Method Article
This article provides an in depth guide for the assembly and operation of a structured illumination microscope operating with total internal reflection fluorescence illumination (TIRF-SIM) to image dynamic biological processes with optical super-resolution in multiple colors.
Оптический супер-разрешением изображения с структурирован освещения микроскопии (SIM) является ключевой технологией для визуализации процессов на молекулярном уровне в химической и медико-биологических наук. Хотя коммерческие системы SIM доступны, системы, которые специально созданных в лаборатории может превзойти коммерческие системы, последний, как правило, предназначены для простоты использования и применения общего назначения, как с точки зрения верности изображения и скорости. В данной статье представлен детальный путеводитель по созданию системы, которая использует SIM полного внутреннего отражения (TIR) освещения и способна визуализации с частотой до 10 Гц в трех цветах при разрешении достигает 100 нм. Благодаря сочетанию SIM и TIRF, система обеспечивает лучшую контрастность изображения, чем конкурирующие технологии. Для достижения этих спецификаций, несколько оптических элементов используются для автоматизированного контроля за состоянием поляризации и пространственной структуры освещающего света для всех доступных WAV возбужденияelengths. Полная информация о аппаратной реализации и контроля приведены для достижения синхронизации между генерации возбуждающего света картины, длины волны, состояния поляризации и управления камерой с акцентом на достижение максимальной частоты кадров приобретения. Протокол шаг за шагом для выравнивания системы и калибровки представлена и улучшение достижимое разрешение проверяется на идеальных образцах. Возможность для видео-курса супер-разрешением изображения демонстрируется с живыми клетками.
За последние полгода десятилетия, супер-разрешение микроскопии созрел и переехал из специализированных лабораторий оптики в руки биолога. Существуют коммерческие микроскоп решения для трех основных вариантов для достижения оптических сверхвысокого разрешения: единая локализация молекулы микроскопии (SMLM), стимулируется истощение выбросов микроскопии (STED) и структурированная подсветка микроскопии (SIM) 1,2. SMLM, такие как фотоактивированного локализации микроскопии (PALM) и стохастические оптической микроскопии реконструкции (STORM) были наиболее популярные методы, во многом благодаря простоте оптической схемы и обещание высокого пространственного разрешения, легко вплоть до 20 нм. Однако супер-разрешение микроскопии с помощью локализации одной молекулы приходит с внутренней компромиссом: пространственное разрешение достижимо зависит от накопления достаточного количества отдельных флуорофоров локализаций, следовательно , ограничивает временное разрешение. Динамический процесс обработки изображенийES в живых клетках, следовательно, становится проблематичным, так как необходимо адекватно образец движение структуры, представляющие интерес для предотвращения артефактов движения в то же время приобретая достаточно локализации событий в то время, чтобы восстановить изображение. Для удовлетворения этих требований, живых клеток SMLM демонстрации получили требуемое увеличение ставок Флуорофор photoswitching за счет значительного увеличения мощности возбуждения, а это в свою очередь приводит к фототоксичности и окислительного стресса, ограничивая тем самым время выживания образца и биологическая релевантность 3.
Явное преимущество STED над обоими SIM и SMLM является то , что он может изображение с супер-разрешением в толстых образцах, например пространственным разрешением около 60 нм была достигнута в органотипических срезах мозга на глубинах до 120 мкм 4. Обработки изображений на таких глубинах с единственной целью реализаций SMLM или SIM неосуществим, но становится возможным либо светового листа одной молекулы или решетки света листа микрофонуroscopy 5. Видео-курс STED также было продемонстрировано и используется для сопоставления синаптическую мобильности везикул, хотя до сих пор это было ограничено визуализации небольшие поля зрения 6.
Для применения в клеточной биологии и реакций молекулярных самосборки 7 - 12 , которые требуют обработки изображений с высоким временным разрешением на протяжении многих временных точках, структурированной подсветки микроскопии (SIM - карта) может быть хорошо подходит , поскольку это не зависит от фотофизиче- свойств конкретного флуоресцентной зонд. Несмотря на это Бесспорное преимущество SIM, до сих пор его использование было в основном ограничено визуализации фиксированных клеток или медленно движущихся процессов. Это происходит из-за ограничений, имеющихся в продаже систем SIM: частота кадров Приобретение этих инструментов была ограничена скоростью вращения решетках, используемых для генерации требуемых синусоидальные шаблона освещения, а также с сохранением поляризации оптики. Новое поколение коммерческих SIMинструменты способны быстрой обработки изображений, но они слишком дороги для всех, кроме центральных объектов визуализации.
Этот протокол представляет собой руководство по построению гибкой системы SIM для визуализации быстропротекающих процессов в тонких образцах и вблизи базальной поверхности живых клеток. В нем используется полное внутреннее отражение флуоресценции (TIRF) для создания рисунка освещения , которая проникает не глубже примерно 150 нм в образце 13 , который значительно уменьшает вне фокуса фонового сигнала. Идея объединения SIM с TIRF почти так же стара , как и сама SIM 14 , но не был экспериментально реализован до 2006 года 15. Первый в естественных условиях изображения , полученные с TIRF-SIM были представлены в 2009 году 16 , достигающие частоты кадров 11 Гц для визуализации тубулина и кинезин динамика и две цветовые системы TIRF-SIM были представлены 17,18. Совсем недавно, руководство для строительства и эксплуатации одного цвета двухлучевые SIM-system был представлен с участием фреймовую со скоростью до 18 Гц 19,20.
Установка, представленная здесь, способна супер-разрешением изображения SIM при частоте 20 Гц в трех цветовых вариантах, два из которых могут работать в TIRF-SIM. Вся система построена вокруг перевернутой рамы микроскопа и использует моторизованный этап перевода ху с пьезоэлектрическим приводом г стадии. Для того, чтобы генерировать синусоидальные паттерны возбуждения, необходимые для TIRF-SIM, система представлена использует сегнетоэлектрический пространственного модулятора света (SLM). Бинарные образцы решетки отображаются на ОДС и результирующие ± 1 порядки дифракции фильтруют, ретранслируется и сосредоточены в кольцо МДП линзы объектива. Необходимые фазовые сдвиги и повороты решетках применяются путем изменения отображаемого изображения SLM. Этот протокол описывает, как построить и выровнять такой путь возбуждения, детали выравнивания пути выбросов, а также представлены тестовые образцы для обеспечения оптимального выравнивания. Кроме того, де писцы вопросы и проблемы, определенные на высокой скорости TIRF-SIM относительно контроля поляризации и синхронизации компонентов.
Вопросы проектирования и ограничения
Перед сборкой системы TIRF-SIM, представленный в данном протоколе, существует несколько проектные ограничения, которые следует учитывать, определяющие выбор оптических компонентов. Все сокращения оптических компонентов относятся к фиг.1.
Пространственного модулятора света (SLM)
Бинарное сегнетоэлектрическая ОДС используется в этой установке, как она способна коммутации, к югу от миллисекунды. Оттенки серого нематических SLMS могут быть использованы, но они сильно предлагают сократить время переключения. Каждый или выключает пиксель в двоичном фазе ОДС будет передавать либо я, либо 0 сдвиг фазы в падающей плоской волновой фронт, поэтому если периодическая решетка рисунок отображается на ПОМ он будет работать в качестве фазовой дифракционной решетки.
лор "> полного внутреннего отражения (TIR) Для достижения МДП и производят мимолетную поле, угол падения пучков возбуждения на границе между стеклом и образца должна быть больше, чем критический угол , Это устанавливает минимальный угол падения требуется, а значит, и максимальное расстояние, или период, в запредельном шаблона освещения. Максимальный угол падения
(Угол приема) ограничивается числовой апертуре (NA) линзы объектива, который может быть вычислен из определения
, Это определяет минимальный интервал достижимо шаблон в соответствии с формулой Аббе
которая связывает NA и длину волны
до минимального расстояния шаблона
. На практике, 1,49 Н.А. масла погружения TIRF цель дает максимальный угол падения около 79 ° и минимальный период Узор на образце 164 нм с использованием длины волны возбуждения 488 нм. Эти два угла образуют кольцо в задней отверстия объектива , по которому прибор достигает освещения МДП (т.е.. Кольце МДП) и в котором должны быть точно расположены очаги возбуждения двух и точно вращают для генерации каждого шаблона освещения.
Реконструкция изображений TIRF-SIM требует приобретения минимум трех фазовых сдвигов на оборот шаблона поэтому период шаблон ОДС должен делиться на 3 (см рисунок 1). Например, в течение 9 пикселей для 488 нм подсветкой и 12 пикселей для 640 нм освещения. Для всестороннего обсуждения дизайна ОДС картины, в том числе оптимизации подпиксельной шаблона разнесением с помощью стриженого решеток, Смотрите предыдущую работу Кнер и др. 16 и Lu-Walther и др. 20 положения двух очагов возбуждения должны быть внутри кольца МДП для всех длин волн, однако угол дифракции ± 1 порядков от ОДС длины волны зависимой. Для получения стандартной SIM, многоцветные изображения может быть достигнуто за счет оптимизации период решетки для самой длинной длины волны, и допуская потерю в производительности для более коротких каналов. Для TIRF-SIM Однако оптимизации для одной длины волны означает, что другая длина волны фокусы больше не в пределах кольца МДП. Например, с помощью дифракционной решетки, период 9 пикселей является достаточным для обеспечения TIRF для 488 нм, в качестве фокусов на уровне 95% от диаметра задней апертуры и внутри кольца МДП, но на 640 нм, в этот период поместит фокусы снаружи диафрагма. По этой причине различные пиксельный рисунок интервалы должны быть использованы для каждой длины волны возбуждения.
Выравнивание пути возбуждения TIRF-SIMчрезвычайно чувствителен к небольшим изменениям в положении дихроичным зеркалом (DM4 на фиг.1) в корпусе микроскопа, гораздо больше, чем в обычной SIM - карты. Использование вращающегося фильтра куба башни не рекомендуется, вместо того, чтобы использовать один, многополосный дихроичное зеркало, которое удерживается в фиксированном положении и разработан специально для длин волн возбуждения, используемых. Крайне важно, что используются только самые высокие качества дихроичных зеркал. Они требуют толстых подложек не менее 3 мм, и часто обозначается как "плоский" изображение производителями. Все другие субстраты приводят к невыносимым аберрации и ухудшения качества изображения в TIRF-SIM.
Поляризация управления
Для достижения TIRF-SIM необходимо , чтобы повернуть состояние поляризации возбуждающего света в синхронности с рисунком освещения таким образом, что она остается азимутально поляризованным в объективном плане зрачка относительно оптической оси (т.е., s-поляризованной). Выравнивание управления поляризационной оптики будет зависеть от конкретного оптического элемента , используемого, например , ячейки Поккельса 21, или полуволны пластины в моторизованной стадии 22 вращения. В этом протоколе используется пользовательский жидкокристаллический переменная замедлитель (LCVR), предназначена для обеспечения полной волны (2л) retardance в диапазоне длин волн 488 до 640 нм, поскольку она позволяет быстро (~ мс) переключение. При использовании жидкокристаллического замедлитель необходимо использовать компоненту высокого качества: стандартные компоненты, как правило, недостаточно стабильны, чтобы дать постоянную retardance по длине от времени экспозиции камеры, что приводит к размыванию из шаблона освещения и низкой контрастности модуляции , Жидкокристаллические замедлители также сильно зависит от температуры и требуют встроенный контроль температуры.
синхронизация
Лазеры должны быть синхронизированы с ПОМ. Бинарные сегнетоэлектрических SLMS внутренне уравновешен сколдовской между включенном состоянии и выключенном состоянии. Пиксели действуют только как полуволна пластины в любом их или выключенном состоянии, но не во время межкадрового переключения времени. Поэтому лазеры должны включаться только во вкл / выкл состояний через светодиод Включить сигнал от ОДС, чтобы предотвратить снижение контрастности рисунка в связи с промежуточным состоянием пикселей. Акустооптический модулятор (АОМ) в качестве альтернативы может быть использован в качестве быстрого затвора, если лазеры не могут быть с цифровой модуляцией.
Выбор объективов
Исходя из этих ограничений требуемое уменьшение плоскости ОДС на плоскость образца для получения желаемого шаблона освещения может быть определена. Это позволяет рассчитать фокусных расстояний двух линз L3 и L4 в эстафете изображения телескопа и конденсатора возбуждения линзы L5. В этой системе 100X / 1.49NA масло погружением линзы объектива используется при длине волны 488 нм и 640 нм возбуждение, следовательно, использует фокусными расстояниями 300 и 140 ммдля L4 и L3, а также 300 мм для L5, доводя общую уменьшение масштаба от 357X, что эквивалентно размеру ОДС пикселя 38 нм в плоскости образца. С помощью этой комбинации линз, ОДС решетки периодов 9 для 488 нм подсветкой и 12 пикселей на 640 нм дают шаблонов расстояниями 172 и 229 нм, в образце, что соответствует углах падения 70 ° и 67 °, соответственно. Для поверхности раздела стекла и воды, критический угол составляет 61 °, и не зависит от длины волны, поэтому эти две модели позволяют расстояния TIRF возбуждения для обеих длин волн. Объектив оборудован коррекции воротник полезно для коррекции сферических аберраций, вносимых изменениями толщины покровного, или если он работает при 37 ° C.
Реконструкция изображения
После того, как исходные данные SIM было приобретено это вопрос вычислительных усилий, чтобы генерировать сверхвысоким разрешением изображения в два этапа. Во-первых, распределение освещенности должен быть определен длякаждое изображение и , во- вторых, компоненты спектра SIM должны быть разделены и рекомбинируют соответствующим образом , чтобы удвоить эффективную поддержку OTF (рисунок 6, вклейки).
Точное знание проектируемых моделей освещения имеет первостепенное значение, так как супер-разрешенные частотные компоненты должны быть несмешанное настолько точно, насколько это возможно, чтобы предотвратить артефакты, вызванные остаточными частями перекрывающихся компонентов. Определим распределение освещенности параметры апостериори из данных исходного изображения , следуя процедуре , введенной Густафссон и др. 23 Короче говоря, набор параметров освещения , которое описывает нормированную двумерную синусоиду должен быть найден для каждого из паттерны возбуждения
:
настоящим а также
описывают контрастность интерференционных полос и образец начальной фазы каждого отдельного изображения м соответственно. Компоненты волнового вектора,
а также
, Изменяются только с различной ориентацией
шаблона и может быть, предполагается, что в противном случае константа. Для крупно определить компоненты волнового вектора выполняется кросс корреляции спектров сырого изображения, которое рафинированного путем применения Subpixel сдвигов к одному из кросс-коррелированных изображений с целью оптимизации перекрытия. Это делается с помощью умножения фазовых градиентов в реальном пространстве
которые вызывают сдвиг субпикселей в Freтота-пространство. Обратите внимание, что полезно иметь хорошую оценку поверхности волновых векторов до фактической оценки шаблона и это можно найти с помощью получения изображения флуоресцентного шарик слой.
По мере того как шаг фаз между сдвинутыми паттернов , То есть.
, Разделение частотных компонентов, могут быть выполнены с помощью преобразования Фурье вдоль "синфазной оси". Глобальная фаза
и контраст интерференционных полос
то может быть определено с использованием сложной линейной регрессии различных компонентов. Отдельные компоненты разделены затем комбинируют с использованием обобщенного фильтра Винера. Для детального описания как извлечения параметров и реализации обобщенного фильтра Винера мы отсылаем читателя к Густафссони др. 23 , где используется тот же алгоритм.
