Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Эта процедура показывает, как можно изолировать от мозга взрослого человека мышью митохондрий связанных ER мембран или MAMS и гликосфинголипид обогащенного микродоменной фракций из MAMS и митохондриальных препаратов.

Аннотация

Внутриклеточных органелл очень динамических структур с различной формой и составом, которые подвергаются клетки конкретных внутренних и внешних сигналов. Их мембраны часто сопоставляется в определенные контакты сайтов, которые становятся центрами для обмена сигнальными молекулами и мембранных компонентов 1,2,3,4. Между органелл мембраны микродоменов, которые образуются между эндоплазматической сети (ER) и митохондрий на открытии IP3 чувствительные Са 2 + каналов известны как митохондрии, связанный-ER мембран или MAMS 4,5,6. Белка / липидного состава и биохимических свойств этих сайтов мембранных контактов были тщательно изучены особенности в отношении их роль в регуляции внутриклеточного Ca 2 + 4,5,6. ER служит в качестве основного магазина внутриклеточного Ca 2 +, и в этом качестве регулирует множество клеточных процессов вниз по течению от Ca 2 + сигнализации, в т.ч.uding посттрансляционных складывающиеся белка и maturation7. Митохондрии, с другой стороны, поддерживать Ca 2 + гомеостаз, путем буферизации цитозольной концентрации Са 2 + предотвращая тем самым начало апоптоза вниз по течению от Ca 2 + 4,8 дисбаланса. Динамичный характер MAMS делает их идеальными сайтов препарировать основных клеточных механизмов, в том числе Ca 2 + сигнализация и регулирование митохондриальных концентрации Са 2 +, биосинтез липидов и транспорта, энергетического метаболизма и выживания клеток 4,9,10,11,12. Несколько протоколов были описаны для очистки этих микродоменов из ткани печени и культивируемых клеток 13,14.

Принимая ранее опубликованных методов во внимание, мы адаптировали протокол для выделения митохондрий и MAMS от взрослого мозга мыши. Для этой процедуры мы добавили дополнительный этап очистки, а именно добыча Triton X100, который электроннойnables изоляции гликосфинголипид обогащенного микродоменной (GEM) доля MAMS. Эти GEM препараты имеют ряд белковых компонентов с кавеол и липидного плоты, полученных от плазматической мембраны или других внутриклеточных мембран, и предложил работать как сборные пункты для кластеризации рецепторных белков и белок-белковых взаимодействий 4,15.

протокол

Следующий протокол предназначен для выделения и очистки MAMS и драгоценных камней из мозга мыши

Решения необходимы для изоляции митохондрий, MAMS и драгоценных камней

Фракционирования для получения сырого митохондриальной подготовки:

Решение: 0,32 М сахарозы, 1 мМ NaHCO 3, 1 мМ MgCl 2, 0,5 мМ CaCl 2 + Ингибиторы протеазы (добавить свежие, по мере необходимости)

Раствор Б: 0,32 М сахарозы, 1 мМ NaHCO 3 + Ингибиторы протеазы (добавить свежие, по мере необходимости)

MAMS изоляции:

Изоляция среднего: 250 мм маннитол, 5 мМ HEPES рН 7,4, 0,5 мМ EGTA, 0,1% BSA

Градиент буфер: 225 мМ маннит, 25 мМ HEPES рН 7,5, 1 мМ EGTA, 0,1% BSA (конечная концентрация)

ГЭУ изоляции:

Содержание "> GEM буфере для экстракции: 25 мм HEPES рН 7,5, 0,15 М NaCl, 1% Triton X-100 + Ингибиторы протеазы (добавить свежие, по мере необходимости)

GEM солюбилизирующий буфер: 50 мМ Трис-HCl, рН 8,8, 5 мМ ЭДТА, 1% SDS + Ингибиторы протеазы (добавить свежий, по мере необходимости).

1. Первый шаг субклеточных Фракционирование: удаление ядра, Unlysed клеток и клеточных мусора

  1. Усыпить мыши в CO 2 камеры.
  2. Немедленно снять головной мозг, вдвое, поместить в 2 мл пробирок на льду и взвесить.

