Este trabalho foi financiado pela Fundação de pesquisa alemã (DFG RE 2740/3-1). Agradecemos Frank Huethe e Thomas Günther a produção interna do set-up feito por tES e DC-estimulador.

para pesquisa envolvendo animais, as aprovações (específico do país) relevantes devem ser obtidas antes de iniciar os experimentos. Todas as experiências com animais aqui relatadas são executadas de acordo com a Directiva 2010/63/UE, a lei de proteção animal alemão atualizado (&#34; Tierschutzgesetz &#34;) de julho de 2013 e os regulamentos de atualizada pesquisa animal alemã de agosto de 2013. Protocolos de animais que tenham sido aprovados pelas autoridades locais &#34; Comissão para a experimentação Animal do Conselho Regional da cidade de Freiburg &#34; e &#34; Comissão para a experimentação Animal da Universidade Medical Center Freiburg &#34;.
 1. preparação de instrumentação e Material para cirurgia <ol><li>certifique-se que os itens listados na Figura 1 estão disponíveis e já colocado para cirurgia.</li>
	<li>Preparar uma placa de platina retangular fina (por exemplo, 10 x 6 x 0,15 mm), que servirá como o elétrodo contrário colocado por via intramuscular, no peito e um soco dois pequenos buracos em dois cantos opostos da placa.</li>
	<li>Soldar um cabo isolado com um comprimento de ~ 10 cm, usando uma lata-solda sem chumbo para um dos cantos da placa de platina (sem um buraco).</li>
	<li>Aplicar uma pequena gota de cola histo-acrílico sobre a articulação de solda para isolamento.</li>
</ol> 2. Preparação do roedor para cirurgia <ol><li>atribuir um número de estudo para o roedor e observe isso na cirurgia preparada cartão</li>
	<li>o roedor de pesar e anotar o peso do cartão da cirurgia. Calcular a dose de anestésicos de injeção (por exemplo, cetamina 100mg/kg de peso corporal mais peso corporal de 70 mg/kg de xilazina para ratos).</li>
	<li>Induzir anestesia por injeção intraperitoneal (i.p.) do montante calculado de anestésicos. 
	Nota: Quando utilizar anestesia por inalação, em vez disso (por exemplo, isoflurano), coloque o roedor em uma câmara de indução com fluxo contínuo de ~ 4% de oxigênio de 1-2 L/min.</li>
	<li>Seleção profundidade da anestesia por reflexo de pitada do dedo do pé começando 5 min pós injeção. Se o reflexo de pitada de dedo do pé está ainda presente, alcançar o prolongamento e aprofundamento da anestesia por injeção de 30% da dose inicial.
	<ol><li>Se em qualquer ponto do tempo no experimento retorna o reflexo de pitada de dedo do pé, 30% da dose inicial da anestesia deve ser injetado.</li>
		<li>Ao usar anestesia por inalação, procure por perda do reflexo postural do roedor na câmara de indução e verifique a profundidade da anestesia pela falta de um reflexo de pitada de dedo do pé. Se os reflexos ainda estão presentes, estenda a duração na câmara de anestesia. Ao longo de todo o experimento, adaptar-se a percentagem de isoflurano para a profundidade da anestesia até atingir uma concentração de manutenção de isoflurano ~1-1.5%.</li>
		<li>Quando ocorre a frequência da respiração diminui e ofegante, reduzir a percentagem; quando o roedor recobra o reflexo de pitada de dedo do pé ou mostra movimento espontâneo, aumentar o percentual de anestésicos de inalação.</li>
	</ol></li> <li>, Assim como os reflexos estão ausentes, colocar o roedor no banco do laboratório ou segurá-la na mão. 
	Nota: Ao usar anestesia por inalação, fornecer fluxo contínuo isoflurano reduzida (agora entre 2-3%) usando um bocal conectado ao nebulizador.</li>
	<li>Remover o cabelo no rato &#39; cabeça de corte da área de orelha a orelha e o nível dos olhos rostral apenas atrás das orelhas com uma tesoura. Em seguida, remover o cabelo no peito por raspar a área entre as patas dianteiras do xifoide até as clavículas. 
	Nota: Manter a pele sob tensão facilita o barbear.</li>
	<li>Cobrem os olhos do rato com uma gota de pomada para proteger a córnea.</li>
	<li>Marcar o rato &#39; orelha s de acordo com o número atribuído estudo. 
	Nota: Dependendo da duração do estudo, uma marca de cauda pode ser suficiente, caso contrário esta especificação padronizada é preferível.</li>
</ol> 3. Procedimento cirúrgico: Implantação de eletrodos no peito Nota: este passo pode ser ignorado quando o eletrodo contador é colocado externamente sobre o peito depilado, com um colete.
<ol><li>Lugar o roedor propenso (no peito) na mesa de operação. 
	Nota: Em caso de anestesia por inalação, mantenha o rato &#39; focinho s colocado no bocal da anestesia, reduzindo ainda mais a concentração de isoflurano 1,5-2%.</li>
	<li>Desinfectar o couro cabeludo raspado com um spray desinfetante ou com um cotonete embebido em agente anti-séptico (por exemplo, etanol 70%) e deixe secar ao ar. Repita duas vezes.</li>
	<li>Cortar a pele com um bisturi em uma linha do nível do olho rostral para o nível do ouvido médio. 
	Nota: Este permite o encapsulamento de cabo de conexão do elétrodo implantado no peito em direção ao topo da cabeça e é também o corte desejado para a colocação de soquete de eletrodo DCS.</li>
	<li>Transformar o rato para a posição supina, para que o peito fique exposto.</li>
	<li>Desinfectar a pele do peito, conforme descrito no passo 3.2.</li>
	<li>Elevar a pele lateral do peito direito com um fórceps de tecido e corte uma botoeira com tesouras pequenas de cerca de 0,5 cm medial da axila direita. Em seguida, fazer um corte sagital direto na orientação craniana com a tesoura.</li>
	<li>Formam uma bolsa subcutânea por atraumatically desconectando a pele do músculo peitoral maior à esquerda. Fazê-lo repetidamente abrindo a tesoura pequena (ou um cotonete de algodão embebido salina).</li>
	<li>Transformar o animal do seu lado direito fazer um túnel o caminho de cabo do canto esquerdo occipital da pele cabeça aberta ao longo do pescoço para sair no malote peitoral por penetrar a fáscia superficial usando fórceps homeostático.</li>
	<li>Abra cuidadosamente a pinça homeostática para agarrar a extremidade do cabo eletrodo ligado ao eléctrodo de platina sem permitir que o fio afiadas a desviar-se. Puxe o cabo através do túnel até o eletrodo entra o malote, orientado com o ponto de solda para o membro posterior esquerdo de roedores. Rode o roedor para a posição prona.</li>
	<li>Fixar a placa de platina com uma sutura não absorvível trançada sintética estéril à fáscia peitoral os dois buracos de canto (4-5 knots são recomendados para estabilidade) opondo-se.</li>
	<li>Da mesma forma, conecte o cabo à fáscia por um nó frouxo, formando um laço ligeiro antes da entrada do túnel de tecido.</li>
	<li>Fechar a pele com suturas cutâneas de 3-4 dependendo do tamanho do corte (o mesmo material de sutura pode ser usado como para o eletrodo e o cabo).</li>
</ol> 4. Procedimento cirúrgico: Colocação do tES sub-fascial soquete <ol><li>lugar do animal em uma armação estereotáxica. 
	Nota: Se utilizar anestesia por inalação, diminuir a concentração do anestésico para um fluxo de isoflurano manutenção de ~1.5-1%, ajustado para o reflexo de pitada de dedo do pé e o padrão de respiração.</li>
	<li>Desinfectar o couro cabeludo raspado, conforme descrito no passo 3.2.</li>
	<li>Cortar a pele com um bisturi em uma linha do nível do olho rostral para o nível do ouvido médio. 
	Nota: Se o peito eletrodo placemEnt foi realizada, já foram executadas as etapas 4.2 e 4.3.</li>
	Troca de <li>raspar fora o periósteo (tecido conjuntivo no crânio) para os lados com o bisturi e cuidadosamente limpe com algodão. Fixar o tecido conjuntivo nos 4 cantos de corte com braçadeiras de buldogue e deixá-los ficar lateralmente para manter o campo de cirurgia aberta.</li>
	<li>Aplicar soro fisiológico 0,9% para limpar a superfície do osso e tecido com cotonetes de algodão. Em seguida, limpe a superfície do osso com 3% H 2 O 2. Evite o contacto com o tecido. Pelo presente, o osso é bem mais limpa e pequeno sangramento do osso será interrompido. Além disso, resíduos de periósteo tornam-se visíveis. Remover estes resíduos com um cotonete de algodão, aplicando uma pressão moderada. 
	Nota: Remoção de resíduos do periósteo aumentará a aderência e a durabilidade do soquete tES colada no osso.
	<ol><li>Em caso de hemorragia incontrolável, utilize uma broca de osso e tocá-lo para 1-3 s com ligeira pressão sobre o osso. Este procedimento mecânico na maioria dos casos parará o sangramento sem aquecimento significativo. Nunca use o eletrocautério no osso; Até breve aplicação resultará em dano de tecido cerebral (eletrocautério deve ser usado exclusivamente para ferida sangrando de tecido).</li>
	</ol></li> <li>Como os parafusos de fixação vão melhorar a aderência de set-up, escolha uma broca de encaixe do tamanho do parafuso. Coloque dois buracos no crânio em duas placas diferentes de osso por pre-perfuração com uma broca de mão e, em seguida, pelo aplicativo ligeira pressão vertical com a broca de osso. Evitar proximidade para a posição desejada do soquete tES, pois isso pode impedir aparafusar o eletrodo (por exemplo, para a esquerda tES cortical motor primário, escolher a posição do parafuso parietal direita frontal e posterior).</li>
	<li>No caso de um eletrodo implantado contador, burr um terceiro furo localizado no osso parietal direito posterior para futura fixação do cabo encapsulado.</li>
	<li>Colocar os parafusos de plástico na trepanação e aperte até sente o primeiro atrito. Em seguida, execute três voltas de parafuso adicional de 180 °. Verifique com a pinça para a estabilidade do parafuso e adicionar mais uma curva, se não é suficientemente apertado. 
	Nota: Para ratos adultos isso garantirá peridural colocação dos parafusos sem danificar a dura-máter ou cérebro (dependendo do design de rosca, a curva número pode variar). O uso de parafusos de aço inoxidável também deve ser viável, desde que mesmo em DCS densidades de corrente acima do limiar de neurodegeneração, colocação de parafuso não perturb lesão local ou medida abaixo os parafusos.</li>
	<li>Vez no ferro de soldar e pré-aqueça por aproximadamente 5 min. Enrole o cabo sair do túnel de tecido occipitally em torno do parafuso parietal direita e depois cortá-la, deixando aproximadamente 1 cm cabo atrás do enrolamento. Retirar cuidadosamente o isolamento na extremidade do cabo com um bisturi.</li>
	<li>Consertar o cabo sem fôlego para o parafuso e o osso com cola de cyanoacrylic.</li>
	<li>, Aplique uma pequena quantidade de chumbo estanho-solda para o conector e os fios desencapados do cabo eletrodo contador e conectar ambos premindo brevemente as duas partes pre-soldadas juntos enquanto toca com a ponta de solda até que derreta a solda de estanho (aproximadamente 2-3 s). Remover a ponta de solda imediatamente para evitar o aquecimento excessivo de metal do cabo com dano tecidual subsequente.</li>
	<li>Buscar o soquete de eletrodo tES feito personalizado ( figura 1B, em vermelho) com pinça de ponta curvada, serrilhada e aplique uma camada fina de cola de cyanoacrylic até a borda inferior do soquete. Para a colocação acima o córtex motor e usando um soquete de 4 mm de diâmetro, coloque o ponto de tomada a meados no 2mm anterior e lateral de 2 mm do bregma. Para esta posição, borda medial interna do soquete deve terminar diretamente na sutura sagital e a borda caudal deve terminar na altura do bregma. Pressione o soquete brevemente no osso (a maioria das colas cyanoacrylic endurecem por pressão). 
	Nota: Colocar uma fonte de luz diretamente sobre o soquete pode facilitar colocação o socket.</li>
	<li>, Certifique-se de que o osso dentro da área do soquete é livre de cola (verificando com a luz, porque a cola é reflexiva). No caso de cola derramar, remover o soquete, raspar a cola com o bisturi e repita a etapa 4.12.</li>
	<li>Após o soquete está no lugar e a área da futura estimulação é livre de cola, primeiro selar a borda lateral do soquete ao tecido vizinho com uma pequena gota de cola cyanoacrylic para evitar uma ponte de fluido que pode levar a derivação de corrente neste local. Não aplique demasiada cola como ele pode fluir para a área de estimulação (se isso ocorrer, volte ao passo 4.12). 
	Nota: Manter a área de estimulação livre de cola é crucial como uma redução da área de estimulação pode aumentar drasticamente a densidade de corrente (A/m ²).</li>
	<li>Cobrir todos os parafusos com cola de cyanoacrylic.</li>
	<li>Misturar o cimento acrílico de dois componentes dental em um tubo de silicone pequenas ou vidro. Assim torna-se viscoso, aplicá-lo com uma espátula odontológica para selar as bordas restantes do soquete para o osso. Evitar qualquer fluxo de cimento acrílico odontológico na área de estimulação.</li>
	<li>Finalmente cobrir o crânio inteiro, parafusos, cabo de eletrodo de contador e o soquete até &#8531; do soquete com cimento acrílico dental. Certifique-se de que o cimento tem a viscosidade correta: se muito fluido, fluirá para o tecido circundante; se demasiado duro é difícil distribuí-lo uniformemente.</li>
	<li>Quando é coberto todo o osso e o cimento é endurecido, retire os grampos de buldogue; a pele só deve tocar o cimento construído para que a sutura não é necessária. (Se o corte inicial foi escolhido há muito tempo e o tecido conjuntivo ou muscular é visível, aplicar uma sutura conforme descrito na etapa 3.12).</li>
	<li>, Aplique uma camada de iodo com um cotonete de algodão ao redor da borda da pele cortada e injectar por via subcutânea carprofeno (5 mg/kg de peso corporal dissolvido em 5-7,5 mL de solução salina 0,9% para dor tratamento e fluido de substituição). 
	Nota: Se utilizar a anestesia por inalação, desligue agora.</li>
	<li>Colocar o roedor em uma caixa de aquecimento para a recuperação da anestesia, até que o roedor está acordado e estabilidade postural é restaurada. 
	Nota: Verifique o animal &#39; desenvolvimento de peso s, ferida critérios de bem-estar geral e estado diariamente de acordo com a instituição &#39; recomendação de s.</li>
</ol> 5. Procedimento de estimulação elétrica transcraniana Nota: como anestesia afeta efeitos de SMT, realizando a estimulação em roedores alertas sempre que possível é recomendável. Permitir que o roedor recuperar pelo menos 5 dias (cicatrização da ferida cabeça e peito) antes de iniciar os experimentos. Experimentos podem ser realizados nos pontos anteriores de tempo após a cirurgia quando usando um eletrodo contador externo fixado com um colete, como o ferimento no peito é mais irritável; Mas os animais precisam estar habituados com o colete de eletrodo durante vários dias e pode ocorrer interferência com tarefas comportamentais.
<ol><li>Preencher o soquete de eletrodo tES metade com soro fisiológico a 0,9% e remover bolhas de ar.</li>
	<li>Servante tDCS cathodal da sessões, sempre verifique a cloração e se necessário (por exemplo, uma superfície brilhante prata), re-chlorinate o eletrodo de Ag/AgCl. Antes tDCS anodal sessões, remova possíveis depósitos de AgCl excesso de estímulos anteriores com lixa para permitir a boa condutibilidade durante a estimulação. Enroscar a tampa de rosca tES do eletrodo ( figura 1B, pedaço de cinza). 
	Cuidado: Falha para re-chlorinate o eletrodo entre sessões tDCS cathodal da conduzirá à exaustão de cloração durante a estimulação e a acumulação tóxica por reação eletroquímica. Isto irá induzir dano tecidual. Não é necessário re-cloração dentro de uma única sessão se estimulação duração é inferior a 20 min.</li>
	<li>Conectar os cabos para os dois conectores na cabeça (para a estimulação anodal, o anodal cabo está conectado ao conector na tampa do parafuso, para cathodal da estimulação, é oposto). 
	Nota: Quando utilizar um eletrodo contador colocado externamente, cobrir o eletrodo contador com gel condutor e coloque sobre o roedor &#39; peito de s. Este é mais fácil se o eletrodo pre-é fixado em um colete de roedor pequeno, que o roedor pode usar durante a estimulação.</li>
	<li>Lugar o roedor na gaiola experimental, com os cabos conectado a um eixo acima da gaiola que permite a livre circulação.</li>
	<li>Ativar o estimulador e ajustar os parâmetros de estimulação (intensidade de estimulação, duração, rampa acima e para baixo tempo).</li>
	<li>Quando não utilizar um dispositivo de estimulação comercialmente disponíveis com um segurança desligado e o alarme de desconexão, incluem um medidor no circuito para verificar o fluxo de corrente constante. 
	Nota: Com esta configuração, estimulação pode ser aplicada durante o desempenho ou treinamento de tarefas comportamentais.</li>
	<li>Verificar se há sinais de estresse ou desconforto do roedor durante estimulação.</li>
	<li>Após o término da estimulação, desconecte os cabos, desatarraxe a tampa do eletrodo na cabeça e limpe e seque o soquete com um cotonete. Retornar o roedor para o ambiente da casa ou prosseguir com um processo comportamental, se desejado.</li>
</ol>

<ol>
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K., Jankord, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulating+Hippocampal+Plasticity+with+In+Vivo+Brain+Stimulation.">Modulating Hippocampal Plasticity with In Vivo Brain Stimulation.</a> J Neurosci. 35 (37), 12824-12832 (2015).</li><li>Wachter, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+direct+current+stimulation+induces+polarity-specific+changes+of+cortical+blood+perfusion+in+the+rat.">Transcranial direct current stimulation induces polarity-specific changes of cortical blood perfusion in the rat.</a> Exp Neurol. 227 (2), 322-327 (2011).</li><li>Koo, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=After-effects+of+anodal+transcranial+direct+current+stimulation+on+the+excitability+of+the+motor+cortex+in+rats.">After-effects of anodal transcranial direct current stimulation on the excitability of the motor cortex in rats.</a> Rest Neurol Neurosci. 34 (5), 859-868 (2016).</li><li>Liebetanz, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=After-effects+of+transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS)+on+cortical+spreading+depression.">After-effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) on cortical spreading depression.</a> Neurosci Lett. 398 (1-2), 85-90 (2006).</li><li>Fregni, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+transcranial+direct+current+stimulation+coupled+with+repetitive+electrical+stimulation+on+cortical+spreading+depression.">Effects of transcranial direct current stimulation coupled with repetitive electrical stimulation on cortical spreading depression.</a> Exp Neurol. 204 (1), 462-466 (2007).</li><li>Cambiaghi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flash+visual+evoked+potentials+in+mice+can+be+modulated+by+transcranial+direct+current+stimulation.">Flash visual evoked potentials in mice can be modulated by transcranial direct current stimulation.</a> Neurosci. 185, 161-165 (2011).</li><li>Dockery, C. A., Liebetanz, D., Birbaumer, N., Malinowska, M., Wesierska, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cumulative+benefits+of+frontal+transcranial+direct+current+stimulation+on+visuospatial+working+memory+training+and+skill+learning+in+rats.">Cumulative benefits of frontal transcranial direct current stimulation on visuospatial working memory training and skill learning in rats.</a> Neurobiol Learn Mem. 96 (3), 452-460 (2011).</li><li>Faraji, J., Gomez-Palacio-Schjetnan, A., Luczak, A., Metz, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beyond+the+silence:+Bilateral+somatosensory+stimulation+enhances+skilled+movement+quality+and+neural+density+in+intact+behaving+rats.">Beyond the silence: Bilateral somatosensory stimulation enhances skilled movement quality and neural density in intact behaving rats.</a> Behav Brain Res. 253, 78-89 (2013).</li><li>Pikhovych, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+Direct+Current+Stimulation+Modulates+Neurogenesis+and+Microglia+Activation+in+the+Mouse+Brain.">Transcranial Direct Current Stimulation Modulates Neurogenesis and Microglia Activation in the Mouse Brain.</a> Stem Cells In. , 1-10 (2016).</li><li>Rueger, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multi-session+transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS)+elicits+inflammatory+and+regenerative+processes+in+the+rat+brain.">Multi-session transcranial direct current stimulation (tDCS) elicits inflammatory and regenerative processes in the rat brain.</a> PloS one. 7 (8), e43776 (2012).</li><li>Liebetanz, D., Koch, R., Mayenfels, S., K&#246;nig, F., Paulus, W., Nitsche, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Safety+limits+of+cathodal+transcranial+direct+current+stimulation+in+rats.">Safety limits of cathodal transcranial direct current stimulation in rats.</a> Clinical Neurophysiol. 120 (6), 1161-1167 (2009).</li><li>Yoon, K. J., Oh, B. -. M., Kim, D. -. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+improvement+and+neuroplastic+effects+of+anodal+transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS)+delivered+1+day+vs.+1+week+after+cerebral+ischemia+in+rats.">Functional improvement and neuroplastic effects of anodal transcranial direct current stimulation (tDCS) delivered 1 day vs. 1 week after cerebral ischemia in rats.</a> Brain Res. 1452, 61-72 (2012).</li><li>Spezia Adachi, L. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exogenously+induced+brain+activation+regulates+neuronal+activity+by+top-down+modulation:+conceptualized+model+for+electrical+brain+stimulation.">Exogenously induced brain activation regulates neuronal activity by top-down modulation: conceptualized model for electrical brain stimulation.</a> Exp Brain Res. 233 (5), 1377-1389 (2015).</li><li>Jackson, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Safety+parameter+considerations+of+anodal+transcranial+Direct+Current+Stimulation+in+rats.">Safety parameter considerations of anodal transcranial Direct Current Stimulation in rats.</a> Brain, behavior, and immunity. , (2017).</li><li>Ordek, G., Groth, J. D., Sahin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effects+of+ketamine/xylazine+anesthesia+on+the+cerebral+and+cerebellar+cortical+activities+in+the+rat.">Differential effects of ketamine/xylazine anesthesia on the cerebral and cerebellar cortical activities in the rat.</a> J Neurophysiol. 109 (5), 1435-1443 (2013).</li><li>Sykes, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differences+in+Motor+Evoked+Potentials+Induced+in+Rats+by+Transcranial+Magnetic+Stimulation+under+Two+Separate+Anesthetics:+Implications+for+Plasticity+Studies.">Differences in Motor Evoked Potentials Induced in Rats by Transcranial Magnetic Stimulation under Two Separate Anesthetics: Implications for Plasticity Studies.</a> Front Neural Circ. 10, 80 (2016).</li><li>Zhang, D. X., Levy, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ketamine+blocks+the+induction+of+LTP+at+the+lateral+entorhinal+cortex-dentate+gyrus+synapses.">Ketamine blocks the induction of LTP at the lateral entorhinal cortex-dentate gyrus synapses.</a> Brain Res. 593 (1), 124-127 (1992).</li></ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Este protocolo descreve materiais típicos e etapas do procedimento cirúrgica realização de uma configuração de tES permanentes, bem como para estimulação subsequente em roedores alertas. Durante a preparação de um roedor tES experimentar, vários aspectos metodológicos (segurança e tolerabilidade de tES, parâmetro de resultado), bem como aspectos conceituais (comparabilidade com a condição humana, os efeitos previstos da estimulação em um cérebro particular região) precisam ser levados em conta. Do pon...

A administração de transcraniana de correntes elétricas para o cérebro (tES) tem sido usada por décadas para estudar a função do cérebro e para modificar o comportamento. Mais recentemente, a aplicação direta de correntes, ou menos frequentemente correntes alternas (TAC e tRNS), canaliza através do crânio intacto pelo uso de dois ou mais eletrodos (anode(s) e cathode(s)) ganhou interesse científico e clínico. Em particular, tDCS tem sido utilizado em mais de 33.200 sessões em indivíduos saudáveis e pacientes com doenças neuropsiquiátricas e emergiu como um seguro e fácil, econômica aplicação de cabeceira, com possível potencial terapêutico, bem como de longa duração efeitos comportamentais1. Isto claramente rendeu a maior necessidade e o interesse científico em estudos mecanicistas, incluindo aspectos de segurança. Este artigo enfoca a forma mais comumente utilizada de estimulação, tDCS.
Em toda a espécie, tDCS modula a excitabilidade cortical e plasticidade sináptica. Alterações de excitabilidade foram relatadas como dependente da polaridade alteração da taxa de disparo neuronal espontânea em ratos e gatos2,3,4, ou alterações no motor amplitudes de potenciais evocados (MEP) em humanos e ratos ( ambos aumentaram após anodal e diminuição após tDCS cathodal da: humano5,6; rato.7). DCS anodal aumentou a eficácia sináptica de motor cortical ou hippocampal sinapses em vitro durante várias horas após a estimulação ou potenciação de longo prazo (LTP), quando aplicado co com uma entrada sináptica fraca específica ou quando dado antes uma plasticidade induzindo a estimulação8,9,10,11,12. Em conformidade, os benefícios da estimulação na sucesso treinamento motor ou cognitivo, muitas vezes são revelados apenas se tDCS é co aplicada com formação de8,13,14,15. Enquanto estas conclusões anteriores são atribuídas principalmente às funções dos neurônios, note-se que células não-neuronais (glia) podem também contribuir para efeitos funcionais das tDCS. Por exemplo, os níveis de cálcio intracelular hamartomas aumentaram durante tDCS anodal em ratos alerta16. Da mesma forma, tDCS anodal em densidades de corrente abaixo do limiar para a neurodegeneração induzida uma ativação dependente da dose de micróglia17. No entanto, a modulação da interação neurônio-glia por tDCS precisa de maiores investigações específicas.
Tomados junto, animal pesquisa avançada claramente nossa compreensão do efeito moduladora da tDCS na excitabilidade e plasticidade. No entanto, há um observável "lacuna de translação inversa" no aumento exponencial nas publicações de estudos tDCS humana em contraste com o lento e pequeno aumento em investigações sobre os mecanismos subjacentes de tES em vitro e in vivo modelos animais. Além disso, modelos de roedores tES são realizados com alta variabilidade em laboratórios de pesquisa (variando de transdermal a estimulação sub-fascial) e procedimentos de estimulação relatado muitas vezes não são totalmente transparentes, dificultando a comparabilidade e replicabilidade de dados de pesquisa básica, bem como a interpretação dos resultados.
Aqui, descrevemos em detalhe a implementação cirúrgica de uma configuração de estimulação transcraniana cérebro visando o córtex motor primário, que permite a tradução da condição humana tDCS minimizando a variabilidade e permite a estimulação repetida sem dificultando o comportamento. É fornecido um protocolo passo a passo para tES subsequentes em ratos alertas. Aspectos metodológicos e conceituais da aplicação segura de tES em roedores alertas são discutidos.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Softasept N</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, 
			Melsungen, Deutschland</td>
			<td>3887138</td>
			<td>antiseptic agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol 70 %</td>
			<td>Carl Roth GmbH &#38; Co. KG, Karlsruhe, Deutschland</td>
			<td>T913.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>arched tip forceps</td>
			<td>FST Fine science tools, Heidelberg, Deutschland</td>
			<td>11071-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Forceps, 10cm, Straight, Serrated</td>
			<td>World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA</td>
			<td>15914</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Handle #3, 13cm</td>
			<td>World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA</td>
			<td>500236</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Standard Scalpel Blade #10</td>
			<td>World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA</td>
			<td>500239</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zelletten cellulose swabs</td>
			<td>Lohmann und Rauscher, Neuwied, Deutschland</td>
			<td>13349</td>
			<td>5 x 4 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>AbbVie Deutschland GmbH &#38; Co</td>
			<td>N01AB06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors, 11.5cm, Straight</td>
			<td>World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA</td>
			<td>501758</td>
			<td>small scissors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cotton swab/cotton buds</td>
			<td>Carl Roth GmbH &#38; Co. KG, Karlsruhe, Deutschland</td>
			<td>EH12.1</td>
			<td>Rotilabo</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kelly Hemostatic Forceps, 14cm, Straight</td>
			<td>World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA</td>
			<td>501241</td>
			<td>surgical clamp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electrode plate (platinum)</td>
			<td>custom made</td>
			<td>Wissenschaftliche Werkstatt Neurozentrum Uniklinik Freiburg, Deutschland</td>
			<td>10x6 mm, 0.15 mm thickness</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insulated copper strands (~1 mm diameter)</td>
			<td>Reichelt elektronik GmbH &#38; Co. KG, Sande, Germany</td>
			<td>LITZE BL</td>
			<td>electrode cable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weller EC 2002 M soldering station</td>
			<td>Weller Tools GmbH, Besigheim, Germany</td>
			<td>EC2002M1D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iso-Core EL 0,5 mm</td>
			<td>FELDER GMBH L&#246;ttechnik, Oberhausen, Deutschland</td>
			<td>20970510</td>
			<td>lead free solder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MERSILENE Polyester Fiber Suture</td>
			<td>Johnson &#38; Johnson Medical GmbH, Ethicon Deutschland, Norderstedt, Germany</td>
			<td>R871H</td>
			<td>nonabsorbable braided suture, 4-0</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Histoacryl</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG, 
			Melsungen, Deutschland</td>
			<td>9381104</td>
			<td>cyanoacrylate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamin 10%</td>
			<td>Medistar GmbH, Germany</td>
			<td>n/a</td>
			<td>anesthetics</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun 2% (Xylazine)</td>
			<td>Bayer GmbH, Germany</td>
			<td>n/a</td>
			<td>anesthetics</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

transcranial electrical brain stimulation in alert rodents

Estimulação elétrica do cérebro de transcraniana pode modular a excitabilidade cortical e plasticidade em humanos e roedores. A forma mais comum de estimulação em seres humanos é a estimulação transcraniana de corrente contínua (tDCS). Menos frequentemente, estimulação transcraniana de corrente alternada (TAC) ou estimulação transcraniana de ruído aleatório (tRNS), uma forma específica de TAC usando uma corrente elétrica aplicada aleatoriamente dentro de um intervalo de frequência pré-definidos, é usada. O aumento da investigação de estimulação cerebral elétrica não invasiva em seres humanos, tanto para fins experimentais e clínicos, resultou em uma maior necessidade de estudos de segurança básico, mecanicista, em animais. Este artigo descreve um modelo para estimulação elétrica do cérebro de transcraniana (tES) através do crânio intacto como alvo o sistema motor em roedores alertas. O protocolo fornece instruções passo a passo para a instalação cirúrgica de um soquete de eletrodo permanente sub-fascial combinado com um eletrodo contador implantado no peito. Colocando um eletrodo de estimulação na tomada sub-fascial, tipos diferentes de estimulação elétrica, comparáveis a tDCS, TAC e tRNS em humanos, podem ser entregue. Além disso, os passos práticos para tES em alertas roedores são introduzidos. A densidade de corrente aplicada, estimulação duração e tipo de estimulação podem ser escolhidos dependendo das necessidades de experimentais. As advertências, vantagens e desvantagens desta montagem são discutidas, assim como aspectos de tolerabilidade e segurança.

A implementação descrita de uma armação para confiável tES repetidas em roedores alertas pode ser facilmente integrada em experimentos mecanicistas, estudos de dose-resposta ou experimentos incluindo tarefas comportamentais. Até à data, a comparabilidade dos dados de estudos com animais usando tES (não invasivo) é dificultada pela variabilidade de tES instantâneas estimulação entre laboratórios e por diferenças nos parâmetros de estimulação (por exemplo, várias ...

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Transcranial Electrical Brain Stimulation in Alert Rodents

Estimulação transcraniana de elétrica cerebral em roedores alertas

Este protocolo descreve uma armação cirúrgica para um soquete de eletrodo sub-fascial permanente e um eletrodo implantado no peito em roedores. Colocando um segundo eletrodo na tomada, diferentes tipos de estimulação elétrica do cérebro de transcraniana podem ser entregue para o sistema motor em animais alertas através do crânio intacto.

Transcranial electrical brain stimulation can modulate cortical excitability and plasticity in humans and rodents. The most common form of stimulation in ...

transcranial-electrical-brain-stimulation-in-alert-rodents

Research

JoVE Journal

Neuroscience

10.6K visualizações.  Albert-Ludwigs-University Freiburg. Este protocolo descreve uma armação cirúrgica para um soquete de eletrodo sub-fascial permanente e um eletrodo implantado no peito em roedores. Colocando um segundo eletrodo na tomada, diferentes tipos de estimulação elétrica do cérebro de transcraniana podem ser entregue para o sistema motor em animais alertas através do crânio intacto.

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Combining Transcranial Magnetic Stimulation and fMRI to Examine the Default Mode Network

The default mode network is a group of brain regions that are active when an individual is not focused on the outside world and the brain is at "wakeful rest."1,2,3 It is thought the default mode network corresponds to self-referential or "internal mentation".2,3
It has been hypothesized that, in humans, activity within the default mode network is correlated with certain pathologies (for instance, hyper-activation has been linked to schizophrenia 4,5,6 and autism spectrum disorders 7 whilst hypo-activation of the network has been linked to Alzheimer's and other neurodegenerative diseases 8). As such, noninvasive modulation of this network may represent a potential therapeutic intervention for a number of neurological and psychiatric pathologies linked to abnormal network activation. One possible tool to effect this modulation is Transcranial Magnetic Stimulation: a non-invasive neurostimulatory and neuromodulatory technique that can transiently or lastingly modulate cortical excitability (either increasing or decreasing it) via the application of localized magnetic field pulses.9
In order to explore the default mode network's propensity towards and tolerance of modulation, we will be combining TMS (to the left inferior parietal lobe) with functional magnetic resonance imaging (fMRI). Through this article, we will examine the protocol and considerations necessary to successfully combine these two neuroscientific tools.

In this article, we examine the methodology and considerations relevant to the combination of TMS and fMRI to examine the effects of brain stimulation on the default network.

Combinando Estimulação Magnética Transcraniana e fMRI para o Exame da rede de modo padrão

The default mode network is a group of brain regions that are active when an individual is not focused on the outside world and the brain is at "wakeful ...

Neurociência

TMS: Using the Theta-Burst Protocol to Explore Mechanism of Plasticity in Individuals with Fragile X Syndrome and Autism

Fragile X Syndrome (FXS), also known as Martin-Bell Syndrome, is a genetic abnormality found on the X chromosome.1,2 Individuals suffering from FXS display abnormalities in the expression of FMR1 - a protein required for typical, healthy neural development.3 Recent data has suggested that the loss of this protein can cause the cortex to be hyperexcitable thereby affecting overall patterns of neural plasticity.4,5
In addition, Fragile X shows a strong comorbidity with autism: in fact, 30% of children with FXS are diagnosed with autism, and 2 - 5% of autistic children suffer from FXS.6
Transcranial Magnetic Stimulation (a non-invasive neurostimulatory and neuromodulatory technique that can transiently or lastingly modulate cortical excitability via the application of localized magnetic field pulses 7,8) represents a unique method of exploring plasticity and the manifestations of FXS within affected individuals. More specifically, Theta-Burst Stimulation (TBS), a specific stimulatory protocol shown to modulate cortical plasticity for a duration up to 30 minutes after stimulation cessation in healthy populations, has already proven an efficacious tool in the exploration of abnormal plasticity.9,10 
Recent studies have shown the effects of TBS last considerably longer in individuals on the autistic spectrum - up to 90 minutes.11 This extended effect-duration suggests an underlying abnormality in the brain's natural plasticity state in autistic individuals - similar to the hyperexcitability induced by Fragile X Syndrome.
In this experiment, utilizing single-pulse motor-evoked potentials (MEPs) as our benchmark, we will explore the effects of both intermittent and continuous TBS on cortical plasticity in individuals suffering from FXS and individuals on the Autistic Spectrum.

In this article, we examine the effects of Theta-Burst TMS stimulation on cortical plasticity in individuals suffering from Fragile X syndrome and individuals on the autistic spectrum.

TMS: Usando o protocolo Theta-Burst para Explorar Mechasnism de Plasticidade em Indivíduos com Síndrome do X Frágil e Autismo

Fragile X Syndrome (FXS), also known as Martin-Bell Syndrome, is a genetic abnormality found on the X chromosome.1,2 Individuals suffering from FXS ...

The NeuroStar TMS Device: Conducting the FDA Approved Protocol for Treatment of Depression

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic fields. These rapidly alternating fields induce electrical currents within localized, targeted regions of the cortex which are associated with various physiological and functional brain changes.1,2,3
In 2007, O'Reardon et al., utilizing the NeuroStar device, published the results of an industry-sponsored, multisite, randomized, sham-stimulation controlled clinical trial in which 301 patients with major depression, who had previously failed to respond to at least one adequate antidepressant treatment trial, underwent either active or sham TMS over the left dorsolateral prefrontal cortex (DLPFC). The patients, who were medication-free at the time of the study, received TMS five times per week over 4-6 weeks.4
The results demonstrated that a sub-population of patients (those who were relatively less resistant to medication, having failed not more than two good pharmacologic trials) showed a statistically significant improvement on the Montgomery-Asberg Depression Scale (MADRS), the Hamilton Depression Rating Scale (HAMD), and various other outcome measures. In October 2008, supported by these and other similar results5,6,7, Neuronetics obtained the first and only Food and Drug Administration (FDA) approval for the clinical treatment of a specific form of medication-refractory depression using a TMS Therapy device (FDA approval K061053).
In this paper, we will explore the specified FDA approved NeuroStar depression treatment protocol (to be administered only under prescription and by a licensed medical profession in either an in- or outpatient setting).

In this article, we examine the methodology and considerations relevant to the FDA approved depression treatment protocol using the Neuronetics NeuroStar TMS device.

O dispositivo NeuroStar TMS: Conduzindo a FDA Aprovado protocolo para o tratamento da depressão

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic ...

Electrode Positioning and Montage in Transcranial Direct Current Stimulation

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a technique that has been intensively investigated in the past decade as this method offers a non-invasive and safe alternative to change cortical excitability2. The effects of one session of tDCS can last for several minutes, and its effects depend on polarity of stimulation, such as that cathodal stimulation induces a decrease in cortical excitability, and anodal stimulation induces an increase in cortical excitability that may last beyond the duration of stimulation6. These effects have been explored in cognitive neuroscience and also clinically in a variety of neuropsychiatric disorders &#x2013; especially when applied over several consecutive sessions4. One area that has been attracting attention of neuroscientists and clinicians is the use of tDCS for modulation of pain-related neural networks3,5. Modulation of two main cortical areas in pain research has been explored: primary motor cortex and dorsolateral prefrontal cortex7. Due to the critical role of electrode montage, in this article, we show different alternatives for electrode placement for tDCS clinical trials on pain; discussing advantages and disadvantages of each method of stimulation.

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is an established technique to modulate cortical excitability1,2. It has been used as an investigative tool in neuroscience due to its effects on cortical plasticity, easy operation, and safe profile. One area that tDCS has been showing encouraging results is pain alleviation 3-5.

Posicionamento do eletrodo e Montage na estimulação transcraniana por corrente

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a technique that has been intensively investigated in the past decade as this method offers a ...

Deep Brain Stimulation with Simultaneous fMRI in Rodents

In order to visualize the global and downstream neuronal responses to deep brain stimulation (DBS) at various targets, we have developed a protocol for using blood oxygen level dependent (BOLD) functional magnetic resonance imaging (fMRI) to image rodents with simultaneous DBS. DBS fMRI presents a number of technical challenges, including accuracy of electrode implantation, MR artifacts created by the electrode, choice of anesthesia and paralytic to minimize any neuronal effects while simultaneously eliminating animal motion, and maintenance of physiological parameters, deviation from which can confound the BOLD signal.&#160;Our laboratory has developed a set of procedures that are capable of overcoming most of these possible issues. For electrical stimulation, a homemade tungsten bipolar microelectrode is used, inserted stereotactically at the stimulation site in the anesthetized subject. In preparation for imaging, rodents are fixed on a plastic headpiece and transferred to the magnet bore. For sedation and paralysis during scanning, a cocktail of dexmedetomidine and pancuronium is continuously infused, along with a minimal dose of isoflurane; this preparation minimizes the BOLD ceiling effect of volatile anesthetics. In this example experiment, stimulation of the subthalamic nucleus (STN) produces BOLD responses which are observed primarily in ipsilateral cortical regions, centered in motor cortex. Simultaneous DBS and fMRI allows the unambiguous modulation of neural circuits dependent on stimulation location and stimulation parameters, and permits observation of neuronal modulations free of regional bias. This technique may be used to explore the downstream effects of modulating neural circuitry at nearly any brain region, with implications for both experimental and clinical DBS.

This protocol describes a standard method for simultaneous functional magnetic resonance imaging and deep brain stimulation in the rodent. The combined use of these experimental tools allows for the exploration of global downstream activity in response to electrical stimulation at virtually any brain target.

Estimulação Cerebral Profunda com fMRI simultâneo em Roedores

In order to visualize the global and downstream neuronal responses to deep brain stimulation (DBS) at various targets, we have developed a protocol for ...

Acrylic Resin Molding Based Head Fixation Technique in Rodents

Head fixation is a technique of immobilizing animal's head by attaching a head-post on the skull for rigid clamping. Traditional head fixation requires surgical attachment of metallic frames on the skull. The attached frames are then clamped to a stationary platform resulting in immobilization of the head. However, metallic frames for head fixation have been technically difficult to design and implement in general laboratory environment. In this study, we provide a novel head fixation method. Using a custom-made head fixation bar, head mounter is constructed during implantation surgery. After the application of acrylic resin for affixing implants such as electrodes and cannula on the skull, additional resins applied on top of that to build a mold matching to the port of the fixation bar. The molded head mounter serves as a guide rails, investigators conveniently fixate the animal&#8217;s head by inserting the head mounter into the port of the fixation bar. This method could be easily applicable if implantation surgery using dental acrylics is necessary and might be useful for laboratories that cannot easily fabricate CNC machined metal head-posts.

Traditional head fixation techniques have used metallic frames attached on the skull as an interface for head fixation apparatus. This protocol demonstrates a frameless, acrylic resin molding based head fixation technique for behavioral tasks in rodents.

Cabeça de base acrílica Resina de moldagem técnica de fixação em roedores

Head fixation is a technique of immobilizing animal's head by attaching a head-post on the skull for rigid clamping. Traditional head fixation requires ...

Effects of Transcranial Alternating Current Stimulation on the Primary Motor Cortex by Online Combined Approach with Transcranial Magnetic Stimulation

Transcranial Alternating Current Stimulation (tACS) is a neuromodulatory technique able to act through sinusoidal electrical waveforms in a specific frequency and in turn modulate ongoing cortical oscillatory activity. This neurotool allows the establishment of a causal link between endogenous oscillatory activity and behavior. Most of the tACS studies have shown online effects of tACS. However, little is known about the underlying action mechanisms of this technique because of the AC-induced artifacts on Electroencephalography (EEG) signals. Here we show a unique approach to investigate online physiological frequency-specific effects of tACS of the primary motor cortex (M1) by using single pulse Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) to probe cortical excitability changes. In our setup, the TMS coil is placed over the tACS electrode while Motor Evoked Potentials (MEPs) are collected to test the effects of the ongoing M1-tACS. So far, this approach has mainly been used to study the visual and motor systems. However, the current tACS-TMS setup can pave the way for future investigations of cognitive functions. Therefore, we provide a step-by-step manual and video guidelines for the procedure.

Transcranial Alternating Current Stimulation (tACS) allows the modulation of cortical excitability in a frequency-specific fashion. Here we show a unique approach which combines online tACS with single pulse Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) in order to "probe" cortical excitability by means of Motor Evoked Potentials.

Efeitos da estimulação da corrente alternada transcraniana no córtex Motor primário por on-line abordagem combinada com estimulação magnética transcraniana

Transcranial Alternating Current Stimulation (tACS) is a neuromodulatory technique able to act through sinusoidal electrical waveforms in a specific ...

Chronic Transcranial Electrical Stimulation and Intracortical Recording in Rats

Transcranial electrical stimulation (TES) is a powerful and relatively simple approach to diffusely influence brain activity either randomly or in a closed-loop event-triggered manner. Although many studies are focusing on the possible benefits and side-effects of TES in healthy and pathologic brains, there are still many fundamental open questions regarding the mechanism of action of the stimulation. Therefore, there is a clear need for a robust and reproducible method to test the acute and the chronic effects of TES in rodents. TES can be combined with regular behavioral, electrophysiological, and imaging techniques to investigate neuronal networks in vivo. The implantation of transcranial stimulation electrodes does not impose extra constraints on the experimental design while it offers a versatile, flexible tool to manipulate brain activity. Here we provide a detailed, step-by-step protocol to fabricate and implant transcranial stimulation electrodes to influence brain activity in a temporally constrained manner for months.

This detailed protocol describes transcranial stimulation electrode placement on the temporal bone in order to investigate the short- and long-term effects of transcranial electrical stimulation in freely moving rats.

Estimulação elétrica transcraniana crônica e gravação Intracortical em ratos

Transcranial electrical stimulation (TES) is a powerful and relatively simple approach to diffusely influence brain activity either randomly or in a ...

Combined Transcranial Magnetic Stimulation and Electroencephalography of the Dorsolateral Prefrontal Cortex

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive method that produces neural excitation in the cortex by means of brief, time-varying magnetic field pulses. The initiation of cortical activation or its modulation depends on the background activation of the neurons of the cortical region activated, the characteristics of the coil, its position and its orientation with respect to the head. TMS combined with simultaneous electrocephalography (EEG) and neuronavigation (nTMS-EEG) allows for the assessment of cortico-cortical excitability and connectivity in almost all cortical areas in a reproducible manner. This advance makes nTMS-EEG a powerful tool that can accurately assess brain dynamics and neurophysiology in test-retest paradigms that are required for clinical trials. Limitations of this method include artifacts that cover the initial brain reactivity to stimulation. Thus, the process of removing artifacts may also extract valuable information. Moreover, the optimal parameters for dorsolateral prefrontal (DLPFC) stimulation are not fully known and current protocols utilize variations from the motor cortex (M1) stimulation paradigms. However, evolving nTMS-EEG designs hope to address these issues. The protocol presented here introduces some standard practices for assessing neurophysiological functioning from stimulation to the DLPFC that can be applied in patients with treatment resistant psychiatric disorders that receive treatment such as transcranial direct current stimulation (tDCS), repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS), magnetic seizure therapy (MST) or electroconvulsive therapy (ECT).

The protocol presented here is for TMS-EEG studies utilizing intracortical excitability test-retest design paradigms. The intent of the protocol is to produce reliable and reproducible cortical excitability measures for assessing neurophysiological functioning related to therapeutic interventions in the treatment of neuropsychiatric diseases such as major depression.

Estimulação magnética transcraniana combinada e Eletroencefalografia do córtex pré-frontal Dorsolateral

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive method that produces neural excitation in the cortex by means of brief, time-varying magnetic ...

Transcranial Direct Current Stimulation (tDCS) in Mice

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for several neuropsychiatric diseases. The biological effects of tDCS are not fully understood, which is in part explained due to the difficulty in obtaining human brain tissue. This protocol describes a tDCS mouse model that uses a chronically implanted electrode allowing the study of the long-lasting biological effects of tDCS. In this experimental model, tDCS changes the cortical gene expression and offers a prominent contribution to the understanding of the rationale for its therapeutic use.

Transcranial Direct Current Stimulation tDCS in Mice

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a therapeutic technique proposed to treat psychiatric diseases. An animal model is essential for understanding the specific biological alterations evoked by tDCS. This protocol describes a tDCS mouse model that uses a chronically implanted electrode.

Transcraniana por corrente contínua estimulação (tDCS) em ratos

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for ...