АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

A method is described herein for the determination of inter-Kingdom association and competition (bacterial and fungal) for adherence to virus-infected HeLa cell monolayers. This protocol can be extended to multiple combinations of prokaryotes, eukaryotes, and viruses.

Аннотация

Изучение Полимикробные взаимодействий через таксономических царств, которые включают грибы, бактерии и вирусы не были ранее рассмотрены в отношении того, как вирусные члены микробиомом влияют на последующие микробные взаимодействия с этими инфицированных вирусом клеток-хозяев. Сожительства вируса с бактериями и грибами, главным образом присутствует на поверхности слизистой оболочки полости рта и половых путей. Слизистые клетки, особенно с постоянными хроническими или стойкими латентных вирусных инфекций, может оказать существенное влияние на членов микробиомом посредством вируса изменения в количестве и типе рецепторов, выраженных. Внесение изменений в архитектуре клетки - хозяина мембраны приведет к измененному способности последующих членов нормальной флоры и условно - патогенных микроорганизмов , чтобы инициировать первый шаг в формировании биопленки, т.е. присоединения. Это исследование описывает способ количественного и визуального изучения эффекта HSV на инициирование biofilформирование м (присоединение) из S. стафилококк и C. Albicans.

Введение

Человек микробиомом включает в себя разнообразные организмы из различных таксономических царств, которые разделяют географические регионы в организме. Приверженность к поверхности клеток является важным первым шагом в формировании биопленки, которая является частью процесса микробиомом колонизации. Включенный в микробиомом могут быть вирусы, которые вызывают хронические и хронические инфекции. Хроническая инфекция клеток этими вирусами , может привести к изменению в мнимым доступности рецепторов. 1,2 Кроме того, проникновение в клетку путем внутриклеточных патогенов также может влиять на хост текучесть мембран / гидрофобность , которая в свою очередь может изменить прикрепление других членов микробиомом, в том числе бактерии и грибы , Для того, чтобы понять взаимодействия, которые могут возникнуть между этими несколькими патогенными микроорганизмами, которые совместно локализуются в одних и тех же географических регионах человеческого организма, мы должны иметь возможность изучать взаимодействие патогенных микроорганизмов, которые представляют спектр таксономических царств, присутствующих на поверхности слизистых оболочек.

т "> The Герпесвиридае семейство микробов , присутствующих в 100% людей в качестве постоянных членов микробиомом 3,4. Кроме того , они могут также быть постоянно пролил как в присутствии и в отсутствие симптомов. В частности, вируса простого герпеса-1 и вируса простого герпеса-2 (ВПГ-1 и ВПГ-2, соответственно) являются постоянными членами микробиомом в oronasopharynx и половых путей. в иммунокомпетентных лиц, как ВПГ-1 и ВПГ-2 вызывают гингивостоматит, а также генитальный герпес 5-8. на этих участках, ВПГ вызывает латентную инфекцию характеризуется хроническим персистирующим бессимптомным вирусовыделение 9. Вступление HSV в клетках приводит к изменениям в поверхностной экспрессии nectins, гепарансульфата, липидных плотах и герпесвирусов ввода посредника / некроза опухоли рецептор фактора (HVEM / TNFR) 10-25. Эти потенциально представляют собой общие рецепторы для некоторых бактерий и грибков, например , золотистого стафилококка и C. Albicans, которые в то время как условно - патогенными микроорганизмами,могут также находиться в качестве членов слизистого микробиомом из oronasopharynx 26,27. В oronasopharynx С. стафилококк и C. Albicans занимают две различные участки колонизации. В хостов с естественными зубами, слизистой оболочки полости рта разделяют HSV-1 и С. Albicans, в то время как передние носовые ноздри заняты S. стафилококк 28. Однако, несмотря на в пробирке выводы , что С. стафилококк прилипает ко рту эпителиальных клеток, 29,30 S. стафилококк нечасто изолирована от полости рта образцов при нормальной ткани присутствует 29,30. Мало что известно о половых путях со-колонизацию нишах , помимо клинических данных , что С. стафилококк связано с аэробного вагинита, характеризующийся воспалением половых органов, выделения и диспареунии, в то время как C. Albicans производит повреждения слизистой оболочки , аналогичные тому , что наблюдается в ротовой полости 31-35. Таким образом, хотя эти члены устного и генитального microbiекоторые крест таксономические царства мало известно об их взаимодействии , как это влияет на их способности инициировать образование биопленки за счет присоединения к поверхности клетки - хозяина 5. Этот протокол был эффективно применен для определения функциональных последствий совместного колонизации / инфекции.

