저자는 Tin Min Qi 박사와 Veluchamy Amutha Barathi 박사 팀에게 동물 치료에 대한 도움을 주신 것에 감사드립니다. 이 작품은 NHIC-I2D-1409007, SingHealth Foundation SHF / FG586P / 2014 및 NMRC / CSA / 045 / 2012에서 지원되었습니다.

동물은 기관 지침 및 안과 및 시력 연구 동물 사용을위한 ARVO 선언에 따라 처리되었습니다. 연구 프로토콜은 SingHealth의 기관 동물 관리 및 사용위원회의 승인을 받았습니다. 1. 누액 샘 추출물의 제조 참고 : 쥐를 케타민 (75mg / kg)과 자일 라진 (10mg / kg)의 복강 내 주사로 마취시켰다. 적절한 마취는 발가락 협착 및 꼬리 협착에 의해 확인되었다. 안과 용 젤을 각 시술 후에 건조를 방지하기 위해 쥐의 눈에 적용 하였다. 마취 된 쥐를 원적외선 빛 아래에 두어 완전히 회복 될 때까지 동물을 따뜻하게 유지했습니다. 절차 및 회복 시간 동안, 동물들은 연구자들에 의해 면밀히 관찰되었다. 모든 재료와 수술 도구는 사용하기 전에 살균되었습니다. 실험 종료시, 쥐를 pentobarbital (80 mg / kg)의 복강 내 주사로 안락사시켰다.완전한 안락사는 안구를 만져서 심장 맥박이없고 깜박 거림이없는 것으로 확인되었습니다. 쥐를 표준 조건으로 보관 하였다 : 실온, 21-23 ℃; 상대 습도, 30-70 %; 12 시간 (오전 7시에서 오후 7 시까 지) 번갈아 가며 밝고 어두운 사이클이 반복됩니다. <ol><li> 안락사를 마친 여성 Sprague-Dawley 쥐 (8 주에서 16 주까지의 연령대)를 편평하게 놓고, 한쪽 귀는 테이블에, 다른 쪽 귀는 위로 향하게 놓습니다. 한 쌍의 스프링 가위로 노출 된 귀 밑으로 10 mm 절개를 최상으로 열도록하십시오. 주변 결합 조직과 배수관에서 그것을 분리하여 누선을 제거합니다. <ol><li> 필요할 때까지 땀샘을 -80 ° C에 보관하십시오. 얼음 위에서 땀샘을 해동하십시오. 가위로 얼음 위에서 가능한 한 가볍게 말하십시오. lacrimal 글 랜드 당 1x 프로 테아 제 억제제와 PBS 150 μL를 추가합니다. </li></ol></li><li> 30 분 진폭으로 10 초 동안 10 초로 설정 한 초음파 분쇄기를 사용하여 20 kHz에서 5 분간 얼음 샘플을 초음파 처리합니다. 아들을 원심 분리하다.13,000 xg 및 4 ° C에서 20 분간 시료를 채취합니다. </li><li> 상층 액을 피펫으로 옮겨서 새 튜브로 옮긴다. 나누어서 1.5 ML 튜브에 뜨는 및 -80 ° C에서 그들을 저장하십시오. 제조 업체의 지침에 따라 bicinchoninic 산성 분석 22로 단백질 농도를 측정합니다. </li></ol> 2. 에멀젼 및 백일해 독소의 제조 <ol><li> 유제 <ol><li> Mycobacterium tuberculosis H37Ra 1mg / mL를 함유하는 완전 프로 인트 보조제 10mL에 열 살생 Mycobacterium tuberculosis H37Ra 40mg 을 넣고 잘 섞는다. 참고 : 최종 완전 프로 인트 보조제에는 5 mg / mL Mycobacterium tuberculosis H37Ra가 포함되어 있습니다. </li><li> 오발 부민의 무게를 달아 PBS에 녹이고 2mg / mL의 오발 부민과 10mg / mL의 눈물샘 추출물이 포함 된 항원 혼합물을 준비합니다. 각 동물 당 200 μL의 주사 용량을 목표로 마스터 혼합물 b동물 번호로 ased. </li><li> 불완전 프로 인트 애쥬 번트 또는 완전 프로 인트 애쥬 번트를 50 mL 튜브에 옮겨 항원 혼합물에 대한 보조제의 양이 1 : 1 비율이되도록하십시오. 항원 혼합물을 애주 번트에 떨어 뜨려 떨어 뜨리면서 흘러 넘치지 않는 최고 속도로 vortexing하십시오. 모든 항원이 추가 된 후 5 분 동안 계속해서 볼 텍싱하십시오. </li><li> 유액을 5 mL 주사기에 옮기고 주사기 커넥터를 통해 다른 5 mL 주사기와 연결하십시오. 한 주사기에서 다른 주사기로 유제를 밀어 넣어 혼합하십시오. 참고 : 물에 넣을 때 단일 액 적이 구체로 남아 있으면 유제가 준비됩니다. 4 ° C에서 밤새 새롭게 준비된 에멀젼 또는 에멀젼 만 사용해야합니다. </li></ol></li><li> 백일해 독소 <ol><li> 100 μg / μL의 최종 농도를 만들기 위해 500 μL의 물에서 백일해 독소 50 μg을 재구성합니다. 30 초 동안 컨테이너에 Votex를 놓고 확인하십시오.옥신은 완전히 녹습니다. 참고 : 여과로 멸균하지 마십시오. 재료가 손실됩니다. 얼지 마라. 이 용액은 4 ℃에서 최소 6 개월 동안 활성 상태를 유지합니다. </li><li> PBS를 사용하여 100 ng / μL의 백일해 독소를 3 ng / μL로 희석하십시오. 희석 된 백일해 독소 100 μL를 27 G 주사 바늘이 달린 1 mL Luer-lock 주사 주사기에 옮기십시오. </li></ol></li></ol> 3. 루이스 래트의 예방 접종 <ol><li> 0 일째에, 유제를 몇 번 섞는다. 27g 주사 바늘이 달린 1mL Luer-lock 주사기에 완전 프로 인트 보조제에 1mg의 눈물샘 추출물과 200ug의 오발 부민이 들어있는 200μL의 유제를 배분합니다. 마취없이 쥐 꼬리의 기초에 피하에 유제를 주입하십시오. 참고 : 주입 전에 테일을 예열하지 않아도됩니다. 