제 &amp; #<html> (160); (20 U / μL) </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> 클레아없는 물 </td><td> 0.2 </td></tr><tr><td> 합계 </td><td> 4.5 </td></tr></tbody></table> 표 2A : TLDA miRNA의 패널 5 μL RT 반응 준비 RT 시약 믹스 구성 요소. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td> 반응 당 볼륨 (μL) </td></tr><tr><td> 의 TaqMan 프리 앰프 Mastermix (2 배) </td><td> 12.5 </td></tr><tr><td> Megaplex의 프리 앰프 프라이머 (10 배) </td><td> 2.5 </td></tr><tr><td> 뉴 클레아없는 물 </td><td> 7.5 </td></tr><tr><td> 합계 </td><td> 22.5 </td></tr></tbody></table> 표 2B : TLDA miRNA의 패널 용 25 μL 사전 amplication 반응 준비 프리 앰프 시약 믹스의 구성 요소. &quot;cellspacing =&quot;0 &quot;&gt; <tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td> 반응 당 볼륨 (μL) </td></tr><tr><td> Megaplex의 RT 프라이머 (10 배) </td><td> 0.75 </td></tr><tr><td> dTTp (100 mM의)과의 dNTPs </td><td> 0.15 </td></tr><tr><td> Multiscribe 역전사 효소 (50 U / μL) </td><td> 1.5 </td></tr><tr><td> 10 배 RT 버퍼 </td><td> 0.75 </td></tr><tr><td> 의 MgCl 2 (25 mM의) </td><td> 0.9 </td></tr><tr><td> 의 RNase 억제제 (20 U / μL) </td><td> 0.09 </td></tr><tr><td> 클레아없는 물 </td><td> 0.35 </td></tr><tr><td> 합계 </td><td> 4.5 </td></tr></tbody></table> 표 3A : 프로브 기반 nanofluidics의 miRNA의 패널 5 μL RT 반응 준비 RT 시약 믹스의 구성 요소. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소에스 </td><td> 반응 당 볼륨 (μL) </td></tr><tr><td> 의 TaqMan 프리 앰프 Mastermix (2 배) </td><td> 12.5 </td></tr><tr><td> Megaplex의 프리 앰프 프라이머 (10 배) </td><td> 2.5 </td></tr><tr><td> 뉴 클레아없는 물 </td><td> 7.5 </td></tr><tr><td> 합계 </td><td> 22.5 </td></tr></tbody></table> 표 3B :. 프로브 기반 nanofluidics의 miRNA의 패널 25 μL 예비 amplication 반응 제제의 프리 앰프 시약 믹스 성분 NOTE : 쌍방향 보충은, 세 가지 플랫폼이 제공 스프레드 시트 엑셀 이미 에러 피펫 팅을 보상하기 위해 5 %의 첨가를 차지한다. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 샘플 </td><td> 반복 샘플 </td></tr><tr><td> 15.535 </td><td> 16.156 </td></tr><tr><td> 15.471 </td><td> 15.652 </td></tr><tr><td> 15.(623) </td><td> 16.063 </td></tr><tr><td> 15.963 </td><td> 15.889 </td></tr><tr><td> 14.006 </td><td> 13.993 </td></tr><tr><td> 14.502 </td><td> 14.623 </td></tr><tr><td> 14.907 </td><td> 14.384 </td></tr><tr><td> 13.732 </td><td> 14.946 </td></tr></tbody></table> 표 4 : 마이크로 유체 배열 카드를 사용의 miRNA U6 프로파일 링을 순환. 두 개의 마이크로 유체 어레이 카드 (A 및 B)를 사용. 샘플로부터 U6 제어의 miRNA의 CT-값 (총 = 8). 실행 사이에 관찰 일관된 U6 제어 miRNA의 풍부.

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Probe-based Real-time PCR Approaches for Quantitative Measurement of microRNAs

순환 마이크로 RNA는 최근 각종 암 및 기타 질환에 대한 유망한 새로운 바이오 마커로 등장했다. 이 문서의 목적은 세 가지 다른 프로브 기반의 실시간 PCR 플랫폼 및 정량화 및 마이크로 RNA 순환의 풍요 로움을 결정하는 데 사용할 수있는 방법을 논의하는 것입니다.