протокол

1. HSV Штаммы и регулировать

Примечание: Рекомбинантный нерасплывающихся ВПГ-1 (KOS) gL86 и HSV-2 (нокаутов) 333gJ - с репортером активности бета-галактозидазы , используемой были предоставлены В. Twiari 36,37.

  1. Использование вируса из одной партии и хранят при -80 ° С в соотношении 1: 1 среды Игла в модификации Игла (DMEM) с 20% фетальной телячьей сыворотки (FBS) и не обезжиренного молока до использования. Перед вирусной хранения много, определяют концентрацию вируса с помощью о - нитрофенил-бета-D-галактопиранозида (ONPG) и 5-бром-4-хлор-3-индолил-бета-D-галактопиранозида (X-Gal) для анализа.
  2. Определение жизнеспособности вируса и множественности заражения (MOI) по X-Gal окрашивания для каждого экспериментального прогона анализа с использованием анализа проникновения вирусов репортер, как описано ранее (рисунок 1) 14.
  3. Развести вирус (Opt-MEM) до нужной МВД России. Fix монослоя (параформальдегид; 0,5 мл / лунку) перед окрашиванием. Поместите контроль жизнеспособности вируса в отдельном microtiтер пластины параллельно с Полимикробные планшеты для анализа.

2. HeLa 299 Cell Погрузочно-разгрузочные работы

  1. Расти при температуре 37 ° С, 5% СО 2 в DMEM с 4,5 г / л глюкозы, 10% инактивированной нагреванием фетальной бычьей сыворотки (ФБС), гентамицин (50 мкг / мл) и L-глутамина. Пассаж клетки на 80% слияния с раствором трипсина (этилендиаминтетрауксусной кислоты, 0,53 М ЭДТА; 0,05% трипсина; 5 мл / колба).

3. С. Albicans Погрузочно - разгрузочные работы

Примечание: C. Albicans , полученные из клинической лаборатории источника хранят при -80 ° С в Remmel обезжиренного молока 2x среды.

  1. Культура замороженной на Сабуро декстроза (37 ° C). Через 24 часа субкультуры C. Albicans на среду Fungisel (37 ° С; 48 ч) для использования.
  2. Сформировать зародышевой трубку (GT) формы (выбрать репрезентативные колоний, FBS 3 мл, 3 ч, 37 ° C; Abs 600, 0.3). После инкубации, моют GT (HBSS; 2x; 4000 XG). Добавьте промытый GT к подогретой HBSS (37 &# 176; C; 0.32 Abs 600). GT формы должны быть 99% клеток, наблюдаемых как определено по количеству гемоцитометра.
  3. Сделать вид дрожжей (YF) маточные суспензии, подбирая репрезентативные Fungisel колоний (HBSS, 3 мл, 0,32 Abs 600). Подсчитайте количество YF форм / мл микроскопически с помощью гемоцитометра. YF формы должны быть 99% клеток, наблюдаемых как определено по количеству гемоцитометра.
  4. Сделайте работает грибковой запас (250 мкл GT или YF запаса в 25 мл HBSS; 37 ° C; 10 5 КОЕ / мл)

4. С. стафилококк Погрузочно - разгрузочные работы

  1. Магазин С. стафилококка ATCC 25923 (-80 ° C; Remmel обезжиренного молока 2 раза). Культура на агаре с овечьей крови (5%; 37 & deg; С; 24 ч). Выберите представительные колонии и переносят в маннита солевую среду, в течение 2-х дней на складе (37 ° С; 18 ч).
  2. Сделать S. стафилококк сток подвеска (3 мл HBSS; 1,32 Abs 600; 10 8 КОЕ / мл)
    1. Совместная работа С. стафилококк акции (100 мклзапаса в 25 мл HBSS; 10 5 КОЕ / мл).

5. Кандида и S. стафилококк Суспензии

  1. Сделать смешанный C. Albicans и S. стафилококк суспензию (250 мкл YF или GT запасов и 100 мкл золотистого стафилококка запас в 25 мл HBSS).

6. Полимикробные биопленки Пробирной

  1. Семенной 96 - луночные планшеты с 200 мкл 2 х 10 5 HeLa клеток / мл (85%) уровень впадения. Рок пластины (30 - 45 мин; 37 ° С) до инкубации (37 ° C, 5% СО 2 инкубаторе; 18 ч). Вымойте монослоя (1x; Opt-MEM) , то Семя с HSV (ВПГ-1 (KOS) gL86 или HSV-2 (КОС) 33 ГДж - в 100 мкл Opt-MEM; MOI 50 и 10). Инкубируйте пластины (3 ч, 37 ° С, 5% СО 2). Используйте только один штамм вируса в день.
  2. Промыть зараженных монослоев (1x, фосфатно - солевой буфер (PBS) , с Mg + 2 и Са +2; 100 мкл). Заменить PBS с теплой HBSS оставив 25 & #181; л в каждую лунку.
    1. Добавить Ю.Ф., GT и / или S. Aureus рабочих суспензий (100 мкл, что мишень в соотношении клеток = 5: 1, N = 16). Как указано в таблице 1 Инкубируйте пластины (статические; 30 мин; 37 ° С, 5% СО 2).
  3. После инкубации аспирата один столбец в то время , немедленно заправку с 300 мкл PBS с Mg + 2 и Са +2. Повторите этот шаг дважды затем добавить радио-иммунопреципитация буфера для анализа лизиса (РИПО, стерилизовали через фильтр; 200 мкл 1:50 разведения).
  4. Быстро растирают клеточный лизат HeLa затем поместите 50 мкл на маннита солей (MS) и / Fungisel (F) средства массовой информации или (рисунок 2). Распространение лизата с использованием гнутого стекла стержня под углом 90 °. Инкубируйте пластин (18 ч при 37 ° С). Вручную подсчитывают количество колоний на чашку. Органы управления состоят из S. стафилококк и / или C. присоединение Albicans к HSV-неинфицированных клеток HeLa.

7. Исследования визуализации

  1. Промыть каждый круглый покровного стекла (12 мм, 50 мл ацетона в 100 мл химический стакан). Сухие и стерилизовать покровные (Kimwipes; стеклянные чашки Петри). Поместите сухие стерильные покровные в лунки стерильных 24-луночные планшеты с алкоголем пламени стерилизованных пинцетом.
  2. Добавить клетки HeLa (1 мл; 5x объем используется для 96-луночных планшетов) в лунки 24-луночных планшетах, содержащих вымытые стерильные круглые покровные стекла. Добавьте вируса, бактерии и грибы , в соответствии с шаблоном (таблица 2) на скорости 5х Объем , используемый для 96 - луночные планшеты, а затем инкубировать и процесс , как описано в пунктах 6.2.1 до 6.4 выше.
  3. После последней промывки, фиксации клеток для микроскопии при затоплении слайд с метанолом и позволяя ей испариться. Храните пластины при комнатной температуре до окрашивания.
  4. Для светлой микроскопии (1,000x окончательное исходное увеличение) заполняют лунки, содержащие метанол фиксировали покровные деионизированной водой. Немедленно аспирация воды. Обложка каждого покровное с кристаллическим фиолетовым граммах, Вымойте покровные свободным от не связанного красителя (деионизированная вода). Сухие покровные в месте затем придерживаться их с монтажной средой с меченым слайде жесткий набор (рисунок 3).
  5. Для флуоресцентной микроскопии (100x цели; 1,000x окончательное исходное увеличение) мыть покровные свободный от метанола, по существу, как описано в пункте 7.4. Сухие покровные в лунках.
    1. После сушки, снимите крышку слипы и поместите их на меченых горками. Затем добавьте достаточное количество 1:20 разбавления флуоресцеинизотиоцианатом (FITC) -conjugated вируса простого герпеса типа 1 + 2 антитела Б-г, чтобы покрыть покровным (1 - 5 мкл).
    2. Инкубируйте слайдов в камере влажности при 37 ° С в течение 30 мин. После инкубации промойте покровные в 4-х изменений PBS.
    3. После последней промывки, возвращают покровное к меченым слайд. Пятно с 4 ', 6-диамидино-2-фенилиндола (DAPI; камере влажности; 37 ° С в течение 30 мин). После инкубации промыть покровные в 4 чанGES ФБС, а затем прикрепить к меченым слайде с трудноизвлекаемыми установленной монтажной средой.
    4. Дайте гистологическая среда для отверждения в течение 24 ч при комнатной температуре в темноте. Изучите покровные по цели нефти на любом светлом поле микроскопа или флуоресцентного микроскопа с FITC и DAPI среза фильтров. Изучите фотографии , по крайней мере 50 полей (100 клеток на организм минимум) для совместной локализации (рисунок 4).