각 쥐에게 완전 프로 인트 보조제에 1mg의 눈물샘 추출물과 200μg의 오발 부민을 넣어 면역시킨다.h 500 μg의 Mycobacterium tuberculosis H37Ra. </li><li> 14 일째, 0 일과 동일한 방식으로, 불완전 프로 인트 보조제에 눈꺼풀 땀샘 추출물 1mg과 오발 부민 200μg이 들어있는 200μL의 에멀젼을 주사하십시오. 100μL의 PBS에 300 ng의 복막 독소를 복강 내 주사하십시오 같은 날 래트 당. </li></ol> 4. 항원 특이 적 면역 세포를 모집하고 국소 염증을 유발하기 위해 포낭 결막과 눈물샘에 항원 혼합물을 주입 <ol><li> 실험에서 쥐의 수를 기준으로 ovalbumin과 lacrimal gland extract의 양을 계산하십시오. 필요한 양의 오발 부민을 달아 1 단계에서 준비한 해동 된 누액 샘 추출물과 혼합하여 1mg / mL의 오발 부민과 1mg / mL의 눈물샘 추출물을 함유 한 항원 용액을 만든다. </li><li> 복강 내 주사로 ketamine (75 mg / kg)과 xylazine (10 mg / kg)으로 쥐를 마취. 꼬집어 라.적절한 마취가 달성되었는지 확인하기 위해 ( 즉, 핀치 이후에 반응하는 움직임이 관찰되지 않음) 랫트를 검사한다. 눈의 forniceal 결막에 항원 5 μL를 주사. 눈물샘에 항원 20 μL를 주입하십시오. </li></ol> 5. 건성 안구 특징의 평가 주 : 5.1-5.3 단계에서 마취 된 쥐는 장갑을 낀 손으로 움직이지 않도록 평평한 표면에 똑바로 세워야합니다. <ol><li> 페놀 레드 실로 눈물량을 측정하십시오. <ol><li> 한 쌍의 포셉을 사용하여 실을 잡고 다른 한 쌍의 쥐의 아래 눈꺼풀을 당깁니다. 나사를 아래쪽 fornix의 근위 모서리에 1 분 동안 놓고 나사를 제거합니다. 참고 : 눈물은 스레드의 젖은 부분을 빨간색으로 만듭니다. </li><li> 나사 부분의 젖은 부분의 길이를 밀리미터 표시가있는 눈금자 옆에 찍습니다. 젖은 길이를 10 분의 1 o까지 측정하십시오.이미지 밀리미터 (ImageJ)와 같은 이미지 소프트웨어를 사용합니다. </li></ol></li><li> 각막 / 눈물 평활도를 측정하십시오. <ol><li> 링 조명 장치와 카메라가 장착 된 실체 현미경 아래에 쥐를 놓습니다. 쥐의 각막에 식염수 5 μL를 적용합니다. 눈꺼풀에 손가락을 대고 위와 아래 눈꺼풀을 5 번 정도 움직여 식염수를 퍼지면서 수동적으로 깜박입니다. </li><li> 반지 조명기를 각막 표면의 중간에 1.6 배 확대하여 초점을 맞 춥니 다. 10 초 후에 사진 이미지를 획득하십시오. 참고 : 링 조명기는 동물의 각막에 두 개의 원형 행의 도트 이미지를 투사합니다. 왜곡되지 않은 점들의 규칙적인 간격은 부드러운 각막 / 눈물 층을 의미합니다. </li></ol></li><li> 플루 오레 신 염색으로 각막 손상을 측정하십시오. <ol><li> 쥐의 각막에 0.2 %의 fluorescein 2 μL를 첨가하십시오. 눈가에 플루 오레 신 염료가 퍼지게하려면 장갑을 낀 손가락으로 쥐 눈꺼풀을 수동으로 3 번 열고 닫으십시오. </li><li&gt; 1 분 후 3mL 주사기 (1 회 주사 바늘을 사용하지 않음)로 1mL의 염수를 끌어 와서 주사기를 각막 앞쪽에 2-3mm 정도 위치시키고 부드럽게 눈에 식염수를 분사하십시오. </li><li> 배경 조명이 꺼진 상태에서 안구 이미징 현미경의 코발트 블루 필터 ( 즉, ~ 400 nm) 아래에서 이미지를 수집합니다. 참고 : 이미지는 이후 이전 발행물 23 에서 수정 된 채점 시스템에 의해 분석되었습니다. 0에서 2까지 녹색 점의 수, 면적 및 강도를 주관적으로 채점하여 이미지를 분석했다. 0은 결석을 나타내고 1은 50 개 미만의 점에 대한 얼룩을 나타내고 2는 50 개 이상의 얼룩점을 나타낸다. </li></ol></li><li> pentobarbital (80 MG / kg)의 intraperitoneal 주사를 통해 쥐를 안락사. 가위로 위, 아래 눈꺼풀을 제거합니다. 고정시키고, 포 셉으로 눈 주위 조직을 밀어내어 안구를 제거하십시오. 지구를 자유롭게해라.그는 외안근, 시신경 및 forniceal 결막. </li><li> 포셉과 쥐 안구의 위치를 ​​고정하고 적도를 따라 원주 절개와 함께 열어. 렌즈와 유리를 제거하십시오. 해부 된 안구를 얼음에 1.5 ML 튜브에 넣어. </li><li> 단계 1.1에서 설명한대로 눈물샘을 수집합니다. 즉시 유선 cytometry 분석을 준비하기 위해 해부 된 안구 조직과 눈물샘을 실험실로 옮기십시오. </li><li> 콜라게나 제 및 Disase II 소화 방법으로 면역 세포를 분리 24 , 25 . 안구 조직 26 에서 T 세포 subpopulation 프로 파일링 유동 세포 계측법을 사용하는 진행합니다. 참고 : 항체 패널은 항 CD45APC-Cyanine7 (OX-1), 항 CD3 BV421 (1F4), 항 CD4 PE- 시아닌 7 (OX-35), 항 CD45RC Alexa647 (OX-22) CD62 PE (HRL1), 항 CD44 FITC (OX-50) 및 생존 세포 염료 7-AAD. CD45 + CD3 <supCD3 + CD45RC + ), T 세포 (TEM , CD3 + CD45RC - CD44 + CD62L + ) 및 중앙 기억 (T CM, CD3 + CD45RC - . </li></ol>

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저자는 아무런 이해 상충이 없다. LT는 Alcon, Allergan, Santen, Bausch and Lomb, Eyelens 및 Eyedetec으로부터 이전 자금 및 / 또는 선물을 받았습니다.

이 프로토콜의 중요한 단계는 유제의 균질성을 확보하는 것입니다. 잘 준비된 유제에서 항원은 완전히 오일로 코팅되어 주입 된 항원의 느린 방출과 지속적인 면역 자극을 보장합니다. 이 프로토콜의 또 다른 중요한 특징은 루이스 쥐의 사용이다. 루이스 쥐는 다른 계통보다자가 면역 질환 발병에 더 민감합니다 27 . 이 프로토콜은 눈물샘 추출물 만 사용하거나 재조합 Klk1b22 20 , 21 두 이전에 게시 된 프로토콜에서 수정되었습니다. 현재의 프로토콜에서, ovalbumin과 lacrimal gland 추출물이 항원으로 사용되며 항원 특이 적 면역 세포가 눈 표면과 눈물샘에 끌어 당겨 국소 조직 손상을 유도합니다. 건조한 눈은 초기 면역 후 48 일에 ~ 85 %까지 천천히 발달합니다. 항원에 대한 도전눈과 눈물샘은 48 일째 건조한 눈을 악화시키고 70 일까지 만성을 보장합니다. Klk 유도 DED 모델의 재조합 Klk1b22와 비교할 때, 현 모델에서 사용 된 눈물샘 추출물과 오발 부민은 저렴하고 얻기 쉽다. 눈물샘 추출물에는자가 면역을 유도 할 수있는 Klk 이외의 다른 단백질도 포함되어 있으므로 이론적으로 DEL 유도시 Klk 방법보다 더 효과적입니다. 우리는 눈물샘 추출물만을 사용하여 쥐에게 면역 접종을 시도했다. 이들 면역화 된 래트가 DED를 생성 하였지만, 대조군에 비해 안구 조직에서 이펙터 기억 T 세포의 유의 한 증가는 없었다. 이 기술의 한계는 모델을 완성하는 데 70 일이 걸린다는 것입니다. 이펙터 메모리 T 세포는 정상 쥐의 눈에서 주요 T 세포 서브 세트입니다. 이 모델에서자가 면역 DED는 안구 내 CD3 + effector memory T 세포를 증가시킵니다. 그 마약따라서 Kv1.3 칼륨 채널의 선택적 억제제와 같이 효과가있는 기억 세포 T 세포는자가 면역 DED 28 에 치료 효과가있을 수 있습니다.

안구 건조증 (DED)은 안구 표면에 손상을 줄 수있는 불쾌감, 시각 장애 및 눈물 막 불안정성 증상을 유발하는 눈물과 안구 표면의 다원적 인 질병입니다. 그것은 눈물 막의 증가 된 삼투압과 안구 표면의 염증을 동반합니다. DED와 관련된 증상은 타는듯한 느낌, 쑤시는 느낌, 거친 느낌, 이물감, 눈물, 안구 피로 및 건조 함입니다 2 , 3 . DED의 두 가지 주요 원인은 눈물 분비 동맥에 의한 눈물 생성 감소와 눈물 막 4 의 과도한 증발입니다. Sjogren 증후군, 전신성 홍 반성 루푸스 및 류마티스 관절염과 같은자가 면역 질환 환자는 마이 보미 닉 (meibomian) 땀샘에 대한 면역 손상으로 눈물의 안정성에 필수적인 지질의 발현을 감소시킵니다. 또한, 안구 표면에 대한 면역 손상은 제품을 감소시킨다표면 습윤성에 중요한 점액의 존재. 함께이 과정들은 만성적으로 만성적 인 안구 건조증을 유발합니다 5 , 6 , 7 . 눈물 보충 및 항 염증 요법이 치료의 요점입니다. 그러나 DED ( 즉, 코르티코 스테로이드와 사이클로스포린)에 대한 현재의 항 염증 요법은 대체로 면역 억제제이며 심각한 부작용을 유발합니다 8 , 9 , 10 . 자가 면역 건조한 눈을 치료하기위한 새로운 면역 조절제를 시험하기에 적합한 동물 모델이 필요합니다. 특정 유전자 결함이있는 마우스 11 , 12 , 13 , 특정 유전자가 결핍 된 마우스 14 , 15 및 면역 반응을 과다 발현하는 형질 전환 마우스ory 유전자는자가 면역 건조한 안구 16,17의 모델로 사용되었습니다. 항원 - 유도자가 면역 동물 모델은 마우스 18 , 토끼 19 , 및 랫드 20 , 21 에서도보고되었다. 여기서는 만성자가 면역성 안구의 항원 유도 모델을 설명합니다. 이 모델은 두 개의 이전 모델을 수정 한 것입니다. 하나는 눈물샘 추출물을 사용했고 두 번째는 눈물샘 20 , 21 에서자가 항원 ( 즉, klk1b22)을 사용했습니다. 이 질병은 오발 부민, 완전 프로 인트 보조제 및 스프 라그 - 돌리 (Sprague-Dawley) 래트에서 눈물샘 추출물을 함유 한 유제 ( 그림 1 )를 가진 6 ~ 8 주령의 암컷 루이스 (Lewis) 쥐의 피하 면역화에 의해 유발되었습니다. 불완전 프로 인트 보조제에서 동일한 항원으로 두 번째 면역화2 주 후에 투여했다. 눈물샘과 안구 표면에 항원 특이 적 면역 세포를 모집하기 위해 눈샘 결막과 눈물샘에 눈물샘 추출물과 오발 부민 (1mg / mL)을 6 주 -7 주에 주사했다 ( 그림 1 ). 85 % 이상의 쥐가 첫 번째 예방 접종 후 70 일째에 마른 눈의 특징을 나타 냈습니다. 이러한 특징으로는 눈물 생성 감소 ( 그림 2 ), 각막의 형광 염색 증가 ( 그림 3 ), 눈물의 안정성 저하 ( 그림 4 )가 있습니다. 유동 세포 계측법에 의한 정상 쥐의 안구에서 T 세포의 면역 프로파일 링은 CD3 + 효과기 기억 T 세포의 우세를 나타낸다 ( 도 5 및 도 6 ). 자가 면역 DED를 가진 래트는 CD3 + 효과기 기억 T 세포의 증가와 순진 및 중추 성 기억 T 세포의 감소를 보여준다 ( 그림 6 </strong&gt;).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="995">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Reagents</td>
			<td style="width:300px;"></td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Protease inhibitor cocktail</td>
			<td style="width:300px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">P2714-1BTL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Pierce BCA Protein Assay Kit</td>
			<td style="width:300px;">Thermal Scientific</td>
			<td style="width:143px;">23227</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Mycobacterium tuberculosis H37Ra&#160;</td>
			<td style="width:300px;">Becton, Dickinson and company</td>
			<td style="width:143px;">231141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">complete Freund&#39;s adjuvant</td>
			<td style="width:300px;">Becton, Dickinson and company</td>
			<td style="width:143px;">231131</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">ovalbumin</td>
			<td style="width:300px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">A5503-10G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">incomplete Freund&#39;s adjuvant&#160;</td>
			<td style="width:300px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">F5506-6X10ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">pertussis toxin&#160;</td>
			<td style="width:300px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:143px;">P7208-50UG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">fluorescein sodium solution</td>
			<td style="width:300px;">Bausch &#38; Lomb U.K Limited</td>
			<td style="width:143px;">NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Name</td>
			<td style="width:300px;">Company</td>
			<td style="width:143px;">Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Equipment</td>
			<td style="width:300px;"></td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Sonicator</td>
			<td>Sonics&#160;</td>
			<td>Vibra-Cell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">phenol red thread</td>
			<td>Tianjin Jingming New Technological development Co. LTD.</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:387px;">Stereo microscope with ring light illuminator and camera</td>
			<td>Carl Zeiss</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:387px;">Micro IV microscope&#160;</td>
			<td style="width:300px;">Phoenix Research Labs</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a chronic autoimmune dry eye rat model with increase in effector memory t cells in eyeball tissue

안구 건조증은 이환율과 건강 관리 부담을 초래하고 삶의 질을 저하시키는 매우 흔한 상태입니다. 자가 면역 건조한 눈 상태를 치료하기위한 신규 한 치료제를 시험하기위한 적합한 건조한 눈 동물 모델이 필요하다. 이 프로토콜은 만성자가 면역성 안구 건조 쥐 모델을 설명합니다. 루이스 래트는 눈물샘 추출물, 오발 부민 및 완전 프로 인트 보조제를 함유 한 유제로 면역화시켰다. 불완전 프로 인트 애쥬 번트에서 동일한 항원으로 2 차 면역화를 2 주 후에 실시 하였다. 이러한 면역화는 꼬리 기저부에서 피하 투여 하였다. 안구 표면과 눈물샘에서 면역 반응을 증가시키기 위해 눈물샘 밑 샘과 눈물샘에 눈물샘 추출물과 오발 부민을 1 차 면역 접종 6 주 후에 주입 하였다. 쥐들은 눈물 감소 생산 감소, 눈물의 안정성 감소, 각막 손상 증가와 같은 안구 건조 기능을 개발했습니다. 면역 전문가유세포 분석법에 의한 파일링은 안구 내에서 CD3 + 효과기 기억 T 세포의 우세를 보였다.

그림 1 은 실험 설계를 보여줍니다. 48 일째와 70 일째에, 건성안 임상 특징을 면역화 된 래트에서 평가한다. 눈물 부피는 페놀 레드 실의 젖은 부분의 길이로 표시됩니다. 그림 2 는 대조군과 DED 쥐의 페놀 레드 스레드의 대표 이미지를 보여줍니다. DED 그룹의 페놀 레드 스레드의 길이는 대조 그룹보다 짧아서 눈물의 양이 적음을 나타냅니다. 플루 오레 신은 손상된 각막 상피에 결합합니다. 따라서, 각막 손상은 각막의 형광 염색으로 측정됩니다. DED 쥐의 각막 표면에있는 Fluorescein spot을 0에서 2로 등급을 매기고 대조군과 비교 하였다. DED가있는 래트는 대조 쥐보다 더 많은 형광 염색을 보였으며 ( 그림 3 ), 각막 손상을 시사합니다. 각막 평활도DED 및 대조군 쥐의 경우 링 일루미네이터에 의해 평가되었다. 각막 표면이 부드럽고 눈물의 안정성이 높으면 안구 표면의 일루미네이터 링 이미지가 둥글고 완벽합니다. 이미지의 왜곡은 각막의 평활도가 낮고 불안정한 눈물 막을 나타냅니다. 링의 왜곡 정도는 0에서 2로 등급이 매겨졌다. DED 그룹에서 높은 링 왜곡 수준이 나타 났으며 ( 그림 4 ), 눈물의 안정성이 낮음을 나타냅니다. 쥐는 안구 건조증이 두 가지 이상일 때 안구 건조증으로 정의됩니다. 24 마리의 면역화 된 래트 중에서 21 마리의 래트가 48 일째에 DED를 나타내었다. 결과는 70 일째에 평가할 때 일관되었다. 유동 세포 계측법 분석은 정상 쥐의 안구 조직에서 우세한 T 세포 하위 집합이 이펙터 메모리 T 세포임을 보여줍니다 ( 그림 5 ). DED 쥐의 안구에서 CD3의 ~ 70 %+ T 세포는 이펙터 메모리 T 세포이며, 대조 쥐에서는이 수치가 ~ 50 %입니다. DED 쥐의 안구는 대조 쥐보다 현저히 높은 이펙터 기억 T 세포를 가지고있다 ( 그림 6 ). <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig1.jpg" /> 그림 1 : 실험 설계도. LG : 눈물샘; DED : 안구 건조증; CFA : 완벽한 프로 인트 보조제; IFA : 불완전 프로 인트 보조제. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55592/55592fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig2.jpg" /> 그림 2 : 페놀 레드 실은 눈물 볼륨을 측정합니다. 페놀 붉은 실을 양쪽 쥐눈의 근위 모서리에 1 분 동안 놓고 제거합니다. Representativ컨트롤과 DED 그룹 모두에서 페놀 레드 스레드의 자국 이미지가 표시됩니다. ImageJ는 페놀 레드 실의 젖은 부분의 길이를 측정하는 데 사용되었습니다. 눈금 막대 = 1mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55592/55592fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig3.jpg" /> 그림 3 : Fluorescein 염색법으로 측정 한 각막 상피 ​​손상의 대표 이미지. 각 쥐의 각막은 1 분 동안 0.2 %의 fluorescein으로 염색되었고 최소한 1 mL의 식염수로 세척되었다. 이미지는 코발트 파란 빛을 가진 안구 이미징 현미경으로 촬영했습니다. 첫 번째 열은 각막의 대표적인 이미지를 보여줍니다. 두 번째 열은 DED 기능을 가진 쥐의 각막 염색의 대표적인 이미지를 포함합니다. 녹색 형광 반점은 각막 상피를 나타냅니다<html> l 손상. 모든 이미지는 동일한 색상으로 제작되었습니다. 형광 염색의 정량은 녹색 반점의 면적과 밀도에 따라 수행되었다. 눈금 막대 = 1mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55592/55592fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig4.jpg" /> 그림 4 : 링 일루미네이터의 반사를 보여주는 대표적인 각막 이미지. 쥐 각막 / 눈물 평활도는 링 조명기로 측정 하였다. 캡처 된 이미지에서 링의 왜곡 정도는 상대적인 눈물의 안정성을 측정 한 것입니다. 왼쪽 열은 대조군 동물의 대표 이미지를 표시하고 오른쪽 열은 건성 안구 유도 후 대표 이미지를 보여줍니다. 눈금 막대 = 1mm.ank &quot;&gt;이 그림의 확대 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig5.jpg" /> 그림 5 : 유동 세포 계측법 분석에서 도트 플롯. 안구 조직으로부터 분리 된 T 세포를 항체 패널로 염색 하였다. CD45 + CD3 + 7AAD - 개체군에서는 CD3 + 7-AAD - T 세포가 문을 열었다. CD3 + 7-AAD - T 세포 중 naive, central memory, effector memory T 세포 집단이 결정되었다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55592/55592fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/55592/55592fig6.jpg" /> 그림 6 : 안구 내 T 세포 서브 집단 프로파일. CD3 + CD45RCCD3 + CD45LC - CD44 + CD62L - 효과기 기억 T (T EM ) 세포 및 CD3 + CD45RC - CD44 + CD62L + 중앙 기억 T (T CM ) 세포는 CD3 + T 세포의 백분율로 표시됩니다. 결과는 3 마리의 대조군 쥐와 6 마리의 DED 랫트에서 나온 것입니다. 격리 된 눈물샘에서 T 세포를 분석 한 결과도 비슷한 결과를 얻었다 (데이터는 표시되지 않음). unpaired Student의 t-test를 통계 비교에 사용했다. 오류 막대는 SD를 나타냅니다. * p &lt;0.05, ** p &lt;0.01. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55592/55592fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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A Chronic Autoimmune Dry Eye Rat Model with Increase in Effector Memory T Cells in Eyeball Tissue

이 보고서는 쥐 눈물샘 추출물, 오발 부민 및 완전 프로 인트 보조제의 유액으로 면역화하여 루이스 쥐의 만성 실험자가 면역안을 유도 한 다음, 눈물 결말과 눈물샘에 눈물샘 추출물과 오발 부민을 주사하는 방법에 대해 설명합니다 6 주 후에.

안구 조직에서 이펙터 기억 T 세포의 증가를 동반 한 만성자가 면역 건식 ​​쥐 모델

Dry eye disease is a very common condition that causes morbidity and healthcare burden and decreases the quality of life. There is a need for a suitable ...

a-chronic-autoimmune-dry-eye-rat-model-with-increase-effector-memory

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

11.4K 조회수.  Singapore Eye Research Insitute, A Member of SingHealth.  이 보고서는 쥐 눈물샘 추출물, 오발 부민 및 완전 프로 인트 보조제의 유액으로 면역화하여 루이스 쥐의 만성 실험자가 면역안을 유도 한 다음, 눈물 결말과 눈물샘에 눈물샘 추출물과 오발 부민을 주사하는 방법에 대해 설명합니다 6 주 후에. 

비디오: A Chronic Autoimmune Dry Eye Rat Model with Increase in Effector Memory T Cells in Eyeball Tissue

Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen presenting cells (APCs)1. This recognition leads to the activation of T-cells and a series of functional outcomes (e.g. cytokine production, killing of the target cells). Understanding the functional role of TCRs is critical to harness the power of the immune system to treat a variety of immunology related diseases (e.g. cancer or autoimmunity).
It is convenient to study TCRs in mouse models, which can be accomplished in several ways. Making TCR transgenic mouse models is costly and time-consuming and currently there are only a limited number of them available2-4. Alternatively, mice with antigen-specific T-cells can be generated by bone marrow chimera. This method also takes several weeks and requires expertise5. Retroviral transduction of TCRs into in vitro activated mouse T-cells is a quick and relatively easy method to obtain T-cells of desired peptide-MHC specificity. Antigen-specific T-cells can be generated in one week and used in any downstream applications. Studying transduced T-cells also has direct application to human immunotherapy, as adoptive transfer of human T-cells transduced with antigen-specific TCRs is an emerging strategy for cancer treatment6.
Here we present a protocol to retrovirally transduce TCRs into in vitro activated mouse T-cells. Both human and mouse TCR genes can be used. Retroviruses carrying specific TCR genes are generated and used to infect mouse T-cells activated with anti-CD3 and anti-CD28 antibodies. After in vitro expansion, transduced T-cells are analyzed by flow cytometry.

We present a protocol to produce antigen-specific mouse T-cells using retroviral transduction

마우스 T - 세포에서 T - 세포 수용체의 Retroviral 전달

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

연구

면역학 및 감염병학

Quantitative Assessment of Immune Cells in the Injured Spinal Cord Tissue by Flow Cytometry:  a Novel Use for a Cell Purification Method

Detection of immune cells in the injured central nervous system (CNS) using morphological or histological techniques has not always provided true quantitative analysis of cellular inflammation. Flow cytometry is a quick alternative method to quantify immune cells in the injured brain or spinal cord tissue. Historically, flow cytometry has been used to quantify immune cells collected from blood or dissociated spleen or thymus, and only a few studies have attempted to quantify immune cells in the injured spinal cord by flow cytometry using fresh dissociated cord tissue. However, the dissociated spinal cord tissue is concentrated with myelin debris that can be mistaken for cells and reduce cell count reliability obtained by the flow cytometer. We have advanced a cell preparation method using the OptiPrep gradient system to effectively separate lipid/myelin debris from cells, providing sensitive and reliable quantifications of cellular inflammation in the injured spinal cord by flow cytometry. As described in our recent study (Beck &amp; Nguyen et al., Brain. 2010 Feb; 133 (Pt 2): 433-47), the OptiPrep cell preparation had increased sensitivity to detect cellular inflammation in the injured spinal cord, with counts of specific cell types correlating with injury severity. Critically, novel usage of this method provided the first characterization of acute and chronic cellular inflammation after SCI to include a complete time course for polymorphonuclear leukocytes (PMNs, neutrophils), macrophages/microglia, and T-cells over a period ranging from 2 hours to 180 days post-injury (dpi), identifying a surprising novel second phase of cellular inflammation. Thorough characterization of cellular inflammation using this method may provide a better understanding of neuroinflammation in the injured CNS, and reveal an important multiphasic component of neuroinflammation that may be critical for the design and implementation of rational therapeutic treatment strategies, including both cell-based and pharmacological interventions for SCI.

Quantification of cellular inflammation in the injured/pathological CNS by flow cytometry is complicated by lipid/myelin debris that can have similar size and granulation to cells, decreasing sensitivity/accuracy. We have advanced a cell preparation method to remove myelin debris and improve cell detection by flow cytometry in the injured spinal cord.

유동세포계측법에 의해 피해를 입은 척수 조직에서 면역 세포의 양적 평가 : 세포 정제 방법에 대한 소설을 사용

Detection of immune cells in the injured central nervous system (CNS) using morphological or histological techniques has not always provided true ...

Generation of Induced Regulatory T Cells from Primary Human Na&iuml;ve and Memory T Cells

The development and maintenance of immunosuppressive CD4+ regulatory T cells (Tregs) contribute to the peripheral tolerance needed to remain in immunologic homeostasis with the vast amount of self and commensal antigens in and on the human body. Perturbations in the balance between Tregs and inflammatory conventional T cells can result in immunopathology or cancer. Although therapeutic injection of Tregs has been shown to be efficacious in murine models of colitis1 , type I diabetes2 , rheumatoid arthritis and graft versus host disease,4 several fundamental differences in human versus mouse Treg biology5 has thus far precluded clinical use. The lack of sufficient number, purity, stability and homing specificity of therapeutic Tregs necessitated a dynamic platform of human Treg development on which to optimize conditions for their ex vivo expansion6.
Here we describe a method for the differentiation of induced Tregs (iTregs) from a single human peripheral blood donor which can be broken down into four stages: isolation of peripheral blood mononuclear cells, magnetic selection of CD4+ T cells, in vitro cell culture and fluorescence activated cell sorting (FACS) of T cell subsets. Since the Treg signature transcription factor forkhead box P3 (FoxP3) is an activation-induced transcription factor in humans7 and no other unique marker exists, a combinatorial panel of markers must be used to identify T cells with suppressor activity. After six days in culture, cells in our system can be demarcated into na&iuml;ve T cells, memory T cells or iTregs based on their relative expression of CD25 and CD45RA. As memory and na&iuml;ve T cells have different reported polarization requirements and plasticities8 , pre-sorting of the initial T cell population into CD45RA+ and CD45RO+ subsets can be used to examine these discrepancies. Consistent with others, our CD25HiCD45RA- iTregs express high levels of FoxP39 , GITR and CTLA-411 and low levels of CD12712 . Following FACS of each population, resultant cells can be used in a suppressor assay which evaluates the relative ability to retard the proliferation of carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE)-labeled autologous T cells.

Generation of Induced Regulatory T Cells from Primary Human Na&#239;ve and Memory T Cells

We describe a method for generating regulatory, memory and na&#239;ve T cells from a single human blood donor. Polarized Tregs can be then compared to other subsets in a variety of genetic and functional applications with genetic homogeneity, including a suppression assay also detailed here.

기본 인적 나이브 및 메모리 T의 세포로부터 유도된 규제 T 세포의 생성

The development and maintenance of immunosuppressive CD4+ regulatory T cells (Tregs) contribute to the peripheral tolerance needed to remain in ...

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

The piggyBac transposon system is naturally active, originally derived from the cabbage looper moth1,2. This non-viral system is plasmid based, most commonly utilizing two plasmids with one expressing the piggyBac transposase enzyme and a transposon plasmid harboring the gene(s) of interest between inverted repeat elements which are required for gene transfer activity. PiggyBac mediates gene transfer through a "cut and paste" mechanism whereby the transposase integrates the transposon segment into the genome of the target cell(s) of interest. PiggyBac has demonstrated efficient gene delivery activity in a wide variety of insect1,2, mammalian3-5, and human cells6 including primary human T cells7,8. Recently, a hyperactive piggyBac transposase was generated improving gene transfer efficiency9,10.
Human T lymphocytes are of clinical interest for adoptive immunotherapy of cancer11. Of note, the first clinical trial involving transposon modification of human T cells using the Sleeping beauty transposon system has been approved12. We have previously evaluated the utility of piggyBac as a non-viral methodology for genetic modification of human T cells. We found piggyBac to be efficient in genetic modification of human T cells with a reporter gene and a non-immunogenic inducible suicide gene7. Analysis of genomic integration sites revealed a lack of preference for integration into or near known proto-oncogenes13. We used piggyBac to gene-modify cytotoxic T lymphocytes to carry a chimeric antigen receptor directed against the tumor antigen HER2, and found that gene-modified T cells mediated targeted killing of HER2-positive tumor cells in vitro and in vivo in an orthotopic mouse model14. We have also used piggyBac to generate human T cells resistant to rapamycin, which should be useful in cancer therapies where rapamycin is utilized15.
Herein, we describe a method for using piggyBac to genetically modify primary human T cells. This includes isolation of peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from human blood followed by culture, gene modification, and activation of T cells. For the purpose of this report, T cells were modified with a reporter gene (eGFP) for analysis and quantification of gene expression by flow cytometry.
PiggyBac can be used to modify human T cells with a variety of genes of interest. Although we have used piggyBac to direct T cells to tumor antigens14, we have also used piggyBac to add an inducible safety switch in order to eliminate gene modified cells if needed7. The large cargo capacity of piggyBac has also enabled gene transfer of a large rapamycin resistant mTOR molecule (15 kb)15. Therefore, we present a non-viral methodology for stable gene-modification of primary human T cells for a wide variety of purposes.

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

We describe a method to genetically modify primary human T cells with a transgene using the non-viral piggyBac transposon system. T cells modified to using the piggyBac transposon system exhibit stable transgene expression.

기본 인간 T 세포 piggyBac Transposon 시스템 변경

The piggyBac transposon system is naturally active, originally derived from the cabbage looper moth1,2. This non-viral system is plasmid based, most ...

Systemic Injection of Neural Stem/Progenitor Cells in Mice with Chronic EAE

Neural stem/precursor cells (NPCs) are a promising stem cell source for transplantation approaches aiming at brain repair or restoration in regenerative neurology. This directive has arisen from the extensive evidence that brain repair is achieved after focal or systemic NPC transplantation in several preclinical models of neurological diseases.
These experimental data have identified the cell delivery route as one of the main hurdles of restorative stem cell therapies for brain diseases that requires urgent assessment. Intraparenchymal stem cell grafting represents a logical approach to those pathologies characterized by isolated and accessible brain lesions such as spinal cord injuries and Parkinson's disease. Unfortunately, this principle is poorly applicable to conditions characterized by a multifocal, inflammatory and disseminated (both in time and space) nature, including multiple sclerosis (MS). As such, brain targeting by systemic NPC delivery has become a low invasive and therapeutically efficacious protocol to deliver cells to the brain and spinal cord of rodents and nonhuman primates affected by experimental chronic inflammatory damage of the central nervous system (CNS).
This alternative method of cell delivery relies on the NPC pathotropism, specifically their innate capacity to (i) sense the environment via functional cell adhesion molecules and inflammatory cytokine and chemokine receptors; (ii) cross the leaking anatomical barriers after intravenous (i.v.) or intracerebroventricular (i.c.v.) injection; (iii) accumulate at the level of multiple perivascular site(s) of inflammatory brain and spinal cord damage; and (i.v.) exert remarkable tissue trophic and immune regulatory effects onto different host target cells in vivo.
Here we describe the methods that we have developed for the i.v. and i.c.v. delivery of syngeneic NPCs in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE), as model of chronic CNS inflammatory demyelination, and envisage the systemic stem cell delivery as a valuable technique for the selective targeting of the inflamed brain in regenerative neurology.

The transplantation of neural stem/progenitor cells (NPCs) holds great promises in regenerative neurology. The systemic delivery of NPCs has turned into effective, low invasive, and therapeutically very efficacious protocol to deliver stem cells in the brain and spinal cord of rodents and nonhuman primates affected by experimental chronic inflammatory damage of the central nervous system.

만성 EAE와 마우스의 신경 줄기 / 전구 세포의 전신 주입

Neural stem/precursor cells (NPCs) are a promising stem cell source for transplantation approaches aiming at brain repair or restoration in regenerative ...

Induction of Murine Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of Effector CD4+CD45RBhigh T Cells into Immunodeficient Mice

There are many different animal models available for studying the pathogenesis of human inflammatory bowel diseases (IBD), each with its own advantages and disadvantages. We describe here an experimental colitis model that is initiated by adoptive transfer of syngeneic splenic CD4+CD45RBhigh T cells into T and B cell deficient recipient mice. The CD4+CD45RBhigh T cell population that largely consists of na&#239;ve effector cells is capable of inducing chronic intestinal inflammation, closely resembling key aspects of human IBD. This method can be manipulated to study aspects of disease onset and progression. Additionally it can be used to study the function of innate, adaptive, and regulatory immune cell populations, and the role of environmental exposures, i.e., the microbiota, in intestinal inflammation. In this article we illustrate the methodology for inducing colitis with a step-by-step protocol. This includes a video demonstration of key technical aspects required to successfully develop this murine model of experimental colitis for research purposes.

Induction of Murine Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of Effector CD4+CD45RBhigh T Cells into Immunodeficient Mice

Here, we present a protocol to induce colonic inflammation in mice by adoptive transfer of syngeneic CD4+CD45RBhigh T cells into T and B cell deficient recipients. Clinical and histopathological features mimic human inflammatory bowel diseases. This method allows the study of the initiation of colonic inflammation and progression of disease.

이펙터 CD4의 입양 전송하여 쥐과 장내 염증의 유도<sup&gt; +</sup&gt; CD45RB<sup&gt; 높은</sup&gt; 면역 결핍 마우스에게 T 세포

There are many different animal models available for studying the pathogenesis of human inflammatory bowel diseases (IBD), each with its own advantages ...

Application of Long-term cultured Interferon-&#947; Enzyme-linked Immunospot Assay for Assessing Effector and Memory T Cell Responses in Cattle

Effector and memory T cells are generated through developmental programing of na&#239;ve cells following antigen recognition. If the infection is controlled up to 95 % of the T cells generated during the expansion phase are eliminated (i.e., contraction phase) and memory T cells remain, sometimes for a lifetime. In humans, two functionally distinct subsets of memory T cells have been described based on the expression of lymph node homing receptors. Central memory T cells express C-C chemokine receptor 7 and CD45RO and are mainly located in T-cell areas of secondary lymphoid organs. Effector memory T cells express CD45RO, lack CCR7 and display receptors associated with lymphocyte homing to peripheral or inflamed tissues. Effector T cells do not express either CCR7 or CD45RO but upon encounter with antigen produce effector cytokines, such as interferon-&#947;. Interferon-&#947; release assays are used for the diagnosis of bovine and human tuberculosis and detect primarily effector and effector memory T cell responses. Central memory T cell responses by CD4+ T cells to vaccination, on the other hand, may be used to predict vaccine efficacy, as demonstrated with simian immunodeficiency virus infection of non-human primates, tuberculosis in mice, and malaria in humans. Several studies with mice and humans as well as unpublished data on cattle, have demonstrated that interferon-&#947; ELISPOT assays measure central memory T cell responses. With this assay, peripheral blood mononuclear cells are cultured in decreasing concentration of antigen for 10 to 14 days (long-term culture), allowing effector responses to peak and wane; facilitating central memory T cells to differentiate and expand within the culture.

Long-term cultured interferon-&#947; enzyme-linked immunospot assay is used as a measure of central memory responses and correlates with protective anti-mycobacterial vaccine responses. With this assay, peripheral blood mononuclear cells are stimulated with mycobacterial antigens and interleukin-2 for 14 days, enabling differentiation and expansion of central memory T cells.

소에 이펙터 및 메모리 T 세포 반응을 평가하기위한 장기 배양 인터페론-γ 효소 링크 된 Immunospot 분석의 응용 프로그램

Effector and memory T cells are generated through developmental programing of na&#239;ve cells following antigen recognition. If the infection is ...

Analysis of Lymphocyte Extravasation Using an In Vitro Model of the Human Blood-brain Barrier

Lymphocyte extravasation into the central nervous system (CNS) is critical for immune surveillance. Disease-related alterations of lymphocyte extravasation might result in pathophysiological changes in the CNS. Thus, investigation of lymphocyte migration into the CNS is important to understand inflammatory CNS diseases and to develop new therapy approaches. Here we present an in vitro model of the human blood-brain barrier to study lymphocyte extravasation. Human brain microvascular endothelial cells (HBMEC) are confluently grown on a porous polyethylene terephthalate transwell insert to mimic the endothelium of the blood-brain barrier. Barrier function is validated by zonula occludens immunohistochemistry, transendothelial electrical resistance (TEER) measurements as well as analysis of evans blue permeation. This model allows investigation of the diapedesis of rare lymphocyte subsets such as CD56brightCD16dim/- NK cells. Furthermore, the effects of other cells, cytokines and chemokines, disease-related alterations, and distinct treatment regimens on the migratory capacity of lymphocytes can be studied. Finally, the impact of inflammatory stimuli as well as different treatment regimens on the endothelial barrier can be analyzed.

Analysis of Lymphocyte Extravasation Using an In Vitro Model of the Human Blood-brain Barrier

Here, we describe a human blood-brain barrier model enabling to investigate lymphocyte transmigration into the central nervous system in vitro.

를 사용하여 림프구 혈관 외로 유출 분석<em&gt; 체외</em&gt; 인간의 혈액 - 뇌 장벽의 모델

Lymphocyte extravasation into the central nervous system (CNS) is critical for immune surveillance. Disease-related alterations of lymphocyte ...

Induction of Paralysis and Visual System Injury in Mice by T Cells Specific for Neuromyelitis Optica Autoantigen Aquaporin-4

While it is recognized that aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells and antibodies participate in the pathogenesis of neuromyelitis optica (NMO), a human central nervous system (CNS) autoimmune demyelinating disease, creation of an AQP4-targeted model with both clinical and histologic manifestations of CNS autoimmunity has proven challenging. Immunization of wild-type (WT) mice with AQP4 peptides elicited T cell proliferation, although those T cells could not transfer disease to na&#239;ve recipient mice. Recently, two novel AQP4 T cell epitopes, peptide (p) 135-153 and p201-220, were identified when studying immune responses to AQP4 in AQP4-deficient (AQP4-/-) mice, suggesting T cell reactivity to these epitopes is normally controlled by thymic negative selection. AQP4-/- Th17 polarized T cells primed to either p135-153 or p201-220 induced paralysis in recipient WT mice, that was associated with predominantly leptomeningeal inflammation of the spinal cord and optic nerves. Inflammation surrounding optic nerves and involvement of the inner retinal layers (IRL) were manifested by changes in serial optical coherence tomography (OCT). Here, we illustrate the approaches used to create this new in vivo model of AQP4-targeted CNS autoimmunity (ATCA), which can now be employed to study mechanisms that permit development of pathogenic AQP4-specific T cells and how they may cooperate with B cells in NMO pathogenesis.

Here, we present a protocol to induce paralysis and opticospinal inflammation by transfer of aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells from AQP4-/- mice into WT mice. In addition, we demonstrate how to use serial optical coherence tomography to monitor visual system dysfunction.

마비 및 비주얼 시스템 부상 Neuromyelitis Optica Autoantigen Aquaporin-4에 대 한 T 세포 관련 하 여 쥐에서의 유도

While it is recognized that aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells and antibodies participate in the pathogenesis of neuromyelitis optica (NMO), a human ...

An Efficient and Simple Method to Establish NK and T Cell Lines from Patients with Chronic Active Epstein-Barr Virus Infection

A number of methods have been described to establish NK/T cell lines from patients with lymphoma or lymphoproliferative syndrome. These methods employed feeder cells, purified NK or T cells with as much as 10 mL of blood, or a high-dose of IL-2. This study presents a new method with a powerful and simple strategy to establish NK and T cell lines by culturing the peripheral blood mononuclear cells (PBMC) with the addition of recombinant human IL-2 (rhIL-2), and uses as little as 2 mL of whole blood. The cells can proliferate quickly in two weeks and be maintained for more than 3 months. With this method, 7 NK or T cell lines have been established with a high success rate. This method is simple, reliable, and applicable to establishing cell lines from more cases of CAEBV or NK/T cell lymphoma.

A simple method for obtaining NK and T cell clones from CAEBV patients was developed with high efficiency, a small amount of peripheral blood, and a low-dose of IL-2.

NK과 만성 활성 엡 스타인-바 바이러스 감염을 가진 환자에서 T 셀 라인을 설정 하는 효율적이 고 간단한 방법

A number of methods have been described to establish NK/T cell lines from patients with lymphoma or lymphoproliferative syndrome. These methods employed ...

안구 조직에서 이펙터 기억 T 세포의 증가를 동반 한 만성자가 면역 건식 ​​쥐 모델

안구 조직에서 이펙터 기억 T 세포의 증가를 동반 한 만성자가 면역 건식 쥐 모델