프로브 기반의 실시간 PCR은 마이크로 RNA의 정량 측정을위한 접근 방법

Probe-based quantitative PCR (qPCR) is a favoured method for measuring transcript abundance, since it is one of the most sensitive detection methods that ...

probe-based-real-time-pcr-approaches-for-quantitative-measurement

Research

JoVE Journal

Biology

33.0K 조회수.  The University of Sydney.  순환 마이크로 RNA는 최근 각종 암 및 기타 질환에 대한 유망한 새로운 바이오 마커로 등장했다. 이 문서의 목적은 세 가지 다른 프로브 기반의 실시간 PCR 플랫폼 및 정량화 및 마이크로 RNA 순환의 풍요 로움을 결정하는 데 사용할 수있는 방법을 논의하는 것입니다. 

비디오: Probe-based Real-time PCR Approaches for Quantitative Measurement of microRNAs

Experimental Approaches to Tissue Engineering

조직 공학 실험 접근법

연구

생물학

Quantitative Real-Time PCR using the Thermo Scientific Solaris qPCR Assay

The Solaris qPCR Gene Expression Assay is a novel type of primer/probe set, designed to simplify the qPCR process while maintaining the sensitivity and accuracy of the assay. These primer/probe sets are pre-designed to &gt;98% of the human and mouse genomes and feature significant improvements from previously available technologies. These improvements were made possible by virtue of a novel design algorithm, developed by Thermo Scientific bioinformatics experts.
Several convenient features have been incorporated into the Solaris qPCR Assay to streamline the process of performing quantitative real-time PCR. First, the protocol is similar to commonly employed alternatives, so the methods used during qPCR are likely to be familiar. Second, the master mix is blue, which makes setting the qPCR reactions easier to track. Third, the thermal cycling conditions are the same for all assays (genes), making it possible to run many samples at a time and reducing the potential for error. Finally, the probe and primer sequence information are provided, simplifying the publication process.
Here, we demonstrate how to obtain the appropriate Solaris reagents using the GENEius product search feature found on the ordering web site (www.thermo.com/solaris) and how to use the Solaris reagents for performing qPCR using the standard curve method.

The Solaris qPCR Gene Expression Assays are novel pre-designed qPCR primer/probe combinations designed to simplify the qPCR process without sacrificing the specificity and robustness of the assay.

써모 과학 솔라리스 qPCR 어세를 사용하여 정량 실시간 PCR

The Solaris qPCR Gene Expression Assay is a novel type of primer/probe set, designed to simplify the qPCR process while maintaining the sensitivity and ...

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer (Agrilus planipennis) Using Quantitative Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB continues to spread rapidly and attacks ash trees of different ages, from saplings to mature trees. However, to date very little or no molecular knowledge exists for EAB. We are interested in deciphering the molecular-based physiological processes at the tissue level that aid EAB in successful colonization of ash trees. In this report we show the effective use of quantitative real-time PCR (qRT-PCR) to ascertain mRNA levels in different larval tissues (including midgut, fat bodies and cuticle) and different developmental stages (including 1st-, 2nd-, 3rd-, 4th-instars, prepupae and adults) of EAB. As an example, a peritrophin gene (herein named, AP-PERI1) is exemplified as the gene of interest and a ribosomal protein (AP-RP1) as the internal control. Peritrophins are important components of the peritrophic membrane/matrix (PM), which is the lining of the insect gut. The PM has diverse functions including digestion and mechanical protection to the midgut epithelium.

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer Agrilus planipennis Using Quantitative Real Time-PCR

Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) is an effective tool to diagnose mRNA levels in different insect tissues and developmental stages. In this report we show the use of qRT-PCR to ascertain mRNA levels in different larval tissues and developmental stages of the invasive insect species, emerald ash borer.

에메랄드 애쉬 보러에서 유전자 발현 분석 ( Agrilus planipennis)를 사용하여 정량 리얼 타임 PCR

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Profiling of Pre-micro RNAs and microRNAs using Quantitative Real-time PCR (qPCR) Arrays

