АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь мы опишем способ выразить правильно сложенные и функциональные поверхностные антигены вируса гриппа, полученные из романа китайского вируса H7N9 в клетках насекомых. Этот метод может быть адаптирован, чтобы выразить эктодомены любых вирусных или клеточных поверхностных белков.

Аннотация

Система бакуловирусом выражение представляет собой мощный инструмент для экспрессии рекомбинантных белков. Здесь мы используем его для производства правильно сложенные и гликозилированного версии вируса гриппа А поверхностных гликопротеинов - гемагглютинина (HA) и нейраминидазы (NA). В качестве примера, мы выбрали HA и NA белки, выраженные нового вируса H7N9, который недавно появился в Китае. Однако протокол может быть легко адаптирована для HA и NA белков, выраженных любой другой гриппа А и вируса B штаммов. Рекомбинантный HA (Rha) и NA (РНК) белки являются важными реагенты для иммунологических анализов, таких как ELISPOT и ИФА, и также находятся в широком использовании для стандартизации вакцины, открытия антител, выделения и характеристики. Кроме того, рекомбинантные молекулы NA могут быть использованы для скрининга низкомолекулярные ингибиторы и могут быть использованы для определения характеристик ферментативной функции НС, а также его чувствительности к противовирусных препаратов. Рекомбинантные белки HA также байнг испытания в экспериментальных вакцин на животных моделях, и вакцина на основе рекомбинантного ГК недавно получил лицензию FDA для использования в организме человека. Способ описан здесь производить эти молекулы прямо вперед и может облегчить исследование в лабораториях гриппа, так как позволяет для производства больших количеств белков быстро и по низкой цене. Хотя здесь мы сосредоточены на вирус гриппа поверхностных гликопротеинов, этот способ также может быть использован для производства других вирусных и клеточных поверхностных белков.

Введение

В первой реакции на появление в последнее время романа H7N9 гриппа штамма вируса в Китае, мы приобрели плазмиды, несущие геномные последовательности для гемагглютинина (HA) и нейраминидазы (NA) гены первых двух изолятов. Используя эти плазмиды, мы смогли быстро построить бакуловирусные векторов экспрессии для получения рекомбинантного HA и NA в клетках насекомых. Эта система выражение хорошо известна в нашей лаборатории и доказал решающее значение для многих наших текущих исследовательских проектов 1-8. Клетки насекомых способны правильно сложить и посттрансляционно изменить сложные белки. Эти модификации включают N-гликозилирования, что очень важно для многих вирусных гликопротеинов. Таким образом, неудивительно, что система бакуловирус достаточно создана для выражения вируса гриппа поверхностные антигены. На самом деле, многие из кристаллических структур ГК и НС были решены с использованием клеток насекомых, выразил белков 9-11. Еще одно преимуществоСистема заключается в его надежных высоким содержанием белка выходом до 30 мг культуре клеток HA / л (на основе нашего опыта работы с более чем 50 различных белков HA) - следствие вирус-инфицирования в выражении от сильного промотора полиэдрина.

Удаление трансмембранным и endodomain белков HA и NA позволяет для экспрессии секретируемых, растворимых версий белков и, таким образом, значительно облегчает процесс очистки. Кроме того, эти эктодомены которые помечены гексагистидиновую и, следовательно, может быть очищен с помощью аффинной хроматографии с использованием Ni 2 +-смолы. Трансмембранные домены ГК и NA белков способствуют гомотримера и формирование гомотетрамера соответственно. Для того чтобы сохранить эти oligomerizations, мы добавляем С-концевой домен тримеризации для HA-и N-терминал тетрамеризации домена НС строит (рис. 1). Мы убедительно показали, что такая область тримеризация стабилизирует функциональное, последстrved конформационные эпитопы на стебель-домена ГК 1. Правильный тетрамеризации НС также может способствовать правильной укладки и функцию NA 10. Последовательности и векторы baculo-передачи, несущие тримеризации или тетрамеризации домены могут быть запрошены у авторов или из других лабораторий в области, 9,10,12.

Другим важным вопросом для экспрессии секретируемых белков в клетках насекомых является выбор правильного клеточной линии. В то время как Spodoptera frugiperda получены Sf9 клетки поддерживают бакуловирусной репликацию очень хорошо, и, как правило, используется для вируса спасательных и распространения, они обладают ограниченными возможностями для выделять большое количество белка. Trichoplusia Ni получены БТИ-TN-5B1-4 клеток (широко известный как High Five) имеют более высокую способность секреции и клеточная линия выбора для экспрессии в данном протоколе 13,14. Кроме того, было бы полезно, чтобы уменьшить или даже устранить фетальной бычьей сыворотки (FBS) от выражения культур. Поэтому мы используем средства массовой информации с уменьшенным (3%) содержанием FBS для выращивания рабочие запасы вируса, и мы выполняем экспрессию белка в сыворотке крови свободных СМИ.

Рекомбинантные HA и NA белки используются для многих иммунологических методов. Пожалуй, наиболее распространенным является в ИФА для измерения преобразование сыворотки после вакцинации у людей или животных 4,6,7,15. ГК и НАН также используются в ELISPOT анализов как оба стимулирующих молекул и реагентов обнаружения для антител секреции клеток 16. Их использование в качестве молекулярных приманки позволяет конкретно сортировки для plasmablasts или других типов В-клеток, которые затем могут быть использованы для выделения (терапевтических) моноклональные антитела (моноклональные антитела). Рекомбинантные HA и NA молекулы в дальнейшем используются в характеристике этих МКА 8. Другие примеры включают исследования устойчивости рН или рецептора специфику выразил различными изолятов вируса, или количественно оценки конкретных ферментативных NAдеятельность или устойчивость к ингибиторам. Кроме того, рекомбинантный очищенный HA может быть использован, чтобы стандартизировать содержание НА вируса гриппа инактивированных вакцин.

Важно отметить, что Rha (и в определенной степени NA) вакцин-кандидатов в настоящее время испытываются на животных моделях и клинических испытаниях на людях с одним кандидатом вакцин, лицензию FDA в 2013 году 2,17-19. Преимущество этих новых вакцин является то, что, в связи с рекомбинантной природе этих белков, трудоемкий процесс генерирования высоких роста реассортантных вирусов можно было бы избежать. Возможно, еще более актуальным является то, что их доходность HA высока и воспроизводится от штамма к штамму. Кроме того, поскольку эти вакцины производятся в системе без яиц, они не содержат белковые примеси, которые создают проблемы для лиц, страдающих аллергией яйцо.

Здесь мы выбрали, чтобы выразить белков HA и NA от двух изолятов романа китайской H7N9 вируса гриппа, A / Аньui/1/13 и A/Shanghai/1/13 20,21. Эти примеры своевременных, но описанный протокол может быть использован для экспрессии любого гриппа А и B НА или NA белков и может быть адаптирована, чтобы выразить любые другие секретируемые вирусных или клеточных белков. Тример или тетрамерные белки трансмембранные могут быть клонированы в кассетах экспрессии, используемых для НА и NA, соответственно. Тем не менее, наиболее растворимые секретируемые клеточные белки, как интерфероны, например, не нужен дополнительный домен для стабилизации и может быть выражена исключительно с С-концевой гексагистидиновой меткой.