Результаты

Уровень надежности данных , полученных из системы , описанной в настоящем докладе показано на рисунке 2 аф 38. С помощью этой системы модуляции стафилококковой и грибковой взаимодействия с инфицированных вирусом клеток и их влияние на соблюдение друг др?...

Обсуждение

На данный момент информация не доступна на сложных взаимодействий между постоянными до полупостоянных членов принимающего микробиомом , которые пересекают несколько таксономических доменов, т.е. прокариот, эукариот и вирусные. Поэтому мы разработали роман в пробирке модель...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

This project was supported by Midwestern University, IL Office of Research and Sponsored Programs (ORSP) and Midwestern University College of Dental Medicine-Illinois (CDMI).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
C.albicans
BBL Sabouraud DextroseBD211584
Fungisel AgarDot Scientific7205A
S.aureus
Mannitol Salt AgarTroy Biologicals7143B
Sheep blood agarTroy Biologicals221239
Hela cells
1xDMEM (Dubelcco's Modified Eagle Medium, with 4.5 g/L glucose and L-glutamine, without sodium pyruvateCorning10-017-CM
Gentamicin 50mg/mlSigma139750µg/ml final concentration in the complete DMEM
Trypsin EDTA (0.05% Trypsin, 0.53M EDTA)Solution 1XCorning25-052-CI
Fetal Bovine SerumAtlanta BiologicalsS1115010% final concentration in the complete DMEM
Other medium and reagents
ONPGThermo Scientific34055
Ultra-Pure X galInvitrogen15520-018
1x HBSS (Hanks' Balanced Salt Solution)Corning20-021-CV
1XPBSDot Scientific30042-500
RIPA LysisLife Technologies89901
Staining
MethanolFisher ScientificA433P-4
HSV 1&2, specific for gDViroStat196
DAPISIGMAD8417-5MG
Gram Crystal VioletTroy Biologicals212527
Supplies
Petri dish 100X15Dot Scientific229693 
Petri dish 150X15Kord Valmark2902
96-Well platesEvergreen Scientific222-8030-01F
24-well platesEvergreen Scientific222-8044-01F
Culture tubes 100x13Thomas Scientific9187L61
Cover slip circles, 12mmDeckglaserCB00120RA1

Ссылки

  1. Palu, G., et al. Effects of herpes-simplex virus type-1 infection on the plasma-membrane and related functions of HeLa S3 cells. J Gen Virol. 75, 3337-3344 (1994).
  2. Vitiello, G., et al. Lipid composition modulates the interaction of peptides deriving from herpes simplex virus type I glycoproteins B and H with biomembranes. Biochim. Biophys. Acta-Biomembr. 1808, 2517-2526 (2011).
  3. Bradley, H., Markowitz, L. E., Gibson, T., McQuillan, G. M. Seroprevalence of Herpes Simplex Virus Types 1 and 2-United States, 1999-2010. J. Infect. Dis. 209, 325-333 (2014).
  4. Szpara, M. L., et al. Evolution and diversity in Human Herpes Simplex Virus genomes. J Virol. 88, 1209-1227 (2014).
  5. Arduino, P. G., Porter, S. R. Herpes Simplex Virus Type I infection: overview on relevant clinico-pathological features. J Oral Pathol Med. 37, 107-121 (2008).
  6. Looker, K. J., Garnett, G. P. A systematic review of the epidemiology and interaction of herpes simplex virus types 1 and 2. Sex. Transm. Infect. 81, 103-107 (2005).
  7. Taylor, T. J., Brockman, M. A., McNamee, E. E., Knipe, D. M. Herpes simplex virus. Front Biosci. 7, 752-764 (2002).
  8. Bernstein, D. I., et al. Epidemiology, clinical presentation, and antibody response to primary infection with Herpes Simplex Virus Type 1 and Type 2 in young women. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 56, 344-351 (2013).
  9. Sacks, S. L., et al. HSV shedding. Antiviral Res. 63, 19-26 (2004).
  10. Brandhorst, T. T., et al. Structure and Function of a Fungal Adhesin that Binds Heparin and Mimics Thrombospondin-1 by Blocking T Cell Activation and Effector Function. PLoS Pathog. 9, (2013).
  11. Green, J. V., et al. Heparin-Binding Motifs and Biofilm Formation by Candida albicans. Journal of Infectious Diseases. 208, 1695-1704 (2013).
  12. Khalil, M. A., Sonbol, F. I. Investigation of biofilm formation on contact eye lenses caused by methicillin resistant Staphylococcus aureus. Niger. J. Clin. Pract. 17, 776-784 (2014).
  13. Shanks, R. M. Q., et al. Heparin stimulates Staphylococcus aureus biofilm formation. Infection and Immunity. 73, 4596-4606 (2005).
  14. Tiwari, V., et al. Role for 3-O-sulfated heparan sulfate as the receptor for herpes simplex virus type 1 entry into primary human corneal fibroblasts. J Virol. 80, 8970-8980 (2006).
  15. Delboy, M. G., Patterson, J. L., Hollander, A. M., Nicola, A. V. Nectin-2-mediated entry of a syncytial strain of herpes simplex virus via pH-independent fusion with the plasma membrane of Chinese hamster ovary cells. Virol J. 3, (2006).
  16. Di Giovine, P., et al. Structure of Herpes Simplex Virus Glycoprotein D Bound to the Human Receptor Nectin-1. PLoS Pathog. 7, (2011).
  17. Hauck, C. R. Cell adhesion receptors - signaling capacity and exploitation by bacterial pathogens. Medical Microbiology and Immunology. 191, 55-62 (2002).
  18. Kramko, N., et al. Early Staphylococcus aureus-induced changes in endothelial barrier function are strain-specific and unrelated to bacterial translocation. Int. J. Med. Microbiol. 303, 635-644 (2013).
  19. Roy, S., Nasser, S., Yee, M., Graves, D. T., Roy, S. A long-term siRNA strategy regulates fibronectin overexpression and improves vascular lesions in retinas of diabetic rats. Molecular vision. 17, 3166-3174 (2011).
  20. Sato, R., et al. Impaired cell adhesion, apoptosis, and signaling in WASP gene-disrupted Nalm-6 pre-B cells and recovery of cell adhesion using a transducible form of WASp. Int. J. Hematol. 95, 299-310 (2012).
  21. Shukla, S. Y., Singh, Y. K., Shukla, D. Role of Nectin-1, HVEM, and PILR-alpha in HSV-2 entry into human retinal pigment epithelial cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 50, 2878-2887 (2009).
  22. Stump, J. D., Sticht, H. Mutations in herpes simplex virus gD protein affect receptor binding by different molecular mechanisms. J Molecu Model. 20, (2014).
  23. Zelano, J., Wallquist, W., Hailer, N. P., Cullheim, S. Expression of nectin-1, nectin-3, N-cadherin, and NCAM in spinal motoneurons after sciatic nerve transection. Experimental Neurology. 201, 461-469 (2006).
  24. Akhtar, J., et al. HVEM and nectin-1 are the major mediators of herpes simplex virus 1 (HSV-1) entry into human conjunctival epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49, 4026-4035 (2008).
  25. Heo, S. K., et al. LIGHT enhances the bactericidal activity of human monocytes and neutrophils via HVEM. J. Leukoc. Biol. 79, 330-338 (2006).
  26. . National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report. Am J Infect Control. 32, 470-485 (2004).
  27. Wisplinghoff, H., et al. Nosocomial bloodstream infections in US hospitals: analysis of 24,179 cases from a prospective nationwide surveillance study. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 39, 1093-1093 (2004).
  28. Colacite, J., et al. Pathogenic potential of Staphylococcus aureus strains isolated from various origins. Ann. Microbiol. 61, 639-647 (2011).
  29. Colombo, A. V., et al. Quantitative detection of Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis and Pseudomonas aeruginosa in human oral epithelial cells from subjects with periodontitis and periodontal health. J. Med. Microbiol. 62, 1592-1600 (2013).
  30. Merghni, A., Ben Nejma, M., Hentati, H., Mahjoub, A., Mastouri, M. Adhesive properties and extracellular enzymatic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from oral cavity. Microb Pathogen. 73, 7-12 (2014).
  31. Donders, G. G. G., et al. Definition of a type of abnormal vaginal flora that is distinct from bacterial vaginosis: aerobic vaginitis. Bjog. 109, 34-43 (2002).
  32. Li, J. R., McCormick, J., Bocking, A., Reid, G. Importance of vaginal microbes in reproductive health. Repro Sci. 19, 235-242 (2012).
  33. Jarvis, W. R. The epidemiology of colonization. Infect Cont Hosp Epidemiol. 17, 47-52 (1996).
  34. Okonofua, F. E., Akonai, K. A., Dighitoghi, M. D. Lower genital-tract infections in infertile nigerian women compared with controls. Genitourin Med. 71, 163-168 (1995).
  35. Nenoff, P., et al. Mycology - an update Part 2: Dermatomycoses: Clinical picture and diagnostics. J Der Deutschen Dermatol Gesellschaft. 12, 749-779 (2014).
  36. Hubbard, S., et al. Contortrostatin, a homodimeric disintegrin isolated from snake venom inhibits herpes simplex virus entry and cell fusion. Antivir. Ther. 17, 1319-1326 (2012).
  37. Shukla, S. Y., Singh, Y. K., Shukla, D. Role of Nectin-1, HVEM, and PILR-α in HSV-2 entry into human retinal pigment epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50, 2878-2887 (2009).
  38. Plotkin, B. J., Sigar, I. M., Tiwari, V., Halkyard, S. Herpes simplex virus (HSV) modulation of Staphylococcus aureus. and Candida albicans.initiation of HeLa 299 cell-associated biofilm. Curr Microbiol. , (2016).
  39. Alva-Murillo, N., Lopez-Meza, J. E., Ochoa-Zarzosa, A. Nonprofessional phagocytic cell receptors involved in Staphylococcus aureus internalization. Biomed Res Internat. , (2014).
  40. Calderone, R. A., Scheld, W. M. Role of fibronectin in the pathogenesis of candidal infections. Reviews of infectious diseases. 9, 400-403 (1987).
  41. Fowler, T., et al. Cellular invasion by Staphylococcus aureus involves a fibronectin bridge between the bacterial fibronectin-binding MSCRAMMs and host cell beta1 integrins. European journal of cell biology. 79, 672-679 (2000).
  42. Mao, L., Franke, J. Symbiosis, dysbiosis, and rebiosis-The value of metaproteomics in human microbiome monitoring. Proteomics. 15, 1142-1151 (2015).
  43. Christopher, R. A., Kowalczyk, A. P., McKeown-Longo, P. J. Localization of fibronectin matrix assembly sites on fibroblasts and endothelial cells. J Cell Sci. 110, 569-581 (1997).
  44. Heino, J., Kapyla, J. Cellular receptors of extracellular matrix molecules. Current Pharm Des. 15, 1309-1317 (2009).
  45. Hynes, R. O., et al. A large glycoprotein lost from the surfaces of transformed cells. Annals of the New York Academy of Sciences. 312, 317-342 (1978).
  46. Mao, Y., Schwarzbauer, J. E. Fibronectin fibrillogenesis, a cell-mediated matrix assembly process. Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology. 24, 389-399 (2005).
  47. Schwarzbauer, J. E., DeSimone, D. W. Fibronectins, their fibrillogenesis, and in vivo functions. Cold Spring Harbor perspectives in biology. 3, (2011).
  48. Abdelmegeed, E., Shaaban, M. I. Cydooxygenase inhibitors reduce biofilm formation and yeast-hypha conversion of fluconazole resistant Candida albicans. J. Microbiol. 51, 598-604 (2013).
  49. Gow, N. A. Germ tube growth of Candida albicans. Current topics in medical mycology. 8, 43-55 (1997).
  50. Liu, Y. P., Filler, S. G. Candida albicans Als3, a multifunctional adhesin and invasin. Eukaryot. Cell. 10, 168-173 (2011).
  51. Lu, Y., Su, C., Liu, H. Candida albicans hyphal initiation and elongation. Trends Microbiol. 22, 707-714 (2014).
  52. Kabir, M. A., Hussain, M. A., Ahmad, Z. Candida albicans: A model organism for studying fungal pathogens. ISRN microbiology. 2012, 538694 (2012).
  53. Ovchinnikova, E. S., Krom, B. P., Busscher, H. J., van der Mei, H. C. Evaluation of adhesion forces of Staphylococcus aureus along the length of Candida albicans hyphae. BMC Microbiol. 12, (2012).
  54. Peters, B. M., et al. Staphylococcus aureus adherence to Candida albicans hyphae is mediated by the hyphal adhesin Als3p. Microbiology-Sgm. 158, 2975-2986 (2012).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

113Candida Albicans

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены