Name: a model of free tissue transfer: the rat epigastric free flap
Uploaded: 2017-01-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 10 s
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저자 (디오 카살) 중 하나는 Fundação Calouste 굴벤 키안, Fundação Champalimaud, Ministério 다 Saúde 전자 Fundação 파라 Ciência 전자 TECNOLOGIA, 포르투갈 후원 고급 의료 교육을위한 프로그램에서 보조금을 받았다. 저자는 촬영과 비디오를 편집 씨 알베르토 세 베리의 기술적 도움을 감사의 말씀을 전합니다. 저자는이 논문에서 제시 한 동물 표본을 준비하는 그들의 도움 씨 옥타비오 Chaveiro 씨 마르코 코스타 씨 카를로스 로페스에 감사하고 있습니다. 마지막으로, 저자는 동물의 획득 및 유지 보수에 관한 모든 물류 측면에서 그녀의 도움을 양 Gracinda 메네 제스에게 감사의 말씀을 전합니다.

동물 주제와 관련된 모든 절차는 기관 동물 관리 및 사용위원회와 윤리위원회 노바 대학 의과 대학, 리스본, 포르투갈 (08 / 2012 / CEFCM)에 의해 승인되었다. 1. 수술 셋업 노트 <ol><li> 250g (350)에 무게 성인의 Wistar 쥐를 사용합니다. </li><li> 수술 7 일 전에 12 시간 명암주기 음식과 물 광고 무제한으로 쥐를 유지합니다. </li><li> 필요한 마취 량을 측정하기 위해서 래트를 체중. </li><li> 수술 전에 수술 도구를 압력솥. </li><li> 레이아웃 모든 수술 용품 및 악기 절차 (재료의 표 참조)이 필요했다. </li><li> 종래의 미세 수술기구를 사용하여 동작 현미경 수술을 수행한다. </li><li> homeothermic 담요, 직장 프로브 및 열 램프를 배치합니다. </li><li> 수욕은 가온 0.9 % 식염수를 함유 한 20 ㎖의 멸균 된 유리 병을 놓고37 ºC. </li><li> 알콜 용액으로 운영 설정의 모든 표면을 소독 멸균 장갑을 착용 할 것. 장갑을 제거합니다. </li><li> 스크럽 모자와 마스크를 놓습니다. </li><li> 물과 비누로 손을 소독 및 멸균 장갑의 또 다른 한 쌍을 착용하십시오. </li><li> 무균 수술 가운을 착용 할 것. </li></ol> 2. 마취 및 피부 준비 참고 : 무균 가운으로, 다음의 네 단계와 조수의 도움을 가지고와 장갑을 착용한다. <ol><li> 복강 주어진 케타민 및 디아제팜의 혼합물로 생쥐를 마취. 투여 량은 5 ㎎ / ㎏의 케타민 및 0.25 ㎎ / ㎏ 디아제팜이다. 발가락 핀치에 의해 전체 절차 8,14,15,32을 통해 호흡 속도의 준수에 의해 마취의 깊이를 판단. </li><li> 각막 마모를 방지하기 위해 눈의 앞쪽 표면 안과 겔을 적용합니다. </li><li> 제모 크림과 함께 복부의 복부 표면에 머리를 제거합니다. 머리 remov 후알은 따뜻한 식염수로 제모 크림을 제거합니다. </li><li> 수술 부위를 통해 알콜 용액을 상당량 살포. 수술 부위에 제품을두고 닦아하지 않습니다. 적어도 15 초를 기다립니다. 응용 프로그램을 3 회 반복합니다. 수술을 진행하기 전에 최소 2 분의 접촉 시간을 떠난다. 다른 연구 단위는 수술 부위에 감염을 방지하기 위해 다른 프로토콜을 사용한다. </li><li> 멸균 장갑을 착용, 쥐의 양쪽에 2 외과 드레이프를 놓습니다. </li></ol> 3. 기증자 사이트 수술 <ol><li> 길이 약 5 cm이고, 3cm 폭을 범위의 상복부 플랩의 경계를 설정합니다. <ol><li> 외과 피부 마커를 사용하여 쥐의 복부의 복부 표면에 중간 선을 표시하기 위해, 치골에 흉골의 칼 모양의 과정에서 선을 그립니다. </li><li> 외과 피부 마커를 사용하여 쥐의 왼쪽에, 첫 번째 줄에 두 개의 수직 선을 그릴 :에전자 흉부 케이지에 바로 꼬리 건너, 후자와 사타구니 배에 불과 두개골에 평행 한 또 하나, (그림 3, 6). </li><li> 정중선과 떨어져에서 3cm의 주위에 평행 한 선을 가진 외과 피부 마커 횡 절개를 표시합니다. </li></ol></li><li> 플랩 수확 <ol><li> panniculus의 카르노 서스 층에 도달 할 때까지 다수의 15 메스 블레이드 피부를 절개. </li><li> panniculus의 카르노 서스면에 더 깊은, 근육 근막에 도달 할 때까지 전기 소작으로 절개를합니다. </li><li> 플랩의 척추 경을 노출 횡 방향하는 내측에서 플랩을 올리고 뇌에서 꼬리에. </li><li> 조심스럽게 결찰 및 천공 혈관이 깊은 근육 층에서 올라오고 플랩의 깊은 표면에가는 나눕니다. </li><li> 플랩의 꼬리 측면에서 트랙터를 놓고 조심스럽게 괴롭 히고에 의해 조심스럽게 플랩의 척추 경을 해부멀리 느슨한 주위 조직 (그림 7). </li><li> 결찰 및 외측 대퇴 곡절 동맥을 분할하고 합자에 대한 9/0 나일론을 사용하여 정맥. </li><li> 대퇴 동맥과 정맥을 분리합니다. 존재하는 경우, (9/0 나일론을 사용하여) 결찰 및 인접 근육이 혈관의 가지를 나눕니다. </li><li> 첫째, 대퇴 정맥의 근위 측면을 고정하는 이중 혈관 클램프를 사용합니다. 다음의 말단 부분을 클램프. 그런 다음, 대퇴 동맥의 말단 측면과 마침내 근위 측면을 클램프. </li><li> 상기 대퇴 동맥의 말단 측면과 마침내 근위 측면을 클램프. </li><li> 피상적 인 상복부 정맥의 단일 혈관 클램프 및 표면 상복부 동맥에 다른 하나를 놓습니다. 각각 자신의 기원과 종료에 표면 상복부 동맥과 정맥을 잘라 바로 미세의 가위를 사용합니다. </li><li> 풍부하게 헤파린 생리 식염수 10 IU / ml의 이러한 혈관의 내강을 관개아무 혈액이나 파편은 선박 &#39;루멘 (33) 안에 표시되지 않을 때까지. </li><li> 당겨 혈관 섹션 사이트에 가까운 외막의 커프 트림. </li><li> 애디슨의 집게 (그림 8)를 사용하여 목에 상복부 플랩을 전송합니다. </li><li> 표피 하과 기증자 사이트를 닫기 5/0 흡수 바늘을 중단. </li><li> 중단 5/0 나일론 바늘로 피부를 닫습니다. </li></ol></li></ol> 4.받는 사이트 수술 <ol><li> 받는 사이트 선박의 노출 <ol><li> 외과 피부 마커를 사용하여 왼쪽 흉쇄 (SCM) 근육의 내측 경계 위에 선을 그립니다. </li><li> 외과 피부 마커를 사용하여 즉시 두개골 다른 선을 그리고 왼쪽 쇄골에 평행. 이 두 라인은 왼쪽 흉쇄 관절에 수렴해야합니다. </li><li> 번호 15 메스 블레이드를 사용하여 피부를 절개. </li><li> subcutaneou을 극복하기 위해 전기 소작을 사용하여의 조직. </li><li> 는 SCM 근육에 측면 외부 경정맥을 해골로 가위를 해부 한 쌍을 사용합니다. </li><li> 격리이 (그림 9)에서 외부 경정맥의 지류를 결찰. </li><li> 단지 9/0 나일론 봉합사와 하악 아래 외부 경정맥을 결찰. </li><li> 후자 내고 아래에 하나의 정맥 클램프를 놓고 직선 미세의 가위를 사용하여 정 맥 외부 경정맥을 절단. </li><li> 10 IU / ml의 농도에서 헤파린 생리 식염수로 정맥의 루멘을 씻으십시오. </li><li> 는 SCM 근육의 중간 마진을 분리함으로써 경동맥과 미주 신경 (그림 10) 노출 측면이 근육을 수축. </li><li> 전기 소작을 사용하여 SCM 근육의 중간 세 번째에 가로 절개를합니다. </li><li> 는 SCM 근육의 깊은 표면과 스트랩 근육 사이의 트랙터를 놓습니다. </li><li> 경동맥에서 미주 신경을 멀리 애타게동맥, 돌보는는 이러한 구조를 손상하지. </li></ol></li><li> 혈관 문합 <ol><li> 경동맥에 두 번 동맥 클램프를 놓습니다. </li><li> 경동맥의 측면 측면에서 9/0 나일론 스티치를 배치하고, 혈관 벽의이 부분을 당겨이 스티치를 사용합니다. </li><li> 용기 벽의이 영역에 개구를 생성하기 위하여 미세 직선 위의 쌍을 사용한다. </li><li> 10/0 나일론 봉합사는 플랩의 표면 상복부 동맥과 최근에 만든 경동맥 개방의 수준에서 경동맥 사이에 termino - 측 문합 수행 중단 사용. </li><li> 외부 경정맥의 근위 그루터기와 표면 상복부 정맥 접근이 두 혈관의 구경을 검사합니다. <ol><li> 크기의 차이가 중간에 약간의 경우, 팽창 집게를 사용하여 표면 상복부 정맥의 절단 끝의 루멘을 팽창. </li><li> 구경 차가 매우 포르노 인 경우ounced는 포셉 팽창 이외에 30 ~ 45 °의 각도에서 표면 상복부 정맥 끝 베벨. </li><li> 사용하여 정맥 문합을 수행는 11/0 나일론 봉합사를 중단. </li></ol></li><li> 플랩의 혈관에 배치 된 하나의 클램프를 제거합니다. </li><li> 대퇴 정맥에 위치 더블 클램프를 제거합니다. </li><li> 대퇴 동맥에 위치 더블 클램프를 제거합니다. </li></ol></li><li> 문합의 개통과 역량을 평가 <ol><li> 플랩의 동맥과 정맥이 완전히 팽창하고 유의 한 출혈이 혈관 클램프 (그림 11)를 제거의 3 분 후에 관찰되지 않은 경우 확인합니다. <ol><li> 이 기간 동안 출혈되면 문합을 통해 촉촉한 식염수 거즈를 배치하고 부드러운 압력을 적용합니다. </li><li> 문합에서 출혈 3 분 후 중지하지 않는 경우, 필요에 따라 나일론, 혈관 클램프 배치 후 봉합을 중단 11/0 추가 추가 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 따뜻한 식염수에 적신 거즈로 목 혈관에 연결하고 포장 플랩으로 10 분을 기다립니다. </li><li> 플랩의 관류과 목에 상처 지혈을 평가합니다. 출혈, 혈전증 또는 과도한 견인의 징후에 대한 문합을 검사합니다. </li><li> 5/0 표피 하 중단 된 봉합사로 시작하는받는 사이트의 플랩을 고정합니다. </li><li> 나일론 봉합사를 중단 5/0로 피부 (그림 12)를 닫습니다. </li></ol></li></ol> 5. 수술 후 케어 <ol><li> 오른쪽 측면 욕창 위치에 개별 케이지 안에 복구 할 수있는 쥐를 남겨주세요. 아래 낮은 설정 전기 열 패드를 배치하여 새장을 따뜻하게 유지. 케이지와 고열을 방지하기 위해 전기 열 패드 사이의 빛 천을 놓습니다. </li><li> 시계는 흉골 드러 누움을 재개 할 때까지 동물 지속적으로 반대 측와위로 매 5 분을 돌려 ambulate 할 수있다. </li><li> 하우스 개별적으로 쥐 제거 t까지그는 2 주 수술 후 수술 바늘. </li><li> 수술 후 통증에 대한 항 염증 약물 1 밀리그램 / 수술 후 3 일 동안 kg 피하 하루에 한 번을 부여합니다. </li></ol> 6. 플랩 평가 <ol><li> 쥐의 머리 위에 음식 대접을 제시하고 육안 검사에 의해 플랩의 생존 능력을 평가합니다. </li><li> 노출 이전 단계를 사용하여 부족한 경우, 플랩을 검사하는 동안 조수가, 쥐의 견갑골 영역을 통해 부드러운 터치를 적용해야합니다. </li><li> 트루 히요 등에 의해 상세히 설명 된 바와 같이 정량적으로, 상처 열개, 플랩 표피, 충혈, 혼잡 및 / 또는 괴사의 영역을 평가하기 위해 디지털 사진 및 ImageJ에 소프트웨어를 사용합니다. 15. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

The most important aspect to obtain consistent flap survival is paying attention to detail in various steps of the microsurgical technique. For example, to obtain good visualization of the vessels, of the surgical instruments and of the fine suture lines, it is very helpful to place underneath the vessels, a sterilized colored plastic background. As many researchers, we prefer to use sterilized fragments of yellow or green balloons (Figures 7 and 11). This background provides the additional advantage of minimizing adherence of suture lines to the adjacent structures, which sometimes leads to the need of pulling the suture line with too much tension, which may in turn lead to vascular tearing. Finally, the use of a background has the additional advantage of decreasing the probability of inadvertently dragging potential thrombogenic tissue debris to the anastomosis site.
Considering that the flap's vessels are very fine and fragile, it is important not to pinch the entire width of the vessels, in order to avoid intimal lesion that, in turn, will lead to intravascular thrombosis and flap failure. To prevent inadvertent injury to both the flap's vessels and to the recipient site's vessels, it is safer to liberally ligate and divide neighboring tributaries, which will allow an easier manipulation of these vessels.
Before starting the anastomoses, it is vital to place the vessels in their definitive position, striving to prevent vascular kinking or torsion of the flap's pedicle. Given the small caliber and delicate consistency of the vessels, these are often difficult to exclude unequivocally. One helpful trick is to secure the flap in its final position with 3 stitches placed away from the site of the anastomoses. Next, if in doubt, temporarily open the vascular clamps placed at the flap's pedicle, and fill the vessels' lumen with heparinized normal saline in a concentration of 10 IU/mL until they become engorged. This leads vessels to assume the configuration they will present after being perfused by blood, as when the clamps are removed after anastomoses completion.
Moreover, it is of paramount importance to detect any air bubbles, even if small, inside the vessels during the entire procedure and particularly before tying the final stitches. If these bubbles are distant from the vascular section, the vessels can be milked gently with microsurgical forceps. If they are located close to the anastomotic sites, simple irrigation leads the less dense bubbles to be easily expelled from the vascular lumen. Failure to acknowledge the presence of air bubbles can cause irreversible flap ischemia and necrosis, no doubt due to the fine caliber of the flap vessels. 
Additionally, it cannot be overemphasized the need for meticulous care while passing and tying the stitches, in order to: include the three layers of the vessels (intima, media and adventitia); obtain good vessel eversion to ensure adequate intimal contact, which is vital to anastomosis sealing and endothelial regrowth; avoid loose vascular contact, which will result in anastomotic incompetence, i.e., bleeding; and avoid grabbing too much vascular tissue, which will lead to anastomosis stenosis and proclivity to thrombosis, which in turn will result in venous congestion or poor flap perfusion, if the vein or artery are involved, respectively.
Finally, it is essential to ensure perfect hemostasis, during the entire procedure, especially when raising the flap in its deep surface. Otherwise hematoma formation and rat death are likely to ensue.
Modifications and troubleshooting of the technique
The authors observed that making a transverse incision in the middle portion of the SCM using an electric cautery, not only allows a better exposure of the carotid artery, but also minimizes the risk of undue tension over the future arterial anastomosis.
Another important technical tip is to start the anastomosis from the vessels' back wall, in order to minimize the risk of unwillingly catching this wall when placing the stitches in the more easily exposed front wall. If the back wall is sutured to the anterior aspect of the anastomosis, lack of vascular patency will almost invariably result either immediately due to mechanical reasons or after only a few hours as a result of thrombosis8. 
If the anastomoses of the epigastric vessels of the rat are considered too technically challenging due to the small caliber of these vessels, the femoral vessels can be ligated distal to the origin of the epigastric vessels and used as the vascular pedicle of the epigastric flap. In this way, larger vessels will be used (the femoral artery has a caliber of 1.0 to 1.2 mm; and the femoral vein has a caliber of 1.2 to 1.5 mm). Moreover, by dissecting and ligating the other tributaries of the femoral vessels, a vascular pedicle length of over 2 cm can be obtained, which will facilitate flap insetting18,34,35. 
Reproducibility
Our experience of more than ten years of using this flap for teaching and research purposes strongly suggests that the rat epigastric flap is a reproducible model of free tissue transfer11,13,17,18,26. It can be easily incorporated in microsurgical courses, as it is a good teaching and training model for microsurgery trainees11,13,17,18,26. In our experience, although technically challenging in the beginning for the novice in microsurgery, after some training, the free epigastric flap can be successfully transferred to the neck of the rat with minimal to no subsequent necrosis in 70 to 80% of cases. These results concur with those generally reported in the literature13,18,36. 
Significance with respect to existing methods
Numerous free flaps have been described in the rat10,16,18,37-39. The most commonly used for teaching and research purposes have been the transverse rectus abdominis myocutaneous flap, the latissimus dorsi and serratus anterior muscle flaps, the hind limb replantation model, and the epigastric (groin) flap18,35. These flaps have been favored, due to their consistent anatomy and sizeable vascular pedicle. The epigastric flap is arguably the one associated with lesser donor site morbidity, as it dissected above the muscle fascia18. Moreover, the epigastric flap, described in 1967, was the first flap to be described in rats34,35. This occurred only 4 years after the first description of an experimental flap in an animal by Goldwyn. Interestingly, this flap was a groin flap in the dog34. 
Limitations of the technique
The two main limitations of this model are the need for microsurgical skills in order to carry out the surgery, and the presence of significant necrosis in 20 to 25% of cases, according to different authors13,18,36. Another potential limitation of the model herein presented is the auto cannibalism of the flap. However, as the authors above, this is an infrequent finding that almost only occurs in cases of total flap necrosis.
Future applications of the technique
The rat epigastric free flap can be used in experimental studies of tissue perfusion, tissue repair and surgical wound infection40,41. Its nutrient vessels are particularly suitable for intravascular injection of solutions containing substances of interest, namely drugs, viral vectors or liposomes, that will mostly produce a local or regional effect30,31. In addition, beneath the flap, pathogens, foreign bodies, radioactive seeds or chemicals can also be placed, mimicking several disease processes and potential treatments30,31.

무료 조직 전송은 점점 1970 1-5 실종 조직을 재구성하기 위해 임상에 사용되고있다. 이는 종양 적출술, 외상, 감염, 기형이나 화상 1-7으로 인한 복잡하고, 그렇지 않으면 치료가 결함의 재건을 허용했다. 이런 종류의 무료 플랩은 머리와 목, 손, 다리들, 그리고 회음부 1,4처럼 매우 복잡한 해부학 적 영역을 재구성 특히 유용하다. 그러나, 오늘은 수술 연수생은 자주 제기 전송 및 미세 수술 기법과 악기 8,9를 사용하여 무료 플랩을 insetting에 관련된 여러 단계의 복잡성에 의해 daunted된다. 또한, 널리 실력 microsurgeon 될 것이 허용되며, 동물 모델에서의 광범위한 실험 방법은 4,8-13 필수적이다. 또한, 기본 및 중개 연구무료 조직 전송 분야에서 큰 임상 전위 8,14-16이다. 그럼에도 불구하고, 연구자들은 자주 인해 수술 절차 4,8-14 관련된 기술적 측면에 관한 정보 부족으로 조직의 미세 수술 전달 모델을 사용 저지된다. 그것은 자주 조작 8,11,13,14,17,18을 유지하기 쉽고, 의무, 상대적으로 저렴 같이 쥐, 미세 수술 연구와 교육을위한 좋은 동물 모델이다. 몇몇 무료 뼈, 근육 및 피부 플랩 래트 18-24에서 설명되었지만, 프리 상복부 fasciocutaneous 플랩 널리 교시 9,12,13,18,25 목적을 위해 사용된다. 이 무료 플랩 어 첫 번째 Strauch 머레이에 의해 1967 년에 기술되었다 인해 여러 가지 요인, 기증자의 영역, 즉 일정한 혈관 해부학, 해부의 상대적 용이성, 상당한 영양 혈관, 피부의 중복에, 그 이후로 인기를 증가 얻고있다무형 문화 유산은 플랩의 고도 4,9-11,13,17,18,25-28에서 발생하는 결함의 기본 폐쇄 할 수 있습니다. 플랩 해부학과 조직학 상복부의 플랩은 표면 상복부 동맥 및 정맥 (그림 1)에 의해 제공됩니다. 이 선박에서 발생한 각각 대퇴 동맥과 정맥에 드레인. 평균적으로 피상적 상복부 혈관의 구경 (그림 2) 17, 18 피상적 인 상복부 동맥의 0.3 ~ 0.5 mm 대조, 0.6 ~ 0.8 mm이다. 측면과 차례로 상복부 지역의 외피의 대부분을 공급하는 모세 혈관 네트워크를 발신, 여러 번 나누어 내측 지점 : 피상적 상복부 동맥 두 가지 주요 지점을 제공합니다. 이러한 모세 혈관은 (그림 2) 13,17,18 동맥 트리 병렬 과정을 피상적 상복부 정맥의 지류로 배출. 그림 3 재에도상복부의 플랩에 동원 할 수있는 피상적 인 상복부의 선박에 의해 공급되는 ventrolateral 복부 벽의 영역을 제공합니다. 이 플랩의 길이는 최대 5cm, 폭 13,17,18에서 3cm 될 수 있습니다. 조직 학적으로, 플랩은 ventrolateral 복벽 근육 (그림 4) 13,17,18를 덮고있는 외피로 구성되어있다. 그것은 진피와 표피에 의해 형성된 피부의 표면 층을 포함하고 있습니다. 피부 아래에 adiposus panniculus라는 지방 조직의 층이있다. 이 층 아래 panniculus의 카르노 서스 18,28,29로 알려진 횡문근의 또 다른 층이있다. panniculus의 카르노 서스 아래 큰 복부 근육을 덮고있는 깊은 근막에 피상적이고 느슨한 유륜 조직이있다. 따라서, 플랩이 깊은 근육 근막을 제외한 모든 층을 포함하는 복합 조직의 블록이다 (도 5) (1)3,17,18,27-31.

<table><tbody><tr><td>Skin Skribe Surgical Skin Marker</td><td>Moore Medical</td><td>31456</td><td>https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/&lt;br/&gt; &amp;amp;PG=CTL&amp;amp;CS=&lt;br/&gt; HOM&amp;amp;FN=ProductDetail&amp;amp;&lt;br/&gt; PID=1740&amp;amp;spx=1</td></tr><tr><td>Micro retractor</td><td>Fine Science Tools</td><td>RS-6540</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Graeffe forceps 0.8 mm tips curved</td><td>Fine Science Tools</td><td>11052-10</td><td>http://www.finescience.de</td></tr><tr><td>Acland clamps</td><td>Fine Science Tools</td><td>00398 V</td><td>http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf</td></tr><tr><td>Clamp applicator</td><td>Fine Science Tools</td><td>CAF-4</td><td>http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf</td></tr><tr><td>High-Temperature Cautery</td><td>Fine Science Tools</td><td>AA03</td><td>http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp</td></tr><tr><td>Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124</td><td>Fine Science Tools</td><td>D-5a.2</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109</td><td>Fine Science Tools</td><td>JFA-5b</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108</td><td>Fine Science Tools</td><td>JF-5</td><td>http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Acland Single Clamps B-1V (Pair)</td><td>Fine Science Tools</td><td>396</td><td>&amp;nbsp;http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight</td><td>Fine Science Tools</td><td>67</td><td>&amp;nbsp;http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT</td><td>Fine Science Tools</td><td>EA7613-11</td><td>&amp;nbsp;http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT</td><td>Fine Science Tools</td><td>EA7652-14</td><td>&amp;nbsp;http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Derf Needle Holders 12 cm TC</td><td>Fine Science Tools</td><td>703DE12</td><td>&amp;nbsp;http://www.merciansurgical.com</td></tr><tr><td>Monosyn 5-0</td><td>B.Braun</td><td>15423BR</td><td>http://www.mcfarlanemedical.com.au/&lt;br/&gt; 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a model of free tissue transfer: the rat epigastric free flap

Free tissue transfer has been increasingly used in clinical practice since the 1970s, allowing reconstruction of complex and otherwise untreatable defects resulting from tumor extirpation, trauma, infections, malformations or burns. Free flaps are particularly useful for reconstructing highly complex anatomical regions, like those of the head and neck, the hand, the foot and the perineum. Moreover, basic and translational research in the area of free tissue transfer is of great clinical potential. Notwithstanding, surgical trainees and researchers are frequently deterred from using microsurgical models of tissue transfer, due to lack of information regarding the technical aspects involved in the operative procedures. The aim of this paper is to present the steps required to transfer a fasciocutaneous epigastric free flap to the neck in the rat.
This flap is based on the superficial epigastric artery and vein, which originates from and drain into the femoral artery and vein, respectively. On average the caliber of the superficial epigastric vein is 0.6 to 0.8 mm, contrasting with the 0.3 to 0.5 mm of the superficial epigastric artery. Histologically, the flap is a composite block of tissues, containing skin (epidermis and dermis), a layer of fat tissue (panniculus adiposus), a layer of striated muscle (panniculus carnosus), and a layer of loose areolar tissue.
Succinctly, the epigastric flap is raised on its pedicle vessels that are then anastomosed to the external jugular vein and to the carotid artery on the ventral surface of the rat's neck. According to our experience, this model guarantees the complete survival of approximately 70 to 80% of epigastric flaps transferred to the neck region. The flap can be evaluated whenever needed by visual inspection. Hence, the authors believe this is a good experimental model for microsurgical research and training.

미세 과정의 맥락에서 연구 목적을 위해 모두 무료로 조직 전송의 모델로 상복부 무료 플랩을 사용하여 10 년 이상의 저자의 경험에 따르면, 플랩 생존의 속도는 외과 의사의 민첩성과 경험에 다소 의존 . 전술 한 기술적 인 측면을 고려하는 경우 일반적으로, 거의 전체 생존율 (&lt;플랩 괴사 10 %) 플랩의 약 70 %는 예상 할 수있다. 플랩의 약 10 %는 부분적인 괴사 (10 내지 50 %)을 제시한다. 플랩의 약 20 %가 완전 괴사를 겪는다. 약 80 %의 전체 생존율은 저작 제 (DC) (도 13)에 의해 수행되는 절차를 지난 20을 얻었다. 수술 후 처음 두 일 동안 무료 상복부 플랩은 종종 부종과 정맥 울혈의 어느 정도를 제공합니다. 이러한 일반적으로 봇시간 가라 수술 후 점차 세 사이의 오일. 일반적으로 첫 주 동안 쥐들은 약간의 상처 열개의 분산 영역 (그림 14)의 결과로, 대부분의 외장 바늘과 표피 하 봉합의 일부를 제거합니다. 10 일 후, 머리를 천천히 플랩의 표면에 성장하기 시작합니다. 수술 후 첫 달의 끝에서, 플랩은 일반적으로 인접한 피부보다 약간 짧은 모발에 덮여있다. 두 달 수술, 플랩의 존재는 약간의 덩어리에 의해 예고하고 플랩의 가장자리 주위에 상대적으로 눈에 띄지 않는 상처 (그림 14)입니다. 플랩의 자동 식인 풍습은 저자의 경험에서, 총 플랩 괴사의 경우에 거의 독점적으로 발생 드문 발견이다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig1.jpg" /> 그림 1 : 상복부 무료 FLA의 혈관 해부학피. 이 사진은 이전에 동맥 시스템에 빨간색 라텍스 솔루션과 정맥 시스템의 블루 라텍스 용액을 주입 한 쥐의 왼쪽 상복부 영역을 보여줍니다. 상복부 영역이 표면 상복부 동맥 및 정맥 축 혈액 공급을받는 것을 관찰 할 수있다. 이 선박에서 발생한 각각 대퇴 동맥과 정맥에 드레인. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig2.jpg" /> 그림 2 : 상복부 무료 플랩에 미세 혈관의 혈액 공급을 나타내는 표면 상복부 선박의 부식 캐스트의 스캐닝 전자 현미경 이미지. superfi의 부식 캐스팅이 주사 전자 현미경 이미지쥐의 인공 상복부 혈관은 정맥은 동맥이 더 큰 구경을 가지고 있음을 보여준다. 평균적으로 피상적 상복부 혈관의 구경은 피상적 인 상복부 동맥의 0.3 ~ 0.5 mm에 비해 0.6 ~ 0.8 mm이다. 측면과 차례로 상복부 지역의 대부분을 공급하는 모세 혈관 네트워크를 발신, 여러 번 나누어 내측 지점 :이 이미지는 또한 표면 상복부 동맥이 두 가지 주요 지점을 기원 것을 알 수있다. 이러한 모세 혈관은 동맥 트리 병렬 과정을 피상적 상복부 정맥의 지류로 배출. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig3.jpg" /> 그림 3 : 쥐의 왼쪽 상복부 무료 플랩의 잠재적 인 영역입니다. 이 그림의 파트 :피상적 인 상복부의 선박에 의해 공급되는 복부 벽의 영역을 변위량하고는 상복부 플랩에 동원 될 수있다. 이 플랩은 최대 길이 5cm, 폭 3cm로 할 수있다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig4.jpg" /> 그림 4 : 상복부 플랩의 hematoxilin - 에오신 염색 부분의 사진입니다. 상복부의 지역이 hematoxilin - 에오신 염색 섹션은 상복부 플랩이 복벽 근육을 커버이 지역의 외피로 구성되어 있음을 보여줍니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 그림 5 : 상복부 플랩의 조직 학적 조성물. 우측의 사진은,이 플랩의 메이슨 트리 크롬의 부로부터 얻은 반면, 왼쪽 사진은 상복부 플랩의 hematoxilin 실린 - 에오신 염색 섹션을 나타낸다. 이 두 사진은 쥐의 상복부 플랩는 조직의 복합 블록 있음을 보여줍니다. 그것은 진피와 표피에 의해 형성된 피부의 표면 층을 포함하고 있습니다. 피부 아래에 adiposus panniculus라는 지방 조직의 층이있다. 이 층 아래 panniculus의 카르노 서스로 알려진 가로 무늬 근육의 층이있다. panniculus의 카르노 서스 아래에는 크고 깊은 복부 근육을 커버하는 깊은 근막이있다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오</a>. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig6.jpg" /> 그림 수술 전에 쥐의 복부 표면에 6. 수술 전 피부 표시. 이 사진은 왼쪽 상복부 플랩을 인상하고 이후 왼쪽 자궁 지역의 복부 측면이 플랩을 인세하는 데 사용되는 절개의 스킨 표시를 보여줍니다. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig7.jpg" /> 그림 7. 운영 현미경 (10X 배율)에서 상복부 플랩의 영양 혈관 외과 해부학. 이 사진은 피상적 인 상복부 동맥과 정맥에서 발생하는 각각 대퇴 동맥에 배수 및 정맥 보여줍니다. 측면 대퇴 곡절 동맥은 일반적으로 피상적 인 에피의 꼬리 측면에서 발생위 동맥. 측면 대퇴 곡절 정맥 비슷한 경로를 가지고 있으며, 일반적으로 표면 상복부 정맥에 종료됩니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig8.jpg" /> 그림 8의 영양 혈관에 유경 상복부의 플랩 생체 외 (피상적 인 상복부 동맥과 정맥 - A, V, 각각). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 9" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig9.jpg" /> 의 그림 9. 운영보기목부 (6 ​​배 확대)의 왼쪽에있는 수신자 정맥, 즉 외부 경정맥의 해부. 흉쇄 근육 외부 경정맥 측의 피하 과정을 관찰 할 수있다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig9large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 10" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig10.jpg" /> 목 (10 배 확대)의 왼쪽에있는 그림 10. 기증자 동맥, 즉, 경동맥의 해부의 운영보기. 그림과 같이 동맥과 첨부 미주 신경은 흉쇄과 infrahyoid 근육을 수축 한 후 노출됩니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig10large.jpg" target="_blank">t의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오</a>그의 그림. <img alt="그림 11" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig11.jpg" /> 그림 운영 현미경 (10 배 확대)에서와 같이 플랩의 선박과 목에받는 사람 혈관의 혈관 문합 11. 사진. 이 사진은 경동맥과 피상적 인 상복부 동맥 사이의 termino-측면 문합을 보여줍니다. 표면 상복부와 외부 경정맥 사이 termino 말단 문합을 관찰하는 것도 가능하다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig11large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 12" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig12.jpg" /> 쥐 immedi의 복부 측면의 그림 12. 사진<html> ately 수술 후. 기증자 영역은 쉽게 주로 닫혀 있는지 확인합니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig12large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 13" src="/files/ftp_upload/55281/55281fig13.jpg" /> 20 연속 쥐 그림 13. 상복부 무료 플랩 생존은 첫 번째 저자 (DC)에 의해 동작. 다섯 쥐 (20 %)은 전체 플랩 괴사 (적색 점으로 표시 한 경우, 4, 8, 13, 15 등)를 제시했다. 트루 히요 등에 의해 상세히 설명 된 바와 같이 플랩 괴사 분야는 자유 소프트웨어 ImageJ에를 사용하여 측정 하였다. 15. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig13large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 14 &quot;SRC =&quot;/ 파일 / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg &quot;/&gt; 4, 14 60 일 수술 후 목의 복부 측면에 배치 된 상복부 플랩 (14) 사진 그림. 쥐가 바늘을 제거로 나흘 수술 후, 일반적으로 약간의 상처 열개있다. 그러나, 플랩은 일반적으로 장소에 남아 있습니다. 간단한 육안 검사로 매일 플랩을 조사 할 수있다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55281/55281fig14large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap

This paper describes the steps required to raise a fasciocutaneous epigastric free flap and transfer it to the neck in the rat.

무료 조직 전송의 모델 : 쥐 상복부 무료 플랩

Free tissue transfer has been increasingly used in clinical practice since the 1970s, allowing reconstruction of complex and otherwise untreatable defects ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

16.6K 조회수.  Universidade NOVA de Lisboa. This paper describes the steps required to raise a fasciocutaneous epigastric free flap and transfer it to the neck in the rat.

비디오: A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap

Rat Mammary Epithelial Cell Transplantation into the Interscapular White Fat Pad

As early as the 1970s, researchers have successfully transplanted mammary epithelial cells into the interscapular white fat pad of rats. Grafting mammary epithelium using transplantation techniques takes advantage of the hormonal environment provided by the adolescent rodent host. These studies are ideally suited to explore the impact of various biological manipulations on mammary gland development and dissect many aspects of mammary gland biology. A common, but limiting, feature is that transplanted epithelial cells are strongly influenced by the surrounding stroma and outcompeted by endogenous epithelium; to utilize native mammary tissue, the abdominal-inguinal white fat pad must be cleared to remove host mammary epithelium prior to the transplantation. A major obstacle when using the rat model organism is that clearing the developing mammary tree in post-weaned rats is not efficient. When transplanted into gland-free fat pads, donor epithelial cells can repopulate the cleared host fat pad and form a functional mammary gland. The interscapular fat pad is an alternative location for these grafts. A major advantage is that it lacks ductal structures yet provides the normal stroma that is necessary to promote epithelial outgrowth and is easily accessible in the rat. Another major advantage of this technique is that it is minimally invasive, because it eliminates the need to cauterize and remove the growing endogenous mammary tree. Additionally, the interscapular fat pad contains a medial blood vessel that can be used to separate sites for grafting. Because the endogenous glands remain intact, this technique can also be used for studies comparing the endogenous mammary gland to the transplanted gland. This paper describes the method of mammary epithelial cell transplantation into the interscapular white fat pad of rats.

This article describes a transplantation method to graft donor rat mammary epithelial cells into the interscapular white fat pad of recipient animals. This method can be used to examine host and/or donor effects on mammary epithelium development and eliminates the need for pre-clearing, thereby extending the usefulness of this technique.

쥐 유방 상피 세포 이식에 갑피 흰 지방 패드

As early as the 1970s, researchers have successfully transplanted mammary epithelial cells into the interscapular white fat pad of rats. Grafting mammary ...

연구

암 연구학

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite tissue. Ischemia reperfusion injury (IRI) is a known cause of partial free flap failure and has no effective treatment. Establishing a laboratory model of this injury can prove costly both financially as larger mammals are conventionally used and in the expertise required by the technical difficulty of these procedures typically requires employing an experienced microsurgeon. This publication and video demonstrate the effective use of a model of IRI in rats which does not require microsurgical expertise. This procedure is an in situ model of a transverse abdominis myocutaneous (TRAM) flap where atraumatic clamps are utilized to reproduce the ischemia-reperfusion injury associated with this surgery. A laser Doppler Imaging (LDI) scanner is employed to assess flap perfusion and the image processing software, Image J to assess percentage area skin survival as a primary outcome measure of injury.

In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury

Free tissue transfer is widely employed in reconstructive surgery to restore form and function following oncological resection and trauma. Preconditioning this tissue prior to surgery may improve outcome. This article describes an in situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap (TRAM) in rats as a means for testing preconditioning strategies.

Myocutaneous 국소 빈혈 reperfusion 상해의 쥐 모델 : 현장 가로 직근 abdominis의 Myocutaneous 플랩의

Free tissue transfer is the gold standard of reconstructive surgery to repair complex defects not amenable to local options or those requiring composite ...

의학

Demonstration of the Rat Ischemic Skin Wound Model

The propensity for chronic wounds in humans increases with ageing, disease conditions such as diabetes and impaired cardiovascular function, and unrelieved pressure due to immobility. Animal models have been developed that attempt to mimic these conditions for the purpose of furthering our understanding of the complexity of chronic wounds. The model described herein is a rat ischemic skin flap model that permits a prolonged reduction of blood flow resulting in wounds that become ischemic and resemble a chronic wound phenotype (reduced vascularization, increased inflammation and delayed wound closure). It consists of a bipedicled dorsal flap with 2 ischemic wounds placed centrally and 2 non-ischemic wounds lateral to the flap as controls. A novel addition to this ischemic skin flap model is the placement of a silicone sheet beneath the flap that functions as a barrier and a splint to prevent revascularization and reduce contraction as the wounds heal. Despite the debate of using rats for wound healing studies due to their quite distinct anatomic and physiologic differences compared to humans (i.e., the presence of a panniculus carnosus muscle, short life-span, increased number of hair follicles, and their ability to heal infected wounds) the modifications employed in this model make it a valuable alternative to previously developed ischemic skin flap models.

The rat, due to its size, availability, and rather docile behavior, has been utilized as a research model for many years. The goal of this protocol is to utilize the rat as an ischemic skin wound healing model to provide valuable insight into the pathophysiology of chronic wounds.

쥐 허혈성 피부 상처 모델의 데모

The propensity for chronic wounds in humans increases with ageing, disease conditions such as diabetes and impaired cardiovascular function, and ...

Tissue-Engineered Graft for Circumferential Esophageal Reconstruction in Rats

The use of biocompatible materials for circumferential esophageal reconstruction is a technically challenging task in rats and requires an optimal implant technique with nutritional support. Recently, there have been many attempts at esophageal tissue engineering, but the success rate has been limited due to difficulty in early epithelization in the special environment of peristalsis. Here, we developed an artificial esophagus that can improve the regeneration of the esophageal mucosa and muscle layers through a two-layered tubular scaffold, a mesenchymal stem cell-based bioreactor system, and a bypass feeding technique with modified gastrostomy. The scaffold is made of polyurethane (PU) nanofibers in a cylindrical shape with a three-dimensional (3D) printed polycaprolactone strand wrapped around the outer wall. Prior to transplantation, human-derived mesenchymal stem cells were seeded into the lumen of the scaffold, and bioreactor cultivation was performed to enhance cellular reactivity. We improved the graft survival rate by applying surgical anastomosis and covering the implanted prosthesis with a thyroid gland flap, followed by temporary nonoral gastrostomy feeding. These grafts were able to recapitulate the findings of initial epithelialization and muscle regeneration around the implanted sites, as demonstrated by histological analysis. In addition, increased elastin fibers and neovascularization were observed in the periphery of the graft. Therefore, this model presents a potential new technique for circumferential esophageal reconstruction.

Esophageal reconstruction is a challenging procedure, and development of a tissue-engineered esophagus that enables regeneration of esophageal mucosa and muscle and that can be implanted as an artificial graft is necessary. Here, we present our protocol to generate an artificial esophagus, including scaffold manufacturing, bioreactor cultivation, and various surgical techniques.

쥐의 원주 식도 재건을 위한 조직 공학 이식편

The use of biocompatible materials for circumferential esophageal reconstruction is a technically challenging task in rats and requires an optimal implant ...

생체공학

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

Orthotopic의 쥐 모델 간 이식 Suprahepatic 베 나 정 맥 재건에 대 한 새로운 자석 문 합 기술을 사용 하 여

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

A Reliable Porcine Fascio-Cutaneous Flap Model for Vascularized Composite Allografts Bioengineering Studies

Vascularized Composite Allografts (VCA) such as hand, face, or penile transplant represents the cutting-edge treatment for devastating skin defects, failed by the first steps of the reconstructive ladder. Despite promising aesthetic and functional outcomes, the main limiting factor remains the need for a drastically applied lifelong immunosuppression and its well-known medical risks, preventing broader indications. Therefore, lifting the immune barrier in VCA is essential to tip the ethical scale and improve patients&#39; quality of life using the most advanced surgical techniques. De novo creation of a patient-specific graft is the upcoming breakthrough in reconstructive transplantation. Using tissue engineering techniques, VCAs can be freed of donor cells and customized for the recipient through perfusion-decellularization-recellularization. To develop these new technologies, a large-scale animal VCA model is necessary. Hence, swine fascio-cutaneous flaps, composed of skin, fat, fascia, and vessels, represent an ideal model for preliminary studies in VCA. Nevertheless, most VCA models described in the literature include muscle and bone. This work reports&#160;a reliable and reproducible technique for saphenous fascio-cutaneous flap harvest in swine, a practical tool for various research fields, especially vascularized composite tissue engineering.

The present protocol describes the porcine fascio-cutaneous flap model and its potential use in vascularized composite tissue research.

혈관화된 복합 동종이식편 생명공학 연구를 위한 신뢰할 수 있는 돼지 근막-피부 피판 모델

Vascularized Composite Allografts (VCA) such as hand, face, or penile transplant represents the cutting-edge treatment for devastating skin defects, ...

Partial Heterotopic Hindlimb Transplantation Model in Rats

Vascularized composite allotransplantations (VCA) represent the most advanced reconstruction option for patients without autologous surgical possibilities after a complex tissue defect. Face and hand transplantations have changed disfigured patients' lives, giving them a new aesthetic and functional social organ. Despite promising outcomes, VCA is still underperformed due to life-long immunosuppression comorbidities and infectious complications. The rat is an ideal animal model for in vivo studies investigating immunological pathways and graft rejection mechanisms. Rats are also widely used in novel composite tissue graft preservation techniques, including perfusion and cryopreservation studies. Models used for VCA in rats must be reproducible, reliable, and efficient with low postoperative morbidity and mortality. Heterotopic limb transplantation procedures fulfill these criteria and are easier to perform than orthotopic limb transplants. Mastering rodent microsurgical models requires solid experience in microsurgery and animal care. Herein is reported a reliable and reproducible model of partial heterotopic osteomyocutaneous flap transplantation in rats, the postoperative outcomes, and the means of prevention of potential complications.

This paper presents a partial heterotopic osteomyocutaneous flap transplantation protocol in rats and its potential outcomes in the mid-term follow-up.

쥐의 부분 이종화 힌드래그 이식 모델

Vascularized composite allotransplantations (VCA) represent the most advanced reconstruction option for patients without autologous surgical possibilities ...

면역학 및 감염병학

Modified Heterotopic Hindlimb Osteomyocutaneous Flap Model in the Rat for Translational Vascularized Composite Allotransplantation Research

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand and face transplants and, more recently, abdominal wall, uterus, and urogenital transplants. Functional outcomes have exceeded initial expectations, and most recipients enjoy an improved quality of life. However, as clinical experience accumulates, chronic rejection and complications from the immunosuppression must be addressed. In many cases where grafts have failed, the causative pathology has been ischemic vasculopathy. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Arial, sans-serif; color: rgb(41, 43, 49); background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">The biological mechanisms of the acute and chronic rejection associated with VCA, especially ischemic vasculopathy, are important areas of research. However, due to the very small number of VCA patients, the evaluation of proposed mechanisms is better addressed in an experimental model. Multiple groups have used animal models to address some of the relevant unsolved questions in VCA rejection and vasculopathy. Several model designs involving a variety of species are described in the literature. Here we present a reproducible model of VCA heterotopic hindlimb osteomyocutaneous flap in the rat that can be utilized for translational VCA research. This model allows for the serial evaluation of the graft, including biopsies and different imaging modalities, while maintaining a low level of morbidity.

Vascularized composite allograft offers life-altering benefits to transplant recipients, but the biological causes of graft rejection and vasculopathy remain poorly understood. The rodent surgical model presented here offers a reproducible, clinically relevant model of transplantation, allowing researchers to evaluate rejection events and potential therapeutic strategies to prevent their occurrence.

변형 된 이종 성 복합체 동종 요법 연구에 대 한 쥐에서 변성 이성애 자 골 진 피부 플랩 모델

Vascularized composite allotransplantation (VCA) is a relatively new field in the reconstructive surgery. Clinical achievements in human VCA include hand ...

The Superficial Inferior Epigastric Artery Axial Flap to Study Ischemic Preconditioning Effects in a Rat Model

Fasciocutaneous flaps (FCF) have become the gold standard for complex defect reconstruction in plastic and reconstructive surgery. This muscle-sparing technique allows transferring vascularized tissues to cover any large defect. FCF can be used as pedicled flaps or as free flaps; however, in the literature, failure rates for pedicled FCF and free FCF are above 5%, leaving room for improvement for these techniques and further knowledge expansion in this area. Ischemic preconditioning (I.P.) has been widely studied, but the mechanisms and the optimization of the I.P. regimen are yet to be determined. This phenomenon is indeed poorly explored in plastic and reconstructive surgery. Here, a surgical model is presented to study the I.P. regimen in a rat axial fasciocutaneous flap model, describing how to safely and reliably assess the effects of I.P. on flap survival. This article describes the complete surgical procedure, including suggestions to improve the reliability of this model. The objective is to provide researchers with a reproducible and reliable model to test various ischemic preconditioning regimens and assess their effects on flap survivability.

This protocol describes harvesting, suturing, and monitoring fasciocutaneous flaps in rats that allow for good visualization and manipulation of blood flow through the superficial inferior epigastric vessels by means of clamping and ligating the femoral vessels. This is critical for studies involving ischemic preconditioning.

쥐 모델에서 허혈성 전처리 효과를 연구하기 위한 표재성 하복부 동맥 축 플랩

Fasciocutaneous flaps (FCF) have become the gold standard for complex defect reconstruction in plastic and reconstructive surgery. This muscle-sparing ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

재건 미세 수술에서 허혈 재관류 손상의 연구를위한 전 임상 쥐 모델

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...