Este trabalho foi financiado pelo NIH conceder R01-3155-53.502 e da Universidade de Washington Acordo-Pfizer de Investigação Biomédica.

1. Preparação dos animais: Este protocolo usa adulto fêmea adulta LysM eGFP-ratos, nos quais os neutrófilos e os macrófagos são fluorescente etiquetado pela expressão de eGFP 1. <ol class="lalpha"><li> Rotulagem dos vasos sanguíneos: Para visualizar os vasos sanguíneos, 15μl de pontos não-alvo quantum (655nm) são diluídos em 100 ul de PBS e injetada por via intravenosa no min do mouse antes de 30/10 de imagem. </li><li> Anestesia: <ol><li> Posicione o mouse na câmara de indução do sistema veterinário anestesia por inalação (Noble Medical Service, Inc). </li><li> Definir o vaporizador a 3-4% do isoflurano e os 100% de oxigênio caudal do gás para ~ 1 L / min. Para evitar overdose acidental anestesia, acompanhar de perto o animal até que o reflexo pitada traseira toe está perdido. </li><li> A anestesia é mantida em 1,5 ~ 2% do isoflurano e afinado durante o exame para minimizar os artefatos de respiração quando necessário. A taxa de respiração do mouse é cuidadosamente monitorizados durante toda a sessão de imagens para garantir um plano adequado de anestesia. </li><li> Puralube pomada veterinária é aplicada para os olhos para evitar a secagem. </li><li> O mouse é colocado sobre uma regulada 36 ° C de aquecimento pad (Braintree Científica) durante as injeções e imagem e para evitar a hipotermia. </li><li> Para evitar a desidratação, o mouse é dado 100 ul de PBS sc a cada 1-2 horas. </li></ol></li><li> Entrega de um estímulo inflamatório para induzir o recrutamento de leucócitos: <ol><li> Posicione o mouse no palco cirurgia e swab da pata com etanol 70%. </li><li> Dobrar a agulha de uma seringa de insulina ~ 90 graus próximo ao bisel para facilitar a injeção e melhorar a precisão da profundidade de entrega. </li><li> Carregar a seringa com 0,5 mg de E.coli bioparticles diluído em PBS 1μl. Isto pode ser feito na tampa de um tubo de microcentrífuga para torná-lo mais fácil de carregar a gota. </li><li> Segure o dedo do pé com uma pinça curva e inserir a agulha delicadamente através da pele com o bisel voltado para cima até que esteja logo abaixo da pele. </li><li> Injetar lentamente e mantenha no lugar por 5 segundos para evitar qualquer volta flush. </li></ol></li></ol> 2. Imagem de instalação palco: A plataforma de imagem consiste em uma placa de alumínio com um furo circular cortam o centro. A tampa de vidro grande é colado ao fundo do prato e uma borracha O-ring está colado na parte superior para criar uma câmara de líquido apertado recesso para acomodar a pata traseira. A placa de alumínio é aquecido a 36 ° C através de dois elementos de aquecimento ligado ao topo da placa. <ol class="lalpha"><li> Posicione o mouse sobre o estágio de imagem pré-aquecido e manter a temperatura corporal central do mouse usando o teclado de 36 ° C de aquecimento. </li><li> Segura a pata para a lamela da câmara de imagem com uma fina camada de supercola. </li><li> Lavar a pata duas vezes para remover todos os bocados flutuante de cola e, em seguida, preencher a câmara com PBS fresco (pré-aquecido a 36 ° C). </li></ol> Ratos podem ser visualizados por até 4 horas sem comprometer a viabilidade do animal. O pé pode ser gentilmente lançado com pequena quantidade de acetona e camundongos revived para estudos de imagem longitudinal. No entanto, neste caso, recomendamos o período de imagem para &lt;2 horas e de espera entre as sessões de 24-48 h para minimizar o risco de overdose de anestesia ou desidratação. 3. Imaging Acquisition O microscópio de dois fotões (microscópio 2P) utilizado neste protocolo é uma custom-built duplo-laser sistema de vídeo-taxa composta de um microscópio de pé. O sistema é equipado com dois Ti: Sapphire lasers, quatro de frente Bi-alcalinos PMTs para aquisições simultâneas 3 e 4 canais e um 20x objetivo imersão em água (Olympus, 20x/0.95 NA). <ol class="lalpha"><li> Ajustar o Chameleon XR Ti: safira laser (Coherent, Inc.) para 890-900nm. </li><li> Use 480nm e 560nm espelhos dicróicos (SemRoc) para separar três canais: azul (&lt;480 nm, sinal de geração de segundo harmônico), verde (480-560nm, LysM-eGFP neutrófilos positivo) e vermelho (&gt; 560 nm, quantum dot vasos sanguíneos rotulados ). Alternativamente, o filtro de 560nm pode ser substituído por um filtro de 570nm de distinguir E. bioparticles coli (576nm bioparticles aparecerá laranja) de 655nm pontos quânticos (aparecerá vermelho escuro). </li><li> Cuidadosamente abaixe o objetivo para o PBS e se concentrar em um navio do dedo do pé. </li><li> Com a velocidade de operação de aquisição de imagem em vídeo-rate (30f/sec) e usando o sinal de segunda harmónica que emana de colágeno como um marco de tecido, de forma rápida pesquisa do tecido (no vídeo da taxa de velocidade de aquisição) para localizar um vaso sanguíneo de interesse (uma com visível lysM eGFP-neutrófilos). </li><li> Ajustar o ganho no PMTs para otimizar a separação de cores e minimizar a quantidade de laser necessária para conseguir sinal suficiente sobre o fundo (sercuidado para não saturar a imagem!). </li><li> Uma vez que região de superfície de interesses está localizado, comece lapso de tempo de imagem. Lapso de tempo de imagens pode ser realizada com dois diferentes resoluções temporal. Para rolar imagens de células e aderência e em tempo real dentro dos vasos sanguíneos, adquirimos 30f/sec em um único plano-z. Para documentar o extravasamento e migração celular no parênquima realizamos imagem lapso de tempo 3D. Um protocolo de aquisição típico será composto de uma média de 15 frames para cada Z-passo e adquirir 21 2.5μm seqüencial z-passos para um volume de 200-225 50 ìm em intervalos de 30 seg. </li><li> Uma vez que os arquivos de dados são armazenados no servidor do laboratório, software ou Imaris Volocity pode ser usado para executar multi-dimensional de renderização e rastreamento de células 2, 3. </li></ol> 4. Resultados representante 1.Real-time (30f/sec) imaginação de neutrófilos rolando ao longo dos vasos em 200x. Lapso de tempo imagem mostra neutrófilos, em verde, rolando ao longo do endotélio dos vasos sanguíneos sobre 10mins após a infecção com Listeria monocytogenes, mostrado em vermelho. Fibras de colágeno no tecido conjuntivo aparecem em azul. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/2062/2062_Miller_Movie1.mov">Clique aqui para ver o vídeo.</a> 2.Time-lapso de imagem 3D de dinâmica de recrutamento de neutrófilos em 200x. Recrutamento de neutrófilos típico de circulação e migração através do tecido inflamado é mostrado. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/2062/2062_Miller_Movie2.mov">Clique aqui para ver o vídeo.</a>

<ol>
	<li>Faust, N., Varas, F., Kelly, L. M., Heck, S., Graf, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insertion+of+enhanced+green+fluorescent+protein+into+the+lysozyme+gene+creates+mice+with+green+fluorescent+granulocytes+and+macrophages.">Insertion of enhanced green fluorescent protein into the lysozyme gene creates mice with green fluorescent granulocytes and macrophages.</a> Blood. 96, 719-726 (2000).</li><li>Zinselmeyer, B. H., Lynch, J. N., Zhang, X., Aoshi, T., Miller, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Video-rate+two-photon+imaging+of+mouse+footpad+-+a+promising+model+for+studying+leukocyte+recruitment+dynamics+during+inflammation.">Video-rate two-photon imaging of mouse footpad - a promising model for studying leukocyte recruitment dynamics during inflammation.</a> Inflamm Res. 57, 93-96 (2008).</li><li>Zinselmeyer, B. H., Dempster, J., Wokosin, D. L., Cannon, J. J., Pless, R., Parker, I., Miller, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+16.+Two-photon+microscopy+and+multidimensional+analysis+of+cell+dynamics.">Chapter 16. Two-photon microscopy and multidimensional analysis of cell dynamics.</a> Methods Enzymol. 461, 349-378 (2009).</li><li>Gray, D. F., Jennings, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Allergy+in+experimental+mouse+tuberculosis.">Allergy in experimental mouse tuberculosis.</a> Am Rev Tuberc. 72, 171-195 (1955).</li><li>Lin, A., Loughman, J. A., Zinselmeyer, B. H., Miller, M. J., Caparon, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Streptolysin+S+inhibits+neutrophil+recruitment+during+the+early+stages+of+Streptococcus+pyogenes+infection.+Infect+Immun.">Streptolysin S inhibits neutrophil recruitment during the early stages of Streptococcus pyogenes infection. Infect Immun.</a> 77, 5190-5201 (2009).</li><li>Smith, C. J., Zhang, Y., Koboldt, C. M., Muhammad, J., Zweifel, B. S., Shaffer, A., Talley, J. J., Masferrer, J. L., Seibert, K., Isakson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+analysis+of+cyclooxygenase-1+in+inflammation.">Pharmacological analysis of cyclooxygenase-1 in inflammation.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 13313-13318 (1998).</li><li>Wipke, B. T., Allen, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Essential+role+of+neutrophils+in+the+initiation+and+progression+of+a+murine+model+of+rheumatoid+arthritis.">Essential role of neutrophils in the initiation and progression of a murine model of rheumatoid arthritis.</a> J Immunol. 167, 1601-1608 (2001).</li><li>Baez, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+open+cremaster+muscle+preparation+for+the+study+of+blood+vessels+by+in+vivo+microscopy.">An open cremaster muscle preparation for the study of blood vessels by in vivo microscopy.</a> Microvasc Res. 5, 384-394 (1973).</li><li>Mempel, T. R., Scimone, M. L., Mora, J. R., von Andrian, U. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=in+vivo+imaging+of+leukocyte+trafficking+in+blood+vessels+and+tissues.">in vivo imaging of leukocyte trafficking in blood vessels and tissues.</a> Curr Opin Immunol. 16, 406-417 (2004).</li><li>Miller, M. J., Wei, S. H., Cahalan, M. D., Parker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Autonomous+T+cell+trafficking+examined+in+vivo+with+intravital+two-photon+microscopy.">Autonomous T cell trafficking examined in vivo with intravital two-photon microscopy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 2604-2609 (2003).</li></ol>

Todos os experimentos foram realizados de acordo com protocolos aprovados pelo Comitê de Estudos de Animais da Universidade de Washington em St Louis.

Neste protocolo de vídeo demonstramos os procedimentos para não-invasivos de imagem 2P de recrutamento de leucócitos em resposta à inflamação. A pata é um site clássico fisiológicos para o estudo de inflamação, tais como infecções, alergias e doença auto-imune 4-7. 2P imagem fornece um quadro detalhado de etapas distintas, em vias de tráfico de leucócitos, de rolamento e adesão nos vasos sanguíneos de quimiotaxia para sites de função efetora. Nós descobrimos q...

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Isoflurane, USP</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Butler Animal Health Supply</td>
<td>029405</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>655nm non-targeted quantum dots</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>Q21021MP</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Tetramathylrhodamine conjugated E. coli BioParticles </td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>E2862</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Listeria monocytogenes (Lm)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Reference 2</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Quick gel</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Duro</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Puralube Vet Ointment </td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Pharmaderm Animal Health</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Insulin syringes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD</td>
<td>08290-3284-38</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>PBS</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Thermo Scirntific</td>
<td>SH30256.02</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

non-invasive imaging of leukocyte homing and migration in vivo

Dois fótons de microscopia (2P) é uma técnica de imagem de alta resolução que tem sido amplamente adaptado por biólogos. O valor da microscopia 2P é que ela fornece informações sobre comportamentos espaço-temporal rica de células dentro dos tecidos intactos e em camundongos vivos. O recrutamento de leucócitos desempenha um papel importante na defesa do hospedeiro contra a infecção e, quando for devidamente controlado, pode contribuir para doenças inflamatórias e autoimunes. Estudar o recrutamento de leucócitos in vivo é tecnicamente desafiador vez que as células estão se movendo rapidamente dentro dos vasos localizados no interior dos tecidos de espalhamento de luz. Até o momento, estudos de imagem mais intravital requerem uma preparação cirúrgica para expor os vasos sanguíneos e tecidos. Para evitar o dano tecidual e inflamação induzida por cirurgia em si, aqui, descrevemos uma abordagem não-invasiva por imagem de uma única célula que pode ser usado para estudar o tráfico de leucócitos na pata de rato e falanges. Discutimos os aspectos técnicos de nossa preparação imagem 2P e andar o leitor através de um experimento típico de configuração inicial para coleta de execução e de dados.

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Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Aqui, descrevemos um método não invasivo de dois fótons abordagem microscopia (2P) para estudo de leucócitos homing na pata do rato. Discutimos os aspectos técnicos de nossa preparação tissular e andar o leitor através de um experimento típico de configuração inicial para coleta de execução e de dados.

Não-invasiva por imagem do Homing leucócitos e Migração In vivo</em

Two-photon (2P) microscopy is a high resolution imaging technique that has been broadly adapted by biologists.  The value of 2P microscopy is that it ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

12.7K visualizações.  Washington University in St. Louis. Aqui, descrevemos um método não invasivo de dois fótons abordagem microscopia (2P) para estudo de leucócitos homing na pata do rato. Discutimos os aspectos técnicos de nossa preparação tissular e andar o leitor através de um experimento típico de configuração inicial para coleta de execução e de dados.