Примечание: Следует мозга половины отдельной течение всей процедуры. Следующая информация относится к лечению одного 1/2 мозга.

  1. Место 1/2 мозга в предварительно охлажденный 2 мл стекло Dounce ткани мясорубку, содержащий 1 мл холодной A. Решение однородный с 15 всего ударов большой пестик оформления.
  2. Трансфер в 15 мл трубки сокола, на льду, и разбавитьгомогенатах до 10 объемов в / о, например, 0,225 г до 2,25 мл.
  3. Центрифуга образца при 1400 х г в течение 10 мин при 4 ° C.
  4. Осторожно удалите супернатант и трансфер в 30 мл с круглым дном трубки центрифуги стекла, на льду. Убедитесь в том, чтобы не потревожить осадок.
  5. Ресуспендируют осадок в том же 10 томов решений. Однородный в той же мясорубке, с 3-6 ударов небольшой зазор пестиком, 1 мл за один раз.
  6. Переезд в новый 15 мл Сокол трубки и центрифуги при 710 х г в течение 10 мин при 4 ° C. Это приводит к гранулы ядер и клеточного мусора.
  7. Осторожно удалите супернатант и бассейн с супернатант сохраненный на шаге 1.6.

2. Шаг второй: Сырая Митохондрии изоляции

  1. Центрифуга супернатантов на 13800 х г в течение 10 мин при 4 ° C.
  2. Передача супернатант в Ultra-Clear трубы центрифуги Beckman, на льду
  3. Ресуспендируют гранул в 10 Решение объемах. Однородный в той же мясорубке, с 3-6 ударов небольшой зазор пестиком, 1 мл за один раз.
  4. Центрифуга, как шаг 2.1.
  5. Повторите шаги 2.2-2.4.
  6. Полученные гранулы является обогащенной фракции митохондрий. Бассейн супернатантов (цитозоль и ER), залить парафином и держать на льду.
  7. Ресуспендируют гранул с 6 ударов небольшим пестиком оформления, в 4,8 мл / г (г относится к первоначальному весу мозга) раствора В, в свежих гомогенизатора.
  8. Использование стеклянной пипетки Пастера, подготовить Разрывные градиентные сахарозы в Ultra-Clear трубы центрифуги Beckman, добавив, затем в нижней части трубки, как следует, тщательно, обеспечивая не образуются пузырьки:
    Resupended пеллетах (0,32 М сахарозы)
    3 мл 850 мм сахарозы (в 1 мМ NaHCO 3)
    3 мл 1 М сахарозы (в 1 мМ NaHCO 3)
    3 мл 1,2 М сахарозы (в 1 мМ NaHCO3)
  9. Центрифуга на 82500 х г в течение 2 ч при 4 ° C. В результате разделения в конце градиента будет производить три полосы и гранул: 1) миелина и других загрязнений мембран (0,32 М - 0,85 м интерфейсом), 2) ER, Гольджи, плазматических мембран (0,85 M - 1 M-интерфейс); 3) синаптосомах (1 м - 1,2 м интерфейсом), 4) сырой митохондрий (гранулы), который используется для последующих стадий очистки

3. Выделение митохондрий связанных Мембрана ER, MAMS

  1. Ресуспендируют свежевыделенных сырой митохондрии от одного мозга половины, в 2 мл изолированная среда, содержащая только что добавили ингибиторов протеазы.
  2. Подготовить 30% Percoll градиент градиент буфера 8 мл на половину мозга, и место в Ultra-Clear трубы центрифуги Beckman.

* Примечание: Сделайте градиент буфера более концентрированные (1,43 раза), чтобы достичь правильной конечной концентрации после того, как гiluting Percoll до 30%.