Quantitative real-time PCR (QPCR) has emerged as an accurate and valuable tool in profiling gene expression levels.  One of its many advantages is a lower detection limit compared to other methods of gene expression profiling while using smaller amounts of input for each assay.  Automated qPCR setup has improved this field by allowing for greater reproducibility.  Its convenient and rapid setup allows for high-throughput experiments, enabling the profiling of many different genes simultaneously in each experiment.  This method along with internal plate controls also reduces experimental variables common to other techniques.  
We recently developed a qPCR assay for profiling of pre-microRNAs  (pre-miRNAs) using a set of 186 primer pairs.  MicroRNAs have emerged as a novel class of small, non-coding RNAs with the ability to regulate many mRNA targets at the post-transcriptional level.  These small RNAs are first transcribed by RNA polymerase II as a primary miRNA (pri-miRNA) transcript, which is then cleaved into the precursor miRNA (pre-miRNA).  Pre-miRNAs are exported to the cytoplasm where Dicer cleaves the hairpin loop to yield mature miRNAs.  Increases in miRNA levels can be observed at both the precursor and mature miRNA levels and profiling of both of these forms can be useful.  There are several commercially available assays for mature miRNAs; however, their high cost may deter researchers from this profiling technique.  Here, we discuss a cost-effective, reliable, SYBR-based qPCR method of profiling pre-miRNAs.  Changes in pre-miRNA levels often reflect mature miRNA changes and can be a useful indicator of mature miRNA expression.  However, simultaneous profiling of both pre-miRNAs and mature miRNAs may be optimal as they can contribute nonredundant information and provide insight into microRNA processing.  Furthermore, the technique described here can be expanded to encompass the profiling of other library sets for specific pathways or pathogens.

Profiling of Pre-micro RNAs and microRNAs using Quantitative Real-time PCR qPCR Arrays

We will demonstrate the setup and analysis of pre-microRNA 96-well arrays for QPCR using a robot as well as by hand with a Thermo Scientific Matrix multichannel pipette.

정량 실시간 PCR (qPCR) 배열을 사용하여 사전 마이크로 RNAS과 microRNAs의 프로 파일링

Quantitative real-time PCR (QPCR) has emerged as an accurate and valuable tool in profiling gene expression levels.  One of its many advantages is a lower ...

Determining Genetic Expression Profiles in C. elegans Using Microarray and Real-time PCR

Synapses are composed of a presynaptic active zone in the signaling cell and a postsynaptic terminal in the target cell. In the case of chemical synapses, messages are carried by neurotransmitters released from presynaptic terminals and received by receptors on postsynaptic cells. Our previous research in Caenorhabditis elegans has shown that VSM-1 negatively regulates exocytosis. Additionally, analysis of synapses in vsm-1 mutants showed that animals lacking a fully functional VSM-1 have increased synaptic connectivity. Based on these preliminary findings, we hypothesized that C. elegans VSM-1 may play a crucial role in synaptogenesis. To test this hypothesis, double-labeled microarray analysis was performed, and gene expression profiles were determined. First, total RNA was isolated, reversely transcribed to cDNA, and hybridized to the DNA microarrays. Then, in-silico analysis of fluorescent probe hybridization revealed significant induction of many genes coding for members of the major sperm protein family (MSP) in mutants with enhanced synaptogenesis. MSPs are the major component of sperm in C. elegans and appear to signal nematode oocyte maturation and ovulation . In fruit flies, Chai and colleagues 1 demonstrated that MSP-like molecules regulate presynaptic bouton number and size at the neuromuscular junction. Moreover, analysis performed by Tsuda and coworkers 2 suggested that MSPs may act as ligands for Eph receptors and trigger receptor tyrosine kinase signaling cascades. Lastly, real time PCR analysis corroborated that the gene coding for MSP-32 is induced in vsm-1(ok1468) mutants. Taken together, research performed by our laboratory has shown that vsm-1 mutants have a significant increase in synaptic density, which could be mediated by MSP-32 signaling.

Determining Genetic Expression Profiles in C. elegans Using Microarray and Real-time PCR

Microarray analysis was conducted to determine genetic expression profiles in C. elegans, and real-time PCR was used to validate and quantify microarray data.

의 유전자 표현 프로필 결정 C. 엘레간스 Microarray 및 실시간 PCR을 사용하여

Synapses are composed of a presynaptic active zone in the signaling cell and a postsynaptic terminal in the target cell. In the case of chemical synapses, ...

FRET Microscopy for Real-time Monitoring of Signaling Events in Live Cells Using Unimolecular Biosensors

F&ouml;rster resonance energy transfer (FRET) microscopy continues to gain increasing interest as a technique for real-time monitoring of biochemical and signaling events in live cells and tissues. Compared to classical biochemical methods, this novel technology is characterized by high temporal and spatial resolution. FRET experiments use various genetically-encoded biosensors which can be expressed and imaged over time in situ or in vivo1-2. Typical biosensors can either report protein-protein interactions by measuring FRET between a fluorophore-tagged pair of proteins or conformational changes in a single protein which harbors donor and acceptor fluorophores interconnected with a binding moiety for a molecule of interest3-4. Bimolecular biosensors for protein-protein interactions include, for example, constructs designed to monitor G-protein activation in cells5, while the unimolecular sensors measuring conformational changes are widely used to image second messengers such as calcium6, cAMP7-8, inositol phosphates9 and cGMP10-11. Here we describe how to build a customized epifluorescence FRET imaging system from single commercially available components and how to control the whole setup using the Micro-Manager freeware. This simple but powerful instrument is designed for routine or more sophisticated FRET measurements in live cells. Acquired images are processed using self-written plug-ins to visualize changes in FRET ratio in real-time during any experiments before being stored in a graphics format compatible with the build-in ImageJ freeware used for subsequent data analysis. This low-cost system is characterized by high flexibility and can be successfully used to monitor various biochemical events and signaling molecules by a plethora of available FRET biosensors in live cells and tissues. As an example, we demonstrate how to use this imaging system to perform real-time monitoring of cAMP in live 293A cells upon stimulation with a &beta;-adrenergic receptor agonist and blocker.

F&#246;rster resonance energy transfer (FRET) microscopy is a powerful technique for real-time monitoring of signaling events in live cells using various biosensors as reporters. Here we describe how to build a customized epifluorescence FRET imaging system from commercially available components and how to use it for FRET experiments.

Unimolecular 바이오 센서를 사용하여 라이브 세포에서 이벤트를 신호의 실시간 모니터링을위한 현미경을 안달

F&ouml;rster resonance energy transfer (FRET) microscopy  continues to gain increasing interest as a technique for real-time monitoring  of biochemical ...

Quantitative, Real-time Analysis of Base Excision Repair Activity in Cell Lysates Utilizing Lesion-specific Molecular Beacons

We describe a method for the quantitative, real-time measurement of DNA glycosylase and AP endonuclease activities in cell nuclear lysates using base excision repair (BER) molecular beacons. The substrate (beacon) is comprised of a deoxyoligonucleotide containing a single base lesion with a 6-Carboxyfluorescein (6-FAM) moiety conjugated to the 5'end and a Dabcyl moiety conjugated to the 3' end of the oligonucleotide. The BER molecular beacon is 43 bases in length and the sequence is designed to promote the formation of a stem-loop structure with 13 nucleotides in the loop and 15 base pairs in the stem1,2. When folded in this configuration the 6-FAM moiety is quenched by Dabcyl in a non-fluorescent manner via F&ouml;rster Resonance Energy Transfer (FRET)3,4. The lesion is positioned such that following base lesion removal and strand scission the remaining 5 base oligonucleotide containing the 6-FAM moiety is released from the stem. Release and detachment from the quencher (Dabcyl) results in an increase of fluorescence that is proportionate to the level of DNA repair. By collecting multiple reads of the fluorescence values, real-time assessment of BER activity is possible. The use of standard quantitative real-time PCR instruments allows the simultaneous analysis of numerous samples. The design of these BER molecular beacons, with a single base lesion, is amenable to kinetic analyses, BER quantification and inhibitor validation and is adaptable for quantification of DNA Repair activity in tissue and tumor cell lysates or with purified proteins. The analysis of BER activity in tumor lysates or tissue aspirates using these molecular beacons may be applicable to functional biomarker measurements. Further, the analysis of BER activity with purified proteins using this quantitative assay provides a rapid, high-throughput method for the discovery and validation of BER inhibitors.

We describe a method for the quantitative, real-time measurement of DNA glycosylase and AP endonuclease activities in cell nuclear lysates. The assay yields rates of DNA Repair activity amenable to kinetic analysis and is adaptable for quantification of DNA Repair activity in tissue and tumor lysates or with purified proteins.

병변 특정 분자 비콘을 활용 세포 Lysates의 기본 절단 복구 활동의 양적, 실시간 분석

We describe a method for the quantitative, real-time measurement of DNA glycosylase and AP endonuclease activities in cell nuclear lysates using base ...

Autonomously Bioluminescent Mammalian Cells for Continuous and Real-time Monitoring of Cytotoxicity

Mammalian cell-based in vitro assays have been widely employed as alternatives to animal testing for toxicological studies but have been limited due to the high monetary and time costs of parallel sample preparation that are necessitated due to the destructive nature of firefly luciferase-based screening methods. This video describes the utilization of autonomously bioluminescent mammalian cells, which do not require the destructive addition of a luciferin substrate, as an inexpensive and facile method for monitoring the cytotoxic effects of a compound of interest. Mammalian cells stably expressing the full bacterial bioluminescence (luxCDABEfrp) gene cassette autonomously produce an optical signal that peaks at 490 nm without the addition of an expensive and possibly interfering luciferin substrate, excitation by an external energy source, or destruction of the sample that is traditionally performed during optical imaging procedures. This independence from external stimulation places the burden for maintaining the bioluminescent reaction solely on the cell, meaning that the resultant signal is only detected during active metabolism. This characteristic makes the lux-expressing cell line an excellent candidate for use as a biosentinel against cytotoxic effects because changes in bioluminescent production are indicative of adverse effects on cellular growth and metabolism. Similarly, the autonomous nature and lack of required sample destruction permits repeated imaging of the same sample in real-time throughout the period of toxicant exposure and can be performed across multiple samples using existing imaging equipment in an automated fashion.

Mammalian cells expressing the bacterial bioluminescence gene cassette (lux) produce light autonomously. The resulting bioluminescent dynamics upon chemical exposure have been demonstrated to reflect the treatment effects on cellular growth and metabolism, making these cells an inexpensive, continuous, real-time toxicity screening tool that can easily be adapted for high-throughput automation.

세포 독성의 지속적인 실시간 모니터링을위한 자율적으로 바이오 루미 네 센트 포유 동물 세포

Mammalian  cell-based in vitro assays have been  widely employed as alternatives to animal testing for toxicological studies but  have been limited due to ...

Profiling Individual Human Embryonic Stem Cells by Quantitative RT-PCR

Heterogeneity of stem cell population hampers detailed understanding of stem cell biology, such as their differentiation propensity toward different lineages. A single cell transcriptome assay can be a new approach for dissecting individual variation. We have developed the single cell qRT-PCR method, and confirmed that this method works well in several gene expression profiles. In single cell level, each human embryonic stem cell, sorted by OCT4::EGFP positive cells, has high expression in OCT4, but a different level of NANOG expression. Our single cell gene expression assay should be useful to interrogate population heterogeneities.

Single cell gene expression assay is needed for understanding stem cell heterogeneities.

정량적 RT-PCR에 의해 개별 인간 배아 줄기 세포를 프로파일 링

Heterogeneity of stem cell population hampers detailed understanding of stem cell biology, such as their differentiation propensity toward different ...

qPCRTag Analysis - A High Throughput, Real Time PCR Assay for Sc2.0 Genotyping

The Synthetic Yeast Genome Project (Sc2.0) aims to build 16 designer yeast chromosomes and combine them into a single yeast cell. To date one synthetic chromosome, synIII1, and one synthetic chromosome arm, synIXR2, have been constructed and their in vivo function validated in the absence of the corresponding wild type chromosomes. An important design feature of Sc2.0 chromosomes is the introduction of PCRTags, which are short, re-coded sequences within open reading frames (ORFs) that enable differentiation of synthetic chromosomes from their wild type counterparts. PCRTag primers anneal selectively to either synthetic or wild type chromosomes and the presence/absence of each type of DNA can be tested using a simple PCR assay. The standard readout of the PCRTag assay is to assess presence/absence of amplicons by agarose gel electrophoresis. However, with an average PCRTag amplicon density of one per 1.5 kb and a genome size of ~12 Mb, the completed Sc2.0 genome will encode roughly 8,000 PCRTags. To improve throughput, we have developed a real time PCR-based detection assay for PCRTag genotyping that we call qPCRTag analysis. The workflow specifies 500 nl reactions in a 1,536 multiwell plate, allowing us to test up to 768 PCRTags with both synthetic and wild type primer pairs in a single experiment.

Designer chromosomes of the Synthetic Yeast Genome project, Sc2.0, can be distinguished from their native counterparts using a PCR-based genotyping assay called PCRTagging, which has a presence/absence endpoint. Here we describe a high-throughput real time PCR detection method for PCRTag genotyping.

qPCRTag 분석 - 높은 처리량, Sc2.0 유전형에 대한 실시간 PCR 분석

The Synthetic Yeast Genome Project (Sc2.0) aims to build 16 designer yeast chromosomes and combine them into a single yeast cell. To date one synthetic ...