протокол

1. Генерация рекомбинантного бакуловируса

  1. Клонирование в бакуловирусных трансфер-плазмид
    1. Клон H7 HA и N9 Н.А. эктодомен (или любой другой ген HA или NA) в модифицированных pFastBac плазмид передачи (см. введение). Векторы для HA, содержащий С-концевой домен тримеризации и гексагистидиновую метку, а также для NA, содержащий N-концевой домен тетрамеризации и гексагистидиновую метку, были описаны 1,10,11,22 (рис. 1) и может быть запрошена от авторы.
      Пояснение: HA эктодомены выраженные без доменом тримеризации будет неправильно сложены, что приводит к потере конформационных нейтрализующих эпитопов, особенно в области стебля. Аналогично, функция Н.А. ферментативная опирается на соответствующую тетрамеризации.
    2. Генерация bacmids
      Transform бакуловирусных Transfer-плазмиды, содержащие HA и NA генов в DH10Bac бактерий в соответствии с использованием бакуловирусной выражениеСистема в соответствии с инструкциями изготовителя. Выделения и очистки bacmids использованием набора Midiprep в соответствии с инструкциями изготовителя (рис. 2).
  2. Спасение рекомбинантного бакуловирусом и проверки экспрессии белка
    Пояснительная записка: Следующие шаги должны быть выполнены в асептических условиях в ламинарном боксе. Выполните эту процедуру независимо для ГК и НС (или любой другой интерес гена). Клетки насекомых обычно выращивают при 28 ° С без CO 2. Клетки Sf9 для этого протокола выращивают в полной TNM-FH клеток насекомых среде с 10% FBS, 1% Pen-Strep * и 0,1% Pluronic F68 раствора, если не указано иное, и пассируют 1:04 два раза в неделю. Высокие Пять клетки выращивают в SFX сыворотки свободных СМИ и пассировать 1:15 два раза в неделю.
    * Добавление антибиотиков следует рассматривать дополнительно в течение протокола и регулируется в соответствии с практикой, используемой в каждой лаборатории.
    1. Пластина клеток насекомых Sf9 в 6-луночные планшеты при плотности 2 × 10 5 клеток / см 2 и оставьте на 20 мин в инкубаторе 28 ° C (без CO 2).
    2. Смешайте 2 мкг (конц. 0,5-2 мкг / мкл) рекомбинантного Бакмидную с 100 мкл TNM-FH среды (бессывороточной, 1% Pen-Strep). Смешайте 6 мкл трансфекции агента 100 мкл TNM-FH среды (сыворотки бесплатно, Пен-Strep). Объедините два тома, аккуратно перемешать и оставьте на 20 мин при комнатной температуре (трансфекции смесь). Включите одну макет трансфекции как контроля (рис. 3).
    3. Удалить супернатант из посеянных клеток Sf9 (клетки теперь придерживаться пластины) и заменить 2 мл свободного TNM-FH сыворотки средой, содержащей Pen-Strep (1%). Добавить полный объем трансфекции смеси, полученной на стадии (1.2.2) и рок пластину 6-луночные тщательно в течение 5 сек. Инкубировать в инкубаторе 28 ° C без CO 2 в течение 6 часов (рис. 3).
    4. Заменить медиа шго свежие полные TNM-FH СМИ (содержащие 10% FBS, 1% Pen-Strep и 0,1% Pluronic F68). Инкубировать в инкубаторе 28 ° C без CO 2 в течение 6 дней. Проверьте клетки иногда под микроскопом. Зараженные клетки обычно появляются больше, круглее, расширили ядра, и начать отделяться (рис. 4).
    5. Урожай клеток и подтверждения экспрессии белка
      1. Урожай клеток через 6 дней после трансфекции путем центрифугирования при 2000 мкг в течение 5 мин при комнатной температуре. Супернатант содержит рекомбинантного бакуловируса - это будет использоваться для генерации рабочих запасы сразу, или можно хранить при температуре 4 ° С в течение многих лет.
      2. Для проверки экспрессии белка собирать шарики и ресуспендируют в 500 мкл PBS. Смешать 50 мкл суспензии с 50 мкл SDS-PAGE загрузочного буфера (содержащего восстановитель). Запуск SDS-PAGE и выполнить Вестерн-блоттинга с анти-антителом гексагистидиновой подтвердить экспрессию генов. Включите клетки от макеттрансфекции в качестве отрицательного контроля (рис. 3).
    6. Подготовка рабочих запасов
      1. Пластина 5 х 10 5 Sf9 клеток / см 2 в T175 см 2 колбы и оставьте на 20 мин позволяют им придают блюду. Замените полную TNM-FH СМИ с TNM-FH средах, содержащих 3% FBS (и 1% Pen-Strep, 0,1% Pluronic F68).
      2. Инфицировать клетки с 100 мкл спасательной супернатанта. Выдержите в инкубаторе 28 ° C без CO 2 в течение 6 дней и время от времени проверять, если клетки заразиться (как описано в пункте 1.2.5.).
      3. Отжим при 2000 х г при комнатной температуре в течение 5 мин и собирают супернатант. Это теперь ваша Р2 складе. Этот запас может храниться бесконечно при 4 ° С. Повторите процедуру инфекции с помощью 100 мкл складе P2 заразить клетки. Полученный препарат называется P3 или работающих запас, который можно хранить при температуре 4 ° С или использовать непосредственно для экспрессии белка. P3 акции, как правило, содержит 10 7 -10 9 бляшкообразующих единиц / мл.

2. Белок Экспрессия и очистка

Пояснительная записка клетки Sf9 поддерживать рост бакуловирусом очень хорошо. Тем не менее, их способность выделять большое количество рекомбинантного белка ограничена. Поэтому мы используем другую линию клеток насекомых, High Five клетки, для выражения секретируемых рекомбинантных белков. Эти клетки не поддерживают репликацию бакуловируса до очень высоких титров 13 но имеют высокую секреторную способность.

  1. Выросший High Five клетки
    Grow High Five клеток в SFX насекомое клеточной среде культуры в T175 см 2 колбы. Прохождение через день 1:03. Для культуры экспрессии 200 мл вам нужно будет расти 5 сливные колб.
  2. Сбор и заражение High Five клетки
    1. Снять High Five клетки от 5 T175 см 2 колбы, нажав колбы рукой. Соберите клеток suspeпередать в 50 мл центрифужные пробирки nsion и.
    2. Отжим при 1200 х г в течение 7 мин при комнатной температуре. Удалить супернатант отстаивают и объединить гранул ресуспендированием их в 15 мл P3 складе.
    3. Дайте настояться в течение 15 мин в капюшоне потока (рис. 5).
    4. Трансфер 200 мл Hyclone SFX культуральной среды в чистый, стерильный 1000 мл шейкер колбу (без buffles, запечатанную алюминиевой фольги перед автоклавированием, не должны были быть использованы для бактериальных культур раньше).
    5. Перенести подвеска P3/cell в шейкер колбу. Печать с стерильной алюминиевой фольги и передачи колбы в шейкере. Взболтать при 70 оборотах в минуту при 28 ° С в течение 72-96 часов.
  3. Сбор рекомбинантного белка от High Five экспрессии клеток супернатантов
    1. 72-96 ч после заражения передачи супернатанты культуры в 500 мл центрифугирования ведра. Отжим при 5500 мкг в течение 20 мин при 4 ° С. В то же время промойте шейкере колбы 3x с дважды дистиллированной воде(DDH 2 O).
    2. Передача 3 мл Ni-смола суспензии в 50 мл пробирку с 45 мл PBS (один необходимы в культуре 200 мл). Хорошо встряхните и вращаются на 3000 мкг при комнатной температуре в течение 10 мин. Слейте PBS и держать шарик. Смешайте супернатант клеток насекомых с Ni-смолы гранул и передавать в уже промытыми встряхиваемых колбах. Инкубировать при температуре 4 ° С в течение 2-4 ч, при встряхивании (рис. 6).
    3. Крепление 10 мл полипропилен на зажим на опорной стойке. Снимите обе крышки и поместите стакан под столбцом собрать поток через (отходов). Возьмем шейкер колбу из шейкере и начинают передавать супернатант / суспензионной смеси на колонку, он сохранит Ni-смолы и только супернатант будет течь через. Пройдите весь объем над колонной (рис. 7).
    4. Промыть смолы 4x 15 мл промывочного буфера (50 мМ Na 2 HCO 3, 300 мМ NaCl, 20 мМ имидазола, рН 8). Пусть все сливные промывочный буфериз колонки и закройте его крышкой (нижняя сторона).
    5. Добавить 2 мл буфера для элюции (50 ммоль Na 2 HCO 3, 300 мМ NaCl, 300 мМ имидазола, рН 8) и оставьте на 5 мин. Откройте колонки и собирать элюата. Повторите это еще 3 раза (в общей сложности 8 мл элюирующего буфера). Элюат, который содержит высокие концентрации белка обычно показывает пену при встряхивании (рис. 7). Держите элюата на льду, когда это возможно.
  4. Буфер обмена и концентрации
    1. Prespin 15 мл ультрафильтрации центрифугирования единиц (30 кДа отрезные для HA / NA но может варьироваться в зависимости от очищенной размера белка) с PBS (рН 7,4-7,6) при 3000 мкг при 4 ° С в течение 20 мин. Отбрасываем течь через и нагрузка элюата на колонку спина. Залейте 5 мл стерильной, лед холодной PBS и спина в течение 60 мин при 3000 мкг при 4 ° С.
    2. При выпуске через раз, залейте 15 мл ледяной PBS и спина в течение 60 мин при 3000 мкг при 4 ° С. Повторите эту процеДюре еще раз.
    3. Возьмем столбец отжима из центрифуги и собирать буфера обмена концентрат (как правило, 200 мкл). Это имеет высокую концентрацию рекомбинантного белка. Промойте колонку отжима с 400 мкл стерильной лед холодной PBS и добавить к концентрату. Хранить концентрата на льду в любое время.

