이 작품은 의료 대학 인스브루크의 #2008-1-596 보조금과 #UNI-0404/1956의는 "Tiroler Wissenschaftsfonds (TWF)" (https://www.tirol.gv.at/en/), 그리고 부여 #2013-042018 "MUI 시작 Förderungsprogramm"의 의해 지원 되었다.

Alloimmune 응답을 방지 하 고 엄격 하 게 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 이식 피해 조사, syngeneic 기증 받는 쌍을 사용 해야 합니다. 이 프로토콜, 남성 C57BL6 (h 2b) 10-12 주 된 마우스 무게 26 ~ 28 g 크기 일치 기증자 받는 쌍으로 사용 되었다. 모든 장벽 병원 체 무료 시설에서 지 내게 했다 동물과 "교장의 실험실 동물 케어" 의료 연구와 "가이드에는 관리와 사용의 실험실 동물"에 대 한 국가 사회에 의해 공식화에 따라 인간의 치료를 받은 과학의 국가 아카데미에 의해 준비와 건강의 국가 학회 (NIH 간행물 번호 86-23, 1985 개정)에 의해 출판. 교육, 과학, 그리고 문화의 오스트리아 내각이이 원고 (BMWF-66.011/0056-II/3b/2011)에 설명 된 실험을 승인 했다.
1. 췌 장 조달
<ol>
	<li>Xylazine (5 mg/kg 체중)와 케 타 민 (100mg/kg 체중) 27-게이지 (G) 바늘을 사용 하 여의 복 (i.p.) 주입으로 기증자 동물 anesthetize</li>
	<li>전기 면도기를 사용 하 여 복 부에 머리를 면도 하 고 테이프의 가닥으로 부정사 위치에 수술 필드에 마우스를 수정.</li>
	<li>세 번을 액체에 젖은 gauzes 요원 필드를 제거 하십시오.</li>
	<li>가 위를 사용 하 여 양자 subcostal 확장명이 중간 복 부 절 개를 수행 합니다. 부드럽게 exteriorize 메 마른 코 튼 스틱, 왼쪽에 내장 하 고 moistened 거 즈에서 그들을 포장. 다음 단계에 대 한 복 부 구멍의 최대 노출을 제공 하는 모기 클램프와 cranially는 xyphoid를 들어올립니다.</li>
	<li>19 G 바늘을 사용 하 여, 주사는 살 균의 400 µ L 1:4 헤 파 린 나트륨 염화 물 솔루션 열 등 한 베 나 정 맥 (IVC)으로 heparinisation. 바늘을 제거한 후 exsanguination 대동맥의 transecting에 의해 동물을 안락사.</li>
	<li>부드럽게 곡선된 팁 집게를 사용 하 여 섬유 조직 분리 하 여 우수한 mesenteric 동맥의 기원과 오른쪽 신장 동맥 사이 복 부 대동맥 해 부. 대동맥을 훼손 하 고 8/0 실크 합자와 넥타이.</li>
	<li>Postpyloric 십이지 장과 간 hilum 사이 hepatoduodenal 인 대를 식별 합니다. 원심 합자, 후 낭 성 덕트의 입구 아래 담 즙 덕트를 분할 부드럽게 해 부 하 고 받는 사람에는 문 합을 수행 하기 위한 충분 한 길이를 최대한 distally 포털 정 맥 transect.</li>
	<li>이전 합자에서 시작 하는 복 부 대동맥 해 부 퉁 명 스럽게 곡선된 팁 집게를 사용 하 여 (단계 1.6 참조). Periaortic 조직 곡선된 팁 집게를 사용 하 여 훼손, 그것 8/0 실크 합자와 고가 위로 transect.<ol>
		<li>바이 폴라 포 셉을 사용 하 여, 모든 허리 가지 응고 하 고, 횡 경 막에 최대한 가깝게 혈관 문 합에 대 한 충분 한 길이 제공 하기 위해 대동맥이 위 transect. 마지막으로, 왼쪽된 신장 동맥 위에 이미 묶인된 대동맥 transect.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>문맥에서 오는 분명 유출 될 때까지 복 부 대동맥을 통해 antegrade 패션에서 4 ° C 히스티딘 트립토판 ketoglutarate 관류 솔루션의 5 mL와 함께 19 G 주사기 췌 장 perfuse. 부 종 형성을 방지 하기 위해 낮은 압력을 적용 합니다. 참고: 복구 된 이식의 따뜻한 허 혈 성 저하에 의해 어떤 편견을 피하기 위해 신속 하 고 표준화 된 방식에서 1.9를 단계 1.5를 수행 합니다.</li>
	<li>메 마른 면 지팡이 사용 하 여 복 막 구멍으로는 내장을 교체 합니다.</li>
	<li>곡선된 팁 집게를 사용 하 여, stepwise Treitz의 인 대를 도달할 때까지 앞으로 이동 하 고 postpyloric 십이지에서 시작 췌를 구분 합니다. 이러한 단계에 대 한 췌 장 및 십이지 장 벽 사이 avascular 결합 조직 영역을 식별 합니다.<ol>
		<li>퉁 명 스럽게 췌 장 그리고 십이지 장 사이 브리징 혈관을 분리 곡선된 팁 집게를 사용 하 여이 분야를 해 부. 각 격리 된 혈관 구조 8/0 실크 합자를 통과 하 고 넥타이.</li>
		<li>마지막으로,가 위 십이지 장 벽 쪽으로 혈관 구조 transect. 같은 패션에는 mesentery, 가로 장 및 위장 췌 구분 8/0 실크 봉합 사를 사용 합니다. 참고:이 절차 동안, choledocho 췌 장 덕트는 출혈 됩니다.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Gastrosplenic 인 대 위, 및 짧은 위 가지 cranially 위장을 해제 하 고가 위로 절단 하 여 비장에서 실행을 식별 합니다. 복구 된 이식에 연결 된 비장을 둡니다. 참고: 지속적으로 얼음에 저장 된 차가운 히스티딘 트립토판 ketoglutarate 관류 솔루션 19 G 바늘 10 mL 주사기를를 사용 하 여 췌 장 이식 rewarming 최소화, 관개.</li>
	<li>마지막으로, 겸 자와 함께 비장을 파악 하 여 췌 기증자 사이트 (그림 1B)에서 제거 하 고 받는 사람에 전송.<ol>
		<li>또는, 가혹한 국 소 빈 혈 reperfusion 상해를 트리거하려면 받는 사람 동물에 이식 하기 전에 16 h에 대 한 살 균, 4 ° C 관류 솔루션에는 이식을 저장 합니다.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 받는 사람 준비
<ol>
	<li>Xylazine (5 mg/kg 체중)와 케 타 민 (100mg/kg 체중) 27g 바늘을 사용 하 여의 i.p. 주사와 받는 사람 동물 anesthetize</li>
	<li>면도 전기 면도기를 사용 하 여 오른쪽 측면 자 궁 경부 지역 고 부정사 위치에 수술 필드에 마우스를 놓습니다. 수정 테이프의 가닥을 사용 하 여 마우스. 호흡을 손상 하는 피하기 위해 앞 다리를 잡아당기고 하지 마십시오.</li>
	<li>액체에 젖은 gauzes를 사용 하 여 시간 요원 필드 3 스크럽.</li>
	<li>바로 paramedian, 오른쪽 mandible 각도 jugular 절 개에서 약간 비스듬한 피부 절 개를 확인 합니다.</li>
	<li>퉁 명 스럽게 식별 하 고 오른쪽 외부 경 정 맥의 옆 분 지 동원. 바이 폴라 집게로 그들을 응고 하 고가 위로 transect.</li>
	<li>Submandibular 침 샘의 오른쪽 엽 cranially, 혈관 작은 꽃 자루를 식별 들어올린 바이 폴라 집게를 사용 하 여 그것을 부식. Cauterized 작은 꽃 자루가 위 transecting 여은 엽을 제거 합니다.</li>
	<li>단계로 2.5 비유에서 외부 경 정 맥의 모든 중간 지점을 식별 하 고 바이 폴라 포 셉으로 부식 한가 위 transect.</li></ol>가능한, cranially 곡선된 팁 집게와 외부 경 정 맥을 훼손 하 고는 합자 사이의 충분 한 공간을 떠나 두 8/0 실크 합자와 선.
	<li>스트레이트가 위 두 이전 배치 합자 사이 외부 경 정 맥 transect</li>
	<li>(0.75 m m의 내경, 외경 0.94 m m의), 폴 리 에틸렌 팔목을 통해 외부 경 정 맥의 근 위 끝을 통과 하 고 정 맥 microhemostat 클램프와 팔목의 핸들을 수정.</li>
	<li>배 그 루터 기의 끝에 넥타이 제거 하 고 팔목에 선박 evert. 원형 8/0-실크 합자 (그림 1A)와 팔목에 나왔으며 정 맥을 수정.</li>
	<li>Proximally distally 오른쪽 sternocleidomastoid 근육의 표면 부분을 부식가 위, transect 그리고 그것을 제거.</li>
	<li>부드럽게 일반적인 경 동맥을 동원, 분기 아래 훼손 하 고 두번에 선 경 동맥 분기를 넥타이 하지 않아야 함. 관계 사이 배를 잘라.</li>
	<li>2.9 단계, 폴 리 갑 (0.57 m m, 0.6 m m 외경의 내경)를 통해 일반적인 경 동맥의 근 위 끝을 통과 하 고는 동맥 microvascular 클램프와 함께 그것을 해결에 비슷합니다.</li>
	<li>혈관 그 루터 기의 끝에 합자를 제거 하 고 부드럽게 배 dilatators를 사용 하 여 루멘 확대. 동맥 갑 이상 선박 evert 고 8/0 실크 합자 (그림 1A)와 그것을 해결.</li>

3입니다. 주입
<ol>
	<li>장소 머리와 핸들으로 비장을 사용 하 여 받는 사람의 목 지역으로 이식 지향 측면, medially, 비장을 포함 하 여 꼬리와 혈관 덩어리가 ventro-caudally. 위치는 이식 제대로 사용 코 튼 스틱</li>
	<li>부드럽게 받는 사람 동물의 외부 경 정 맥, 하가 되어 이전 나왔으며, 췌 장 이식의 문맥을 세워 적절 한 팔목에 고정 (단계 2.10 참조). 원형 8/0 실크 합자와 그것을 해결.</li>
	<li>받는 사람 동물의 나왔으며 일반적인 경 동맥에는 이식의 복 부 대동맥의 그 루터 기 세워. 원주 8/0 실크 합자 (그림 1C)와 그것을 해결.</li>
	<li>비장, hilum 가까이 비장 혈관 고 곡선된 팁 집게와 함께 그들을 훼손 합니다. 8/0 실크 합자와 그들을 연결 하 고 비장을 제거 하는 비장 혈관 transect. 마지막으로, 관계를 단축.</li>
	<li>셉을 적용 하는 클램프를 사용 하 여 먼저 정 맥 팔목에 클램프를 제거 합니다. 동맥 클램프를 제거 합니다. 참고: 이식에 성공 하면 췌 장 이식 됩니다 수 reperfused 즉시 균질 분홍 색상과 표시 동맥 맥 (그림 1D)를 보여주는.</li>
	<li>Normothermic 염 분 솔루션과 접목 축</li>
	<li>직선 겸 자 사용 하 여 정 맥 팔목의 핸들을 제거 합니다.</li>
	<li>가까운 실행 중인 수술 상처 봉합 사 6/0.</li>
</ol>
4. 수술 후 관리 (끝점)
<ol>
	<li>일반적인 염 분의 최대 0.5 mL을 피하 적용 절차, (사우스 캐롤라이나) 자가 유체 손실 19 G 바늘을 사용 하 여 교체.</li>
	<li>마 취에서 완전 한 회복까지 생리대에 받는 동물을 계속.</li>
	<li>일단, 반환 받는 사람 동물 주택 시설에 수 있는 음식 하 고 광고 libitum물.</li>
	<li>수술 후 통증을 방지 하기 위해 관리 작업 (1) Buprenorphin (0.1 mg/kg 들어) 후 바로 모든 12 h 첫 번째 5 일 및 (2) carprofen 4 mg/kg 들어 모든 12 h는 첫 주에 대 한 사우스 캐롤라이나.</li>
	<li>적절 한 영양 섭취를 예상 하려면 각 받는 사람 동물의 무게 (g)를 매일 모니터링 합니다. 수술 날, 무관심, 마비, 매우 구부러진된 뒤쪽으로 수술 측면 감염에서 체중에 비해 10-15% 이상의 체중 감소는 끝점을 나타냅니다.<ol>
		<li>이 경우에, 뿐 아니라 임상 끝점에 도달 하면 터미널 isoflurane 흡입을 사용 하 여 동물을 희생.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol>
	<li>Gruessner, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=2011+update+on+pancreas+transplantation:+comprehensive+trend+analysis+of+25,000+cases+followed+up+over+the+course+of+twenty-four+years+at+the+International+Pancreas+Transplant+Registry+(IPTR).">2011 update on pancreas transplantation: comprehensive trend analysis of 25,000 cases followed up over the course of twenty-four years at the International Pancreas Transplant Registry (IPTR).</a> Rev Diabet Stud. 8 (1), 6-16 (2011).</li><li>Troppmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complications+after+pancreas+transplantation.">Complications after pancreas transplantation.</a> Curr Opin Organ Transplant. 15 (1), 112-118 (2010).</li><li>Fern&#225;ndez-Cruz, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Native+and+graft+pancreatitis+following+combined+pancreas-renal+transplantation.">Native and graft pancreatitis following combined pancreas-renal transplantation.</a> Br J Surg. 80 (11), 1429-1432 (1993).</li><li>Eltzschig, H. K., Eckle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ischemia+and+reperfusion-from+mechanism+to+translation.">Ischemia and reperfusion-from mechanism to translation.</a> Nat Med. 17 (11), 1391-1401 (2011).</li><li>Konigsrainer, A., Habringer, C., Krausler, R., Margreiter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+of+pancreas+transplantation+in+the+rat+securing+pancreatic+juice+for+monitoring.">A technique of pancreas transplantation in the rat securing pancreatic juice for monitoring.</a> Transpl. Int. 3 (3), 181-182 (1990).</li><li>Lee, S., Tung, K., Koopmans, H., Chandler, J., Orloff, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreaticoduodenal+transplantation+in+the+rat.">Pancreaticoduodenal transplantation in the rat.</a> Transplantation. 13 (4), 421-425 (1972).</li><li>Tori, M., Ito, T., Matsuda, H., Shirakura, R., Nozawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Model+of+mouse+pancreaticoduodenal+transplantation.">Model of mouse pancreaticoduodenal transplantation.</a> Microsurgery. 19 (2), 61-65 (1999).</li><li>Oberhuber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+cervical+heart+transplantation+model+using+a+modified+cuff+technique.">Murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique.</a> J Vis Exp. (92), e50753 (2014).</li><li>Brandacher, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tetrahydrobiopterin+compounds+prolong+allograft+survival+independently+of+their+effect+on+nitric+oxide+synthase+activity.">Tetrahydrobiopterin compounds prolong allograft survival independently of their effect on nitric oxide synthase activity.</a> Transplantation. 81 (4), 583-589 (2006).</li><li>Zou, Y., Brandacher, G., Margreiter, R., Steurer, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cervical+heterotopic+arterialized+liver+transplantation+in+the+mouse.">Cervical heterotopic arterialized liver transplantation in the mouse.</a> J Surg Res. 93 (1), 97-100 (2000).</li><li>Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+on+suture+versus+cuff+anastomosis+in+mouse+cervical+cardiac+transplant.">A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant.</a> Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).</li><li>Liu, X. Y., Xue, L., Zheng, X., Yan, S., Zheng, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreas+transplantation+in+the+mouse.">Pancreas transplantation in the mouse.</a> Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 9 (3), 254-258 (2010).</li><li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Donor+pretreatment+with+tetrahydrobiopterin+saves+pancreatic+isografts+from+ischemia+reperfusion+injury+in+a+mouse+model.">Donor pretreatment with tetrahydrobiopterin saves pancreatic isografts from ischemia reperfusion injury in a mouse model.</a> Am J Transplant. 10 (10), 2231-2240 (2010).</li><li>Drognitz, O., Obermaier, R., von Dobschuetz, E., Pisarski, P., Neeff, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreas+transplantation+and+ischemia-reperfusion+injury:+current+considerations.">Pancreas transplantation and ischemia-reperfusion injury: current considerations.</a> Pancreas. 38 (2), 226-227 (2009).</li><li>White, S., Shaw, J., Sutherland, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreas+transplantation.">Pancreas transplantation.</a> Lancet. 373 (9677), 1808-1817 (2009).</li><li>Morath, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+pancreas-kidney+transplantation+in+type+1+diabetes.">Simultaneous pancreas-kidney transplantation in type 1 diabetes.</a> Clin Transplant. 23 (Suppl 21), 115-120 (2009).</li><li>Perseghin, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cross-sectional+assessment+of+the+effect+of+kidney+and+kidney-pancreas+transplantation+on+resting+left+ventricular+energy+metabolism+in+type+1+diabetic-uremic+patients:+a+phosphorous-31+magnetic+resonance+spectroscopy+study.">Cross-sectional assessment of the effect of kidney and kidney-pancreas transplantation on resting left ventricular energy metabolism in type 1 diabetic-uremic patients: a phosphorous-31 magnetic resonance spectroscopy study.</a> J Am Coll Cardiol. 46 (6), 1085-1092 (2005).</li><li>Secchi, A., Caldara, R., La Rocca, E., Fiorina, P., Di Carlo, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiovascular+disease+and+neoplasms+after+pancreas+transplantation.">Cardiovascular disease and neoplasms after pancreas transplantation.</a> Lancet. 352 (9121), 65 (1998).</li><li>Kirk, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crossing+the+bridge:+large+animal+models+in+translational+transplantation+research.">Crossing the bridge: large animal models in translational transplantation research.</a> Immunol Rev. 196, 176-196 (2003).</li><li>de Jong, M., Maina, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Of+mice+and+humans:+are+they+the+same?--Implications+in+cancer+translational+research.">Of mice and humans: are they the same?--Implications in cancer translational research.</a> J Nucl Med. 51 (4), 501-504 (2010).</li><li>Niimi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+technique+for+heterotopic+cardiac+transplantation+in+mice:+experience+of+3000+operations+by+one+surgeon.">The technique for heterotopic cardiac transplantation in mice: experience of 3000 operations by one surgeon.</a> J Heart Lung Transplant. 20 (10), 1123-1128 (2001).</li><li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+technique+for+heterotopic+vascularized+pancreas+transplantation+in+mice+to+assess+ischemia+reperfusion+injury+and+graft+pancreatitis.">A novel technique for heterotopic vascularized pancreas transplantation in mice to assess ischemia reperfusion injury and graft pancreatitis.</a> Surgery. 141 (5), 682-689 (2007).</li><li>Cardini, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crucial+role+for+neuronal+nitric+oxide+synthase+in+early+microcirculatory+derangement+and+recipient+survival+following+murine+pancreas+transplantation.">Crucial role for neuronal nitric oxide synthase in early microcirculatory derangement and recipient survival following murine pancreas transplantation.</a> PLoS One. 9 (11), e112570 (2014).</li><li>Maglione, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+lethal+murine+pancreas+ischemia+reperfusion+injury+is+specific+for+tetrahydrobiopterin.">Prevention of lethal murine pancreas ischemia reperfusion injury is specific for tetrahydrobiopterin.</a> Transpl Int. 25 (10), 1084-1095 (2012).</li></ol>

저자 들은 아무 경쟁 금융 관심사 선언 합니다.

IRI 관련 이식 피해는 단단한 장기 이식에 고는 미세 혈관의 방해에 의해 특징입니다. 허 혈 성 단계에서 여러 가지 대사 산물의 축적과 염증의 개시 반응 산소 및 질소 종에 의해 주로 중재 폭포, 이식 reperfusion4조직 손상에서 결과. 이 캐스케이드 수 있습니다만 단기, 하지만 또한 장기적인 성공을 위태롭게 하 고, 따라서, 환자 생존14이 크게 영향을. 날짜 하려면, 결합 된 신장 췌 장 이식 형식에서 고통 끝 단계 신장 질병151 당뇨병 환자를 위한 선택의 치료를 나타냅니다. 몇몇 연구는 성공적인 결합된 신장 췌 장 이식만 복원 하지 않는 받는 사람의 당뇨병, 신장 이식 기능 보호 하지만 또한 안정화 및 심지어 신경 장 해를 포함 하 여 2 차 합병증을 회복 뿐만 아니라 마이크로 포커스 및 macroangiopathy16,,1718.
동물 연구에서 감소, 대체, 및 교양 (3 R의) 지속적인 노력에도 불구 하 고 IRI 같은 복잡 한 병 태 생리 과정의 재생산 불가능 단순히 생체 외에서 설정에서 합니다. 따라서, 동물 모델은 여전히 변환 연구19,20이상적인 도구가 될 수 간주 됩니다. 여기에 설명 된 것 처럼 마우스 모델 쥐 또는 다른 동물에 비해 몇 가지 장점을 모델. 이들은 유전자 잘 정의 된 타고 난된 마우스 긴장 (예: 유전자 변형 및 노크 아웃 긴장)의 광대 한 수량, 분자 분석 도구의 과다로는 쉽고 저렴 한21처리의 가용성을 포함 한다. 설명된 모델의 주요 장점은 비 봉합 팔목 기술에 있다. 여기 제시 기법, 성공의 속도 사용 하 여 &#62; 90%는 달성, 더 이전에 비해 설명된 모델22입니다 극적으로. 이 아닌 봉합 기술을 사용 하 여, 우리는 크게 hypovolemic 충격, 혈전 증, 및 anastomoses12의 협 같은 일반적인 합병증을 감소. 관련 받는 사람의 빠른 수술 후 회복 된 이식의 여분의 복 부 위치가이 방법의 추가 장점에 의하여 이루어져 있다. 또한, 자 궁 경부 위치를을 vivo에서 분석, 어떤 긴장22없이 exterioration에 의해 이식의 라이브 영상 등 완벽 하 게 적합.
이 모델의 주요 단점은 임상 현실 유사 하지 않는 췌 장 덕트의 폐색입니다. 이 모델에 exocrine 배수 choledocho 췌 장 덕트 매 관리 됩니다. 긴 기간에 결과 표시 섬유 증 및 동맥의 위축 이식 췌 장 염22에 지도 없이. 우리가 일찍 관찰 외 분 비 조직의이 저하 때문으로 이식 후 하루 30, 우리는이 모델에 적합 하지 긴 기간 관찰 믿습니다. 반면, 손상 되지 않은 내 분 비 기능에 게 받는 이식13,,2324의 기능의 일일 평가 위한 쉬운 도구의 gylcemic 컨트롤.
이러한 특성이 초기 이식 부상과 연관 된 긴 보존 기간 다른 보존 솔루션 및 기술 분석에 대 한 이상적인 모델을 만듭니다. 이 모델 최적의 성공을 달성 하기 위해 몇 가지 중요 한 단계 고려 되어야 한다. 췌 장 자체는 조작에 매우 취약입니다. 따라서, 부드러운 처리 기관 복구 그리고 이식 면 막대기를 사용 하 여 기계적 외상을 최소화 합니다. 집게와 동맥을 직접 파악 피해 야 한다, 이후 그것은 필연적으로 하지 심한 이식 손상 될 것 이다. 같은 이유로 비장 췌, 함께 복구 되 고 핸들로 사용 됩니다. 이것은 또한 임상 연습에 설립. 추가 함정 4 ° C 히스티딘 트립토판 ketoglutarate 관류 솔루션을 사용 하 여 대동맥 유세 통해 관류에 의해 달성 된다 감기 관류를 포함 한다. 이로써, 동맥의 과도 한 팽창 부드럽게 perfusing에 이식 하 여 피할 수 있습니다. 나머지 관류 솔루션 기관 복구 하는 동안 그것의 온도 낮게 유지 하기 위해서는 이식, 보습을 위해 사용 되어야 한다.
받는 사람 준비 관련 외부 경 정 맥 뿐만 아니라 일반적인 경 동맥의 조심 해 부 성공적인 revascularisation에 대 한 기본을 설정합니다. 모든 지류, 뿐만 아니라 주변의 지방 조직을 제거 하 여 정 맥의 특히, 완전 노출, 나머지 지방 조직에 의해 외부 압축 및 협 착 증을 방지 하기 위해 필요 하다. 적절 한 갑 직경의 선택은 중요 합니다. 25 ~ 28 g, 사이 무게 마우스 공유 경험을 바탕 0.57 m m 동맥 갑와 0.75 사이의 정 맥 커 0.8 m m의 내부 직경은 적합 하다. 정확한, 깨끗 한 수 갑의 가장자리의 절단은 필수 배 그 루터 기를 찢는 피하기 위해입니다. 특히, 동맥의 혈관의 팽창 최고의 좋은 팁 배 dilatators를 사용 하 여 이루어집니다. 엄지손가락의 규칙으로 서 배 갑의 두 번 루멘을 넓혀 수 있어야 합니다. 이상 배 everting 및 팔목에 고정 과정으로이 질이 중요 한 단계 때 피부 플랩 아래에 그들을 배치 하 여 혈관 클램프를 안정화 하는 것이 좋습니다.
이미 언급 했 듯이, 비 봉합 팔목-기술 혈관 문 합 하는 쉬운 방법 나타내고 5 분 내에서 수행할 수 있습니다. 그러나, 받는 사람의 목 지역에 이식의 올바른 위치 올바른 revascularization 위한 매우 중요입니다. 이로써, 정 맥과 동맥의 안전, 직선, 그리고 긴장 없는 문 합 할 수 있도록 예상 되는 목 지역에 이식의 최종 정확한 위치 한다. 너무 긴 혈관이 유출 방해 비틀면 때문에 발생할 수 있습니다 때문에, 피할 수 있다. 같은 이유로 정 맥 문 합에 갑 핸들 또한 제거 되어야 한다 reperfusion 다음. 췌 장 이식에서 지역화 된 bleedings의 경우, 성공적인 hemostasis 부드럽게 면 지팡이 사용 하 여 5 분 동안 출혈 측면을 압축 하 여 얻을 수 있습니다. 이 합병증의이 종류를 관리 하는 유일한 성공적인 방법입니다.열화, 비록 매우 선택적, 괴 사 성 췌 장 염으로 인해 거의 모든 경우에서 이식 손실 귀착되는.
요약 하자면, 우리는 및 microsurgically 가능한 기술적 이며 뛰어난 성공 속도 비 봉합 팔목 기술을 사용 하 여 마우스의 췌 장 이식 하는 방법을 개발 했다. 췌 장 덕트 폐색 때문에의 progredient 섬유 증을 감안할 때,이 모델은 초기 이식 손해에 초점을 맞추고 연구 분야에 대 한 가장 적합 합니다. 이 원고는 안전 하 게 그들의 실험실에서이 모델을 확립 하는 연구를 허용 하는 위한 것입니다.

동시 신장-췌 장 이식 (SPK) 환자 당뇨병 mellitus 그리고 끝 단계 신장 질병에서 고통에 대 한 치료의 현재 표준을 나타냅니다. 성공적인 이식 장기 인슐린 독립 안정화 또는 당뇨병 microangiopathy와 더 나은 삶의 질1의 심지어 회귀와 관련 된 발생 합니다. 그러나, 신장과 간 이식 같은 다른 일반적인 고체 기관 이식, 달리 췌 장 이식 더 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 (IRI)을 따르게 됩니다. 최대 35%의 보고 한 부각 위태롭게 이식, 뿐만 아니라 심지어 환자, 생존2,3.
산화 스트레스, microcirculatory 장애 증가 식 프로 염증 성 cytokines 및 접착 분자의 결과로 마침내 내 피 활성화 및 그것의 무결성의 손실에는 모두에 기인이 아닌 수용자 이식 부상 4. 지금까지, IRI의 정확한 분자 메커니즘 크게 알 수 있으며 기관 기관에서 다를 수 있습니다.
주요 진행 생체 외에서 모델을 활용 하 여에 불구 하 고 동물 모델의 개발은 췌 장 이식 다음 이식 IRI 관련 변경에 관련 된 분자 메커니즘의 지식을 심화 하 결정적 이다. 설치류의5,6, 여러 가지 췌 장 이식 모델 개발 되었습니다 하지만 단 하나 쥐7에 보고 됩니다. 이 매우 요구 microsurgical 절차는 46%의 낮은 생존 율의 약점이 다. 그러나, 마우스 모델을 다양 한 분자 분석 도구는 그들에 적용 될 수 있기 때문에 이식 관련 연구에 대 한 최고의 모델을 나타냅니다. 다른 장기 이식8,,910쥐에서 광범위 한 microsurgical 경험을 바탕으로, 우리 췌 heterotopic, 자 궁 경부에 대 한 새로운, 높게 재현 기술 개발 와 쥐에 이식 &#62; 90% 성공률 갑 비 봉합 기술을 사용 하 여. 이 기술은 anastomoses 관련 합병증을 최소한 감소와 봉합 모델11에 비해 높은 성공률을 달성 될 수 있다. 지금까지 비슷한 성공률을 하나만 마우스 모델 류 외12에 의해 설명 하고있다. 그러나, 지금까지이 모델을 사용 하 여 게시 없음 연구 있다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="783">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Adventitia Scissors</td>
			<td style="width:205px;">S&#38;T</td>
			<td style="width:131px;">S-00102</td>
			<td style="width:169px;">Straight</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:279px;">Dumont # 7 Forceps</td>
			<td style="width:205px;">FST</td>
			<td style="width:131px;">&#160;11271- 30</td>
			<td style="width:169px;">Curved Tip 0.17 x 0.1 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Yasargil Clip Mini Permanent 7mm</td>
			<td style="width:205px;">Aesculap</td>
			<td style="width:131px;">FE720K</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Micro vessel clip</td>
			<td style="width:205px;">S&#38;T</td>
			<td style="width:131px;">B1 00396 V</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="18">
			<td height="18" style="height:19px;width:279px;">Vessel dilatator</td>
			<td style="width:205px;">S&#38;T</td>
			<td style="width:131px;">D-5a.2, 00125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Clip applier</td>
			<td style="width:205px;">S &#38; T</td>
			<td style="width:131px;">CAF-4 00072</td>
			<td style="width:169px;">for venous cuff</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Clip applier</td>
			<td style="width:205px;">Aesculap</td>
			<td style="width:131px;">FE572K&#160;</td>
			<td style="width:169px;">for the arterial cuff</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:279px;">Polyethylene tube</td>
			<td>Portex Ltd</td>
			<td style="width:131px;"></td>
			<td style="width:169px;">Inner diameter 0.75 mm for venous cuff</td>
		</tr>
		<tr height="81">
			<td height="81" style="height:81px;width:279px;">Polymide tubing</td>
			<td style="width:205px;">Vention Medical&#160;</td>
			<td style="width:131px;">141-0051</td>
			<td style="width:169px;">Inner diameter 0.8 mm (Alternative for polyethylene tube from Portex Ltd)</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:279px;">Polymide tubing</td>
			<td>Vention Medical</td>
			<td style="width:131px;">141-0033</td>
			<td style="width:169px;">Inner diameter 0.57 mm for arteriail cuff</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Bipolar forceps</td>
			<td style="width:205px;">Micromed</td>
			<td>140-100-015</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">8/0 silk ligatures</td>
			<td style="width:205px;">Catgut GmbH, Merkuramed</td>
			<td style="width:131px;">17209008</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Custodiol HTK solution</td>
			<td style="width:205px;">Dr. Franz K&#246;hler Chemie</td>
			<td style="width:131px;">59997</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:279px;">Ketamin Graeub</td>
			<td>aniMedica GmbH</td>
			<td style="width:131px;">32554</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:279px;">Xylasol Graeub</td>
			<td>aniMedica GmbH</td>
			<td style="width:131px;">50855</td>
			<td style="width:169px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

mouse model for pancreas transplantation using a modified cuff technique

마우스 모델 이식 연구, 취급이 용이, 다양 한 유전자 잘 정의 된 긴장, 및 분자 프로브 및에서 vivo에서 로 를 수행 하기 위해 시 약의 광범위의 가용성을 포함 하 여 몇 가지 장점이 있는 체 외 연구. 다양 한 murine 이식 모델 우리의 경험을 바탕으로, 우리 밑에 심한 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 된 초기 이식 손상 메커니즘을 분석 하는 것으로 쥐에서 heterotopic 췌 장 이식 모델을 개발 했다. 달리 이전 설명된 기법 봉합 기술을 사용 하 여 여기 우리 기술 비 봉합 팔목 기술을 사용 하 여 새로운 절차.
최근 몇 년 동안, 우리가 마우스의 전반적인 성공율에 300 개 이상의 췌 장 이식 수행한 &gt; 90% 성공률 결코 설명 하기 전에 마우스 췌 장 이식에서. 이 아닌 봉합 팔목 기술 이식 revascularization의 두 주요 단계로 구성 됩니다: (I) 폴 리 에틸렌/폴 리 갑을 통해 받는 사람 배 고 완곡 한 합자와 (II) 기증자 선박 배치 그것을 고치는 받는 사람 배 고 두 번째 원주 합자와 고정 나왔으며. 내 피 레이어 결과 높은 patency 속도 덜 thrombogenic 병 변에서의 결과 연속성 및, 마지막으로, 높은 성공률.
이 모델에서 동맥 문 합 받는 사람 동물의 나왔으며 일반적인 경 동맥을 통해 기증자 이식의 복 부 대동맥을 당겨서 이루어집니다. 정 맥 배수 장치는 이식의 받는의 나왔으며 외부 경 정 맥에 당기는 이식의 문맥으로 이루어집니다. 이 원고는 세부 사항 및 장기 복구 및 수 있도록 그들의 실험실에서 이식을 성공적으로 수행 하기 위해 microsurgical 기술 연구원 장기 이식 절차의 중요 한 단계를 제공 합니다.

지난 10 년간 우리는 생쥐에서 300 개 이상의 췌 장 이식 수행. 프로토콜을 설정한 후의 전반적인 생존 했다 &#62; 90%. 수술 후 출혈 이후 치명적인 괴 이식 췌 장 염으로 혈전 증 이식 다음 실패에 대 한 주요 원인 이었다. 두 경우 모두, 끝점은 24 시간 이내에 도달 하 고 동물을 희생 했다. 어떤 신경 장애, 부전 실어증, 그리고이 시리즈에서 외과 측면 감염 증상 없었다.
이식된 이식의 내 분 비 기능을 조사 하 고 따라서 patency 모델의 유효성을 검사, 혈당 intraperitoneally 적용된 streptozotocin (312.5 mg/kg 체중)의 단 하나의 복용량으로 전처리 하 여 받는 사람 마우스에서 유도 되었다 4 수술 전에 일. 마우스 경우 혈당 hyperglycemic 여겨졌다 &#62; 300 mg/dL. 그림 2A 다른 그룹의 혈액 포도 당 수준을 보여줍니다. 16 h의 머리말 붙인된 찬 허 혈 시간 없이 이식 받는 마우스 normogylcemia 이식, 다음 24 시간 이내에 도달 하 고 전체 관찰 기간 동안이 대사 상태를 유지. 대조적으로, 비 이식 동물 hyperglycemic 남아 있었다. 때문에 우리는 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 된 이식 손상 내 분 비 기능에 미치는 영향에 관심이 있었다, 우리 16 h 장기 찬 허 혈 시간 (CIT)와 따뜻한 허 혈 시간 (WIT)의 45 분에 이식 노출 했다 제 3의 그룹을 추가. 이러한 이식 받은 쥐 normoglycemia를 도달 하지 않았다 고이 모델13에 치명적인 것으로 표시 되었다 심각한 췌 장 염의 개발으로 인해 48 h 후 희생 되어야 했다.
이 모델은 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 된 초기 이식 피해를 조사 하기 위한 다양 한 프로젝트에 대 한 유용 합니다. 추가 조사 포함, 다른 가운데, 2 h 이식 다음을 수행 하는 microcirculatory으로 혼란의 정량화를 위한 공초점 intravital 형광 현미경 검사 법. 이식의 microvessels의 대비는 음 경 정 맥으로 0.4% fluorescein isothiocyanate 표시 된 dextran (150 000 MW)의 0.3 mL를 주입 하 여 향상 되었습니다. 그림 2B 순진한 murine 췌와 장기간된 CIT (그림 2C)에 노출 되지 했다는 이식된 췌 장 이식의 일반 모 세관 패턴을 표시 합니다. 그림 2D 췌 장 이식 장기. CIT 노출의 결과로 미세 혈관의 붕괴를 표시 하는 반면,
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/54998/54998fig1.jpg"> 
그림 1 : 자가 사진. (A) 받는 사람 혈관 문 합에 대 한 준비의 자가 보기. 외부 경 정 맥 (1) 되어 정 맥 폴 리 에틸렌 팔목에 나왔으며과 원형 8/0 실크 합자와 고정. 비유에서 일반적인 경 동맥 (2) 되어 나왔으며과 작은 동맥 폴 리아 미드 팔목에 고정. 스케일 바 m m. 1 (B) 라 전췌 장 이식 포털 정 맥 (1) 및 (2) 혈관 문 합에 필요한 복 부 대동맥의 그 루터 기. (3) 비장 췌 함께 검색 되 고 핸들로 사용 됩니다. 비장은 이식의 reperfusion 전에 제거 됩니다. 규모 1 cm. 바 (C) 자가 보기는 anastomoses의. 포털 정 맥 (1) 나왔으며 외부 경 정 맥의 팔목에 당겨 (2)와 원형 8/0 실크 넥타이 고정. 마찬가지로, 복 부 대동맥 (3)의 대동맥 유세 나왔으며 일반적인 경 동맥 (4)의 팔목 위에 당 겼 다. 1. 다음 5 분 reperfusion perfused 췌 장 이식의 보기 (D) 자가 바 규모: 정 맥, 동맥 클램프, 뒤의 제거 후 성공적으로 이식된 췌 장 이식 동종 분홍 색상을 표시 합니다. 비장의 reperfusion 전에 제거 되었습니다 (1: 합자 비장 혈관). 규모 1 cm. 바 <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54998/54998fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/54998/54998fig2.jpg"> 
그림 2 : 내 분 비 기능과 췌 장 이식의 confocal vivo에서 형광 현미경 검사 법. 그림 2A CIT 없이 이식된 생쥐의 혈액 포도 당 수준으로 꺾은선형 차트를 보여 줍니다 (n = 10, CIT, 블루 라인 없이 PTX), 비-이식 마우스 (n = 11, 아니 PTX 레드 라인), 그리고 장기간된 CIT에 노출 하는 이식 받은 쥐 (PTX + 16 h CIT, n = 10, 녹색 선). 모든 받는 사람 312.5 mg/kg 들어 streptozotocin i.p.과 hyperglycemic 렌더링 이전 했다 CIT 없이 이식의 모든 받는 사람이 그대로 내 분 비 기능 (50 일) 전체 관측 기간을 살아날 수 있었다, 그러나 비 이식 마우스 전체 관찰 기간 동안 hyperglycemic 남아. 16 h CIT에 노출 하는 이식 받은 생쥐 혈당에서 재기 하지 않았다 고 이식 수술, 10-15% 이상의 체중 감소 후 48 h 희생 했다. 전체 관측 기간 살아남은 쥐 날 한 마지막 glycemia 측정을 다음 50에 희생 했다. 미세 이식된 이식에 confocal intravital 형광 현미경 이식 다음 2 h에 의해 평가 되었다. 순진한 췌 컨트롤로 제공 됩니다. 그림 2B 순진한 췌에 정기적으로 모 세관 패턴을 보여 줍니다. 일반 모 세관 메쉬 또한 장기간된 CIT (그림 2C) 대상이 되지 이식된 이식에서 볼 수 있다. 반면, 붕괴는 미세 이식된 이식 장기 CIT (그림 2D)에 노출에서 관찰 됩니다. 스케일 바 100 µ m. 데이터에서 그래프 ± 표준 편차로 표현 됩니다. PTX: 췌 장 이식; CIT: 찬 허 혈 시간; 승: 없이 <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54998/54998fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique at JoVE.com

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

복 부의 단단한 장기 이식 중 췌 장 이식 가혹한 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 된 이식 손상, 결국 초기 이식 손실에 지도 개발 하는 경향이 있다. 이 프로토콜 murine 췌 장 이식이 초기, 해로운 손해 분석 적합 비 봉합 팔목 기술을 사용 하 여 모델을 설명 합니다.

췌 장 이식 수정된 팔목 기술을 사용 하 여 마우스 모델

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

mouse-model-for-pancreas-transplantation-using-modified-cuff

Research

JoVE Journal

Medicine

10.8K 조회수.  Medical University Innsbruck. 복 부의 단단한 장기 이식 중 췌 장 이식 가혹한 국 소 빈 혈 reperfusion 상해 관련 된 이식 손상, 결국 초기 이식 손실에 지도 개발 하는 경향이 있다. 이 프로토콜 murine 췌 장 이식이 초기, 해로운 손해 분석 적합 비 봉합 팔목 기술을 사용 하 여 모델을 설명 합니다.

비디오: Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

A Mouse Model of in Utero Transplantation

The transplantation of stem cells and viruses in utero has tremendous potential for treating congenital disorders in the human fetus. For example, in utero transplantation (IUT) of hematopoietic stem cells has been used to successfully treat patients with severe combined immunodeficiency.1,2 In several other conditions, however, IUT has been attempted without success.3 Given these mixed results, the availability of an efficient non-human model to study the biological sequelae of stem cell transplantation and gene therapy is critical to advance this field. We and others have used the mouse model of IUT to study factors affecting successful engraftment of in utero transplanted hematopoietic stem cells in both wild-type mice4-7 and those with genetic diseases.8,9 The fetal environment also offers considerable advantages for the success of in utero gene therapy. For example, the delivery of adenoviral10, adeno-associated viral10, retroviral11, and lentiviral vectors12,13 into the fetus has resulted in the transduction of multiple organs distant from the site of injection with long-term gene expression. in utero gene therapy may therefore be considered as a possible treatment strategy for single gene disorders such as muscular dystrophy or cystic fibrosis. Another potential advantage of IUT is the ability to induce immune tolerance to a specific antigen. As seen in mice with hemophilia, the introduction of Factor IX early in development results in tolerance to this protein.14 
In addition to its use in investigating potential human therapies, the mouse model of IUT can be a powerful tool to study basic questions in developmental and stem cell biology. For example, one can deliver various small molecules to induce or inhibit specific gene expression at defined gestational stages and manipulate developmental pathways. The impact of these alterations can be assessed at various timepoints after the initial transplantation. Furthermore, one can transplant pluripotent or lineage specific progenitor cells into the fetal environment to study stem cell differentiation in a non-irradiated and unperturbed host environment.
The mouse model of IUT has already provided numerous insights within the fields of immunology, and developmental and stem cell biology. In this video-based protocol, we describe a step-by-step approach to performing IUT in mouse fetuses and outline the critical steps and potential pitfalls of this technique.

A Mouse Model of in Utero Transplantation

The mouse model of in utero transplantation is a versatile tool that can be used to study the potential clinical applications of stem cell transplantation and gene therapy in the fetus. In this protocol, we present a general approach to performing this technique

의 마우스 모델 Utero에 이식

The transplantation of stem cells and viruses in utero has tremendous potential for treating congenital disorders in the human fetus.  For example, in ...

연구

의학

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are available to perform mechanistic in vivo studies. While heart transplantation models using a suture technique were first successfully developed in rats, the translation into an equally widespread used murine equivalent was never achieved due the technical complexity of the microsurgical procedure. In contrast, non-suture cuff techniques, also developed initially in rats, were successfully adapted for use in mice1-3. This technique for revascularization involves two major steps I) everting the recipient vessel over a polyethylene cuff; II) pulling the donor vessel over the formerly everted recipient vessel and holding it in place with a circumferential tie. This ensures a continuity of the endothelial layer, short operating time and very high patency rates4.
Using this technique for vascular anastomosis we performed more than 1,000 cervical heart transplants with an overall success rate of 95%. For arterial inflow the common carotid artery and the proximal aortic arch were anastomosed resulting in a retrograde perfusion of the transplanted heart. For venous drainage the pulmonary artery of the graft was anastomosed with the external jugular vein of the recipient5.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

The murine cervical heart transplantation model is well suited for immunological as well as ischemia reperfusion injury studies. We modified the procedure using a non-suture cuff technique and performed more than 1,000 successful transplants with this approach.
Herein, we provide additional details of this technique to supplement the video.

수정 커프 기술을 사용하여 쥐의 자궁 심장 이식 모델

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed results. However, the cellular and molecular mechanisms of the neotissue development, valve thickening, and stenosis development are not researched extensively. To answer the above questions, we developed a murine heterotopic heart valve transplantation model. A heart valve was harvested from a valve donor mouse and transplanted to a heart donor mouse. The heart with a new valve was transplanted heterotopically to a recipient mouse. The transplanted heart showed its own heartbeat, independent of the recipient&#8217;s heartbeat. The blood flow was quantified using a high frequency ultrasound system with a pulsed wave Doppler. The flow through the implanted pulmonary valve showed forward flow with minimal regurgitation and the peak flow was close to 100 mm/sec. This murine model of heart valve transplantation is highly versatile, so it can be modified and adapted to provide different hemodynamic environments and/or can be used with various transgenic mice to study neotissue development in a tissue engineered heart valve.

In order to understand the cellular and molecular mechanisms underlying neotissue formation and stenosis development in tissue engineered heart valves, a murine model of heterotopic heart valve transplantation was developed. A pulmonary heart valve was transplanted to recipient using the heterotopic heart transplantation technique.

이소성 심장 이식 마우스 모델을 사용하여 폐동맥 판막 이식

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

Using the Sleeve Technique in a Mouse Model of Aortic Transplantation - An Instructional Video

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the aorta in mice using the sleeve method was short and easy averaging 20 min, permitting studies of iso/allo grafts. The following article describes the aortic transplantation procedure used in our laboratory. The mice were anesthetized with a mixture of 1.5% volume isoflurane and 100% oxygen through a face mask. At this point, the segment of the aorta between the renal arteries and its bifurcation was separated from the vena cava, freely prepared and clampedat the proximal and distal segments with a single silk suture. Prior to the removal of the aorta, a saline solution containing heparin was injected into the inferior vena cava. Then the aorta was cut between the clamps and a saline heparin solution was used to flush the lumen. The sleeve technique with monofilament sutures was used in order to transplant the abdominal aorta in the orthotopic position.

We present an orthotopic aortic transplantation model using the sleeve technique in mice. It is a very rapid anastomosis method, which can be employed in studies of vascular disease.

대동맥 이식-교육용 비디오의 마우스 모델에서 소매 기법을 사용 하 여

Orthotopic aortic transplantation using the sleeve technique reduces injury to the aorta with failure rate of only 10-20%. The time to anastomose the ...

Dissection of the Mouse Pancreas for Histological Analysis and Metabolic Profiling

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at the 12 codon (Ptf1acre/+;LSL-KrasG12D/+) mouse strain as a model of human pancreatic cancer. The goal of our current studies is to identify novel metabolic biomarkers of pancreatic cancer progression. We have performed metabolic profiling of urine, feces, blood, and pancreas tissue extracts, as well as histological analyses of the pancreas to stage the cancer progression. The mouse pancreas is not a well-defined solid organ like in humans, but rather is a diffusely distributed soft tissue that is not easily identified by individuals unfamiliar with mouse internal anatomy or by individuals that have little or no experience performing mouse organ dissections. The purpose of this article is to provide a detailed step-wise visual demonstration to guide novices in the removal of the mouse pancreas by dissection. This article should be especially valuable to students and investigators new to research that requires harvesting of the mouse pancreas by dissection for metabolic profiling or histological analyses.

This video article provides a detailed demonstration of the procedures required to successfully remove the pancreas from a mouse by dissection for histological analysis and metabolic profiling.

조직학 분석 및 대사 프로 파일링에 대 한 마우스 췌의 해 부

We have been investigating the pancreas specific transcription factor, 1a cre-recombinase; lox-stop-lox- Kristen rat sarcoma, glycine to aspartic acid at ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

Orthotopic의 쥐 모델 간 이식 Suprahepatic 베 나 정 맥 재건에 대 한 새로운 자석 문 합 기술을 사용 하 여

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and drugs. It is widely used in many studies on the physiological functions of vascular smooth muscle, the pathogenesis of vascular diseases such as hypertension, and the development of smooth muscle relaxant drugs. The mouse is a widely used model animal with a large pool of disease models and genetically modified strains. We introduced this method to measure the isometric contraction of mouse mesenteric artery in detail. A 1.4-mm segment of mouse mesenteric resistance artery was isolated and mounted on a myograph chamber by passing two steel wires through its lumen. After equilibration and normalization steps, the vessel segment was potentiated by a high-K+ solution twice prior to the contraction assay. As an example of the application of this method in drug development, we measured the relaxant effect of a novel natural substance, neoliensinine, isolated from a Chinese herb, embryos of the lotus seed (Nelumbo nucifera Gaertn.) on mouse mesenteric arteries. The vessel segments mounted on the myograph chamber were stimulated with a high-K+ solution. When the force tension reached a stable sustained phase, cumulative doses of neoliensinine were added to the chamber. We found that neoliensinine had a dose-dependent relaxant effect on smooth muscle contraction, thus suggesting that it bears potential activity against hypertension. In addition, as the vessel segment can survive at least 4 hours after mounting and maintain contractility induced by the high-K+ solution for many times, we suggest that the wire myograph system may be used for the time-consuming process of drug screening.

The wire myograph technique is used to investigate vascular smooth muscle functions and screen new drugs. We report a detailed protocol for measuring the isometric contractility of the mouse mesenteric artery and for screening new relaxants of vascular smooth muscle.

Myography 와이어를 사용 하 여 마우스 Mesenteric 동맥의 isometric 수축 측정

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

Murine Cervical Aortic Transplantation Model using a Modified Non-Suture Cuff Technique

With the introduction of powerful immunosuppressive protocols, distinct advances are possible in the prevention and therapy of acute rejection episodes. However, only minor improvement in the long-term results of transplanted solid organs could be observed over the past decades. In this context, chronic allograft vasculopathy (CAV) still represents the leading cause of late organ failure in cardiac, renal and pulmonary transplantation.
Thus far, the underlying pathogenesis of CAV development remains unclear, explaining why effective treatment strategies are presently missing and emphasizing a need for relevant experimental models in order to study the underlying pathophysiology leading to CAV formation. The following protocol describes a murine heterotopic cervical aortic transplantation model using a modified non-suture cuff technique. In this technique, a segment of the thoracic aorta is interpositioned in the right common carotid artery. With the use of the non-suture cuff technique, an easy to learn and reproducible model can be established, minimizing the possible heterogeneity of sutured vascular micro anastomoses.

Here, we present a protocol of heterotopic aortic transplantation in mice using the non-suture cuff technique in a cervical murine model. This model can be used to study the underlying pathology of chronic allograft vasculopathy (CAV) and can help evaluate new therapeutic agents in order to prevent its formation.

수정된 비봉합사 커프 기술을 사용한 뮤린 자궁 경부 대동맥 이식 모델

With the introduction of powerful immunosuppressive protocols, distinct advances are possible in the prevention and therapy of acute rejection episodes. ...

Robot-Assisted Kidney Transplantation

This paper describes robot-assisted kidney transplantation (RAKT) from a living donor. The robot is docked between the parted legs of the patient, placed in the supine Trendelenburg position. Kidney allografts are provided by a living donor. Before vascular anastomosis, the kidney allograft is prepared by inserting a double-J stent in the ureter, and the temperature for the anastomosis is lowered by wrapping it in an ice-packed gauze. A 12 mm or 8 mm port for the robotic camera and three 8 mm ports for robotic arms are placed. A peritoneal pouch is created for the kidney allograft by raising the peritoneal flaps on both sides over the psoas muscle before dissecting the iliac vessels and bladder. A 6 cm Pfannenstiel incision is made to insert the kidney into the peritoneal pouch, lateral to the right iliac vessels. 
After clamping the external iliac vein with Bulldogs clamps, a venotomy is performed, and the graft renal vein is anastomosed to the external iliac vein in an end-to-side continuous manner with a 6/0 polytetrafluoroethylene suture. After clamping the graft renal vein, the iliac vein is declamped. This is followed by clamping of the external iliac artery, arteriotomy, arterial anastomosis with a 6/0 polytetrafluoroethylene suture, clamping of the graft renal artery, and declamping of the external iliac artery. Reperfusion is then carried out, and ureteroneocystostomy is performed using the Lich-Gregoir technique. The peritoneum is closed at a few locations with polymer locking clips, and a closed-suction drain is placed through one of the working ports. After deflating the pneumoperitoneum, all incisions are closed.

This paper provides technical details for robot-assisted kidney transplantation from a living donor.

로봇 보조 신장 이식

This paper describes robot-assisted kidney transplantation (RAKT) from a living donor. The robot is docked between the parted legs of the patient, placed ...

A Modified Cuff Technique for Mouse Cervical Heterotopic Heart Transplantation Model

Cardiac allograft rejection limits the long-term survival of patients after heart transplantation. A mouse heart transplantation model is ideal for investigating the mechanism of cardiac allograft rejection in preclinical studies because of their high homology with human genes. This understanding would help develop unique approaches to improving patients&#39; long-term survival treated with cardiac allografts. In a mouse model, abdominal donor heart implantation is commonly performed with an end-to-end&#160;anastomosis to the recipient&#39;s aorta and inferior vena cava using stitches. In this model, the donor&#39;s heart is implanted by end-to-end anastomosis to the recipient&#39;s carotid artery and jugular vein by the modified-Cuff technique. The transplantation surgery is performed without stitching and thus may increase the survival of the recipient since there is no interference with the blood supply and venous reflux of the lower body. This mouse model would help investigate the mechanisms underlying the immunological and pathological (acute/chronic) rejection of cardiac allografts.

In the present protocol, a mouse heart transplantation model is used for investigating the mechanism of cardiac allograft rejection. In this heterotopic heart transplantation model, operation efficiency is improved, and the survival of cardiac grafts is ensured by a cervical end-to-end anastomosis of heart implantation using a modified Cuff technique.

마우스 자궁경부 이종 심장 이식 모델을 위한 수정된 커프 기술

Cardiac allograft rejection limits the long-term survival of patients after heart transplantation. A mouse heart transplantation model is ideal for ...