<p> Humana estudos de células-tronco embrionárias no laboratório Teitell são suportados por um Instituto da Califórnia de Medicina Regenerativa (CIRM), as sementes conceder RS1-00313. Agradecemos a membros do Centro de Medicina Regenerativa Broad e Investigação em Células Estaminais na Universidade da Califórnia, especialmente Dr. Amander Clark, Dr. Jerome Zack, e membros do Instituto Broad Stem UCLA Facility núcleo celular para o seu apoio de nossos estudos. </p>

<p class="jove_title"> manutenção CTEh cultura diária </p><ol><li> meios de cultura CTEh deve ser trocada a cada 24 hrs. Do frasco estoque ES mídia armazenada a 4 ° C, retire a quantidade de solução necessária (~ 20ml por 6 bem-prato), coloque em um tubo falcon 50ml, e aquecido a 37 ° C em banho-maria. Uma vez que a mídia está aquecido, adicione bFGF armazenadas a 4 ° C para uma concentração final de 10ng/ml. Coloque o estoque bFGF volta a 4 ° C imediatamente após o uso! </li><li> Remover das placas de 6-bem todos, mas ~ 500μl dos meios de comunicação. Certifique-se de rodar o prato cultura para suspender a remoção de detritos. Verifique se o bFGF nos meios de cultura CTEh é bem misturado e adicionar 3 ml de mídia fresco volta a cada poço de uma placa de seis poços. Volte a colocar a placa na incubadora. </li></ol><p class="jove_title"> HESCs divisão de MEFs para Matrigel </p><p class="jove_content"> Normalmente, uma placa de 6 bem-confluentes de hESCs em MEFs pode ser dividida 01:02 - 01:03 para Matrigel placas 6-bem, com os poços se tornar confluentes novamente 4-5 dias após a divisão. </p><ol><li> Quando hESCs divisão em Matrigel, MEF-condicionado media (CM) é usado para manter pluripotência. MEF-condicionado mídia é feito antecipadamente. No primeiro dia, 1,5 × 10 <sup>7</sup> γ irradiados MEFs são semeadas num frasco T75. No segundo dia, MEFs são lavadas uma vez com temperatura ambiente 1 × PBS, pH 7,4, e em seguida 15ml de mídia ES suplementado com 5ng/ml bFGF é adicionado ao balão. (NOTA: MEFs pode ser banhado em frascos menores ou maiores, mas proporção entre a densidade das células e volume de mídia ES deve ser constante.) O balão é incubados a 37 ° C por mais 24 hrs. No terceiro dia, o CM é coletado e substituído com 15ml de mídia ES fresco suplementado com 5ng/ml bFGF. O CM coletadas são armazenadas a 4 ° C. MEF-condicionado media de um revestimento de MEFs são colhidas ao longo de sete dias consecutivos para gerar 15 × 7 = 105ml. Após sete dias, todas as frações CM são combinados, estéril filtrado, aliquotado e armazenado a -20 ° C. Media CM preparado como descrito podem ser armazenadas e usadas por 1 mês. </li><li> Um dia antes de se separarem CTEh, coloque Matrigel alíquotas em tubos eppendorf a 4 ° C para descongelar durante a noite (uma alíquota contém 76.2mg de Matrigel, e esta é a quantidade necessária para uma placa de 6 poços). No dia da divisão, tome um frasco do Matrigel descongelado para uma placa de 6 poços, coloque o frasco e 6ml de frio DMEM/F12 media no gelo. Transferir o Matrigel no DMEM/F12 mídia e misture bem. Adicionar 1 ml da solução a cada poço de uma placa de seis poços. Redemoinho a placa para distribuir Matrigel na superfície e incubar a placa Matrigel coberto em temperatura ambiente por pelo menos 1 hr antes da divisão do hESCs. </li><li> hESCs em MEFs são lavadas uma vez com 1 × PBS, pH 7.4. Posteriormente 1ml de quente colagenase IV (1mg/ml) é adicionado a cada poço da placa 6-bem e, em seguida, a placa é incubada a 37 ° C por 5-10 min. </li><li> Adicionar 1ml de mídia ES sem bFGF a cada poço. Use uma pipeta de 1ml para fundir as células-tronco fora do prato. Recolher todos os meios contendo aglomerados de hESCs e MEFs mortos em um tubo falcon 50ml. Deixe aglomerados de células grandes contentar com 5-10 min para que as touceiras CTEh formar um pellet no fundo do tubo, enquanto a MEFs permanecem suspensas no sobrenadante. Desprezar o sobrenadante e lavar pela ressuspensão do pellet CTEh usando mídia ES faltando bFGF, seguido por centrifugação a temperatura ambiente em 200g por 5 min. </li><li> Para a placa de células-tronco em placas Matrigel, primeiro lave os pratos Matrigel com temperatura ambiente DMEM/F12 (1 ml por poço) e adicionar 2,5 ml de CM suplementado com 10ng/ml bFGF por poço. Ressuspender o sedimento em um volume adequado de CM suplementado com 10ng/ml bFGF, pipetar a suspensão célula para cima e para baixo várias vezes até que os pedaços se tornar uniforme e de pequena dimensão. Alíquota da suspensão de 0,5 ml por poço na placa Matrigel. Note-se que a densidade de colônia em Matrigel é maior do que a densidade de colônias, dividindo usual em MEFs. Coloque a placa em um 37 ° C de cultura de tecidos incubadora. </li><li> Para manter a hESCs em Matrigel, media CM suplementado com 10ng/ml bFGF é trocada a cada 24 horas até 4-5 dias. </li></ol>

<ol>
	<li>Thomson, J. a. m. e. s. A., Itskovitz-Eldor, J. o. s. e. p. h., Shapiro, S. a. n. d. e. r. S., Waknitz, M. i. c. h. e. l. l. e. A., Swiergiel, J. e. n. n. i. f. e. r. J., Marshall, V. i. v. i. e. n. n. e. S., Jones, J. e. f. f. r. e. y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+Stem+Cell+Lines+Derived+from+Human+Blastocysts++.">Embryonic Stem Cell Lines Derived from Human Blastocysts  .</a> <em style='font-style: italic'>Science</em>. <b>282</b>, 1145-1147 (1998).</li><li>Xu, C. h. u. n. h. u. i., Inokuma, M. a. r. g. a. r. e. t. S., Denham, J. e. r. r. o. d., Golds, K. a. t. h. a. l. e. e. n., Kundu, P. r. a. t. i. m. a., Gold, J. o. s. e. p. h. D., Carpenter, M. e. l. i. s. s. a. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeder-free+growth+of+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells.">Feeder-free growth of undifferentiated human embryonic stem cells.</a> <em style='font-style: italic'>Nature Biotechnology</em>. <b>19</b>, 971-974 (2001).</li></ol>

<p> Este vídeo demonstra como hESCs passagem de placas MEF para as placas de alimentação livre de células Matrigel. Note-se que a densidade de colônia em Matrigel é maior do que a densidade de colônias, dividindo usual em MEFs. Imunofluorescência e citometria de fluxo para microscopia ou marcadores CTEh pluripotência, como Oct-4 e SSEA-4, são necessários para confirmar a manutenção de hESCs em um estado indiferenciado em condições de alimentação livre de cultura. </p>

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		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Knockout Serum Replacer (KSR)</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>10828-028</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DMEM/F12</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>11330-057</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td> Non-essential Amino Acids</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>11140-050</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>GlutaMax </td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>35050-061</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DMEM</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>11995-065</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>FBS</td>
<td>Reagent</td>
<td>Clontech</td>
<td>631107</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>L-glutamine</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>25030-081</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>BME</td>
<td>Reagent</td>
<td>Fisher</td>
<td>BP176-100</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>bFGF</td>
<td>Reagent</td>
<td>R&D Systems</td>
<td>233-FB-025</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Collagenase IV</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>17104-019</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Dispase</td>
<td>Reagent</td>
<td>Stem Cell Technologies</td>
<td>17105-041</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Penicillin / Streptomycin </td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>15140-122</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Gelatin</td>
<td>Reagent</td>
<td>Chemicon</td>
<td>ES-006-B</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Matrigel</td>
<td>Reagent</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>354277</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Oct-4 antibody</td>
<td>Reagent</td>
<td>Santa Cruz Biotechnology</td>
<td>SC-9081</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>anti-h/mSSEA-4 Phycoerythrin Conjugated Mouse IgG3</td>
<td>Reagent</td>
<td>R&D Systems</td>
<td>FAB1435P</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>FITCI-conjugated antirabbit IgG</td>
<td>Reagent</td>
<td>Jackson ImmunoResearch Laboratories. Inc.</td>
<td>715-095-152</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>
			<div>
					</div>
		

from mefs to matrigel 2: splitting hescs from mefs onto matrigel

<p class="jove_content">Este vídeo demonstra como crescer células estaminais embrionárias humanas (hESCs) em fibroblastos de rato embrionárias (MEF), as células de alimentação, como hESCs passagem de placas MEF para alimentação livre de células placas Matrigel.</p>

Watch this Scientific Journal Video about From MEFs to Matrigel 2: Splitting hESCs from MEFs onto Matrigel at JoVE.com

From MEFs to Matrigel 2: Splitting hESCs from MEFs onto Matrigel

<p class="jove_content">Este vídeo demonstra como manter o crescimento de células estaminais embrionárias humanas (hESCs) no alimentador livre de células condições e como hESCs contínua passagem de alimentação livre de células condições. Confirmação de CTEh pluripotência cultivadas em alimentador livre de células ao microscópio de imunofluorescência condições também é demonstrada. Parte 2 de 3.</p>

De MEFs para Matrigel 2: hESCs Divisão de MEFs para Matrigel

This video demonstrates how to grow human embryonic stem cells (hESCs) on mouse embryonic fibroblast (MEF) feeder cells, how to passage hESCs from MEF ...

from-mefs-to-matrigel-2-splitting-hescs-from-mefs-onto-matrigel

Research

JoVE Journal

Biology

11.4K visualizações.  University of California, Los Angeles. Este vídeo demonstra como manter o crescimento de células estaminais embrionárias humanas (hESCs) no alimentador livre de células condições e como hESCs contínua passagem de alimentação livre de células condições. Confirmação de CTEh pluripotência cultivadas em alimentador livre de células ao microscópio de imunofluorescência condições também é demonstrada. Parte 2 de 3.