3. Характеристика и контроль качества

  1. Измерение концентрации белка
    Возьмите аликвоту концентрата и измерить его с помощью вашего белка метод количественного выбора. Набор концентрации белка 1 мг / мл добавлением PBS и заморозить небольших аликвот до -80 ° С. Замораживание циклов оттаивания вред белковую структуру и может привести к агрегации.
  2. SDS-PAGE и окрашиванием Кумасси
    Запуск 500 нг вашего белка на SDS-PAGE и выполнить окрашивание Кумасси. Для быстрого и удобного окрашивания Кумасси использовать реагент в сочетании с протоколом СВЧ. HA белки обычно появляются на 64кДа, тогда как белки NA должен работать на размером около 56 кДа (8А и В). Используя описанную протокол, который вы не должны видеть никаких продуктов распада. Если деградация происходит это обычно является признаком загрязнения дрожжей / грибковой во время выражения. В этом случае повторите процедуру и убедитесь, что держать все стерильно.
  3. Вестерн-блот / ИФА
    Для того чтобы проверить идентичность белка мы рекомендуем сделать, чтобы блоте или ELISA анализа с специфическим антителом. В идеале, ELISA анализы выполняются с антителом, которое связывается с конформационных эпитопов (например, анти-HA стебель антитела 1). Использование такого антитела правильную укладку белка может быть подтверждена (рис. 8в).
  4. Измерение Н.А. деятельность
    Правильной укладки вирусной NA также может быть определено измерением активности Na. Мы рекомендуем выполнить этот тест с использованием коммерчески доступной Н.А. * звезды анализ (просто следуйте рекомендациям пользователей).

Результаты

Молекулы ГК из A/Shanghai/1/13 и A/Anhui/1/13 хорошо выражена при урожайности около 20 мг / л культуры. Молекулы NA обоих штаммов показал умеренные уровни экспрессии, начиная от 0,2 мг / л культуры для A/Shanghai/1/13 до 0,7 мг / л для A/Anhui/1/13. Все четыре препараты белковые было очень мало, чтобы не примесей (8А

Обсуждение

Хотя выражение вируса гриппа HA и NA белков в клетках насекомых с использованием бакуловирусной системы экспрессии, как правило, прямо вперед, есть несколько важных моментов, которые необходимо учитывать. Важно, как отмечалось во введении, что эктодомены ГК и НС выражены в слиянии с трим?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Мы хотели бы поблагодарить Patrick C. Wilson для моноклональных антител CR9114. Мы также благодарим Дженнифер Debeauchamp и Ричард Webby для оригинальных плазмид A/Anhui/1/13. Частичная поддержка для этой работы была предоставлена ​​Национальным институтом аллергии и инфекционных заболеваний, финансируемый Проект Программа грантов AI097092-01A1 и CEIRS (Центры передового опыта по борьбе с гриппом исследований и надзору, HHSN26620070010C). ФК была поддержана общение Эрвин Шредингер (J 3232) от Австрийским научным фондом (FWF).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Name of Material/ EquipmentCompanyCatalog NumberComments/Description
Bac-to-Bac Baculovirus expression systemInvitrogen10359-016Follow manufacturer's instructions
TNM-FH insect mediumGemini Bioproducts600-311
HyClone SFX-InsectThermo FisherSH30278.02
Cellfectin II ReagentInvitrogenP/N58760
Pluronic F68Sigma1000702664
SimplyBlue SafeStainInvitrogenLC6060
Ni-NTA AgaroseQiagen1018240
Amicon Ultra Centrigual filters Ultracel 30KMilliporeUFC902024
Pen StrepGibco15140-122
Polypropylene Columns (5 ml)Qiagen34964
Max efficiency DH10Bac bacteriaInvitrogen10361-012
PureLink HiPure Plasmid Filter Midiprep KitInvitrogenK210015
ImidazoleSigma-AldrichI2399-100Gfor elution and wash buffers
Sf9 cellsATCCCRL-1711
High Five cellsInvitrogenB85502

Ссылки

  1. Krammer, F., et al. A carboxy-terminal trimerization domain stabilizes conformational epitopes on the stalk domain of soluble recombinant hemagglutinin substrates. PLoS One. 7, e43603 (2012).
  2. Krammer, F., Pica, N., Hai, R., Margine, I., Palese, P. Chimeric hemagglutinin influenza virus vaccine constructs elicit broadly-protective stalk-specific antibodies. J. Virol. , (2013).
  3. Leyva-Grado, V. H., Mubareka, S., Krammer, F., Cárdenas, W. B. Influenza virus infection in Guinea pigs raised as livestock, ecuador. Emerg. Infect. Dis. 18, 1135-1138 (2012).
  4. Margine, I., et al. H3N2 influenza virus infection induces broadly reactive hemagglutinin stalk antibodies in humans and mice. J. Virol. , (2013).
  5. Miller, M. S., et al. 1976 and 2009 H1N1 Influenza Virus Vaccines Boost Anti-Hemagglutinin Stalk Antibodies in Humans. J. Infect. Dis. 652, (1976).
  6. Pica, N., et al. Hemagglutinin stalk antibodies elicited by the 2009 pandemic influenza virus as a mechanism for the extinction of seasonal H1N1 viruses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 2573-2578 (2012).
  7. Sangster, M. Y., et al. The B cell response and hemagglutinin stalk-reactive antibody production in different age cohorts following 2009 H1N1 influenza vaccination. Clin. Vaccine Immunol. , (2013).
  8. Tan, G. S., et al. A pan-h1 anti-hemagglutinin monoclonal antibody with potent broad-spectrum efficacy in vivo. J. Virol. 86, 6179-6188 (2012).
  9. Ekiert, D. C., et al. Antibody recognition of a highly conserved influenza virus epitope. Science. 324, 246-251 (2009).
  10. Xu, X., Zhu, X., Dwek, R. A., Stevens, J., Wilson, I. A. Structural characterization of the 1918 influenza virus H1N1 neuraminidase. J. Virol. 82, 10493-10501 (2008).
  11. Stevens, J., et al. Structure of the uncleaved human H1 hemagglutinin from the extinct 1918 influenza virus. Science. 303, 1866-1870 (2004).
  12. Wei, C. J., et al. Comparative efficacy of neutralizing antibodies elicited by recombinant hemagglutinin proteins from avian H5N1 influenza virus. J. Virol. 82, 6200-6208 (2008).
  13. Krammer, F., et al. Trichoplusia ni cells (High Five) are highly efficient for the production of influenza A virus-like particles: a comparison of two insect cell lines as production platforms for influenza vaccines. Mol. Biotechnol. 45, 226-234 (2010).
  14. Palmberger, D., et al. Insect cells for antibody production: evaluation of an efficient alternative. J. Biotechnol. 153, 160-166 (2011).
  15. Santiago, F. W., Lambert Emo, K., Fitzgerald, T., Treanor, J. J., Topham, D. J. Antigenic and immunogenic properties of recombinant hemagglutinin proteins from H1N1 A/Brisbane/59/07 and B/Florida/04/06 when produced in various protein expression systems. Vaccine. 30, 4606-4616 (2012).
  16. Wrammert, J., et al. Broadly cross-reactive antibodies dominate the human B cell response against 2009 pandemic H1N1 influenza virus infection. J. Exp. Med. 208, 181-193 (2011).
  17. Treanor, J. J., et al. Protective efficacy of a trivalent recombinant hemagglutinin protein vaccine (FluBlok) against influenza in healthy adults: a randomized, placebo-controlled trial. Vaccine. 29, 7733-7739 (2011).
  18. Dalakouras, T., Smith, B., Platis, D., Cox, M., Labrou, N. Development of recombinant protein-based influenza vaccine. Expression and affinity purification of H1N1 influenza virus neuraminidase. J. Chromatogr. A. 1136, 48-56 (2006).
  19. Krammer, F., Grabherr, R. Alternative influenza vaccines made by insect cells. Trends Mol. Med. 16, 313-320 (2010).
  20. Gao, R., et al. Human Infection with a Novel Avian-Origin Influenza A (H7N9) Virus. N. Engl. J. Med. , (2013).
  21. Goff, P. H., et al. Induction of cross-reactive antibodies to novel H7N9 influenza virus by recombinant Newcastle disease virus expressing a North American lineage H7 subtype hemagglutinin. J. Virol. , (2013).
  22. Weldon, W. C., et al. Enhanced immunogenicity of stabilized trimeric soluble influenza hemagglutinin. PLoS One. 5, (2010).
  23. Dreyfus, C., et al. Highly conserved protective epitopes on influenza B viruses. Science. 337, 1343-1348 (2012).
  24. Steel, J., et al. Live attenuated influenza viruses containing NS1 truncations as vaccine candidates against H5N1 highly pathogenic avian influenza. J. Virol. 83, 1742-1753 (2009).
  25. Fouchier, R. A., et al. Avian influenza A virus (H7N7) associated with human conjunctivitis and a fatal case of acute respiratory distress syndrome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 1356-1361 (2004).
  26. Kost, T., Condreay, J., Jarvis, D. Baculovirus as versatile vectors for protein expression in insect and mammalian cells. Nat. Biotechnol. 23, 567-575 (2005).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

81OrthomyxoviridaeH7N9

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены