이 책은 사우스 캐롤라이나 의과 대학에서 학술 집, NIH / NCATS 허가 번호 UL1 TR000062로, 사우스 캐롤라이나 임상 및 중개 연구 (SCTR) 연구소에 의해 지원되었다. 추가 지원은 DRM에 버지니아 우수상 BX002327-01에 의해 제공되었다. DJH는 NIH / NCATS 허가 번호 TL1 TR000061에 의해 NIH 허가 번호 T32 GM008716에 의해 지원되었다. 바다 NIH 허가 번호 T32 HL07260에 의해 지원되었다.

여기에 나열된 모든 절차는 사우스 캐롤라이나 의과 대학에서 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 여기에 설명 된 실험 급성 비 생존 실험이다. 따라서,이 눈 연고의 아무 소용이 없으며 멸균 운영 스위트 룸은 필요하지 않습니다. 안락사는 마음의 수확시 방혈에 의해 달성된다. 1. 실험 준비 <ol><li> 일정한 압력 또는 일정한 흐름을 Langendorff 관류 장치 (4)를 설정합니다. </li><li> 수정 크렙스 Henseleit 버퍼의 4 L 준비 (MM의 : (112)의 NaCl, 5 KCl을, 1.2 황산을 1, K 2 HPO 4, 1.25 염화칼슘 2, 25 NaHCO3를, 11 D- 글루코스, 0.2 옥 탄산, 산도 = 7.4). <ol><li> 10 배 재고 버퍼를 확인합니다. <ol><li> 3 L의 초순수에의 NaCl, KCl을, 황산, 및 K 2 HPO 4를 녹여. </li><li> 500ml의 초순수 위스콘신에 CaCl2를 녹이고1 N 염산 40 mL로 일. </li><li> 천천히 1.2.1.1에서 만든 버퍼에 염화칼슘이 솔루션을 추가 할 수 있습니다. 4 L. 총 충분히 초순수를 추가 0.8 μm의 필터를 통해 여과 전에 1 시간 동안 교반을 허용합니다. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 4 L의 초순수에 NaHCO3를 해산. 0.8 μm의 필터로를 통해 필터링하기 전에 1 시간 동안 교반을 허용합니다. 저장 4 ° C에서 </li></ol></li><li> 400 ml의 10 배 NaHCO3를 버퍼와 400 ml의 10 배 크렙스 Henseleit 버퍼를 결합합니다. 교반하면서 당과 옥 탄산을 녹이고 4 L. 총하기에 충분한 초순수를 추가합니다. 0.8 μm의 필터를 통해 필터링합니다. </li></ol></li><li> 심장을 위해 시스템을 준비합니다. <ol><li> 4 L 병에 필터링 된 버퍼의 2 L을 추가 대동맥 정맥에 붙어있는 꼭지 위의 38을 배치. 이 권장 관류 압 4 중심부에 70 ~ 80 mmHg로의 관류 압력을 제공 할 것입니다. </li><li> 병에 버퍼에 가스 분산 버블을 삽입합니다. </li><li> 튜브 내부에서 모든 거품을 제거해야되고, 시스템을 통해 버퍼를 실행합니다. </li><li> 심장은 시스템 상에 배치 될 전에 가스 (95 %, O2 / 5 % CO 2) 적어도 30 분에 돌려. 산소 포화도를 확인하기 위해 가스 유동 프로브 및 혈액 가스 분석을 사용한다. </li></ol></li><li> 수술 용품 및 풍선을 준비합니다. <ol><li> 마음의 수확, 6.75 일쌍 &quot;수술 가위, 4.5 일쌍&quot;가위, 27 G 바늘, 0 게이지 실크 봉합사의 2 개 (약 15 지혈제 이쌍, caramalt 집게 두 세트, 두 개의 주사기를 준비 길이 cm), 하나 1/16 인치 철 뉼러, 한 기관 캐뉼라. </li><li> 기관 캐뉼라를 조립하려면 Y 커넥터에 1/16 인치 직경의 플라스틱 튜브의 짧은 조각을 접착제. </li><li> 풍선 장치를 조립 : 1/16 인치 튜브의 조각에 위관 바늘을 부착 한 후 압력 변환기의 하우징에 튜브를 연결합니다. 압력 TR의 다른쪽에 부착 된 작은 주사기ansducer 하우징은 풍선의 인플레이션과 디플레이션을 수 있습니다. <ol><li> 중앙에 위관 바늘의 플라스틱 포장과 장소 팁의 사각형을 잘라. 위관 바늘 주위의 플라스틱 포장 랩. </li><li> 식염수로 풍선을 채우고 두 봉합으로 묶을. 누수가 없는지 확인하기 위해 풍선을 팽창. 팽창 된 풍선 내의 식염수의 부피는 약 200 μL해야하지만 쥐의 크기에 따라 달라질 수있다. </li><li> 또한, 플라스틱 랩 대신 라텍스 손가락 침대를 사용합니다. 손가락 침대에서 위관 바늘을 놓고 식염수로 채우고 묶을. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. 수확 심장 <ol><li> decapicone 구속 또는 기타 수동 소자를 이용한 스프 라그 돌리 래트를 제지. 쥐의 무게를. </li><li> 쥐를 마취하는 복강 내 주사를 통해 케타민 / 자일 라진 혼합물 (0.85 ㎎ / ㎏ 케타민 0.15 ㎎ / ㎏ 자일 라진)를 관리합니다. 마취제의 용량은 충분한 마취를 제공 할 것입니다20-40 분하지만 절차는 신속히 마취가 확인 가능한 후에 완료한다. </li><li> 테스트 발가락 핀치 반사에 의한 마취의 적절한 수준을 확인합니다. </li><li> 기관 절개술 <ol><li> 절개를 만들기 위해 펠트와 가위를 상승 지혈제를 사용, 턱의 기본 중순 앞발에서 펠트를 제거합니다. 펠트 따라 절단하고 제거하는 일을 허용, 기본 근육에서 분리하는 상승 펠트를 유지합니다. </li><li> 지혈제를 사용하여, 선의 조직을 들어 올려 선의 조직 근막에 수평 절개 열등합니다. 닉하지 경정맥을 돌보는 오픈 절개를 확산 지혈제를 사용합니다. </li><li> , 지혈제를 사용하여 핀치 근육 기관을 덮는 및 사용 가위는 지혈제의 끝 아​​래 근육에 횡 절개를합니다. 지혈제를 사용하여 기관을 나타 내기 위해 따로 조직을 확산. </li><li> 조심스럽게 부드럽게 전진과 지혈을 후퇴에 의해 진행하면서 근막을 제거, 기관에서 지혈제를 삽입합니다. </li><li>지혈이 성공적으로 기관 뒤에 배치되면, 지혈제와 0-0 실크 봉합사를 꼬집어 가위의 작은 날카로운 쌍의 기관을 hemisect. </li><li> , hemisected 기관으로 기관 캐뉼라를 삽입기도 뒤에 봉합을 당겨와 외과 의사의 매듭 캐 뉼러의 Y 사타구니에 봉합사를 고정, 유관 기관 주위 봉합 넥타이. </li><li> 27 G 바늘을 사용하여 경정맥에 1000 U / kg 헤파린 주입하고 30 초 동안 순환 시키도록 허용한다. </li></ol></li><li> 개흉술 <ol><li> 지혈제로 곤란과 가위로 절단하여 중간 앞발 지역 중순 복부에서 펠트를 제거합니다. </li><li> 바로 다이어프램 아래, 복부 근육의 벽에 ¾ 인치 가로 절개를합니다. </li><li> 흉골을 따라 절단, 복부 벽과 가슴 벽까지 수직 절개를합니다. </li><li> 다시 양자 다이어프램을 절단 한 후 마음이 확산 남아 보장하는 지혈제와 클램프 흉곽을 나타 내기 위해 흉곽을 확산. </li&gt; <li> 지혈제를 사용하여 부드럽게 상행 대동맥을 노출, 흉선을 제거합니다. </li><li> 지혈제의 팁을 통해 수 있도록 끈을 확산 부드럽게 진행하고 지혈을 후퇴하고, 대동맥 루프를 통해 지혈을 애무 해줘. </li><li> , 상행 대동맥 뒤에 0-0 실크 봉합사를 당겨 느슨한 반 사각 매듭으로 봉합을 묶어 지혈을 사용합니다. </li><li> 관류 버퍼, hemisect 대동맥의 흐름을 시작하고 즉시 대동맥 루멘에 캐 뉼러를 삽입 꼭지를 돌립니다. 신속하게 반 사각 매듭을 식은 죽 먹기 철저하게 강화, 매듭을 완료합니다. </li><li> 멀리 큰 혈관에서 심장을 해부 가슴에서 심장을 제거하고 관류 열을 연결하는 가위를 사용합니다. </li><li> 초과 폐 조직을 잘라 내고 마음이 풍선을 삽입하기 전에 약 15 분 동안 열 평형 수 있습니다. 10-20 ml / 분의 중심부를 통해 버퍼의 정상 유량을 사용한다. </li></ol></li></ol> 3. 랑겐 돌프 관류 및 허혈 재관류 손상 <ol><li> LV 사전 배치ssure 풍선 <ol><li> 원뿔 모양으로 압연하는 동안 풍선을 수축 및 풍선이 수축 유지 보장하기 위해 꼭지를 켜십시오. </li><li> 소비세는 승모판 막에 대한 액세스를 노출 가위의 작은 쌍의 중앙 홀을 떠났다. </li><li> 좌심방과 좌심실에 승모판을 통해 풍선을 삽입합니다. </li><li> 압력 모니터링 소프트웨어를 시작합니다 (LabChart 프로). </li><li> 스톱 콕을 열고 부드럽게 micromanometer로부터 판독 확장기 혈압이 제로를 초과 할 때까지 풍선 식염수의 양을 증가시켜 풍선을 팽창. </li><li> 천천히 수축, 길이 긴장 응답을 확인 75 mmHg로의 이완기 압력으로 천천히 풍선을 팽창하기 위해, 한 번 반복합니다. </li><li> 풍선에 식염수의 양을 조절함으로써 10 mmHg로에 이완기 압력을 설정합니다. 인플레이션이 수준에서 풍선을 밀봉 마개를 돌려 LV 풍선과 압력 변환기 사이의 폐쇄 압력 시스템을 유지한다. </li><li> 플라스틱 가열 챔버 커버 챔버로 낮은 마음. </li></ol></li><li> 광고허혈 재관류 손상의 직무 <ol><li> 가열 된 챔버의 바닥을 연결하고 챔버 토로 버퍼에 기입 할 수 있습니다. </li><li> 버퍼가 마음을 침수되면 글로벌 허혈을 유도, 마음에 버퍼의 흐름을 중지 꼭지를 켜십시오. 허혈 시간은 실험의 목적에 따라 달라질 수있다. </li><li> 국소 빈혈의 30 분 후, 재관류를 시작, 마음에 버퍼의 흐름을 복원 꼭지를 켜십시오. </li><li> 실험을 종료하기 전에 1 시간 동안 마음의 재관류를 허용합니다. 실험의 목적에 따라 변수 재관류 시간을 사용합니다. </li></ol></li><li> 실험의 종료 및 조직의 수확 <ol><li> 꼭지의 사이드 포트를 사용하여, 10 ㎖의 속도로 마음에 4 ° C에서 인산염 완충 생리 식염수 10 ml의 관리 / 분의 마음을 체포합니다. </li><li> , 관류 열에서 마음을 제거 심방 조직을 나머지 멀리 트림. </li><li> 아빠 커버, 스테인레스 스틸 조직 슬라이스 행렬에 마음을 놓고8 분, 또는 마음까지 -80 ° C에서 rafilm 및 장소는 마시멜로 같은 일관성을 가지고있다. </li><li> 냉장고에서 블록을 제거하고 2mm의 조각으로 마음을 슬라이스 매트릭스 슬라이스로 면도날을 삽입합니다. 조직 블록은 2mm 이외의 슬라이스 크기로 구입할 수 있습니다. </li><li> 한 번에 조각 하나를 제거하고 생화학 적 연구에 동결 플래시 액체 질소에 놓습니다. 경색 염색의 정점에서 세 번째 심실 슬라이스를 유지. </li><li> 생화학 실험에 사용할 때까지 -80 ° C에서 액체 질소 저장에서 조직을 제거합니다. </li></ol></li><li> 경색 염색 <ol><li> 15 분 동안 37 ℃ / V의 트리 페닐 테트라 졸륨 클로라이드 (TTC) 1 % w 10ml에 제 심실 슬라이스 인큐베이션. 주 : TTC 인큐베이션은 효율성 15에서 변화없이 15 또는 30 분 동안 수행 될 수있다. </li><li> 10 % 포르말린에 TTC로부터 조직 절편을 전송하고, 밤새 실온에서 배양 할 수있다. 최적의 결과를 듣고,TS는 포르말린에서 꺼내어 24 시간 내에 4 군데해야합니다. </li><li> 같은 ImageJ에 같은 사진 스테인드 조각 사용 소프트웨어는 제조 업체의 프로토콜에 따라 경색 크기를 추정한다. 염료가 시간이 지남에 따라 퇴색되므로, 고정 후 가능한 한 빨리 사진을 가져 가라. </li></ol></li></ol>

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</ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

절연 관류 래트 심장 성공적 허혈 재관류 손상 9 심장 전처리에 약리학 적 개입의 효과를 연구하기 위해 사용될 수있다. 그러나, 재현 가능한 결과를 보장하기 위해 표준화되어야 절차와 몇몇 중요한 단계가있다. 시스템 내에서 37.4 ℃의 온도를 유지하는 것은 심지어 가벼운 저체온증과 고열이 심장 컨디셔닝 10, 11의 원인이되므로 중요하다. 케타민에 장기간 노출이 심장 컨디셔닝...

모두 허혈 및 재관류에 심장 응답의 기초가되는 사건의 해명은 대동맥 - 클램핑 (2)를 필요로 심근 경색 (1) 심장 수술의 치료 개선에 필수적이다. 허혈 재관류 손상의 생체 내 모델이 매우 유용 종료점을 분석 할 수 있지만, 그들이 실시간으로 급성 허혈 재관류 손상의 작용 효과를 연구하기위한로서 효과적이지 않다. 생체 허혈 재관류 모델은 일반적으로 재관류시의 경색 크기에서 상당한 변동성 및 심장 약물의 직접 전달을 생산에 또한 도전. 허혈 재관류 손상을 연구 랑겐 돌프 격리하는 마음 시스템의 활용은 약물 치료, 경색 조직의 균일 한 영역, 직접 심근에 약물의 즉각적인 전달의 실시간 기능 평가를 할 수 있습니다. 먼저 B를 설명1895 년 3 Y 오스카 랑겐 돌프는 랑겐 돌프 격리하는 마음은 지난 40 년 4,5에 대한 허혈 재관류 연구에 사용 된, 허혈 재관류 손상 연구를위한 강력한 모델이다. 여기에 일부 수정 기능 분석을 위해 고립 된 마음을 최적화하기 위해 만들어집니다. 대동맥의 현장 삽관에서 심장 박동이 심장 허혈 재관류 시험 (6)의 결과를 바꿀 것 허혈 양상을 경험하지 않는 것을 보장된다. 이를 용이하게하기 위해, 기관 절개 환기 있도록 수술시 쥐의 생리 안정성 확보를 행한다. 심장이어서 크렙스 Henseleit 버퍼 ​​대동맥에 직접 역행 관류 통해 전달되는 유리 물 재킷 나선형 기둥에 부착된다. 염수로 채워진 풍선 좌심실에 삽입 및 심실 내에서 압력을 실시간으로 측정 할 수있는 압력 변환기에 부착되고여러 기능 매개 변수의 D 계산. 실험이 끝날 때, 심장 수축과 DNA, RNA 및 단백질 수준의 하류 분석을 가능하게 액체 질소에 냉동 플래시 체포 냉 식염수로 불어 낸다. 따라서 수정을 Langendorff 관류 심장 허혈 재관류 손상시 급성 언제든지 약리학 적 개입의 생리적 효과를 직접 모니터링을위한 효과적인 시스템 역할을한다.

<table><tbody><tr><td>Sodium Chloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>Potassium Chloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium Sulfate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>203726</td><td></td></tr><tr><td>Potassium Phosphate Dibasic</td><td>Sigma Aldrich</td><td>RES20765-A7</td><td></td></tr><tr><td>Calcium Chloride Dihydrate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C8106</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Bicarbonate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Octanoic Acid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C2875</td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-triphenyltetrazolium chloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T8877</td><td></td></tr><tr><td>Medical Pressure Transducer</td><td>MEMSCAP</td><td>SP844</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex Peristaltic Pump</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-07521-40</td><td></td></tr><tr><td>Masterflex Easy Load Pump Head</td><td>Cole Parmer</td><td>EW-07518-10</td><td></td></tr><tr><td>Heated circulating water bath</td><td>Lauda</td><td>M3</td><td></td></tr><tr><td>Tubing Flow Module</td><td>Transonic</td><td>TS410</td><td></td></tr><tr><td>Modular Research Console</td><td>Transonic</td><td>T402</td><td></td></tr><tr><td>Inline flow sensor</td><td>Transonic</td><td>ME2PXN</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab Data Acquisition Device</td><td>AD Instruments</td><td>PL3508</td><td></td></tr><tr><td>LabChart data acquisition software</td><td>AD Instruments</td><td>MLU60/8</td><td></td></tr></tbody></table>

induction and assessment of ischemia-reperfusion injury in langendorff-perfused rat hearts

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for myocardial infarction and cardiac complications of thoracic surgery. The ability of certain drugs to precondition the myocardium against ischemia reperfusion injury has led to multiple clinical trials, with little success. The isolated heart model allows acute observation of the functional effects of ischemia reperfusion injury in real time, including the effects of various pharmacological interventions administered at any time-point before or within the ischemia-reperfusion injury window. Since brief periods of ischemia can precondition the heart against ischemic injury, in situ aortic cannulation is performed to allow for functional assessment of non-preconditioned myocardium. A saline filled balloon is placed into the left ventricle to allow for real-time measurement of pressure generation. Ischemic injury is simulated by the cessation of perfusion buffer flow, followed by reperfusion. The duration of both ischemia and reperfusion can be modulated to examine biochemical events at any given time-point. Although the Langendorff isolated heart model does not allow for the consideration of systemic events affecting ischemia and reperfusion, it is an excellent model for the examination of acute functional and biochemical events within the window of ischemia reperfusion injury as well as the effect of pharmacological intervention on cardiac pre- and postconditioning. The goal of this protocol is to demonstrate how to perform in situ aortic cannulation and heart excision followed by ischemia/reperfusion injury in the Langendorff model.

좌심실 풍선 장치는 좌심실 수축 (도 1)에 의해 개발 된 압력의 실시간 모니터링을 허용한다. 앞서도 7과 같이,이 압접 흔적은 심실 기능 많은 매개 변수를 계산하는데 사용될 수있다. 이러한 계산은, 기준 위상뿐만 아니라 재관류 위상 이루어진 각 그룹 내에서 여러 트레이스 대하여 평균, 우리는 이전에 9했던 것처럼 약리학 적 개입, 심장 전처리에 기인 한 것인지를 ?...

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Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

랑겐 돌프 - 관류 쥐 마음에 유도 및 허혈 - 재관류 손상의 평가

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

22.9K 조회수.  Medical University of South Carolina. The isolated rat heart is an enduring model for ischemia reperfusion injury. Here, we describe the process of harvesting the beating heart from a rat via in situ aortic cannulation, Langendorff perfusion of the heart, simulated ischemia-reperfusion injury, and infarct staining to confirm the extent of ischemic insult.

비디오: Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

고양이에서 급성 심근 경색

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

연구

의학

Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts

Optical mapping of the cardiac surface with voltage-sensitive fluorescent dyes has become an important tool to investigate electrical excitation in experimental models that range in scale from cell cultures to whole-organs[1, 2]. Using state-of-the-art optical imaging systems, generation and propagation of action potentials during normal cardiac rhythm or throughout initiation and maintenance of arrhythmias can be visualized almost instantly[1]. The latest commercially-available systems can provide information at exceedingly high spatiotemporal resolutions and were based on custom-built equipment initially developed to overcome the obstacles imposed by more conventional electrophysiological methods[1]. Advancements in high-resolution and high-speed complementary metal-oxide-semiconductor (CMOS) cameras and intensely-bright, light-emitting diodes (LEDs) as well as voltage-sensitive dyes, optics, and filters have begun to make electrical signal acquisition practical for cardiovascular cell biologists who are more accustomed to working with microscopes. Although the newest generation of CMOS cameras can acquire 10,000 frames per second on a 16,384 pixel array, depending on the type of sample preparation, long-established fluorescence acquisition technologies such as photodiode arrays, laser scanning systems, and cooled charged-coupled device (CCD) cameras still have some distinct advantages with respect to dynamic range, signal-to-noise ratio, and quantum efficiency[1, 3]. In the present study, Lewis rat hearts were perfused ex vivo with a crystalloid perfusate (Krebs-Henseleit solution) at 37&deg;C on a modified Langendorff apparatus. After a 20 minute stabilization period, the hearts were intermittently perfused with 11 mMol/L 2,3-butanedione monoxime to eliminate contraction-associated motion during image acquisition. For optical mapping, we loaded hearts with the fast-response potentiometric probe di-8-ANEPPS[4] (5 &mu;Mol/L) and briefly illuminated the preparation with 475&plusmn;15 nm excitation light. During a typical 2 second period of illumination, &gt;605 nm light emitted from the cardiac preparation was imaged with a high-speed CMOS camera connected to a horizontal macroscope. For this demonstration, hearts were paced at 300 beats per minute with a coaxial electrode connected to an isolated electrical stimulation unit. Simultaneous bipolar electrographic recordings were acquired and analyzed along with the voltage signals using readily-available software. In this manner, action potentials on the surface of Langendorff-perfused rat hearts can be visualized and registered with electrographic signals.

This article describes a high temporal and spatial resolution technique to optically image action potential movement on the surface of Langendorff-perfused rat hearts using a potentiometric dye (di-8-ANEPPS).

Langendorff - perfused 랫 하트의 광학 매핑

Optical mapping of the cardiac surface with voltage-sensitive fluorescent dyes has become an important tool to investigate electrical excitation in ...

생물학

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

쥐의 심근 허혈 재관류 후 관상 동맥 흐름 예비의 평가

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

Modified Langendorff Perfusion을 이용한 CVD 연구 강화

Modified Langendorff Perfusion for Extended Perfusion Times of Rodent Cardiac Grafts

Despite important advancements in the diagnosis and treatment of cardiovascular diseases (CVDs), the field is in urgent need of increased research and scientific advancement. As a result, innovation, improvement and/or repurposing of the available research toolset can provide improved testbeds for research advancement. Langendorff perfusion is an extremely valuable research technique for the field of CVD research that can be modified to accommodate a wide array of experimental needs. This tailoring can be achieved by personalizing a large number of perfusion parameters, including perfusion pressure, flow, perfusate, temperature, etc. This protocol demonstrates the versatility of Langendorff perfusion and the feasibility of achieving longer perfusion times (4 h) without graft function loss by utilizing lower perfusion pressures (30-35 mmHg). Achieving extended perfusion times without graft damage and/or function loss caused by the technique itself has the potential to eliminate confounding elements from experimental results. In effect, in scientific circumstances where longer perfusion times are relevant to the experimental needs (i.e., drug treatments, immunological response analysis, gene editing, graft preservation, etc.), lower perfusion pressures can be key for scientific success.

저자 스포트라이트: 심혈관 연구의 발전 - 실험 결과 개선을 위한 맞춤형 Langendorff 관류 기법

This article demonstrates the feasibility of achieving longer perfusion times (4 h) of murine cardiac grafts without function loss by employing lower (30-35 mmHg) than physiological (60-80 mmHg) perfusion pressures during Langendorff.

설치류 심장 이식편의 관류 시간 연장을 위한 수정된 Langendorff 관류

Despite important advancements in the diagnosis and treatment of cardiovascular diseases (CVDs), the field is in urgent need of increased research and ...

생체공학

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

쥐 간 이식 모형에 있는 혈역학적인 변경을 시뮬레이션하여 기관 허혈-재관류 상해

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...

A Fluorescence Assay for Evaluating the Permeability of a Cardiac Microvascular Endothelial Barrier in a Rat Model of Ischemia/reperfusion

Revascularization therapies for culprit arteries, regardless of percutaneous coronary intervention and coronary artery bypass grafting, are considered the best strategy for improving the clinical prognosis of patients with acute coronary syndrome (ACS). Nonetheless, myocardial reperfusion following effective revascularization can trigger significant cardiomyocyte death and coronary endothelial collapse, known as myocardial ischemia/reperfusion injury (MIRI). Usually, endothelial cells and their intercellular tight junctions cooperatively maintain the microvascular endothelial barrier and its relatively low permeability but fail in reperfusion areas. 
Microvascular endothelial hyperpermeability induced by ischemia/reperfusion (IR) contributes to myocardial edema, increased infiltration of pro-inflammatory cells, and aggravated intramyocardial hemorrhage, which may worsen the prognosis of ACS. The tracer used in this study-70,000 Da FITC-dextran, a branched glucose molecule labeled by fluorescein isothiocyanate (FITC)-appears too large to infiltrate the cardiac microvascular endothelium in normal conditions. However, it is capable of infiltrating a broken barrier after MIRI. Thus, the higher the endothelial permeability is, the more FITC-dextran accumulates in the extravascular intercellular space. Thus, the intensity of fluorescence from FITC can indicate the permeability of the microvascular endothelial barrier. This protocol takes advantage of FITC-dextran to evaluate the cardiac microvascular endothelial barrier functionally, which is detected by an automated quantitative pathology imaging system.

<meta charset="utf8"></head><body>허혈/재관류의 쥐 모델에서 심장 미세혈관 내피 장벽의 투과성을 평가하기 위한 형광 분석

Here, we describe a method to functionally assess the endothelial barrier of cardiac microvessels after ischemia/reperfusion injury via the measurement of the mean fluorescence intensity of extravasated 70,000 Da FITC-dextran in comparison with Evans Blue.

허혈/재관류의 쥐 모델에서 심장 미세혈관 내피 장벽의 투과성을 평가하기 위한 형광 분석

Revascularization therapies for culprit arteries, regardless of percutaneous coronary intervention and coronary artery bypass grafting, are considered the ...

Induction of Myocardial Infarction and Myocardial Ischemia-Reperfusion Injury in Mice

Acute myocardial infarction is a common cardiovascular disease with high mortality. Myocardial reperfusion injury can counteract the beneficial effects of heart reflow and induce secondary myocardial injury. A simple and reproducible model of myocardial infarction and myocardial ischemia-reperfusion injury is a good tool for researchers. Here, a customizable method to create a myocardial infarction (MI) model and MIRI by precision ligation of the left anterior descending coronary artery (LAD) through micromanipulation is described. Accurate and reproducible ligature positioning of the LAD helps obtain consistent results for heart injury. ST-segment changes can help to identify model accuracy. The serum level of cardiac troponin T (cTnT) is used to assess the myocardial injury, cardiac ultrasound is employed to evaluate the myocardial systolic function, and Evans-Blue/triphenyl tetrazolium chloride staining is used to measure infarct size. In general, this protocol reduces procedure duration, ensures controllable infarct size, and improves mouse survival.

Here we describe a simple and reproducible method that can induce myocardial infarction or myocardial ischemia-reperfusion injury in mice by precision ligation of the left anterior descending coronary artery through micromanipulation.

마우스의 심근경색 및 심근 허혈-재관류 손상 유도

Acute myocardial infarction is a common cardiovascular disease with high mortality. Myocardial reperfusion injury can counteract the beneficial effects of ...

랑겐 돌프 - 관류 쥐 마음에 유도 및 허혈 - 재관류 손상의 평가

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설치류 심장 이식편의 관류 시간 연장을 위한 수정된 Langendorff 관류

설치류 심장 이식편의 관류 시간 연장을 위한 수정된 Langendorff 관류

설치류 심장 이식편의 관류 시간 연장을 위한 수정된 Langendorff 관류

쥐 간 이식 모형에 있는 혈역학적인 변경을 시뮬레이션하여 기관 허혈-재관류 상해

허혈/재관류의 쥐 모델에서 심장 미세혈관 내피 장벽의 투과성을 평가하기 위한 형광 분석

허혈/재관류의 쥐 모델에서 심장 미세혈관 내피 장벽의 투과성을 평가하기 위한 형광 분석

마우스의 심근경색 및 심근 허혈-재관류 손상 유도