  1. Слой митохондриальной подвески на вершине подготовленных градиентов медленно, чтобы избежать пузырей.
  2. Центрифуга на 95000 х г в течение 30 мин, 4 ° C.
    1. Снимите тяжелой фракции (нижняя полоса) ПЕРВЫЙ со стеклянной пипетки Пастера и перенести в свежую круглым дном стеклянной трубки, на льду.
    2. Снимите легкие фракции (верхняя полоса) ВТОРОЙ с другой стекло пипетки Пастера и перенести в отдельную свежие круглым дном стеклянной трубки, на льду.
  3. Развести обеих фракций, собранных в шаге 3,5 с 10 мл Средний изоляции и центрифуге при 6300 мкг в течение 10 мин при 4 ° C.
  4. Удалите супернатант из тяжелой фракции, полученной на стадии 3.6, ресуспендируют осадок с еще 10 средних изоляции мл и центрифугируют снова, как шаг 3,6. Полученный осадок будет чистой фракции митохондрий.
  5. Передача супернатант от света Fracния, полученные в шаге от 3,6 до Ultra-Clear трубы центрифуги Beckman, на льду. Откажитесь от гранул.
  6. Добавьте достаточное количество средних Изоляция супернатанта, полученного на стадии 3,8 до заполнения трубы и центрифуги при 100000 х г в течение 1 часа, 4 ° C. Полученный осадок будет MAMS фракции. Осторожно снимите и выбросьте супернатант.

Примечание: На данном этапе, вы также можете центрифуге при 100000 х г в течение 1 часа, 4 ° C супернатант сохранен на шаге 2.6. Осадок будет ER фракции супернатанта и цитозольной фракции.

4. Добыча гликосфинголипид обогащенного микродоменов, драгоценных камней

  1. Lyse чистой митохондрий и / или MAM фракции в 500 мкл-1 мл экстракционного буфера в течение 20 минут на льду.
  2. Центрифуга лизатов при 15300 х г в течение 2 мин при 4 ° C.
  3. Сбор супернатантов (Triton X-100 растворимого материала) и вновь центрифуги гранулв течение 2 минут, чтобы удалить остатки растворимого материала. (Triton X-100 извлечены митохондрий и / или Тритон Х-100 извлечены MAMS).
  4. Растворения гранул в солюбилизирующего буфера. Этот материал представляет собой растворяются GEM фракции и может быть использована для дальнейшего анализа.

Результаты

Основываясь на нашем опыте с использованием этого протокола мы можем смело рекомендовать его для выделения и очистки MAMS, драгоценных камней и митохондриальной фракции мозга мыши. Процедура, как описано очень воспроизводимые и последовательным. На рисунке 1 мы показываем пред...

Обсуждение

Места контакта между внутриклеточных мембран или между органелл и плазматической мембраны клетки представляют динамические сигнализации платформы для основных клеточных процессах. Точную характеристику их функции и состав под обоими физиологических и патологических условиях треб...

Раскрытие информации

Ни один из авторов есть какие-то конфликты интересов, чтобы объявить.

Благодарности

Мы признаем вклад Рената Сано с зачатием начального протокола. Ad'A. держит Ювелиры для детей (JFC) Наделенный кафедры генетики и генной терапии. Эта работа была частично финансируется за счет грантов NIH GM60905, DK52025 и CA021764, и американский ливанских сирийских Associated благотворительности (ALSAC).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Название Реагенты / Материал Компания Номер по каталогу Комментарии
РЕАГЕНТЫ
Фракционирование
Сахароза Fisher Scientific S5-500
Бикарбонат натрия Sigma-Aldrich S-5761
Хлорид магния, гексагидрат Fisher Scientific BP214-500
Хлорид кальция, дигидрат Sigma-Aldrich C-5080
MAM
D-маннит Sigma-Aldrich M9546-250G
Hepes Fisher Scientific BP310-500
EGTA Sigma-Aldrich E4378-250G
BSA, доля V, тепловой шок, Лиофилизат Roche 03-116-964-001
Percoll GE 17-0891-02
GEM
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284-500 мл
Хлористый натрий Fisher Scientific S271-3
Tris базы Roche 03-118-142-001
HCl Fisher Scientific A144S-500
EDTA Fisher Scientific BP120-500
Додецилсульфата натрия (SDS) Fisher Scientific BP166-500
Общий
Ингибиторы протеазы Таблетки, полный ЭДТА бесплатно Roche 11-873-580-001
ОБОРУДОВАНИЕ
2 мл Douce All-стекла шлифовальные ткани Кимбл Chase 885300-0002
15 мл полипропиленовые конические пробирки, BD Falcon BD 352097
30 мл с круглым дном стеклянные трубки центрифуги Кимбл Chase 45500-30
15 мл с круглым дном стекла CentriFuge трубы Кимбл Chase 45500-15
Ультрацентрифуга трубки, Ultra-Clear, тонкостенных, 14x89 мм Beckman-Coulter 344059
Parafilm Cole-Parmer PM996
Одноразовые боросиликатного стекла Пастера Пипец, 9 " Fisher Scientific 13-678-20C

Ссылки

  1. Poburko, D., Kuo, K. H., Dai, J., Lee, C. H., van Breemen, C. Organellar junctions promote targeted Ca2+ signaling in smooth muscle: why two membranes are better than one. Trends Pharmacol. Sci. 25 (1), 8-15 (2004).
  2. Pani, B., Ong, H. L., Liu, X., Rauser, K., Ambudkar, I. S., Singh, B. B. Lipid rafts determine clustering of STIM1 in endoplasmic reticulum-plasma membrane junctions and regulation of store-operated Ca2+ entry (SOCE. J. Biol. Chem. 283 (25), 17333-17340 (2008).
  3. Levine, T., Rabouille, C. Endoplasmic reticulum: one continuous network compartmentalized by extrinsic cues. Curr. Opin. Cell Biol. 17 (4), 362-368 (2005).
  4. Sano, R., Annunziata, I., Patterson, A., Moshiach, S., Gomero, E., Opferman, J., Forte, M., d'Azzo, A. GM1-ganglioside accumulation at the mitochondria-associated ER membranes links ER stress to Ca(2+)-dependent mitochondrial apoptosis. Mol. Cell. 36 (3), 500-511 (2009).
  5. Raturi, A., Simmen, T. Where the endoplasmic reticulum and the mitochondrion tie the knot: The mitochondria-associated membrane (MAM). Biochim. Biophys. Acta. , (2012).
  6. Giorgi, C., De Stefani, D., Bononi, A., Rizzuto, R., Pinton, P. Structural and functional link between the mitochondrial network and the endoplasmic reticulum. Int. J. Biochem. Cell Biol. 41 (10), 1817-1827 (2009).
  7. d'Azzo, A., Tessitore, R. Sano Gangliosides as apoptotic signals in ER stress response. Cell Death Differ. 13, 404-414 (2006).
  8. Kroemer, G., Galluzzi, L., Brenner, C. Mitochondrial membrane permeabilization in cell death. Physiol. Rev. 87, 99-163 (2007).
  9. Rizzuto, R., Brini, M., Murgia, M., Pozzan, T. Microdomains with high Ca2+ close to IP3-sensitive channels that are sensed by neighboring mitochondria. Science. 262, 744-747 (1993).
  10. Lynes, E. M., Bui, M., Yap, M. C., Benson, M. D., Schneider, B., Ellgaard, L., Berthiaume, L. G., Simmen, T. Palmitoylated TMX and calnexin target to the mitochondria-associated membrane. EMBO J. 31 (2), 457-470 (2011).
  11. Fujimoto, M., Hayashi, T., Su, T. P. The role of cholesterol in the association of endoplasmic reticulum membranes with mitochondria. Biochem. Biophys. Res. Commun. 417 (1), 635-639 (2012).
  12. Grimm, S. The ER-mitochondria interface: the social network of cell death. Biochim. Biophys. Acta. 1823 (2), 327-334 (2012).
  13. Vance, J. E. Phospholipid synthesis in a membrane fraction associated with mitochondria. J. Biol. Chem. 265, 7248-7256 (1990).
  14. Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells. Nat. Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).
  15. Pizzo, P., Viola, A. Lymphocyte lipid rafts: structure and function. Curr. Opin. Immunol. 15 (3), 255-260 (2003).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience73MAMSER

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены