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  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

We describe whole-animal imaging and flow cytometry-based techniques for monitoring expansion of antigen-specific CD8+ T cells in response to immunization with nanoparticles in a murine model of vaccination.

Resumo

Traditional vaccine adjuvants, such as alum, elicit suboptimal CD8+ T cell responses. To address this major challenge in vaccine development, various nanoparticle systems have been engineered to mimic features of pathogens to improve antigen delivery to draining lymph nodes and increase antigen uptake by antigen-presenting cells, leading to new vaccine formulations optimized for induction of antigen-specific CD8+ T cell responses. In this article, we describe the synthesis of a “pathogen-mimicking” nanoparticle system, termed interbilayer-crosslinked multilamellar vesicles (ICMVs) that can serve as an effective vaccine carrier for co-delivery of subunit antigens and immunostimulatory agents and elicitation of potent cytotoxic CD8+ T lymphocyte (CTL) responses. We describe methods for characterizing hydrodynamic size and surface charge of vaccine nanoparticles with dynamic light scattering and zeta potential analyzer and present a confocal microscopy-based procedure to analyze nanoparticle-mediated antigen delivery to draining lymph nodes. Furthermore, we show a new bioluminescence whole-animal imaging technique utilizing adoptive transfer of luciferase-expressing, antigen-specific CD8+ T cells into recipient mice, followed by nanoparticle vaccination, which permits non-invasive interrogation of expansion and trafficking patterns of CTLs in real time. We also describe tetramer staining and flow cytometric analysis of peripheral blood mononuclear cells for longitudinal quantification of endogenous T cell responses in mice vaccinated with nanoparticles.

Introdução

Desenvolvimento tradicional vacina tem utilizado, principalmente, a abordagem empírica de tentativa-e-erro. No entanto, com o recente desenvolvimento de uma grande variedade de biomateriais e descoberta de determinantes moleculares de activação imunitária, é agora possível conceber racionalmente formulações de vacinas com pistas biofísicas e bioquímicas derivados de patogénios 1,2. Em particular, várias plataformas de entrega de droga de partículas foram examinados como transportadores de vacinas uma vez que podem ser co-carregadas com antigénios de subunidade e agentes imunoestimulantes, proteger os componentes da vacina contra a degradação, e aumentar a sua co-entrega a células apresentadoras de antigénio (APCs), residente em linfa nodos (LNs), maximizando assim a estimulação e activação imunitária 3-5. Neste relatório, descreve-se a síntese de um sistema de nanopartículas "-imitando agente patogénico", denominados interbilayer reticulado vesículas multilamelares (ICMVs), que tenham sido previamente demonstrado como uma vacina potente Platform para elicitação de robusto de linfócitos T citotóxicos (CTL) e respostas imunitárias humorais em ambos os compartimentos dos tecidos das mucosas e sistémicas 6-9. Em particular, a vacinação com ICMVs alcançado substancialmente melhorada níveis de IgG no soro contra um antigénio da malária, em comparação com a vacinação com adjuvantes convencionais (por exemplo, alúmen e Montanide 7) e também induziu respostas CTL potentes contra células tumorais e modelos de desafio virais em ratinhos 9. Aqui, usando ICMVs como um sistema de nanopartículas vacina modelo, descrevem métodos para caracterização de nano-vacinais formulações, incluindo tamanho de partícula e medições de potencial zeta e monitoramento do tráfico de partículas para linfonodos drenantes (dLNs) utilizando confocal imagem de tecidos criosseccionada 7. Além disso, apresenta-se um método baseado no de imagem inteira em animais de análise de expansão de respostas por CTL em ratinhos após a transferência adoptiva de células específicas para o antigénio T CD8 + que expressam luciferase 9,10. Finalmente, deescriba tetrâmero coloração de células mononucleares do sangue periférico (PBMCs) para quantificação longitudinal de respostas de células T endógenas em ratinhos vacinados com nanopartículas 6,9.

ICMVs são uma formulação de nanopartículas à base de lípidos sintetizados por fusão controlada de lipossomas simples em estruturas multilamelares, que são então estabilizadas quimicamente por grupos de cabeça de fosfolípidos de reticulação funcionalizado com maleimida dentro camadas lipídicas com ditiol reticuladores 6. Uma vez ICMVs são sintetizados, uma pequena fracção de nanopartículas podem ser usadas para determinar o tamanho de partícula e potencial zeta (isto é, carga de superfície das partículas), com um sistema de dispersão de luz dinâmica (DLS), e um analisador de potencial zeta. DLS medidas de mudanças na dispersão de luz em suspensões de partículas, permitindo a determinação do coeficiente de difusão e o tamanho hidrodinâmico de partículas 11. Atingir o tamanho de partícula consistente de lote para lote é crítica sínteseuma vez que o tamanho de partícula é um dos principais factores que influenciam a drenagem linfática das partículas de vacinas para dLNs e subsequente absorção celular por APCs 12,13. Além disso, o potencial zeta pode ser obtido por medição da velocidade das partículas, quando uma corrente eléctrica é aplicada, o que permite a determinação da mobilidade electroforética das partículas e superfície das partículas de carga 11. Assegurar valores de potencial zeta consistentes de partículas é importante uma vez que a carga superficial das partículas determina a estabilidade coloidal, o que tem um impacto directo sobre a dispersão das partículas durante o armazenamento e após a administração in vivo 14,15. A fim de controlar a localização das partículas para dLNs, ICMVs pode ser marcado com fluoróforos desejados, incluindo corantes lipofílicos e antigénios covalentemente marcados. A seguir à imunização, os ratos podem ser sacrificados em vários pontos temporais, dLNs ressecado, criosseccionada, e analisados ​​com microscopia confocal. Esta técnica permite a visualização de drai linfáticoNing de ambos os veículos de vacina para antigénio de nanopartículas e dLNs. As secções de tecido podem ser adicionalmente coradas com anticorpos marcado por fluorescência e utilizada para obter mais informação, tais como tipos de células associadas com o antigénio e a formação de centros germinais como mostrámos anteriormente 7.

Uma vez que a síntese de partículas é optimizada e tráfico para os dLNs é confirmada, é importante para validar elicitação de expansão de CTL in vivo. A fim de analisar a elicitação de células específicas para o antigénio T CD8 + em resposta à vacinação de nanopartículas, nós utilizamos um modelo de antigénio, ovalbumina (OVA), 257-264 péptido com OVA (SIINFEKL) epítopo imunodominante de células T CD8 +, o que permite que as análises imunológicas detalhados de respostas de células T específicas para o antigénio para o desenvolvimento de vacinas inicial 16,17. Em particular, para interrogar a dinâmica de expansão e migração de células específicas para o antigénio T CD8 +, que geraram ummodelo de ratinho transgénico duplo da luciferase do pirilampo por cruzamento de ratinhos transgénicos que expressam (Luc) com OT-I ratinhos transgénicos que possuem células T CD8 + com o receptor de células T (TCR) específico para SIINFEKL (em associação com H-2K b). A partir destes ratinhos OT-I / Luc, que expressam luciferase, as células AT-I T CD8 + pode ser isolado e preparado para transferência adoptiva para naive C57BL / 6. Uma vez semeadas, a imunização bem sucedida com nanopartículas contendo OVA resultará na expansão das células T transferidas, que podem ser controladas através da monitorização do sinal de bioluminescência com um sistema de imagem de animais 9,10 todo. Esta técnica de imagem não invasiva de corpo inteiro foi usado com outros antigénios virais ou tumorais no passado 18-20, processos envolvidos na expansão das células T em tecidos linfóides e difusão para os tecidos periféricos de um modo longitudinal revelando.

Complementar para análise de adoptivamente células específicas de antigénio transferidos T CD8 +, endógenoas respostas das células T após vacinação nos pode ser examinado com o complexo de péptido-histocompatibilidade principal (MHC) de ensaio de tetrâmero 21, em que um complexo péptido-MHC de tetrâmero, que consiste de quatro marcado com fluoróforo do MHC de classe I de moléculas carregadas com epítopos de péptidos, é empregue TCR se ligar e marcar as células T CD8 + de um modo específico do antigénio. O ensaio de tetrâmero de péptido-MHC pode ser realizada tanto em estudos de necropsia terminais para identificar as células T CD8 + específicas para o antigénio em linfóides e tecidos periféricos ou em estudos longitudinais com células mononucleares do sangue periférico (PBMC) obtidas a partir de sangue em série chama. Após a coloração de linfócitos com péptido-MHC de tetrâmero, análise de citometria de fluxo é realizada por análises detalhadas sobre o fenótipo dos CTL ou quantificação da sua frequência entre as células T CD8 +.

Protocolo

Todas as experiências descritas neste protocolo foi aprovado pelo Comitê Universidade de uso e cuidados dos Animais (UCUCA) na Universidade de Michigan e realizado de acordo com as políticas e diretrizes estabelecidas.

1. Síntese e Caracterização de ICMVs Co-carregado com proteína Antígeno e Adjuvante Moléculas

  1. Mistura 1: 1 de razão molar de 1,2-dioleoyl- sn-glicero-3-fosfocolina (DOPC) e 1,2-dioleoyl--sn-glicero-3-phosphoethanolamine- N - [4- (p -maleimidophenyl) butiramida] (MPB) em clorofórmio, mantendo-se a quantidade total de lípidos em 1,26 umol por lote (isto é, 500 jig de DOPC e 630 ug de MPB) em um frasco de vidro de 20 ml (diâmetro = 28 mm e altura = 61 mm).
  2. Adicionar fármacos lipofílicos, tais como monofosforil lípido A (MPLA) ou corantes lipofílicos (por exemplo, fez), para a solução de lípido na concentração desejada. Cuidadosamente remover o solvente orgânico por purga com nitroge extra-secon gás e colocando as amostras sob vácuo O / N.
  3. Hidratar a película de lípidos pela adição de 200 ul de 10 mM de bis-Tris propano (BTP, pH 7,0) contendo fármacos solúveis em água (por exemplo, antigénios de proteína). Vortex durante 10 segundos cada 10 minutos durante 1 h à TA.
  4. Transferir o conteúdo do frasco de vidro para um tubo de microcentrífuga de 1,5 ml, as amostras lugar num banho de gelo-água, e sonicar continuamente durante 5 min, utilizando a intensidade de 40% em uma configuração de 125 W / 20 kHz sonda de sonicador de ponta.
  5. Adicionar 4 mL de 150 mM de ditiotreitol (DTT) para cada lote (concentração de trabalho de 2,4 mM), vortex, e centrifuga-se brevemente utilizando um tampo de microcentrífuga.
  6. Adicionar 40 ul de 200 mM CaCl 2 e misturar-se com a pipeta (concentração de trabalho de 33 mM). Incubar as amostras a 37 ° C durante 1 hora para permitir a reticulação da MPB contendo camadas lipídicas com DTT.
  7. Centrifugar as amostras a 20.000 xg durante 15 min, remover o sobrenadante e ressuspender em 200 ul de ddiH 2 O.
  8. Repetir o passo de 1,7 e centrifuga-se novamente após a segunda ddiH 2 O lavagem para remover de CaCl2, que não reagiu, DTT, não encapsulados e materiais de carga a partir do sobrenadante.
  9. Prepare a 10 mg / ml de 2 kDa polietileno glicol-tiol (PEG-SH) em ddiH 2 O. Ressuspender cada amostra ICMV em 100 ul de solução de PEG-SH e incubar a 37 ° C durante 30 min.
  10. Execute duas ddiH 2 O lavagens (passo 1.7) e ressuspender o sedimento ICMV final em PBS e armazenar a 4 ° C. Antes de usar, misturar a suspensão ICMV, como partículas podem assentar no fundo após um armazenamento prolongado.
  11. Para a caracterização de partículas, remover uma pequena alíquota (~ 10%) de ICMVs de cada lote individualmente e diluir num volume total de 1 ml de ddiH 2 O. Colocar uma única amostra num Zetasizer tamanho celular e medida da partícula, o índice de polidispersidade, e potencial zeta das amostras usando um sistema de medição de DLS e potencial zeta (de acordo com o protocolo do fabricante).

2. O exame do Linfonodo Drenagem de ICMVs Fluorescência-marcado com microscopia confocal

  1. Preparação de ICMVs carregado com antigénio marcado com fluoróforo e corante fluorescente lipof ílico
    1. Prepare a proteína marcada com fluororo, tal como ovalbumina feito reagir com éster de Alexa Fluor 555-succinimidilo, de acordo com as instruções do fabricante.
    2. Para preparar ICMVs marcados com fluoróforo no invólucro lipídico, adicionar corante fluorescente lipof ílico, (por exemplo, 1,1'-dioctadecil-3,3,3 ', 3'-Tetramethylindodicarbocyanine, (DID)) durante a preparação da película de lípido (Passo 1.2) na quantidade de 0,05% molar de lípido. Para a hidratação do lípido filme (Passo 1,3), tampão de utilização contendo o antigénio marcado com fluoróforo, e a síntese completa ICMV como descrito nas etapas 1,4-1,11.
  2. A administração subcutânea de nanoparticulas na base da cauda
    1. Anestesiar rato usando um vaporizador fluxo controlado equipado com uma câmara de indução utilizing 3% de isoflurano e 1,5 L / min de fluxo de oxigênio de acordo com um protocolo aprovado do IACUC animal. Uma vez que o mouse estiver inconsciente, execute os seguintes passos rapidamente antes da anestesia desgastar fora para permitir o acesso ideal para o local da injeção e minimizar o desconforto para o animal. Como alternativa, use um bom encaixe cone do nariz para manter a anestesia. Se os ratos são anestesiados por mais de 5 minutos, aplicar lubrificante ocular necessário para minimizar a irritação após o procedimento.
    2. Pulveriza-se a base da cauda com etanol a 70% para higienizar e molhar a pele Parte o cabelo molhado para expor um pequeno pedaço de pele visível, que pode ser usado para visualizar a agulha sob a pele.
    3. Prepare a suspensão de injecção de partículas, contendo a quantidade desejada de antigénio e adjuvante por 100 ul de dose de vacinação em PBS (por exemplo, 10 ug de OVA e 0,3 ug MPLA por 100 ul de dose injectada foi usado no passado 6,9).
    4. Desenhe a suspensão de partículas intOA seringa com uma agulha de 27-29 G e inserir a agulha na base da cauda (~ 5 mm da linha fina) com o chanfro voltado para cima e injectar 50 ul da suspensão de partículas 22.
    5. Aguarde alguns segundos para que a pressão para igualar para evitar back-fluxo excessivo e retire a agulha. Repetir a injecção do outro lado da base da cauda, ​​para atingir ambos os linfonodos de drenagem inguinais.
  3. Preparação de criosecções nódulos linfáticos e análise com microscopia confocal.
    1. Eutanásia o rato com asfixia com CO 2, seguida por pneumotórax produzido de acordo com um protocolo aprovado do IACUC animal. Extrair LNs inguinais acordo com o protocolo demonstrada em Bedoya 23 e lavar o sangue, colocando os tecidos em 1 mL de PBS a 4 ° C.
    2. Absorve o PBS a partir dos tecidos com os tecidos e colocar o tecido no cryomolds tecido (10 x 10 x 5 mm3) pré-cheia para o topo com meio de congelação 24 de outubro. Snap congelar a tissue bloco em nitrogênio líquido por 30 s. Alternativamente, coloque bloco de tecido em gelo seco durante 30 minutos. Armazenar tecido congelado em freezer -80 ° C.
    3. Os cortes de tecido de 5-10 mm de espessura num crióstato fixada em -20 ° C 24.
    4. Se necessário, execute rotulagem de imunofluorescência, e examinar o tecido com microscopia confocal como demonstrado anteriormente 24.

3. Monitoração de Expansão de antígeno específico da, luciferase expressando células T CD8 + após Nanoparticle vacinação com Whole animal de imagem

  1. Isolamento de OVA 257-264 -específica, células que expressam luciferase T CD8 + a partir de ratinhos transgénicos OT-I / Luc
    1. Euthanize um rato transgénico OT-I / Luc com asfixia com CO2 e induzir um pneumotórax de acordo com um protocolo aprovado do IACUC animal. Colher o baço de forma estéril através do acesso a cavidade peritoneal e separar cuidadosamente o tecido do pâncreas 23, elugar em 5 ml de PBS a 4 ° C + 2% FBS para a transferência de capuz de cultura de tecidos.
    2. Inserir o baço sobre um filtro de nylon de 70? M ao longo de um tubo de centrífuga cónico de 50 ml (até 3 baços de cada vez). Utilizando um êmbolo de uma seringa de 3 ml, moer as células através do filtro.
    3. Lavar o êmbolo e o filtro com PBS + 2% FBS e descartar. Levar o volume total a 10 ml / baço no tubo de 50 ml, levar uma pequena amostra da suspensão de células para contagem com um hemocitómetro, e centrifuga-se durante 10 min a 300 x g.
    4. Utilizando um kit de selecção negativa magnética comercialmente disponível, isolar a população de células T CD8 +, seguindo as instruções do fabricante.
    5. Depois de lavar as células com PBS, contar o número de células T CD8 + isoladas. Para avaliar a pureza das células T CD8 + isoladas, incubar ~ 20.000-30.000 células em 20 ul de rato CD16 / 32 anticorpo (0,025 mg / ml) durante 10 min, em seguida, adicionar 20 ul de anticorpo αCD8-APC (0,005 mg / ml) e incubar durante 30 min. Perform todas as incubações a 4 ° C em PBS + 1% w / v BSA. Realizar análise de citometria de fluxo 25.
  2. A transferência adoptiva de células T CD8 + isoladas e visualização da sua vacinação pós expansão
    1. Realizar a transferência adoptiva de células isolado OT-I / Luc T CD8 + em naïve C57BL / 6 ratos por administração de 1-10 x 10 5 células em um volume de 200 ul de PBS por via de injecção intravenosa na veia da cauda 22 (dia -1). Considerando que as manchas da pele e da pele preta em camundongos C57BL / 6 podem interferir com o sinal bioluminescente, albinos raspada camundongos C57BL / 6 são ideais para esses estudos.
    2. Depois de um dia (dia 0), administrar a vacina como previamente descrito (secção 2.2).
    3. Administrar 150 mg de luciferina por kg de peso corporal do ratinho por via intraperitoneal num volume de 300 ul de PBS. Após 10 min, anestesiar os ratos com isoflurano (como no passo 2.2.1) e visualizar as células AT-I / Luc T CD8 + através da aquisição do sinal de bioluminescência durante 5-10 min wom um sistema de imagem animal inteiro (IVIS; referem-se a Wilson 26 para instruções detalhadas). Repita conforme necessário para os estudos longitudinais.

As células T CD8 + 4. péptido-MHC Tetrâmero Coloração de PBMC para análise do antigénio específico da-

Nota: O procedimento seguinte protocolo pode ser realizada utilizando tanto ratinhos C57BL / 6 com células transferidas adoptivamente OT-I / Luc T CD8 + ou ratinhos C57BL / 6, sem a transferência adoptiva.

  1. Num ponto de tempo desejado após a vacinação, recolher aproximadamente 100 mL de sangue (4-6 gotas) a partir de ratinhos por sangramento submandibular técnica 27 dentro de um tubo revestido com K2EDTA e gire várias vezes para evitar a coagulação.
  2. Transferir 100 uL de sangue para um tubo de microcentrífuga, adicionar 1 ml de tampão de lise, e incubar durante 2 a 3 minutos, a fim de remover as células vermelhas do sangue (RBC). Centrifugar as amostras durante 5 min a 1500 x g e eliminar o sobrenadante. Se o sedimento ainda umppears vermelho (indicando remoção incompleta de hemácias), repita o passo de lise com uma breve incubação (<1 min) de lise.
  3. Lavam-se as PBMC restantes com 1 ml de tampão de FACS (PBS + 1% p / v de BSA) e centrifugar a 1500 xg durante 5 min.
  4. Aspirar o sobrenadante e ressuspender a amostra em 20 ul de rato CD16 / 32 anticorpo (0,025 mg / ml) para bloquear o anticorpo não específico e FcR-mediada de ligação. Incubar durante 10 min à TA.
  5. Células transferir de microtubos em 4 ml tubos de FACS de fundo redondo. Adicionar 20 ul de H-2K b solução de OVA SIINFEKL Tetrâmero-PE de acordo com as especificações do fabricante para cada amostra e incubar durante 30 min em gelo.
  6. Preparar a mistura de anticorpos (por exemplo, αCD8-APC, αCD44-FITC, e αCD62L-PECy7 anticorpos (0,005, 0,005, e 0,002 mg / ml de concentração, respectivamente)). Adicionar 20 ul de cada amostra experimental, e incubar durante 20 min em gelo. Preparar controlos fluoróforo individuais por labeling células com cada tetrâmero marcado com fluoróforo ou o anticorpo na concentração indicada acima.
  7. Lavar duas vezes com tampão FACS e ressuspender o sedimento final em tampão FACS contendo 2 mg / ml de DAPI. As células são agora pronto para a análise de citometria de fluxo (detalhes e exemplos podem ser encontrados em Scheffold 25).

Resultados

Os passos envolvidos na síntese de ICMVs estão ilustrados na Figura 1 6. Resumidamente, uma película de lípido contendo quaisquer fármacos lipofílicos ou corantes fluorescentes é hidratado na presença de drogas hidrofílicas. Os catiões divalentes, tais como Ca 2+, são adicionados à unidade de fusão de lipossomas aniónicos em vesículas multilamelares. Ditiol agente de reticulação, tal como DTT, é adicionado a "staple" lípidos funcionalizado com maleimida...

Discussão

O protocolo fornecido neste artigo descreve a síntese e caracterização de um novo sistema de nanopartículas à base de lípidos, denominado ICMVs, e fornece o processo de validação da eficácia de formulações de vacinas à base de nanopartículas para induzir respostas de CD8 +, células T específicas de antigénio. ICMV síntese é completada em todas as condições aquosa, o que é uma grande vantagem em comparação com outros sistemas habitualmente utilizados nanopartículas poliméricas (por exemplo,

Divulgações

Perkin Elmer, desde que o custo de produção incorridos durante a publicação deste artigo.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado pelo Instituto Nacional de Saúde conceder 1K22AI097291-01 e pelo Centro Nacional para a Promoção da Ciência Translational dos Institutos Nacionais de Saúde sob Award Número UL1TR000433. Nós também reconhecemos Prof. Darrell Irvine no MIT e Prof. Matthias Stephan no Fred Hutchinson Cancer Center por sua contribuição no trabalho inicial sobre as nanopartículas de vacinas e camundongos transgênicos OT-I / Luc.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
1. Synthesis and characterization of ICMVs co-loaded with protein antigen and adjuvant molecules
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[4-(p-maleimidophenyl)butyramide] (sodium salt) (MPB)Avanti Polar Lipids, INC.870012
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC)Avanti Polar Lipids, INC.850375
Monophosphoryl Lipid A (Synthetic) (PHAD™) (MPLA)Avanti Polar Lipids, INC.699800
20 mL glass vialsWheaton0334125D
Symphny Vacuum OvenVWR414004-580
Ovalbumin (OVA)Worthington3054
Bis-Tris Propane (BTP)FisherBP2943
Q125 Sonicator (125W/20kHz)QsonicaQ125-110
Dithiothreitol (DTT)FisherBP172
2 kDa Thiolated Polyethylene Glycol (PEG-SH)Laysan BioMPEG-SH-2000-1g
Malvern ZetaSizer Nano ZSP Malvern
ZetaSizer CuvettesMalvernDTS1070
2. Examination of lymph node draining of fluorescence-tagged ICMVs with confocal microscopy
1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'-Tetramethylindodicarbocyanine, 4-Chlorobenzenesulfonate Salt (DID)Life TechnologiesD-7757
Alexa Fluor 555-succinimidyl ester (AF555-NHS)Life TechnologiesA37571
Tissue-Tek OCT freezing medium VWR25608-930
Tissue CryomoldsVWR25608-922
3. Monitoring expansion of antigen-specific, luciferase-expressing CD8+ T cells after nanoparticle vaccination with whole animal imaging
C57BL/6 miceJackson000664
Albino C57BL/6 miceJackson000058
OT-1 C57BL/6 miceJackson003831
70 μm nylon strainerBD352350
EasySep™ Mouse CD8+ T Cell Isolation KitStemCell19853
IVIS® whole animal imaging systemPerkin Elmer
4. Peptide-MHC tetramer staining of peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) for flow cytometric analysis of antigen-specific CD8+ T cells
K2EDTA tubesBD365974
ACK lysis bufferLife TechnologiesA10492-01 
Anti-CD16/32 Fc BlockEbioscience14-0161-86
H-2Kb OVA TetramerMBLTS-5001-1C
Anti-CD8-APCBD553031
Anti-CD44-FITCBD553133
Anti-CD62L-PECy7Ebioscience25-0621-82
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI)SIGMAD8417-10MG
CyAn Flow CytometerBeckman Coulter
FlowJo SoftwareFlowJo

Referências

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  5. Riet, E., Ainai, A., Suzuki, T., Kersten, G., Hasegawa, H. Combatting infectious diseases; nanotechnology as a platform for rational vaccine design. Advanced drug delivery reviews. 74C, 28-34 (2014).
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  8. DeMuth, P. C., Moon, J. J., Suh, H., Hammond, P. T., Irvine, D. J. Releasable layer-by-layer assembly of stabilized lipid nanocapsules on microneedles for enhanced transcutaneous vaccine delivery. ACS Nano. 6, 8041-8051 (2012).
  9. Li, A. V., et al. Generation of Effector Memory T Cell-Based Mucosal and Systemic Immunity with Pulmonary Nanoparticle Vaccination. Science Translational Medicine. 5, 204ra130 (2013).
  10. Stephan, M. T., Moon, J. J., Um, S. H., Bershteyn, A., Irvine, D. J. Therapeutic cell engineering with surface-conjugated synthetic nanoparticles. Nature Medicine. 16, 1035-1041 (2010).
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