이 작품은 교육부의 교육 혁신 팀 개발 프로그램의 중국 (번호에서에서 교부 금에 의해 지원 되었다 IRT16R57), 중국 (No. 81470896), 그리고 연구의 국립 자연 과학 재단 기금에 대 한 젊은 인재 모집 계획의 서 안 교통 대학 (RW).

프로토콜 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 지침에 따라 실시 하 고 윤리의 동물 실험의 서 안 교통 대학, 서 안, 산시 성, 중국에 위원회에 의해 승인 되었다.
참고:이 프로토콜의 절차의 수술 현미경 아래에서 수행 되었다.
1. 수술 전 준비
<ol><li>디자인과 모양 자석 링 (그림 1)의<ol>
<li>네오디뮴-철-붕 소 자석 링의 쌍을 일치 하 여 자기 문 합 장치를 조립.</li>
		<li>주요 축 직경와 부 축 직경, 두께 8 m m, 5.5 m m, 1 mm, 0.5 g의 무게 쥐 SHVC의 매개 변수에 따라 반지를 각각 디자인 합니다.</li>
		<li>와이어 전극 가공 기술에 의해 원하는 모양에 고리를 곡선 다음 티타늄 산화물 에어브러쉬와 얻은 반지 코트 하 고 6 h 55-60 ° C에서 500 mg/L 에틸렌 산화물과 소독.</li>
	</ol>
</li>
	<li>(그림 2) 수 갑<ol>
<li>팔목을 폴 리 에틸렌 튜브를 절단 하 여 IHVC와 PV의 문 합에 대비 합니다. 팔목 바디 5 m m 인지 확인 2 mm 갑 확장명이 오래. 참고: 태양광 팔목의 내부 및 외부 직경은 1.8 및 2.1 m m, 그 동안 IHVC 팔목의 2.6 및 2.8 m m, 각각.</li>
	</ol>
</li>
	<li>텐트 (그림 2)<ol>
<li>양쪽 끝에 경사를 생산 하는 BD의 문 합 5 mm의 길이 절단 24 G 정 맥 정 맥에 의해는 텐트 준비.</li>
	</ol>
</li>
	<li>실험 동물<ol>
<li>기증자로 250과 280 g와 수신자 사이 무게 남성 Sprague Dawley 쥐를 사용 합니다. 기증자 보다 받는 사람이 동일한 무게 또는 약간 무거운 (< 10 g) 인지를 확인 합니다.</li>
		<li>음식과 수술 전에 물에 기후 제어 객실에서 쥐를 유지.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 기증자 작업
<ol><li>주입 buprenorphine (0.05 mg/kg) 피하는 진통제로 작업 하기 전에 1 시간 있습니다.</li>
	<li>Isoflurane 흡입에 의해 기증자 쥐를 anesthetize. 마 취 및 유량 0.6-0.8에서 2 vol %isoflurane 유도 유리 상자에 1.5 L/분의 유량에 사용 5 vol % isoflurane L/원뿔에 분 마 취의 유지 관리를 위해 마스크. 발가락 핀치와 피부 핀치를 수행 하 여 마 취의 깊이 확인 합니다.</li>
	<li>청소기 노출에 대 한 허용 하는 전기 면도기를 사용 하 여 쥐의 전체 복 부 피부를 면도. Povidone-요오드 솔루션 해당 피부 소독.</li>
	<li>따라 xiphisternum 위에 1 ㎝를 확장 하는 성 기의 뿌리에서 수술가 위를 사용 하 여 십자형 절 개를 통해 복 부 구멍을 열고 교육 알바, midaxillary 라인 세로 절 개의 중간점에서 연장. Exteriorize 왼쪽에 위장 하 고 젖은 거 즈로 그것을 커버.</li>
	<li>클램프 및 xiphisternum hemostatic 집게를 사용 하 여 머리 쪽으로 당겨. Falciform 인 대와 간 주위 결합 조직 해 부. 분리 하 고 6-0 비단 봉합으로 왼쪽된 열 등 한 인할지 정 맥 선.</li>
	<li>담 관에는 스 텐트를 삽입 합니다.<ol>
<li>Gastroduodenal 정 맥은 문맥을 조인 지점 바로 위에 BD 클램프 하 고는 microforceps를 사용 하 여 약간 긴장을 유지 하기 위해 그것을 당겨. 다음 마이크로 위 여 약 5mm 담 즙 합류에 인접 앞쪽 벽에 길이 1 m m의 절 개를 "V"를 수행 합니다.</li>
		<li>곡선된 microforceps를 사용 하 여 담 즙 덕트의 루멘으로는 스 텐트를 삽입 합니다. 담 즙 덕트 외부 텐트 거짓말의 반 이상 있는지 확인 합니다.</li>
		<li>6-0 비단 봉합으로 텐트를 보호 합니다. 봉합의 한쪽 끝을 잘라. 나중에 문 합 중 다른 하나를 유지. 텐트 아래 담 즙 덕트 transect 고 담 즙은 텐트에서 올 수 있는지 확인 하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>왼쪽된 신장 정 맥 수준 IHVC를 격리 합니다. IHVC skeletonized 때까지 면 뇌 해 부에 의해 전방 및 측면 주위 조직에서 IHVC를 무료. 바로 suprarenal 정 맥 및 6-0 비단 봉합으로 오른쪽 신장 정 맥 선 고 합니다.</li>
	<li>헤 파 린 음 경의 등 쪽 정 맥을 통해 정상적인 염 분 해결책의 2 mL에 희석의 주입 50 U 쥐를 heparinize.</li>
	<li>간 perfuse<ol>
<li>왼쪽된 신장 정 맥 아래 복 부 대동맥을 격리 합니다. 대동맥에 22-G 카 테 터를 삽입 합니다.</li>
		<li>thoracotomy 수행, 클램프는 microforceps를 사용 하 여 흉부 대동맥.</li>
		<li>3 mL/min의 속도로 주입 펌프와 헤 파 린 (4 ° C)의 U 25를 포함 하는 정상적인 염 분 솔루션의 20 mL와 대동맥에서 카 테 터를 통해 기증자 간을 perfuse. 한편, 관류 솔루션 간에서 흐름 수 있도록 오른쪽 신장 정 맥 아래 베 나 정 맥을 잘라.</li>
		<li>Transect 횡 경 막의 일부와 함께 SHVC 및 IHVC 왼쪽된 신장 정 맥의 수준에서 기증자 간 되었다 pallid.</li>
	</ol>
</li>
	<li>두 개의 마이크로 포 셉으로 PV를 둘러싼 결합 조직 해 부. 선 고는 8-0 prolene 봉합으로 pyloric 혈관을 나눕니다. 비장 정 맥의 수준에서 PV transect 기증자 간 소비 세 고 차가운 정상적인 염 분 해결책으로 그것을 씻어. 차가운 식 염 수에 4 ° c.를 목욕 하는 곳</li>
</ol>3. 이식 준비
참고: 4 ° c.에 차가운 식 염 수 목욕에서 간 이식 준비를 위한 모든 절차 수행
<ol><li>기증자의 IHVC (그림 3)에 팔목을 연결 합니다.<ol>
<li>간 쪽으로 향하고 팔목 확장명이 팔목에는 IHVC를 삽입 합니다. IHVC의 후부 벽에 팔목 확장을 배치 합니다. 팔목 확장과 IHVC 곡선된 microforceps 목욕 컨테이너 파일 클립을 사용 하 여 연결 자체를 해결할.</li>
		<li>두 개의 마이크로 집게를 사용 하 여 팔목 몸에 IHVC의 선단부를 evert.</li>
		<li>6-0 비단 봉합으로 가장자리를 보호 합니다. IHVC 과정에서 왜곡 하지는 다는 것을 확인 하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>기증자의 PV에는 팔목을 연결할 PV에 3.1 단계를 반복 합니다.</li>
	<li>마그네틱 링 기증자의 SHVC (그림 4)에 연결 합니다.<ol>
<li>4 개의 집게를 통해 횡 경 막을 당겨 하 고 트림은 SHVC.</li>
		<li>티타늄 합금 마이크로 집게를 사용 하 여 자기 반지를 통해 SHVC를 전달 합니다.</li>
		<li>반지에는 SHVC의 선단부를 evert.</li>
		<li>6-0 비단 봉합으로 반지를 보안 합니다. SHVC 과정에서 왜곡 하지는 다는 것을 확인 하십시오.</li>
		<li>간 주위 초과 다이어 프 램을 제거 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>감기 정상적인 염 분 목욕에 기증자 간 담가 그리고 4 ° c.에 저장</li>
</ol>4. 받는 사람 작업
참고: 받는 사람 쥐에 이식 이식의 스키마는 그림 5에 표시 됩니다.
<ol><li>주입 buprenorphine (0.05 mg/kg) 피하는 진통제로 작업 하기 전에 1 시간 있습니다. Isoflurane 흡입에 의해 기증자 쥐를 anesthetize. 마 취 및 유량 0.6-0.8에서 2 vol %isoflurane 유도 유리 상자에 1.5 L/분의 유량에 사용 5 vol % isoflurane L/원뿔에 분 마 취의 유지 관리를 위해 마스크.</li>
	<li>쥐의 전체 복 부 피부를 면도. Povidone-요오드 솔루션 해당 피부 소독.</li>
	<li>4 cm 중간 절 개를 통해 복 부 구멍을 엽니다. 복 부 견인 기를 놓습니다. 갈비는 중간에서 가능한 멀리 떨어져 당겨.</li>
	<li>클램프 및 xiphisternum hemostatic 집게를 사용 하 여 머리 쪽으로 당겨. 결합 조직 그리고 간 주위 인 대 해 부. 선 하 고 간을 식도 인 대를 나눕니다. 선 고는 8-0 prolene 봉합으로 간 동맥을 나눕니다.</li>
	<li>첫 번째 간 포털에서 일반적인 담 관을 격리 합니다. 그것의 부분 바로 아래 일반적인 담 관 주위 6-0 비단 봉합 사 놓고 선 일반적인 담 관.</li>
	<li>오른쪽 신장 정 맥으로 IHVC 해 부. 선 고 바로 부 신 정 맥을 나눕니다. 장소 간 SHVC에 스트랩.</li>
	<li>Microvessel 클립 오른쪽 신장 정 맥 바로 위에 IHVC 클램프. Microvessel 클립 pyloric 정 맥의 수준에서 태양광을 클램프.<ol>
<li>간에서 피를, PV 통해 정상적인 염 분의 2 개 mL를 주사 천천히. 이전 배치 끈을 잡아 당겨 간 아래로 끕니다. Satinsky 클램프와 SHVC와 횡 경 막의 일부를 클램프.</li>
		<li>실질 가까운 IHVC와 porta hepatis에 PV transect. 간 바로 위에 SHVC transecting에 의해 간 소비 세. 받는 사람 간에 신속 하 게 제거 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>마그네틱 링 받는 사람의 SHVC에 연결 합니다.<ol>
<li>자기 반지에 받는 사람의 나머지 SHVC를 삽입 합니다.</li>
		<li>자기 매력에 의해 Satinsky 클램프에 자기 반지를 수정.</li>
		<li>그릇의 가장자리를 커버까지 자석 반지에는 SHVC evert.</li>
	</ol>
</li>
	<li>기증자 간 이식 orthotopically 놓고 차가운 젖은 거 즈로 그것을 커버 합니다.</li>
	<li>정상적인 염 분 해결책에는 기증자와 받는 사람의 SHVCs의 루멘을 채우십시오. 공기 색 전 증을 방지 하기 위해 철저 하 게 공기 방울을 제거 합니다. 자기 힘을 통해 함께 기증자의와 받는 사람의 SHVC에 포함 된 자석 반지 커플링 여 SHVC 재건을 마무리.</li>
	<li>PV를 재구성 합니다.<ol>
<li>요로 PV의 긴장을 유지 하는 8-0 prolene 봉합을 당겨 받는 사람의 PV의 오른쪽과 왼쪽 지점.</li>
		<li>정 맥을 완전히 노출 하려면 pylorus 정 맥 비장 정 맥을 내려 받는 사람의 PV의 클램프를 이동 합니다.</li>
		<li>받는 사람의 앞쪽 벽 incise 정상적인 염 분 해결책으로 PV의 루멘을 채우십시오.</li>
		<li>기증자의 PV의 팔목 확장을 곡선된 집게로 잡으십시오.</li>
		<li>일반적인 염 분으로 PV 루멘 홍 조 유지 하면서 받는 사람의 PV에 기증자의 PV의 팔목 본문을 삽입 합니다.</li>
		<li>안전한 그것을 완곡으로 6-0 실크 합자. PV와 SHVC에 클램프를 발표 함으로써 이식 간 혈액 흐름을 다시 설정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>4.11 재구성은 IHVC IHVC에 단계를 반복 합니다.</li>
	<li>텐트 기술에 의해 담 즙 덕트를 재구성 합니다.<ol>
<li>받는 사람 일반적인 담 관의 앞쪽 벽에 "V" incise</li>
		<li>받는 사람 BD의 루멘으로 기증자 텐트를 삽입 하 고 6-0 실크 원주 봉합으로 해결. 함께 두 개의 담 즙 덕트에는 봉합을 당겨 하 고 넥타이를 서로 가까이 BD 봉합.</li>
		<li>담 즙 누출을 방지 하기 위해 anastomotic 사이트 omentum 조직 포장.</li>
	</ol>
</li>
	<li>따뜻한 정상적인 염 분 해결책으로 복 강의 관개 복 부 절 개를 연속으로 2 층에서 3-0 비 흡수 되기 쉬운 외과 봉합을 닫습니다.</li>
	<li>관리 16 mg/kg 세 (항생제)와 0.05 mg/kg buprenorphine (진통제) 작업 후 피하 주입에 의해 즉시.</li>
	<li>쥐 깨끗 한 장에 음식 허용 놓고 광고 libitum물.</li>
	<li>주사 세 (16 mg/kg) 및 buprenorphine (0.05 mg/kg) 복 부 구멍으로 3 일 동안 매일 12 시간.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+half+century+(1961-2011)+of+applying+microsurgery+to+experimental+liver+research.">A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research.</a> World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).</li><li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+value+of+microsurgery+in+liver+research.">The value of microsurgery in liver research.</a> Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. 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Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">Orthotopic liver transplantation in rats.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).</li><li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. 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D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis+III:+delivery+of+a+magnetic+compression+anastomosis+device+using+minimally+invasive+endoscopic+techniques.">Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques.</a> Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).</li><li>Wall, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MAGNAMOSIS+IV:+magnetic+compression+anastomosis+for+minimally+invasive+colorectal+surgery.">MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery.</a> Endoscopy. 45, 643-648 (2013).</li><li>Xue, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Choledochojejunostomy+with+an+innovative+magnetic+compressive+anastomosis:+How+to+determine+optimal+pressure?.">Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure?.</a> World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).</li><li>Yan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portacaval+shunt+established+in+six+dogs+using+magnetic+compression+technique.">Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique.</a> PloS one. 8, e76873 (2013).</li><li>Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Repair+of+esophageal+atresia+with+proximal+fistula+using+endoscopic+magnetic+compression+anastomosis+(magnamosis)+after+staged+lengthening.">Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening.</a> Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).</li><li>Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis:+a+novel+technique+for+the+management+of+rectal+atresia.">Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia.</a> BMJ case reports. , (2014).</li><li>Shi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+ring+anastomosis+of+suprahepatic+vena+cava:+novel+technique+for+liver+transplantation+in+rat.">Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat.</a> Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).</li></ol>

저자는 공개 없다.

많은 임상 진행 간 이식 동물 연구를 지정할 수 있습니다. 쥐 OLT 장기 보존, 이식 면역학, 생리학과 병리학의 연구에서 널리 사용 되 고 잘 허용 모델 이다. 그러나, 그것은 또한 매우 복잡 한 절차 이며 고급 microsurgical 기술. 쥐 OLT의 절차에 많은 개선에도 불구 하 고 SHVC 문 합 도전 단계에 남아 있었다. 이 문서에서 우리는 쥐 OLT에서에서 SHVC 재건을 위한 새로운 자석 문 합 기술을 설명합니다. 이 기...

Orthotopic 간 이식 (OLT)의 쥐 모델 이식 연구1,2에 대 한 필수적입니다. 첫 번째 쥐 OLT 리 외. 19733에 의해 설명 되었다. 그 모델에 모든 선박 손 봉합 기술에 의해 재건 되었다. 손 봉합 기술을는 크게 그것의 이용을 제한 하는 고급 microsurgical 기술을 필요로 한다. 그 이후, 쥐 OLT의 원래 프로토콜에 대 한 다양 한 수정 보고 되었습니다. 그것은 크게4 재건축 절차 간소화 그들 가운데, 포털 정 맥 (PV) 및 infrahepatic 베 나 정 맥 (IHVC) 지금도 외. 1979 년에 보고의 문 합에 대 한 갑 기술이이 모델에 대 한 개선 간주 됩니다. . 그러나, 받는 사람의 suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 짧은 앞쪽 벽으로 인해 갑 기술은 매우 어렵습니다는 SHVC의 재건을 위해 사용 하. 이 분야에서 대부분 연구에서는 여전히 손 봉합 기술을 사용 하 여 병목 단계 게 쥐 OLT5,6,7에서 SHVC 재건에 대 한.
마그네틱 문 합 기술 (즉, magnamosis) 두 배 또는 2 개의 자석8,9,,1011사이 매력적인 힘을 사용 하 여 다른 관 구조를 연결 하는 방법 이다. 자기 힘은 점차적으로 압축 하 고 강한, sutureless 문 합12,13으로 개장 하는 조직. 이 압축 문 합 인간14,15에 효과가 입증 되었습니다. 우리는 한 쌍의 쥐에서 SHVC의 문 합에 맞게 자기 반지 디자인. 우리의 최근 연구 자석 문 합 기술은 이다 우수한 쥐 OLT16SHVC 재건에 대 한 손 봉합 기술을 보이고 있다. 이 문서의 목적은 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 상세한 단계별 프로토콜을 제공 하는 것입니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1148">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Anesthesia Machine</td>
			<td style="width:377px;">Harvard</td>
			<td style="width:119px;">&#160;tabletop</td>
			<td style="width:353px;">Animal anaesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System</td>
			<td style="width:377px;">Perlong Medical</td>
			<td style="width:119px;">PLX7000B</td>
			<td>It is mainly used for the angiography and photography of various operations</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">Syringe Pump</td>
			<td style="width:377px;">Mindray</td>
			<td style="width:119px;">BeneFusion SP5</td>
			<td>intravenous infusion</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:377px;">RWD life Science Co.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">iohexol</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai General Pharmaceutical Co</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>&#160;intravascular contrast media&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">heparin sodium injection</td>
			<td style="width:377px;">SPH No.1 Biochemical &#38; Pharmaceutical Co., LTD&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>&#160;prevent the formation of thrombosis&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">cefuroxime&#160;</td>
			<td style="width:377px;">Glaxo Operations UK Limited&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>an antibiotic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">buprenorphine&#160;</td>
			<td style="width:377px;">TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>an analgesic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">curved microforceps</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">W40350</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">hemostatic forceps(straight)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J31010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">hemostatic forceps(curved)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J31020</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Satinsky clamp</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">XEC050</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">needle holder</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J32010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">microneedle holder</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WBA040</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">notched forceps</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J42010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">tissue forceps(with hook)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J41010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">tissue scissor</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">Y00040</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">surgical scissors</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">Y00030</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">micro scissors</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">MR-S121T</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">microvessel clips</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">XEC240</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">straight microforceps(titanium alloy)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WCC010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">curved microforceps&#160; (titanium alloy)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WCC020</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rat model of orthotopic liver transplantation using a novel magnetic anastomosis technique for suprahepatic vena cava reconstruction

Orthotopic 간 이식 (OLT)의 쥐 모델 이식 연구를 위해 필수적 이다. 그것은 매우 정교한 동물 모델 하 고 가파른 학습 곡선을 필요로 합니다. 문맥 (PV) 및 infrahepatic 베 나 정 맥 (IHVC)의 문 합에 대 한 갑 기술 도입 방식이 크게 쥐에 이식 절차 간소화. 그러나, 받는 사람의 suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 짧은 앞쪽 벽으로 인해 갑 기술은 매우 어렵습니다는 SHVC의 재건을 위해 사용 하. 이 분야에서 대부분 연구에서는 여전히 손을 봉합 기술을 사용 하 여 SHVC 재건, 그것에 게 쥐 orthotopic 간 이식에서 병목 단계에 대 한. 마그네틱 문 합 기술 (즉, magnamosis) 두 배 두 자석 사이 매력적인 힘을 사용 하 여 연결 하는 방법 이다. 우리의 최근 연구 자석 문 합 기술은 이다 우수한 쥐에 SHVC 재건에 대 한 손 봉합 기술을 보이고 있다. 이 문서에서 우리는 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 단계별 프로토콜을 보여줍니다. 이 모델에 PV와 IHVC의 개조는 담 즙 덕트 (BD)의 재건 텐트 기술에 의해 수행 하는 동안 표준 팔목 기술에 의해 수행 되었다. 간장 재 arterialization은 수행 되지 않습니다. 마그네틱 문 합 기술 SHVC 재건 훨씬 쉽게 하 고 anphepatic 단계를 크게 단축. 합리적인 학습 곡선 후 고급 microsurgical 기술 없이 연구자는 OLT의이 쥐 모델을 사용 하 여 안정적이 고 재현 가능한 결과 생성할 수 있습니다.

약 10 번의 시도 후 SHVC 재건을 위한 마그네틱 문 합 기술은 성공적으로 이전 microsurgical 훈련 했다 연구원에 의해 마스터 했다. SHVC의 개조는 2 분 미만 했다. 받는 사람 쥐에 대 한 anhepatic 단계는 약 10 분 했다. 아니 혈전 증, 출혈 또는 angiostegnosis SHVC anastomotic 사이트에서 reperfusion 후 1, 5, 30 일에 관찰 되었다. 열 등 한 베 나 cavography는 이식 후 2 주에 수행 되었다. <strong class="x...

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A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

Suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 재건 쥐 orthotopic 간 이식에 어려운 단계에 남아 있다. 이 문서에서 우리는 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 단계별 프로토콜을 보여줍니다.

Orthotopic의 쥐 모델 간 이식 Suprahepatic 베 나 정 맥 재건에 대 한 새로운 자석 문 합 기술을 사용 하 여

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

9.8K 조회수.  First Affiliated Hospital, Xi'an Jiaotong University. Suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 재건 쥐 orthotopic 간 이식에 어려운 단계에 남아 있다. 이 문서에서 우리는 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 단계별 프로토콜을 보여줍니다.

비디오: A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Orthotopic 대동맥 이식 : 만성 Vasculopathy의 개발 연구에 생쥐 모델

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

연구

의학

Electrolytic Inferior Vena Cava Model (EIM) of Venous Thrombosis

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential therapeutic compounds (1). New compounds to be utilized in the treatment and prevention of DVT are currently being developed. The delivery of potential therapeutic antagonist compounds to an affected thrombosed vein has been problematic. In the context of therapeutic applications, a model that uses partial stasis and consistently generates thrombi within a major vein has been recently established. The Electrolytic Inferior vena cava Model (EIM) is mouse model of DVT that permits thrombus formation in the presence of continuous blood flow. This model allows therapeutic agents to be in contact with the thrombus in a dynamic fashion, and is more sensitive than other models of DVT (1). In addition, this thrombosis model closely simulates clinical situations of thrombus formation and is ideal to study venous endothelial cell activation, leukocyte migration, venous thrombogenesis, and to test therapeutic applications (1). The EIM model is technically simple, easily reproducible, creates consistent thrombi sizes and allows for a large sample (i.e. thrombus and vein wall) which is required for analytical purposes.

Electrolytic Inferior Vena Cava Model EIM of Venous Thrombosis

The electrolytic induction of endothelial activation to the internal surface of the Inferior Vena Cava results in venous type thrombus formation due to endothelial activation and partial blood stasis, two components of Virchow's triad.

정맥 혈전증의 전해 하부 대정 맥 모델 (EIM)

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential ...

Mouse Complete Stasis Model of Inferior Vena Cava Thrombosis

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE). In the United States (U.S.), the high morbidity and mortality rates make VTE a serious health concern 1-2. After heart disease and stroke, VTE is the third most common vascular disease 3. In the U.S. alone, there is an estimated 900,000 people affected each year, with 300,000 deaths occurring annually 3. A reliable in vivo animal model to study the mechanisms of this disease is necessary.
The advantages of using the mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis are several. The mouse model allows for the administration of very small volumes of limited availability test agents, reducing costs dramatically. Most promising is the potential for mice with gene knockouts that allow specific inflammatory and coagulation factor functions to be delineated. Current molecular assays allow for the quantitation of vein wall, thrombus, whole blood, and plasma for assays. However, a major concern involving this model is the operative size constraints and the friability of the vessels. Also, due to the small IVC sample weight (mean 0.005 grams) it is necessary to increase animal numbers for accurate statistical analysis for tissue, thrombus, and blood assays such as real-time polymerase chain reaction (RT-PCR), western blot, enzyme-linked immunosorbent (ELISA), zymography, vein wall and thrombus cellular analysis, and whole blood and plasma assays 4-8.
The major disadvantage with the stasis model is that the lack of blood flow inhibits the maximal effect of administered systemic therapeutic agents on the thrombus and vein wall.

The mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis yields quantifiable amounts of vein wall tissue and thrombus. It has proven useful for evaluating interactions between the vein wall and the occlusive thrombus and in assessing the progression from acute to chronic inflammation.

하부 대정 맥 혈전증의 마우스 완전한 스테이 시스 모델

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE).  In the United States (U.S.), the high morbidity and ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

쥐에게 Orthotopic 간 이식

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

간 간선 재건과 부분 Orthotopic 간 이식의 쥐 모델에 대한 외과 절차

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. The long-term clinical results showed excellent patency rates, however, with significant incidence of stenosis. To investigate the cellular and molecular mechanisms of vascular neotissue formation and prevent stenosis development in tissue engineered vascular grafts (TEVGs), we developed a mouse model of the graft with approximately 1 mm internal diameter. First, the TEVGs were assembled from biodegradable tubular scaffolds fabricated from a polyglycolic acid nonwoven felt mesh coated with &#949;-caprolactone and L-lactide copolymer. The scaffolds were then placed in a lyophilizer, vacuumed for 24 hr, and stored in a desiccator until cell seeding. Second, bone marrow was collected from donor mice and mononuclear cells were isolated by density gradient centrifugation. Third, approximately one million cells were seeded on a scaffold and incubated O/N. Finally, the seeded scaffolds were then implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. The implanted grafts demonstrated excellent patency (&#62;90%) without evidence of thromboembolic complications or aneurysmal formation. This murine model will aid us in understanding and quantifying the cellular and molecular mechanisms of neotissue formation in the TEVG.

To improve our knowledge of cellular and molecular neotissue formation, a murine model of the TEVG was recently developed. The grafts were implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. This model achieves similar results to those achieved in our clinical investigation, but over a far shortened time-course.

마우스 모델에서 하대 정맥 끼어 이식의 주입

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation waiting list die without receiving an organ transplant or are delisted due to disease progression. Even after a successful transplantation, rejection and side effects of immunosuppression remain major concerns for graft survival and patient morbidity. 
Experimental animal research has been essential to the success of liver transplantation and still plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. In particular, the porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) is optimal for clinically oriented research for its close resemblance to human size, anatomy, and physiology. 
Decompression of intestinal congestion during the anhepatic phase of porcine OLTx is important to guarantee reliable animal survival. The use of an active porto-caval-jugular shunt achieves excellent intestinal decompression. The system can be used for short-term as well as long-term survival experiments. The following protocol contains all technical information for a stable and reproducible liver transplantation model in pigs including post-operative animal care.

Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

활성 포르토 대정맥 션트를 사용하여 돼지 간 조달 및 동소 이식 이식의 기술

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.

췌 장 이식 수정된 팔목 기술을 사용 하 여 마우스 모델

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, we developed a rat model of patch angioplasty that can be used in either a vein or an artery, creating a patch venoplasty or a patch arterioplasty, respectively. Technical aspects of this model are discussed. The infra-renal IVC or aorta are dissected and then clamped proximally and distally. A 3 mm venotomy or arteriotomy is performed in the infrarenal inferior vena cava or aorta of 6 to 8 week-old Wistar rats. A bovine pericardial patch (3 mm x 1.5 mm x 0.6 mm) is then used to close the site using a 10-0 nylon suture. Compared to arterial patches, venous patches show increased neointimal thickness on postoperative day 7. This novel model of pericardial patch angioplasty can be used to examine neointimal hyperplasia on vascular biomaterials, as well as to compare the differences between the arterial and venous environments.

We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

쥐 대동맥 또는 하대 정맥에 혈관 성형술 패치

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

직교 쥐 신장 이식: 새롭고 단순화 된 외과 접근

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...