1. Расположение и выравнивание возбуждению Path
2. Выравнивание поляризационных Rotator
3. Выравнивание Пути выбросов
4. Система синхронизации и калибровки
Многоцветный диаметром 100 нм флуоресцентные шарики были обследованы для сравнения стандартный TIRF для TIRF-SIM и количественно достижимую улучшение бокового разрешения (Рисунок 4A - B). Реконструкция исходных кадров в изображения сверхвысокого разрешения осуществляли с использованием стандартных алгоритмов , как описано в литературе 27,28. Можно видеть, что TIRF-SIM, очевидно, имеет значительно выше боковое разрешение по сравнению с TIRF. Функция рассеяния точки (PSF) микроскопа хорошо аппроксимируется изображением одного суб-дифракционного размера флуоресцентного шарик, поэтому ФРТ и разрешающая способность может быть определена количественно путем подбора функции 2D гауссовых к отдельным бусин для каждой длины волны. Расчетная разрешающая способность микроскопа , основанного на среднем значении полувысоте полной ширины (FWHM) составляет 89 нм и 116 нм для 488 и 640 нм TIRF-SIM соответственно (фиг.4С). Это соответствует двукратному Improvement в боковом разрешении для обеих длин волн по сравнению с теоретической дифракции ограниченного случая. Флуоресцентно меченных амилоидные фибриллы также являются отличным тестовый образец для демонстрации удвоенное разрешение (рис 4D). Амилоидные фибриллы были сформированы в пробирке путем инкубирования -амилоида , меченного 10% родамин производными красителями (488 нм возбуждение) в течение 1 недели , а затем получения изображения с TIRF-SIM. См ссылку 12 для получения дополнительной информации.
Субклеточных структур с высокой контрастностью, как emGFP помечены микротрубочек (рис 5В, G) или LifeAct-GFP (рис 5D) идеально подходят для работы с изображениями TIRF-SIM и дают изображения сверхвысокого разрешения с высокой контрастностью. изображений TIRF-SIM с помощью установки, подробно описанную в данном протоколе позволяет наблюдать субпопуляции микротрубочек, расположенных в непосредственной близости от базальных клеток коры, и полимеризация микротрубочек и деполимеризации может бе видели в течение долгого времени (анимированные Рисунок 1). Не все образцы поддаются визуализации с TIRF-SIM, в частности, низких образцов контрастных без дискретных структур. Клетки , экспрессирующие цитозольного GFP отсутствие высокой информации о разрешающей способности в сторону от по краям плазматической мембраны (рис 5F, H и анимированные рисунок 2) и , следовательно , неоптимальной для визуализации TIRF-SIM в качестве результирующих реконструкциях по существу TIRF изображений наложенные с артефактами. В таких образцах, увеличение контраста часто можно отнести к шагу деконволюции алгоритма восстановления.
Высокая контрастность модуляции имеет важное значение для успешной визуализации SIM. Преобразование Фурье восстановленного изображения позволяет визуализировать оптической передаточной функции SIM (OTF) (6А, вставка). Без максимизации контраста модуляции для каждой ориентации путем обеспечения азимутальной полярнойризации с поляризационным ротатора, существует очень мало модуляции информации с высокой разрешающей способностью в образце, приводящей к низким отношением сигнал-шум в SIM-полос пропускания. Алгоритмы реконструкции , которые используют стандартный фильтр подход Винера просто усиливают шум в SIM и полос пропускания дают изображение , которое по существу представляет собой стандартное TIRF изображение перекрывается с гексагональной (или "соты") ореолы (рис 6A, правая панель). Возможное повышение может быть использование алгоритмов 31,32 итеративных 29,30 или слепота восстановления , чтобы уменьшить эти артефакты , в зависимости от типа образца. Мы рекомендуем использовать ImageJ плагин SIMcheck для проверки качества данных SIM до и после реконструкции 33.
Рисунок 1:. Макет установки Многоцветный TIRF-SIM TIRF-SIM милиcroscope состоит из трех основных частей, блок формирования луча, блок проекции модели и блок обнаружения. В блоке формировани луча, три различных лазеров выровнены на той же траектории луча через дихроичных зеркал (DM1 и дм2) и направляется через четыре оптических элементов для управления поляризацией. Во-первых, поляризатор (Р) обеспечивает чистоту линейного состояния поляризации каждого из лазерных лучей. Следующие три оптических элемента необходимы для поворота поляризации в быстрой, автоматизированным способом, как подробно описано в тексте. После этого две линзы (L1 и L2) в телескопическую конфигурацию расширения луча, чтобы соответствовать активной поверхности пространственного оптического модулятора (SLM) и дифрагированного на три бимлетов по проектируемых двоичными образцы решетки ОДС (в примерах показаны в плитках 1- 9). Состояние поляризации освещения света по отношению к образцу ОДС показано, как стрела. Второй телескоп (L3 и L4) де-усиливающая шаблон и предлагает доступ к йплоскость е Фурье шаблона ОДС. В этом плане пространственная маска (SM) используется, чтобы отфильтровать центральный компонент и другие нежелательные компоненты дифракции от пиксельного структуры ОДС и ее внутренней проводки. Перед тем как два оставшихся пучки фокусируются на задней фокальной плоскости объектива (OB) с помощью линзы конденсатора (L5), два дихроичных зеркал (дм3 и DM4) включены в установку. DM4 действует как обычный дихроичным зеркалом в флуоресцентной микроскопии, чтобы отделить освещение от излучаемого света. Тем не менее, это зеркало неизбежно вызывает эллиптичность в состоянии поляризации света подсветки, которая может быть компенсировано DM3, дихроичного зеркала с идеально той же партии, DM4. Масло погружения TIRF цель имеет достаточно большой NA непосредственно запуск двух встречных волн на покровное, которые отражаются полностью и приводят к структурированной эванесцентной поля в покровное. Образец устанавливается на стадии XYZ перевода. Обнаружение является перфорацияormed через ту же самую объективную и DM4 в передаче, плюс дополнительная фильтрация с помощью фильтров выбросов полосовой, установленный в компьютерным управлением фильтра колеса (EFW). Наконец, изображение проецируется на камеру sCMOS с помощью внутреннего тубуса микроскопа линзы (L6). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рис . 2: Выравнивание перекрывающихся пучков (А) решетка шаблон ОДС оконном с круглым отверстием полезно для выравнивания. Если два не перекрывающихся пучков видны на камере (слева), то положение плоскости образца должна быть приложена путем итеративного регулировки осевого положения объектива и камеры, чтобы дать одно кольцевое освещение пятно (справа). Лучи должны перекрываться в Ordeг для получения синусоидальной картину возбуждения, необходимого для TIRF-SIM. Если лучи не полностью перекрывают это уменьшает поле зрения, по которой формируется интерференционная картина. (В и С) Точный угол падения пучков имеет важное значение для TIRF-SIM. Если угол является неправильным, один из лучей не будет под нужным углом для TIRF и это хорошо видно при визуализации раствора флуоресцентного красителя. Один пучок имеет угол падения больше , чем критический угол , который дает круговое пятно, а другой нет, что приводит к яркой полосой на левой части изображения в (B). (D) Регулировка угла наклона зеркала DM3 обеспечивает оба луча падает под тем же самым углом, и это может быть подтверждено расфокусировка цель: если правильно выровнены, XZ проекция г стопкой образца флуоресцентного красителя должны показать два симметрично пересекающихся балки с незначительным фон нафокус. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 3: Синхронизация. Зависимости в различных системных компонентов (А) для быстрого сбора SIM, синхронизация системных компонентов с использованием решения на основе аппаратных средств имеет важное значение. (B) плата сбора данных (DAQ) следует использовать в качестве мастер - триггера. ТТЛ сигнал от платы сбора данных посылается на sCMOS внешнего входа и используется для запуска экспозиции фотокамеры. Камера Глобальный выход экспозиции затем запускает ОДС, чтобы отобразить образец решетки и SLM LED Включить выход используется для цифровой модуляции лазерного возбуждения таким образом, что лазер только испускать, когда пиксели ОДС находятся в состоянии «включено». После того, как экспозиция КомплексыТ.Е., камера глобальный выход экспозиции используется для продвижения шаблон SLM к следующей фазе решетки или под углом. Плата DAQ также выдает аналоговое напряжение на контроллер LCVR контролировать линейное состояние поляризации светового луча. Это напряжение включается после приобретения изображений фазы 3 для каждого угла рисунка. После приобретения 9 изображений для одной длины волны, плата DAQ выдает сигнал на контроллер колеса фильтра выбросов и переходит к следующей длине волны. Плата DAQ также применяет г-смещение образца путем вывода аналогового напряжения на контроллер Z-этап пьезо. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 4: TIRF-SIM визуализации опытных образцов 100 нм Многоцветный шариков и флуоресцентно Labelled амилоидные фибриллы. (А и В) Сравнение стандартного TIRF по сравнению с реконструкций TIRF-SIM для 488 нм и 640 нм возбуждения. (C) Гистограмма полноширинные половинной максимальной (FWHM) гауссовых подходит к шарикам TIRF-SIM с указанием ожидаемого улучшения разрешающей способности . (D) по сравнению с TIRF TIRF-SIM -амилоида фибрилл , меченных 10% родамина производной красителя (488 нм возбуждение). Масштабные полоски = 1 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рис . 5: Живая Cell TIRF-SIM визуализации Сравнение обычных TIRF и TIRF-SIM изображения (A, B) микротрубочек (emGFP-тубулина) в ячейке HEK293, (C, D ) нитчатые актин (LifeAct-GFP) в клетке COS-7 и (E, F) цитозольного GFP в клетке HEK293. Изображения в B и F единичные моменты времени из фильмов. Коробочные участки показаны в увеличенном (G, H). Масштабные полоски = 3 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рис . 6: Влияние поляризационных Rotator на реконструированный из бисера изображений (A) Без использования поляризационный ротатор , таких как LCVR, отношение сигнал-шум в SIM - полос пропускания мала , что приводит к характерным гексагональных артефактов в реконструированном SIM изображения (справа), (B) в 2D-SIM, структурированные модели освещения непосредственно видны в Фурьепреобразование исходных изображений (слева, пространственная частота возбуждения подсвечена), поскольку они находятся в пределах радиуса поддержки OTF выбросов, однако в TIRF-SIM, они находятся за пределами поддержки OTF и поэтому не видна (справа). В этом случае контраст модуляции картина должна быть оценена с помощью разреженного шарика монослой, как указано в протоколе. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рис . 7: пространственный модулятор света паттернов поколения позволяет реализовать другие методы визуализации , такие как Многофокальные SIM (А) В MSIM, решетка площади pointsdisplayed на SLM (врезке) дает решетку дифракции ограниченных очагов на плоскости изображения. Тонкий слой низкой концентрации родамина 6G проецируется в visua атрических фокусы. Картина переведена через образец (B) и приобретенное сырое изображение Z-стек перестраивается для создания изображения с уменьшенным вне фокуса света (C). Масштабные полоски = 5 мкм. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Анимированные Рисунок 1:. Время серии фильма EmGFP-тубулина в клетке HEK293 быстрой полимеризации и деполимеризации emGFP маркированы микротрубочки можно наблюдать с помощью TIRF-SIM. Изображения, полученные с использованием 50 мс время экспозиции каждого кадра сырой (450 мс на кадр SIM) с интервалом 0,5 сек. Время экспозиции была ограничена яркость флуорофора, а не скорость камеры или ОДС. 3988movie1.mov "целевых =" _blank "> Пожалуйста, нажмите сюда, чтобы просмотреть это видео.
Анимированные Рисунок 2:. Время серии фильма цитозольного GFP в ячейке HEK293 Образцы с низкой контрастностью , такие как это не являются идеальными образцами для визуализации TIRF-SIM. Ретроградный кровоток мембрану можно увидеть в TIRF изображений, но TIRF-SIM не дает никакой дополнительной информации, кроме по краям клеток. Изображения TIRF-SIM были приобретены с использованием 50 мс время экспозиции каждого кадра сырой (450 мс на кадр SIM) с интервалом 5 сек. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы просмотреть это видео.
Справочная файла Код: Пример ОДС репертуар файла (48449_300us_1-bit_Balanced.seq3).d / 53988 / 48449_300us_1-bit_Balanced.seq3 "> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_001.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_002.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_003.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Справочная файла Код: Пример ОДС repertoiповторно файл (period9_004.bmp). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы загрузить этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_005.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_006.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_007.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_008.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_009.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_mask_1.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_mask_2.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл. >
Дополнительный код файла:. Пример ОДС Репертуар файл (period9_mask_3.bmp) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример ОДС репертуар файла (TIRF-SIM_example.rep) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример кода генерации решетки (1 из 2) (generate_gratings.m) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Справочная файла Код: Пример кода генерации решетки (2 из 2) (circular_mask.m).= "Https://www.jove.com/files/ftp_upload/53988/circular_mask.m"> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Дополнительный код файла:. Пример кода для расчета контраста модуляции (calculate_contrast.m) Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы скачать этот файл.
Пользовательские встроенные системы TIRF-SIM, такие как настройки подробно в данном протоколе способны многоцветной супер-разрешением изображения на высокой скорости по сравнению с коммерчески доступными микроскопов. Бесспорное преимущество SIM в качестве метода сверхвысокого разрешения является то, что временное разрешение не ограничивается фотофизике флуорофора, по сравнению с другими методами, такими как одна молекула локализации микроскопии (SMLM) или методов сканирования точек, таких как стимулируется обеднения выбросов микроскопии ( STED). В отличие от этих других методов, SIM не требует фотопереключаемых или истощаемых флуорофоры так многоцветной визуализации проста. Номера системы TIRF-SIM, такие как оптический секционирования SIM и мультифокальной SIM обычно может добиться улучшения разрешения в 1,7 раза или менее на практике, в отличие от фактора 2 улучшения сообщили здесь, и коммерческие системы также часто медленнее и менее гибким, чем система представленные в этом протоколе.
"> Две основные трудности в реализации этой техники, во-первых, необходимость для точного позиционирования шести SIM-лучей в пределах зоны МДП задней апертуры объективной, которая требует трудоемкой и требует много времени оптическую процедуру выравнивания. Во-вторых, для получения высокой контрастности картины в образце, поворота плоскости поляризации имеет важное значение. для малых систем NA 2D-SIM, вращение поляризации можно избежать путем тщательного выбора ориентации линейной поляризации, но это становится невозможным для TIRF-SIM 25. для получения изображений многоцветной высокоскоростной, электро- оптический контроль поляризации необходимо, и это увеличивает сложность и стоимость системы.Ограничения метода
TIRF-SIM, как обычные TIRF, естественно ограничивается наблюдением биологических структур и процессов, расположенных на базальной мембране клетки, которые могут быть освещаемой глубины проникновения в 150-200 нм исчезающего поля. В то время какSIM - часто цитируется как менее photodamaging к клеткам , чем либо STED или SMLM, латеральное разрешение Удвоение ли еще увеличить требуемое число фотонов , по крайней мере , в 4 раза по сравнению с 5 обычными TIRF микроскопии. Для получения изображений при высокой частоте кадров с короткими выдержками времени, это увеличение фотонов требует использования повышенных освещенностей. Хотя любой флуорофор может быть использован для SIM-визуализации фиксированных или медленных движущихся образцов, высокая яркость флуоресцентных белков или следующего поколения синтетических красителей с повышенной светостойкости рекомендуются для получения изображений живых клеток.
Несмотря на то, что эта реализация способна визуализации одного цвета с частотой кадров SIM свыше 20 Гц, многоцветные изображения в представленной системе ограничена временем переключения моторизованной эмиссионного фильтра колеса. Из-за большого размера чипа камеры sCMOS, использование фильтра эмиссии многополосные и изображения расщепления оптики было бы и разрешить одновременное Imaging с несколькими длинами волн при скорости не штрафа. Другой возможностью было бы чередовать различные лазеры возбуждения и использовать многополосный режекторный фильтр, чтобы отказаться от возбуждающего света. Использование бинарной сегнетоэлектрической SLM в этом варианте осуществления, также не является оптимальным. Дифракционная эффективность такого ОДС очень низка, так что большая часть падающего света в отражении нулевого порядка, который отфильтровывается пространственной маской. Для применений, требующих очень высокую частоту кадров, скорость формирования изображения, таким образом, ограничена выходной мощности лазерного диода. ОДС также вносит некоторую эллиптичность в поляризации для длин волн вдали от 550 нм расчетной длины волны, где пиксели не работают в идеальных полуволна пластин. Хотя это может быть компенсировано за счет использования дополнительного LCVR, идеальным решением может быть использование цифрового микрозеркальное устройства (DMD) в качестве генератора шаблона.
Возможные модификации
Установка Presented здесь является гибким и более легко модифицировать , чем коммерческие инструменты , так что другие методы визуализации , такие как 3D-SIM, быстрая 2D-SIM, мультифокальной SIM (MSIM) и нелинейном SIM (NL-SIM) могут быть реализованы 21,34,35.
2D-SIM может быть хорошо подходит для работы с изображениями относительно плоский, быстро движущихся структур, таких как периферической эндоплазматической сети. Периферийное ER лежит глубже внутри клетки, чем может быть освещена с помощью мимолетную поле TIRF, но благодаря своей плоской конструкции могут быть отображены с использованием стандартного 2D-SIM с незначительным фоном не в фокусе. Кроме того, использование улучшенных алгоритмов реконструкции оптических секционирования для подавления вне фокуса света расширить использование 2D-SIM для оптически толстых образцов, хотя и где осевое разрешение Удвоение не требуется 21.
В MSIM образец освещается редкой решеткой возбуждения очагов 36. Эта модальность может быть реализован путем простого удаления пространственной маски (СМ) И заменив его на поляризатор. ПОМ в настоящее время работает как амплитудный модулятор. Бинарные решетками SIM, отображаемые на SLM могут быть заменены 2D-решетки пятен, с размером пятен, выбранных, чтобы быть равным размеру дифракционного ограниченного фокуса в плоскости изображения. На фиг.7А, решетка из 4 - х 4 пикселя квадратов отображается на ОДС (вставка) , который , когда на , уменьшенной пробе генерирует ограниченную дифракционную фокусы 150 х 150 нм, учитывая физический размер ОДС пикселя 13,62 мкм. Очаги возбуждения, то можно перевести сдвигая решетчатый узор на SLM и это повторяется несколько раз для того, чтобы осветить все поле зрения. Изображения приобретаются для каждого переведенного позиции шаблона и стек после обработки для получения реконструированного изображения с улучшенным разрешением до фактора и снижение вне фокуса света по сравнению с эквивалентной Widefield изображения30. Эта модальность может быть полезно для получения изображений толстые, плотные образцы , для которых стандарт SIM - непригодна, например , с низкой контрастностью структур , таких , как окрашенными красных кровяных телец (рис 7c), хотя время обнаружения увеличивается из - за большого количества необработанных кадров требуется на поле зрения (в данном случае N = 168).
И, наконец, установка может быть изменена для того, чтобы либо высокой NA линейный TIRF-SIM или с рисунком активации нелинейную SIM (PA NL-SIM), представленный недавно Ли и др., С использованием сверхвысокой 1.7 цели НС или дополнение фотоактивации лазера 405 нм и тщательной оптимизации решетки моделей SLM 35.
Будущие приложения
SIM-прежнему быстро развивается техника и многие приложения в области наук о жизни будет включена в будущем. Скорость, разрешение, и улучшения контраста техники и возможность использования стандартных флуорофоров мЕАН что для биоимиджинга, SIM устанавливается для замены обычных многих систем микроскопа, таких как конфокальной и широкое поле платформ. Коммерческие системы SIM уже доступны сегодня с выдающимися техническими характеристиками, однако они выходят за рамки финансовых возможностей многих научно-исследовательских лабораторий, и, самое главное, они являются негибкими быть изменены и разработаны для реализации новейших разработок научных исследований в этой области. Они также не имеют существенный потенциал для 'быть адаптирована для эксперимента под рукой ", часто критически узкое место в передний край жизни науки исследований. Система , описанная здесь , будет особенно хорошо подходит для изучения динамических процессов вблизи поверхности клеток, для исследования реконструированных двухслойных систем в пробирке, чтобы изучать химию поверхности в материалах и физических наук, например. 2D-материалов, а также многих других приложений.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана грантами от Leverhulme Trust, инженерным и физическим научным исследованиям Совета [EP / H018301 / 1, EP / G037221 / 1]; Болезнь Альцгеймера Research UK [Aruk-EG2012A-1]; Wellcome Trust [089703 / Z / 09 / Z] и Совет по медицинским исследованиям [MR / K015850 / 1, MR / K02292X / 1]. Мы благодарим Е. Авезовым и М. Лу для трансфекции LifeAct-GFP и цитозольная-GFP клеток соответственно, и W. Chen для подготовки культуры HEK293. Мы также благодарим К. O'Holleran за помощь в разработке микроскопа, и Л. Шао и Р. Heintzmann за полезные обсуждения и предложения.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
488 nm laser | Toptica | iBeam SMART | with digital modulation |
561 nm laser | Coherent | OBIS LS | with digital modulation |
640 nm laser | Cobolt | MLD | with digital modulation |
Long-pass dichroic mirrors | Thorlabs | for combining excitation beams | |
Quad band dichroic mirror | Chroma | ZT405/488/561/640rpc | 3 mm thick, TIRF imaging flat, mounted in Olympus BX filter cube |
Quad band dichroic mirror | Chroma | ZT405/488/561/640rpc | From same batch as above, 25 x 25 mm |
1" square kinematic mount | Edmund Optics | 58-860 | |
Glan-Taylor calcite polarizers | Thorlabs | GT5-A | For alignment of LCVR |
Glan-Taylor mount | Thorlabs | SM05PM5 | |
Achromatic half wave plate | Thorlabs | AHWP05M-600 | 400-800 nm |
Rotation cage mount | Thorlabs | CRM1/M | For HWP |
Liquid Crystal Variable Retarder | Meadowlark Optics | SWIFT | Custom built to provide full wave retardance over the range 488 to 640 nm. |
LCVR controller | Meadowlark Optics | D3060HV | Two channel high voltage controller for liquid crystal retarders |
Achromatic quarter wave plate | Meadowlark Optics | AQM-100-0545 | |
Rotation cage mount | Thorlabs | CRM1P/M | For QWP |
10 mm achromatic doublet | Thorlabs | AC080-010-A-ML | For beam expander |
200 mm achromatic doublet | Thorlabs | AC254-200-A-ML | For beam expander |
Cage XY Translators | Thorlabs | CXY1 | |
Ferroelectric spatial light modulator | Forth Dimension Displays | M0787-00249 | SXGA-3DM (IFF) Microdisplay Type M249, 1,280 x 1,024 pixels, with driver board |
SLM mounting frame | Forth Dimension Displays | M0787-10014 | Fixed to custom built aluminium mount |
Ø50.8 mm Gimbal Mirror Mount | Thorlabs | GM200/M | For SLM mounting |
Two-Axis Linear Translation Stage with Rotating Platform | Thorlabs | XYR1/M | For SLM mounting |
Rail carrier | Newport | M-PRC-3 | For SLM mounting |
Precision Optical Rail | Newport | PRL-6 | For SLM mounting |
300 mm achromatic doublet lens | Qioptiq | G322 273 322 | f = 300 mm, 31.5 mm diameter |
140 mm achromatic doublet lens | Qioptiq | G322 239 322 | f = 140 mm, 31.5 mm diameter |
Precision XY Translation Mounts | Thorlabs | LM2XY | |
Lens Mounting Adapters | Thorlabs | SM2AD32 | For mounting 31.5 mm lenses in 2" mounts |
Translation stages | Comar | 12XT65 | Dovetail, side drive |
XY Translator with Differential Drives | Thorlabs | ST1XY-D/M | for spatial filter |
Rotation cage mount | Thorlabs | CRM1/M | for spatial filter |
300 mm achromatic doublet | Thorlabs | AC508-300-A-ML | Excitation tube lens |
Automated XY stage with Z-piezo top plate | ASI | PZ-2150-XYFT-PZ-IX71 | with MS-2000 controller |
Inverted microscope frame | Olympus | IX-71 | |
Objective lens | Olympus | UAPON100XOTIRF | 100X/1.49NA |
High speed filter wheel | Prior Scientific | HF110A | with Prior ProScan III controller |
Bandpass emission filters | Semrock | FF01-525/30, FF01-676/29 | |
sCMOS camera | Hamamatsu | ORCA Flash v4.0 | |
Stage top incubator | OKO Lab | H301-K-FRAME | For live cell imaging, with Bold Line temperature and CO2 controllers |
Stainless steel optical posts | Thorlabs | TR series | for mounting optical components |
Post holders | Thorlabs | PH series | for mounting optical components |
Kinematic mirror mounts | Thorlabs | KM100 | for mounting 1" mirrors |
Shearing interferometer | Thorlabs | SI100 | |
100 nm fluorescent microspheres | Life Technologies | T-7279 | Tetraspeck |
Rhodamine 6G | Sigma Aldrich | 83697-250MG | |
8 well glass bottom dishes | ibidi | 80827 | with #1.5 coverglass |
Nunc Lab-Tek II Chambered Coverglass | Thermo Fisher Scientific | 155409 | with #1.5 coverglass |
0.01 mm microscope reticle slide | EMS | 68039-22 | |
CellLight Tubulin-GFP, BacMam 2.0 | Thermo Fisher Scientific | C10613 |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены