Gostaríamos de agradecer ao Dr. Jeffrey Rothstein para a prestação de ratos BAC GLT1 EGFP e GLT1 anticorpos; Tufts Center for Neuroscience Research (NIH P30 NS047243; PI, Rob Jackson) para a prestação de importantes instalações valiosos; Nova faculdade de recrutamento de subvenção (NIH P30 5P30NS069254-02 , PI, Phil Haydon) na Tufts Neuroscience Departamento.

1. Assembleia da Câmara Cultura microfluídicos (MCP) <ol><li> MCP (Figura 1) são concebidos para câmaras abertas compartimentados culturas de diferentes tipos de células 4. Geralmente, ela tem dois compartimentos, que são ligados por meio dos canais centrais (3 mm de diâmetro). Assembleia de MCP com vidro de fundo pratos é necessário para preparação de culturas e análise de imagem posterior. </li><li> Em primeiro lugar, revestimento estéreis de vidro com fundo de pratos com poliornitina (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml) dissolvido em tetraborato de sódio (Sigma-Aldrich, 10 mM pH 8,5) e foram incubadas durante a noite a 37 ° C. </li><li> No dia seguinte, as revestidas de vidro com fundo de placas foram lavadas três vezes com DDQ 2 O e secou-se sob o capô estéril fumos. Os pratos de vidro com fundo foram então adicionalmente revestidas com laminina (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml) e secou-se sob luz UV, durante 1 hora. Pratos revestidos estão prontas para utilização ou podem ser armazenadas à temperatura de -20 ° C até à sua utilização. Estas revestimento de umre necessário para chapeamento neurônios e astrócitos na co-cultura. </li><li> Para a montagem da plataforma de cultura, as plataformas de cultura microfluídicos foram colocados no topo dos com revestimento de vidro com fundo de pratos com canais de ligação centrais no seu lado inferior para formar uma vedação estanque. Neurónio regular ou meios de cultura de astrócitos foram adicionados (a partir das áreas de células de revestimento), em ambos os lados (fig. 1) para a MCP montado e incubadas durante 2-4 horas a 37 ° C, para assegurar que não haja fugas entre a MCP e-glass prato fundo. Nós testamos com o meio antes de as células de revestimento para garantir que não haja vazamento. A montagem de MCP sobre o prato de vidro de fundo deve ser preparado imediatamente antes da utilização. </li></ol> 2. Preparação da cultura neuronal e Indução de axónios neuronais em MCP montado <ol><li> Culturas de células neuronais corticais foram recém-preparado a partir de cérebros embrionários 14-16 dias de idade, de ratinho. O meio de cultura é composto por neurónios meio neurobasal, 2% B27 neurobasal suplemento, glutamina 2 mM pela adição de 1% de 100x GlutaMAX, e 1% de penicilina-streptomysin. Seguindo a dissecção do cérebro do rato, as meninges foram removidas a partir do córtex sob o microscópio de dissecação. O tecido foi então triturado com uma lâmina de barbear para fazer pequenos blocos de tecido de modo a aumentar a área de superfície exposta à tripsina. Os blocos de tecido foram tratadas com tripsina (Sigma-Aldrich, de Tripsina a 0,05%) durante 10 minutos num banho de água a 37 ° C, e depois dissociado por trituração suave com um fogo polida pipeta de Pasteur. As células dissociadas foram filtradas através de um filtro de 70 | iM para recolher a suspensão de células claras neuronal. </li><li> Neurónios (2-3 x 10 6 / ml, 150 ul) foram colocadas em placas sobre as áreas de células de revestimento do lado direito (Figura 1) da MCP montado de modo que os neurónios pode anexar na área de retenção de células (Figura 1). Neurónios recentemente preparadas foram colocadas em placas com meio de plaqueamento neuronal que é suplementado com 5% de soro fetal bovino (Hyclone) para a regulaçãor meio de cultura neuronal. Porque apenas os neurónios que se ligam na área de retenção de células são capazes de crescer em axónios do outro lado da MCP montado por meio de canais centrais, é importante que a densidade da placa elevada de neurónios na área de revestimento de células suficientes para assegurar neurónios estão ligados ao área de retenção de células. Uma imagem representativa de alta densidade de axónios neuronais é mostrado na Figura 2A. </li><li> No dia seguinte, o meio de plaqueamento neuronal foi substituído por meio normal de cultura neuronal. Alterando médio foi realizado por meio de aspiração cuidadosamente a partir da área de revestimento da câmara de célula, mas não a partir da área de retenção de células da MCP montado, de modo a evitar bolhas de ar na área de retenção de células e os canais de ligação centrais. As bolhas de ar vai inibir seriamente o crescimento axonal ea subsequente entrada nos canais centrais no MCP. Glial-cell factor neurotrófico derivado (GDNF, 10-20 ng / ml) foi também adicionado no lado (esquerdo) outrosda câmara no mesmo dia, para facilitar a indução de crescimento axonal 5 a partir do lado neuronal e transversal através de canais centrais da MCP montada (Figura 2A). Quantidade de crescimento de neurites espontânea sem GDNF é também observada a partir do lado neuronal e transversal através de canais centrais da MCP montado. Axónios que entram no canal central são frequentemente observadas 2-3 dias após o plaqueamento. Uma vez que os axónios entrar no canal central, que normalmente entrar no outro lado no prazo de um dia. Axônios são normalmente intacto durante pelo menos uma semana após a entrada no outro lado. </li></ol> 3. Além de astrócitos cultivados para MCP estabelecer um sistema de co-cultura Compartimentada Culturas primárias de astrócitos foram preparadas a partir do cérebro P1-3 do rato filhote. O procedimento de dissociação cérebro é semelhante ao processo neuronal de células de isolamento descritas acima. Os astrócitos foram inicialmente semeadas em placa de 10 cm, que foram pré-Revestidas com poliornitina (Sigma-Aldrich, 1 mg / ml). O meio de cultura de astrócitos (DMEM, 10% de soro fetal bovino, 1% de penicilina-streptomysin) foi mudado todos os dias durante os dois dias seguintes para remover os detritos. Depois disso, o meio foi trocado a cada três dias. <ol><li> Astrócitos tornam-se confluentes 90% e formam uma monocamada após 7 dias. Astrócitos confluentes foram tripsinizadas e 150 ul de re-suspensas astrócitos (1x10 6 / ml) foram re-plaqueadas em placas de revestimento da área da célula do lado esquerdo do MCP montado quando axónios estão prestes a entrar ou ter acabado de entrar na parte lateral esquerda do o montado MCP. Os astrócitos foram plaqueadas normalmente 4-5 dias depois dos neurónios foram plaqueados. O GDNF foi primeiro removido antes da re-chapeamento dos astrócitos para o lado esquerdo da MCP. Re-plated astrócitos foram fixados na área de retenção de células, como mostrado pela imunocoloração GFAP (Figura 1). Apenas o fluxo mínimo de meio entre os dois lados das câmaras (determinado por fluorescência dsim) foi encontrada na MCP, tal como anteriormente demonstrado 4,6. </li><li> Astrócitos tornam-se confluentes 90% e formam uma monocamada após 7 dias. Astrócitos confluentes foram tripsinizadas e 150 ul de re-suspensas astrócitos (1 x 10 6 / ml) foram re-plaqueadas em placas de revestimento da área da célula do lado esquerdo do MCP montado quando axónios estão prestes a entrar ou ter acabado de entrar na esquerda lado da MCP montado. Os astrócitos foram plaqueadas normalmente 4-5 dias depois dos neurónios foram plaqueados. O GDNF foi primeiro removido antes da re-chapeamento dos astrócitos para o lado esquerdo da MCP. Re-plated astrócitos foram fixados na área de retenção de células, como mostrado pela imunocoloração GFAP (Figura 1). Apenas o fluxo mínimo de meio entre os dois lados das câmaras (determinado por fluorescência de corantes) foi encontrada na MCP, tal como anteriormente demonstrado 4,6. </li><li> Após a re-chapeamento dos astrócitos, axónios que entraram no lado esquerdo da MCP montado interagir directamente com o Astrocytes por contato direto axonal ou liberação de fatores solúveis. A imunocoloração de astroglial GLT1 transportador de membrana plasmática de glutamato e neuronal βIII-tubulina foi utilizada para visualizar a interacção entre os axónios e os astrócitos, conforme mostrado na Figura 2D-F. </li></ol>

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Não há conflitos de interesse declarados.

O neurônio MCP baseado e astrócitos sistema de co-cultura de neurônio permite dissecção detalhada para as vias de sinalização astroglia permitindo que somente os axônios passam os canais centrais e interagindo com as células gliais. Este sistema de co-cultura pode ser convenientemente configurado com o neurônio convencional e procedimentos de cultura de astrócitos. Nós também descrita uma aplicação prática deste sistema de co-cultura utilizando um repórter baseado eGFP para demonstrar a activação depe...

<table border="1"><tbody><tr><td> De soro fetal bovino </td><td> Hyclone </td><td> SH30070.03 </td><td> para revestimento do neurônio para neurônio médio cutlure </td></tr><tr><td> De soro fetal bovino </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F4135 </td><td> por meio de cultura de astrócitos </td></tr><tr><td> Fator nervo gliais derivadas </td><td> R &amp; D de sistemas </td><td> 212-GD </td><td> Aplicar 10-20 ng / ml para neurónio lado da câmara </td></tr><tr><td> Dulbecco Eagle modificado meio de glucose elevada </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 11995 </td><td></td></tr><tr><td> 70 milímetros filtro celular </td><td> BD Falcon </td><td> 352350 </td><td></td></tr><tr><td> Prato fundo de vidro esterilizado </td><td> MatTek Corporação </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Microfluídicos plataformas cultura </td><td> Xona microfluídica LLC </td><td> SND150 </td><td></td></tr><tr><td> 6 cavidades da placa de cultura </td&gt; <td> Cellstar </td><td> 657 160 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Neuron meio de cultura <ul><li> Meio Neurobasal </li><li> 2% B27 suplemento Neurobasal </li><li> 2 mM de glutamato pela adição de 1% de 100x GlutaMAX </li><li> 1% penicilina streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Neurônio meio de cultura para células de revestimento <ul><li> Meio Neurobasal </li><li> 2% B27 suplemento Neurobasal </li><li> 2 mM de glutamato pela adição de 1% de 100x GlutaMAX </li><li> 1% penicilina streptomysin </li><li> 5% de soro fetal bovino SH30070.03 </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Meio de cultura de astrócitos <ul><li> Dulbecco modificado eaglucose do meio gle alta </li><li> 10% de soro bovino fetal F4135 </li><li> 1% penicilina streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Tabela 1. Materiais utilizados na cultura de microfluidos axon plataforma baseada neuronal e da glia do sistema de co-cultura. </td></tr></tbody></table>

imaging analysis of neuron to glia interaction in microfluidic culture platform (mcp)-based neuronal axon and glia co-culture system

Neurónio adequado para interacção glia é crítica para a função fisiológica do sistema nervoso central (SNC). Esta comunicação bidirecional é sofisticada específicas mediadas por vias de sinalização entre neurônios e células gliais 1,2. Identificação e caracterização de tais vias de sinalização é essencial para a compreensão de como a fisiologia neurônio glia interacção CNS formas. Anteriormente, neurônios e células gliais culturas mistas têm sido amplamente utilizados para testes e caracterização de vias de sinalização entre neurônios e células gliais. O que aprendemos com essas preparações e outras ferramentas in vivo, no entanto, sugeriu que a sinalização mútuas entre neurônio e glia que ocorreram geralmente em compartimentos específicos dentro dos neurônios (axônio, dendrito, ou soma) 3. Isto torna importante o desenvolvimento de um sistema de cultura novo, que permite a separação dos compartimentos neuronais e, especificamente, examina a interacção entre as células gliais e neuroaxônios NAL / dendritos. Além disso, o sistema de cultura convencional mista não é capaz de diferenciar os factores solúveis e os sinais de membrana por contacto directo entre neurónios e células gliais. Além disso, a grande quantidade de neurónios e células gliais no sistema de co-cultura convencional não tem a resolução necessária para observar a interacção entre um único axónio e uma célula glial. Neste estudo, descrevemos uma nova axónio e glia do sistema de co-cultura com a utilização de uma plataforma de cultura de microfluidos (MCP). Neste sistema de co-cultura, os neurónios e células gliais são cultivadas em duas câmaras separadas, que estão ligados através de múltiplos canais centrais. Nesta plataforma de cultura de microfluidos, apenas processos neuronais (especialmente axónios) pode entrar no lado glial através dos canais centrais. Em combinação com a marcação de proteínas poderoso fluorescente, este sistema permite a análise directa das vias de sinalização entre as interações axonais / dendrítica e glial, tals regulação axônio mediada transcrição em glia tráfico receptor, mediada por células gliais em terminais neuronais, e glia mediada crescimento do axônio. O diâmetro estreito da câmara também significativamente proíbe o fluxo do meio para neurónios enriquecidos para a câmara de glial, facilitando sondagem da interacção proteína-membrana directa entre axónios / dendritos e superfícies gliais.

Lapso de tempo de análise de imagem de axônio induzida por ativação do promotor GLT1 em astrócitos O neurónio compartimentado e sistema de co-cultura de astrócitos permite que apenas os processos neuronais, particularmente axónios, os seletivamente interagir com os astrócitos. Após o estabelecimento com sucesso de axónio e astrócito (ou outras células da glia) co-cultura na MCP montados, diferentes tipos de interacções axónio-glia pode ser estudado, tais como; axonal induzida po...

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Imaging Analysis of Neuron to Glia Interaction in Microfluidic Culture Platform MCP-based Neuronal Axon and Glia Co-culture System

Este estudo descreve os procedimentos de criação de um axônio neuronal e romance (astro) glia plataforma de co-cultura. Neste sistema de co-cultura, a manipulação da interacção directa entre um único axónio (e única célula glial) torna-se possível, permitindo a análise mecanicista do neurónio mútuo de sinalização gliais.

Análise de imagens de Neuron Glia para Interação em Plataforma Cultura microfluídicos (MCP) baseado Axon Neuronal e Sistema Glia co-cultura

Proper  neuron to glia interaction is critical to physiological function of the central  nervous system (CNS). This bidirectional communication is ...

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Neuroscience

Imaging Analysis of Neuron to Glia Interaction in Microfluidic Culture Platform (MCP)-based Neuronal Axon and Glia Co-culture System

14.9K visualizações.  Tufts University. Este estudo descreve os procedimentos de criação de um axônio neuronal e romance (astro) glia plataforma de co-cultura. Neste sistema de co-cultura, a manipulação da interacção directa entre um único axónio (e única célula glial) torna-se possível, permitindo a análise mecanicista do neurónio mútuo de sinalização gliais.